Name: Ein Optic Nerve Crush Injury Mausmodell zur retinalen Ganglienzellen Survival Study (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-25T15:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 7 s
Description: Erfahren Sie, wie Sie ein Optic Nerve Crush Injury Mausmodell zur Analyse des Überlebens retinaler Ganglienzellen etablieren. Diese Methode nutzt retrograde Markierung und Fluoreszenzmikroskopie zur Untersuchung von Optikusneuropathien wie Glaukom.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Unsere Forschung wird durch die Interne Research Program des NIH, National Eye Institute unterstützt.

Alle Geräte und Reagenzien sind steril. Alle Tierversuche wurden von der Animal Care genehmigt und Verwenden Committee (ACUC) an der NEI / NIH (Tier Studienprotokoll NEI-570), und wurden nach den NIH-Richtlinien und Vorschriften durchgeführt. 1. Baseline Retrograde Markierung von retinalen Ganglienzellen (RGC) Am Tag 1 Der Zweck dieses Verfahrens ist es, die retinalen Ganglienzellen retrograd Etikett durch die Injektion eines neuronalen Markierungsfarbstoff in den Colliculus superior der Mäuse drei Tage vor dem Sehnerv Quetschverletzung. Der Farbstoff wird retrograd entnommen werden von den retinalen Ganglienzellen und bietet ein Marker für die Lebenden RGCs (Abbildung 1). Dieser Ansatz führt zu reproduzierbaren Kennzeichnung von lebensfähigen RGCs mit wenig Variation 1-5. <ol><li> Tief betäuben die Maus. Reinigen Sie das Haar am Oberkopf. Platzieren Sie die Maus in einem kleinen stereotaktischen Apparat. Protective Salbe ist an beiden Augen angewendet. Desinfizieren Sie die Kopfhaut jeweils dreimal mit einem Iodophor und einem 70% igem Alkohol zu schrubben. </li><li> Machen Sie einen Schnitt in der Haut am Schädel freizulegen, und halten Sie sie trocken und sauber mit 3% Wasserstoffperoxid. </li><li> Identifizieren und markieren Sie die Bregma. Bohren Sie ein Loch über dem Colliculus superior bei 2,9 mm hinter dem Bregma und 0,5 mm lateral der Mittellinie jeder Hemisphäre 7. Während des Bohrens, gelten Kochsalzlösung auf der Stelle, wo das Loch gebohrt, um sekundäre Wärme Verletzungen zu vermeiden ist. </li><li> Mit Hilfe eines stereotaktischen Messgerät und einem Hamilton Spritze die Fluorogold neuronalen Markierungsfarbstoff (1 ul von 3% Fluorochrom in Kochsalzlösung) sehr langsam in den Colliculus superior jeder Hemisphäre in einer Tiefe von 1,6 mm von der knöchernen Oberfläche des Gehirns. </li><li> Suture die Inzisionsstelle. Geben Sie eine subkutane Injektion von Buprenorphin zur Analgesie. </li><li> Bewegen Sie die Maus an einen warmen und trockenen Ort und zu überwachen, bis es in der Lage, eine aufrechte Haltung zu bewahren, und senden es an seinen eigenen Käfig ist. Für die ersten drei Tage nach der Kennzeichnung Verfahren, sind systemische Analgetika (zB Buprenorphin) und topische Antibiotika-Salbe zweimal täglich verabreicht und die Maus wird streng überwacht. </li></ol> 2. Optic Nerve Crush Injury An Tag 4 In diesem Verfahren werden wir ein Auge Verletzung des Sehnervs gelten für eine primäre Schädigung der Axone (Abb. 2), was zu einem allmählichen Absterben der retinalen Ganglienzellen führt zu verursachen. <ol><li> Drei Tage nach der Markierungsfarbstoff Anwendung ist die Maus tief narkotisiert. Mit einem Binokular ist der Bindehaut eines Auges an über die 4-Uhr-Position mit einem Paar Frühling Schere eingeschnitten. </li><li> Sanft lenken den orbitalen Muskeln und legte sie beiseite. Setzen Sie die weiße Sehnerv an seiner Austrittsstelle aus dem Auge Globus. Achten Sie besonders darauf, keine Blutgefäße beschädigen. </li><li> Mit Hilfe eines Paares von cross-action Zange, gelten verknallt Verletzung des Sehnervs bei etwa 2 mm vom Augapfel für ca. 3 Sekunden. Achten Sie besonders darauf nicht an die A. ophthalmica Schäden an Blutungen verursachen. </li><li> Nach Abschluss der Quetschverletzungen, wird der Einschnitt vernäht. </li><li> Bevor Sie die Maustaste wieder aus der Narkose, eine subkutane Injektion von Buprenorphin zur Analgesie. </li><li> Bewegen Sie die Maus an einen warmen und trockenen Ort und überwachen sie, bis sie in der Lage, eine aufrechte Haltung zu bewahren und senden es an seinen eigenen Käfig ist. Für die ersten drei Tage nach dem Quetschverletzung Verfahren, sind systemische Analgetika (zB Buprenorphin) und topische Antibiotika-Salbe zweimal täglich verabreicht und die Maus wird streng überwacht. </li></ol> 3. Ernte der Netzhaut und Analysieren RGC Überleben an Tag 11 Der Zweck dieses Verfahrens ist die Ernte der retinaeto analysieren retinalen Ganglienzellen Überleben. <ol><li> Am Tag 11 (Tag 7 nach ONC), wird die Maus durch CO 2-Infusion und Genickbruch getötet. </li><li> Die Augen sind mit Hilfe einer Pinzette durch Druck auf die Bahn entkernte. </li><li> Die Augen sind in 4% Paraformaldehyd-Lösung für 2 Stunden fixiert und gewaschen in PBS dreimal. Präparieren Sie die Netzhaut. Das Verfahren der Netzhaut Dissektion wurde bereits zuvor von JoVE im Jahr 2010 veröffentlicht durch Gustmann, S. et al. 6, und wird daher hier nicht beschrieben werden. </li><li> Bilder der überlebenden retinalen Ganglienzellen getroffen werden mit Hilfe eines Fluoreszenz-Mikroskops in definierten Regionen der Netzhaut und des retinalen Ganglienzellen Dichte gezählt werden können. Ein repräsentatives Ergebnis der Fluoreszenz-markierten retinalen Ganglienzellen mit oder ohne Sehnerv Quetschverletzung ist in Abbildung 3 dargestellt. </li></ol> 4. Repräsentative Ergebnisse: Zur Analyse retinalen Ganglienzellen Überleben, sieben Tage nach der Sehnerv Quetschverletzung wurden die Netzhäute geerntet, fixiert, abgeflacht und montiert. Netzhautbilder wurden mit einem Fluoreszenz-Mikroskop. Verglichen mit dem unverletzten normalen retina (links, Normal), ist die Anzahl der lebensfähigen RGCs (grün, retrograd durch die Fluorogold neuronale Tracer Farbstoff in den Colliculus superior injiziert beschriftet) signifikant niedriger in der Netzhaut mit einer Sehnerv Quetschverletzung (rechts, ONC) (Abbildung 3) . <img src="/files/ftp_upload/2685/2685fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Baseline retrograde Markierung von retinalen Ganglienzellen Um die lebensfähigen retinalen Ganglienzellen zu verschiedenen Zeitpunkten nach der Sehnerv Quetschverletzung zählen, sind die retinalen Ganglienzellen retrograd durch die Injektion eines neuronalen Markierungsfarbstoff (grüne Farbe) in den Colliculus superior im Gehirn drei Tage vor dem Sehnerv markierten ( rot) Quetschverletzung. Da die Axone der retinalen Ganglienzellen in den Colliculus superior befinden, wird der Tracer-Farbstoff durch die RGCs retrograd entnommen werden und stellt einen Marker für die Lebenden RGCs. <img src="/files/ftp_upload/2685/2685fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Sehnerv Quetschverletzung Um den Status der retinalen Ganglienzellen das Überleben der Zelle zu analysieren, ist eine Quetschverletzung des Sehnervs (rot), die auf eine primäre Schädigung der Axone bewirken. Dies führt zu einer allmählichen Absterben der retinalen Ganglienzellen führen. Drei Tage nach der Tracer-Farbstoff (grün) Injektion, ist die Maus narkotisiert. Die Bindehaut eines Auges ist eingeschnitten. Auslenken Orbital Muskeln und legte sie beiseite. Setzen Sie den Sehnerv an seiner Austrittsstelle aus dem Auge Globus. Tragen Sie einen Quetschverletzung des Sehnervs bei etwa 2 mm vom Augapfel für etwa 3 Sekunden unter Verwendung eines Paares von Cross-Aktion Pinzette. <img src="/files/ftp_upload/2685/2685fig3.jpg" alt="Abbildung 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 3"> Abbildung 3. Fluoreszenz-markierten retinalen Ganglienzellen mit oder ohne Sehnerv Quetschverletzung Zur Analyse retinalen Ganglienzellen Überleben, sieben Tage nach der Sehnerv Quetschverletzung wurden die Netzhäute geerntet, fixiert, abgeflacht und montiert. Netzhautbilder wurden mit einem Fluoreszenz-Mikroskop. Verglichen mit dem unverletzten normalen Netzhaut (links, Normal), wurde die Anzahl der lebensfähigen RGCs (grün, retrograd durch die Fluorogold neuronale Tracer Farbstoff in den Colliculus superior injiziert beschriftet) signifikant niedriger in der Netzhaut mit einer Sehnerv Quetschverletzung (rechts, ONC ) (Abbildung 3). Maßstabsbalken: 50 um

<ol><li>Yoles, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GM1+reduces+injury-induced+metabolic+deficits+and+degeneration+in+the+rat+optic+nerve%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">GM1 reduces injury-induced metabolic deficits and degeneration in the rat optic nerve.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 33, 3586-3591 (1992).</li>
<li>Fisher, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vaccination+for+neuroprotection+in+the+mouse+optic+nerve%3A+implications+for+optic+neuropathies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Vaccination for neuroprotection in the mouse optic nerve: implications for optic neuropathies.</a> J Neurosci. 21, 136-142 (2001).</li>
<li>Levkovitch-Verbin, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RGC+death+in+mice+after+optic+nerve+crush+injury%3A+oxidative+stress+and+neuroprotection%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">RGC death in mice after optic nerve crush injury: oxidative stress and neuroprotection.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 41, 4169-4174 (2000).</li>
<li>Li, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-B+inhibits+apoptosis+via+VEGFR-1-mediated+suppression+of+the+expression+of+BH3-only+protein+genes+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+clinical+investigation%22%5BJournal%5D)">VEGF-B inhibits apoptosis via VEGFR-1-mediated suppression of the expression of BH3-only protein genes in mice and rats.</a> The Journal of clinical investigation. 118, 913-923 (2008).</li>
<li>Tang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+effect+of+PDGF-CC+rescues+neurons+from+apoptosis+in+both+brain+and+retina+by+regulating+GSK3beta+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+experimental+medicine%22%5BJournal%5D)">Survival effect of PDGF-CC rescues neurons from apoptosis in both brain and retina by regulating GSK3beta phosphorylation.</a> The Journal of experimental medicine. 207, 867-880 (2010).</li>
<li>Gustmann, S., Dunker, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo-like+organotypic+murine+retinal+wholemount+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">In vivo-like organotypic murine retinal wholemount culture.</a> J Vis Exp. , (2010).</li>
<li>Franklin, K., Paxinos, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFranklin%2C+K+%22The+Mouse+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press. San Diego. (1997).</li>
</ol>

Der Sehnerv Quetschverletzung Mausmodell ist nützlich, um den Prozess der RGC Tod und Überleben zu untersuchen. Dieses Modell ist auch oft verwendet, um die Auswirkungen der verschiedenen Reagenzien und Gene auf RGC Apoptose und Überleben zu untersuchen. Ein Vorteil dieses Modells ist, dass es ein hohes Maß an Reproduzierbarkeit bei minimalen Variationen hat. Allerdings ist besondere Sorgfalt in mehreren Schritten in diesem Modell erforderlich. Erstens, wenn was den Sehnerv Quetschverletzung...

<table><tbody><tr><td>Stereotaktischer Apparat</td><td>ASI Instruments</td><td>SAS-4100</td><td></td></tr><tr><td>Präparationsmikroskop</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>PZMIV-BS</td><td></td></tr><tr><td>Messerskalpellgriff</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>Messerskalpellblätter Nr. 15</td><td>Fine Science Tools</td><td>10015-00</td><td></td></tr><tr><td>Mikrobohrer</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-17</td><td></td></tr><tr><td>Nahtnadel</td><td>Fine Science Tools</td><td>12050-03</td><td></td></tr><tr><td>Federschere</td><td>Fine Science Tools</td><td>16144-13</td><td></td></tr><tr><td>Dumont Nr. 5 Pinzette</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-50</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton-Spritze</td><td>Hamilton Co</td><td>88400</td><td></td></tr><tr><td>Gazetupfer</td><td>Office Depot</td><td>674889</td><td></td></tr><tr><td>Fluorochrom</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>39286</td><td></td></tr><tr><td>Alkohol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>459844</td><td>70%</td></tr><tr><td>H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3410</td><td>3%</td></tr></tbody></table>

ein optic nerve crush injury mausmodell zur retinalen ganglienzellen survival study

An Optic Nerve Crush Injury Murine Model to Study Retinal Ganglion Cell Survival

Eine Verletzung des Sehnervs kann die axonale Degeneration führen, gefolgt von einer allmählichen Tod von retinalen Ganglienzellen (RGC), die zu einer irreversiblen Verlust der Sehkraft führt. Beispiele für solche Krankheiten in menschlichen gehören traumatische Optikusneuropathie und Sehnerv-Degeneration bei Glaukom. Es ist durch die typischen Veränderungen im Sehnervenkopf, progressive Degeneration des Sehnervs und der Verlust von retinalen Ganglienzellen, wenn unkontrolliert, was zu Sehverlust und Erblindung aus. Der Sehnerv crush (ONC) Verletzungen Mausmodell ist eine wichtige experimentelle Krankheit Modell für traumatische Optikusneuropathie, Glaukom, etc. In diesem Modell das Gedränge Verletzung des Sehnervs führt zur allmählichen retinalen Ganglienzellen Apoptose. Diese Krankheit Modell kann verwendet werden, um die allgemeinen Prozesse und Mechanismen der neuronalen Tod und Überleben, die wesentlich für die Entwicklung von therapeutischen Maßnahmen ist zu studieren. Darüber hinaus können pharmakologische und molekularbiologische Ansätze in diesem Modell verwendet werden, um zu identifizieren und zu testen potenzielle therapeutische Reagenzien für verschiedene Arten von Optikusneuropathie zu behandeln. Hier bieten wir Ihnen eine Schritt für Schritt Demonstration von (I) Baseline retrograde Markierung von retinalen Ganglienzellen (RGC) am Tag 1, (II) Sehnerv Quetschverletzung am Tag 4, (III) Ernte der Netzhaut und zu analysieren RGC Überleben am Tag 11, und (IV) repräsentatives Ergebnis.

Dieses Protokoll zeigt, wie man retrograd Label retinalen Ganglienzellen, und wie man später machen ein Sehnerv Quetschverletzung um retinalen Ganglienzellen Überleben und Apoptose zu analysieren. Es ist eine experimentelle Krankheit Modell für verschiedene Arten von Optikusneuropathie, einschließlich Glaukom.

Ein Optic Nerve Crush Injury Mausmodell zur retinalen Ganglienzellen Survival Study

Eine Verletzung des Sehnervs kann zu einer axonalen Degeneration führen, gefolgt von einem allmählichen Absterben der retinalen Ganglienzellen (RGCs), was zu einer irreversiblen ...

Dieses Verfahren demonstriert die Verletzung des Sehnervs durch Quetschung und die anschließende Analyse des Überlebens retinaler Ganglienzellen in einem Mausmodell. Dies wird erreicht, indem ein fluoreszierender Farbstoff in den Colliculus superior injiziert wird. Am ersten Tag wird der Farbstoff retrograd zu den retinalen Ganglienzellen transportiert, um diese Zellpopulation in einem zweiten Schritt zu markieren.Am vierten Tag wird eine Quetschverletzung des Sehnervs verursacht, um eine Degeneration des Sehnervs auszulösen, die zu einem schleichenden Absterben der retinalen Ganglienzellen führt. Am elften Tag wird die Netzhaut präpariert, um das Überleben der retinalen Ganglienzellen zu untersuchen. Das Ergebnis dieses Verfahrens zeigt die Anzahl der verbliebenen vitalen retinalen Ganglienzellen an, basierend auf einer Zählung der mit Fluora Gold markierten retinalen Ganglienzellen, die mittels Fluoreszenzmikroskopie durchgeführt wurde.Hallo, ich komme aus der Dr.Lab am National Eye Institute, NIH. Ich werde Ihnen nun zeigen, wie man das Maus-Modell der optischen Nervenquetschverletzung durchführt. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie eine einfache, stabile und

an-optic-nerve-crush-injury-murine-model-to-study-retinal-ganglion

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Optic Nerve Durchtrennung ist eine weit verbreitete Modell der erwachsenen ZNS-Verletzung. Neunzig Prozent der retinalen Ganglienzellen (RGC), deren Axone sind vollständig durchtrennt (Axotomie) sterben innerhalb von 14 Tagen nach Axotomie. Dieses Modell ist leicht zugänglich experimentelle Manipulationen und hoch reproduzierbar.

Optic Nerve Durchtrennung: Ein Modell des Adult Neuron Apoptose in das zentrale Nervensystem

Optic Nerve Durchtrennung ist eine weit verbreitete Modell der erwachsenen ZNS-Verletzung. Dieses Modell ist ideal für die Durchführung einer Reihe von experimentellen Manipulationen, die die Netzhaut Ziel global oder direkt auf den verletzten neuronalen Population von retinalen Ganglienzellen.

Methoden für die experimentelle Manipulationen nach Optic Nerve Durchtrennung im Säuger-ZNS

Dieses Video zeigt ein Verfahren, mit einem klinischen 3 T Scanner, für kontrastverstärkte MR-Bildgebung des naiven Maus visuelle Projektion und für sich wiederholende und Längs in-vivo-Studien der Sehnerv-Degeneration mit akuter Sehnerven Quetschverletzung und chronische Degeneration des Sehnervs an assoziierten Knock-out-Mäusen (p50 KO).

In-vivo-Imaging von Optic Nerve Fiber Integrität von Contrast-Enhanced MRI in Mäuse

Das Ziel des Protokolls ist es, photochemisch induzieren ischämischen Schädigung des hinteren Sehnervs bei Ratten. Dieses Modell ist für Studien der Pathophysiologie der hinteren ischämischer optischer Neuropathie und therapeutischen Ansätzen für diese und andere Optikusneuropathien sowie anderer ZNS-ischämischen Erkrankungen.

Rattenmodell der photochemisch-induzierte Posterior ischämische Optikusneuropathie

Das Glaukom ist durch eine Schädigung der retinalen Ganglienzellen gekennzeichnet. Die Induktion des Glaukoms in Tiermodellen kann Aufschluss über die Erforschung dieser Krankheit geben. Hier skizzieren wir ein Verfahren, das den Verlust von RGCs in einem in vivo Rattenmodell induziert und die Vorbereitung von Whole-Mount-Netzhäuten für die Analyse demonstriert.

Glaucoma auslösende Verfahren in ein<em&gt; In Vivo</em&gt; Rat Modell und Whole-mount Retina Vorbereitung

Dieser Artikel beschreibt ein Verfahren für die retinale Ischämie-Reperfusionsverletzung von erhöhtem Augeninnendruck bei Mäusen zu induzieren. Retinaler Ischämie-Reperfusionsschaden durch erhöhten Augeninnendruck dient menschlichen Krankheiten zu modellieren, indem kompromittiert Sauerstoff- und Nährstoffversorgung in der Retina gekennzeichnet, so dass die Forscher potentielle zelluläre Mechanismen und Therapien für menschliche Erkrankungen der retinalen Gefäß-Nerven-Einheit zu untersuchen.

Ein Maus-Modell der Netzhautischämie-Reperfusionsschaden Durch Erhöhung des intraokularen Druck

Sekundäre Degeneration der retinalen Ganglienzellen (Routinggruppenconnectors) tritt häufig bei Glaukom. Diese Studie beschreibt eine innovative operative Vorgehensweise für partielle Sehnerv Durchtrennung. Die Verwendung dieses platzsparende operativen Ansatzes erstreckt sich das Modell Einsatzbereich und ermöglicht Erforschung der sekundären Verletzungen Mechanismen in Routinggruppenconnectors in einer neuen Weise.

Partielle Sehnerv Durchtrennung bei Ratten: ein Modell gegründet mit einem neuen operativen Ansatz zur sekundären Degeneration der retinalen Ganglienzellen bewerten

In diesem Artikel werden detaillierte Anweisungen zur Durchführung einer Sehnervenquetschung in einem Kaninchenmodell unter Verwendung von Standard-ophthalmochirurgischen Techniken vorgestellt.

Ein chirurgischer Ansatz zur Quetschung des Sehnervs in einem Kaninchenmodell

Dieser Artikel enthält eine Beschreibung, wie zu sezieren und Datensatz aus der isolierten Netzhaut Vorbereitung in der Maus. Insbesondere beschreiben wir, wie Licht von Antworten eines fluoreszenzmarkierten Ganglienzelle Bevölkerung aufzunehmen und anschließend zu identifizieren und zu analysieren, ihre Morphologie.

Eine isolierte Retinal Vorbereitung auf leichte Ansprache aus genetisch markierten retinalen Ganglienzellen Rekord

Direkte Injektion in den Sehnerv der Ratte ist nützlich für die regenerative Forschung. Wir demonstrieren eine minimal-invasive Technik zur direkten Injektion in einen Sehnerv der Ratte, bei der der Schädel nicht geöffnet werden muss. Mit dieser Methode werden chirurgische Komplikationen minimiert und die Genesung ist schneller.

Minimal-invasive Technik für die Injektion in Ratten-Optic Nerve

Erfahren Sie, wie Sie ein Optic Nerve Crush Injury Mausmodell zur Analyse des Überlebens retinaler Ganglienzellen etablieren. Diese Methode nutzt retrograde Markierung und Fluoreszenzmikroskopie zur Untersuchung von Optikusneuropathien wie Glaukom.

Ein Optic Nerve Crush Injury Mausmodell zur retinalen Ganglienzellen Survival Study

Weitere Videos entdecken