Name: Gewebe-Simulation Phantoms zur Bestimmung der potentiellen Near-Infrarot-Fluoreszenz-Imaging-Anwendungen in Brustkrebschirurgie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 5 s
Description: Erfahren Sie die Anwendung von Nahinfrarot-Fluoreszenz-Imaging in der Brustkrebschirurgie mittels gewebeähnlicher Phantome. Diese Methode ermöglicht die präzise intraoperative Tumorlokalisation und Bewertung chirurgischer Ränder.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diese Arbeit wurde durch einen Zuschuss der Jan Kornelis de Cock Stiftung unterstützt.

1. Erstellen Sie Silikonformen für Tumor-Simulation Einschlüsse <ol><li> Sammeln feste Materialien in der gewünschten Form und Größe, die als Modelle für die Tumor-Simulation Einschlüsse, zB, Perlen oder Murmeln dienen kann. </li><li> Die Tumormodelle gründlich reinigen. Um eine einfache Entnahme aus der Silikonform können die Tumormodellen mit Antihaftspray besprüht oder mit einer dünnen Schicht Vaseline oder Wachs überzogen werden. </li><li> Legen Sie jedes Modell in einer separaten dünnwandige Rechteck (Kunststoff)-Box mit einer glatten Oberfläche. Falls erforderlich, fixieren das Modell auf der Unterseite der Box, um sie in Position zu halten. Verwenden Sie eine Box, die etwas größer als die Tumormodell selbst zu verschwenden übermäßige Mengen von Silikon ist. </li><li> Die erforderliche Menge von Silikon-Komponente A in eine Schüssel und fügen Silikon Komponente B in einem 10: 1-Verhältnis von Gewicht. Beide Komponenten. Wahlweise kann eine Vakuumpumpe verwendet werden, um Luftblasen aus der Siliconmischung zu entfernen. </li><li> Sanft pour die Silikonmischung in der Kunststoff-Box von Luftblasen zu verhindern. Das Silicongemisch innerhalb 45 Minuten verarbeitet werden, um optimale Ergebnisse zu erhalten. </li><li> Lassen Sie die Silikonmischung verfestigen für mindestens 6 Stunden vor dem Schneiden der Form und Entfernen des Tumormodell. Optional kann die Silikonform in einer Zick-Zack-Muster geschnitten werden, damit sie wieder zusammen passen sauber. Maximale Festigkeit des Silicon wird nach 3 Tagen erreicht. </li></ol> 2. Erstellen Tris-gepufferte Kochsalzlösung <ol><li> Erstellung einer Tris-gepufferten Kochsalzlösung (TBS) Lösung durch Zugabe von 6,1 g (50 mM) Tris und 8,8 g (150 mM) NaCl zu 800 ml entionisiertem Wasser. </li><li> Geben Sie 1,0 g (15 mmol) NaN 3 zu Oxygenierung des Hämoglobins (Schritt 3.3 und 4.4) zu blockieren und um das Bakterienwachstum zu hemmen. ACHTUNG: NaN 3 ist eine schwere Gift. Es kann tödlich in Kontakt mit der Haut oder beim Verschlucken. Die Toxizität dieser Verbindung ist vergleichbar mit der löslichen Alkali Cyanide und die letale Dosis für einen erwachsenen Menschenetwa 0,7 g beträgt. Beachten Sie unbedingt die Sicherheitshinweise, wie vom Hersteller bereitgestellt. </li><li> Den pH-Wert auf 7,4 und bringen das Volumen auf 1.000 ml mit VE-Wasser. </li></ol> 3. Erstellen Fluorescent Einschlüsse <ol><li> 2 g Agarose auf 50 ml TBS mit Schritt 2. Die höheren Schmelzpunkt, verglichen mit Gelatine-Agarose (Schritt 4.2) werden die Einschlüsse von Auflösen und undichte Fluoreszenzfarbstoff, wenn in geschmolzene Gelatine gegeben verhindern. Gegebenenfalls kann die Menge des zugesetzten Agarose 1 oder 3 g geändert werden, um weichere oder tastbaren Tumor Einschlüsse bzw. erhalten. </li><li> Erhitzen Sie die Agarose-Brei mit Hilfe einer Mikrowelle, bis der Siedepunkt erreicht ist. Gut durchrühren, bis die Agarose vollständig gelöst ist. </li><li> Fügen 1,1 g (17 mmol) Hämoglobin und 5 ml Intralipid 20% in 50 ml TBS unter konstantem Rühren gelöst, um die Agarose-Mischung, um die optischen Eigenschaften des umgebenden Brustgewebes Phantom (Schritt 4) ähneln. </li><li> Fügen 20,0 mg (250,8 mmol) des Fluoreszenzfarbstoffs Indocyaningrün auf 83,8 ml VE-Wasser. Sicherstellen, daß der Farbstoff vollständig gelöst ist. </li><li> Pipette 5,0 ml von dieser Lösung, und es an die Agarose-Mischung hinzu, um eine Endkonzentration von 14 uM erhalten. Gegebenenfalls können andere Fluoreszenzfarbstoffe als ICG falls mit ihren eigenen optimalen Konzentration verwendet werden. </li><li> Sanft füllen die Silikonformen in Schritt 1 mit der heißen Agarose-Gemisch mit einer Spritze (1A) erzeugt. Wiederholen Sie diesen Vorgang, bis alle Formen gefüllt sind. </li><li> Lassen Sie die Leuchtstoffeinschlüsse erstarren bei RT für etwa eine Stunde. Schützen Sie die Einschlüsse von Licht durch die die gesamte Form mit Aluminiumfolie. </li><li> Nach dem Erstarren, öffnen Sie vorsichtig die Form, und drücken Sie die Aufnahme (Abbildung 1B). Optional können Sie die Spitze der Spritze, um kleine Tropfen geschmolzener Agarose-Mischung auf der Oberfläche der Aufnahme beantragen. Durch Wiederholen dieses Vorgangs mehrmals an der gleichen Stelle, kleine tumor Sporen können erstellt werden, um infiltrative Tumoren simulieren. </li><li> Schützen Sie die Agarose-Einschlüsse aus Licht und Austrocknung durch Einwickeln in Aluminiumfolie und speichern sie in einer feuchten Vorratsbehälter bei 4 ° C. HINWEIS: Die Verwendung von niedrigeren oder höheren Konzentrationen als Fluoreszenzfarbstoff der bekannten Konzentration optimale Ergebnis werden beide in verminderter Intensität Fluoreszenzsignal. Die scheinbar eingängig Verringerung der Signalintensität mit zunehmender Farbstoffkonzentrationen oberhalb der optimalen Fluoreszenzfarbstoffkonzentration aufgrund eines Phänomens, wie Abschrecken bekannt. Bei der Beurteilung der maximalen Eindringtiefe von einem fluoreszierenden Farbstoff in Phantome, mit der optimalen Konzentration ist erforderlich. </li></ol> 4. Erstellen Brust Phantoms <ol><li> Besorgen Sie sich eine becherförmige Form auf Brust Phantome der gewünschten Größe und Volumen, zB ein Glas oder Kunststoffbehälter zu schaffen. Die Form sollte eine glatte Oberfläche aufweisen, um die Gelatineform zu der Form anhaftet. Eine Form volume von 500 ml an Brustkrebs Phantome von ausreichender Größe zu schaffen. </li><li> Um eine Brust Phantom mit einem Volumen von 500 ml zu erstellen, fügen Sie 50 g Gelatine 250 Bloom 500 ml TBS (Schritt 2). Wärme die Gelatine Aufschlämmung auf 50 ° C unter konstantem Rühren. </li><li> Sobald die Gelatine vollständig gelöst ist, können die Gelatinemischung allmählich abkühlen und halten es auf einer konstanten Temperatur von 35 ° C unter Verwendung eines heißen Wasserbades. </li><li> Unter konstantem Rühren werden 5,5 g (85 mmol) Rinderhämoglobin und 25 ml Intralipid 20%, um die Absorption und Streuung von Photonen in Gewebe zu simulieren sind. </li><li> Vorkühlung des becherförmigen Form bei 4 ° C für mindestens 1 Stunde. Neben der Stockgelatinemischung in der Form auf eine Ebene, die zu der vorgegebenen Tiefe des Tumor Agarosegel-Simulation Aufnahme (1C) entspricht. Lassen Sie das Gelatinegemisch verfestigt bei 4 ° C für 30 min bis eine Stunde. </li><li> Nach dem Erstarren Stellung eine tumor Simulation Fluoreszenz Agarose Aufnahme auf der Oberfläche<html> Das Phantom und vorübergehend fixieren die Aufnahme mit einer kleinen Nadel. Bis zu einem Maximum von drei tumor Simulation Fluoreszenz Einschlüsse in einem Brustphantoms eingearbeitet werden. Ausreichend Platz (mindestens 5 cm) sollte zwischen den einzelnen Tumor-Simulation enthalten (1D) gehalten werden. </li><li> Gießen des Rests des warmen Gelatinemischung in dem verbleibenden Formvolumens, so dass die Einhaltung der beiden Schichten, ohne Brechung Artefakte. Markieren Sie die Position der fluoreszierenden Tumor-Simulation Einschlüsse auf der Form. Lassen Sie die Phantom erstarren O / N bei 4 ° C. </li><li> Einmal verfestigte, entfernen Sie die für temporäre Fixierung der Einschlüsse verwendeten Nadeln und entfernen Sie vorsichtig die Brust Phantom von seiner Form (1E). Schutz der Brust Phantom von Licht und Austrocknung durch das Einwickeln in Aluminiumfolie und speichern sie in einer feuchten Vorratsbehälter bei 4 ° C. </li></ol><html> ure 1 &quot;fo: content-width =&quot; 5in &quot;src =&quot; / files / ftp_upload / 51776 / 51776fig1highres.jpg &quot;width =&quot; 500 &quot;/&gt; Figur 1 aufeinanderfolgenden Schritte der Schaffung Brust Phantome mit fluoreszierenden Tumor simulierende Einschlüsse. Nachdem Silikonformen von der gewünschten Form und Größe, die Formen mit geschmolzener Agarose-Gemisch mit einer Spritze (A) gefüllt. Tumor-Simulation Einschlüsse unterschiedlicher Größe und Form wurden in der aktuellen Studie (B) hergestellt. Als nächstes wird eine dünne Schicht der geschmolzenen Gelatine-Mischung in einem angepassten beschichteten Holzbrustform (C) gegossen. Nach dem Erstarren werden die Tumor-Simulation Einschlüssen angeordnet ist, vorübergehend fixiert, und mit einer weiteren Schicht aus geschmolzener Gelatine-Mischung (D) bedeckt. Nach dem Erstarren wird das Brustphantom vorsichtig aus der Form (E) entfernt wird. Das Phantom kann dann zur Simulation verschiedener NIRF Imaging-Anwendungen (F) angewendet werden.ref = &quot;/ files / ftp_upload / 51776 / 51776fig1highres.jpg&quot; target = &quot;_blank&quot;&gt; Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen. 5. Stellen Sie die NIRF-Kamera-System <ol><li> Ein NIRF Kamerasystem für die intraoperative Anwendung zur Simulation gezielte NIRF Bildgebung in der Brustkrebs-Operation erforderlich. Mehrere NIRF bildgebende Systeme für Echtzeit-Bildgebung intraoperative NIRF sind derzeit für Forschungszwecke zur Verfügung. Obwohl einige Unterschiede zwischen diesen Geräten vorhanden sind, enthalten sie alle eine Anregungslichtquelle (zur Anregung der fluoreszierenden Tumor Einschlüsse) und eine hochempfindliche Abbildungsvorrichtung zum Erfassen der emittierten Photonen. </li><li> Achten Sie darauf, eine Anregungslichtquelle eines ausreichenden Wellenlänge zu verwenden. Für die Tumor-Simulation Einschlüsse enthalten ICG, verwenden Sie eine Anregungslichtquelle (zB Laser), die Photonen zwischen 750 und 800 nm emittiert. Wenn eine alternative Fluoreszenzfarbstoff verwendet wird, sollte die Anregungswellenlänge eingestellt entsprechen den ma werden<html> Anweisungen hersteller ist. </li><li> Falls die NIRF Kamerasystem enthält einen Emissionsfilter, um unerwünschte Hintergrundsignale, stellen Sie sicher, dass der richtige Filter verwendet wird. Für die Tumor-Simulation Einschlüsse enthalten ICG, verwenden Sie ein Emissionsfilter zwischen 800 und 850 nm auf. Alternative fluoreszierende Farbstoffe können unterschiedliche Emissionsfilter erfordern, je nach Angaben der Hersteller. HINWEIS: Stellen Sie sicher, dass es Nullüberdeckung zwischen der Anregung und der Emissionswellenlängen, um übersättigte Bilder zu verhindern. Darüber hinaus kann die Bildaufnahmezeit justiert werden, um eine optimale Fluoreszenzbilder zu erhalten. Im Falle von tief sitzenden Fluoreszenz Einschlüsse oder schwache Fluoreszenzsignale kann die Bildaufnahmezeit bis zu mehreren Sekunden erhöht min. Im Fall von oberflächlichen Einschlüsse oder starke Fluoreszenzsignale kann Akquisitionszeit bis zu mehreren ms verringert werden, um für Video-Rate Fluoreszenz-Bildgebung in Echtzeit zu ermöglichen. </li></ol>e &quot;&gt; 6. Simulation von NIRF Imaging-Anwendungen in Brustkrebschirurgie <ol><li> Nehmen Sie die Gewebe-Simulation Brust Phantom aus seinem Behälter und legen Sie sie auf eine flache Oberfläche nicht fluoreszierend. Nächsten, positionieren Sie den NIRF Abbildungsgerät über der Brust Phantom, so dass ein ausreichender Arbeitsabstand für Exzision der Tumor-Simulation Einschlüsse. </li><li> Lokalisierung des Tumors-Simulation mit fluoreszierenden Einbeziehung NIRF Bildgebung und / oder Palpation der Phantom Brust. Falls kein Fluoreszenzsignal detektiert werden kann, wird die Aufnahme entweder zu tief im Phantom für die Detektion oder die Bildgewinnungszeit zu erhöhen positioniert. </li><li> Sobald die Aufnahme lokalisiert ist, einschneiden die Phantom Brust und entfernen den Tumor-Simulation der Einbeziehung in die Echtzeit-NIRF-Führung mit konventionellen chirurgischen Instrumenten. Alternativ kann die Aufnahme, kann ausgeschnitten allein durch visuelle Inspektion und Abtasten der Brust Phantom geführt werden, um den Standard-of-Care zu simulieren. </li><li> Direkt nach der Entnahmedes Tumor-Simulation Eingliederung, Bild der Operationshöhle für jede verbleibende Fluoreszenzaktivität anzeigt unzureichende Exzision. </li><li> Im Falle einer verbleibenden Fluoreszenzaktivität, Verbrauchs die Aufnahme Rest unter direkter Anleitung NIRF bis kein Fluoreszenzsignal übrig ist. </li><li> Bild die ausgeschnittenen Phantom Fragmente NIRF geführte makroskopische Marge Zustandsbewertung zu simulieren. Hierzu schneiden die Phantom Gewebe in 3-5 mm Platten und Bild die Plaques entsprechend. Fluoreszenzsignal bis in den operativen Margen weist auf die Existenz von positiven operativen Margen. </li></ol>

<ol><li>Bellon, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ACR+Appropriateness+Criteria%C2%AE+Conservative+Surgery+and+Radiation+-+Stage+I+and+II+Breast+Carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22The+Breast+Journal%22%5BJournal%5D)">ACR Appropriateness Criteria® Conservative Surgery and Radiation - Stage I and II Breast Carcinoma.</a> The Breast Journal. 17 (5), 448-455 (2011).</li>
<li>Kaufmann, M., Morrow, M., Von Minckwitz, G., Harris, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Biedenkopf+Expert+Panel+Members.+Locoregional+treatment+of+primary+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">The Biedenkopf Expert Panel Members. Locoregional treatment of primary breast cancer.</a> Cancer. 116, 1184-1191 (2010).</li>
<li>Pleijhuis, R. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Obtaining+adequate+surgical+margins+in+breast-conserving+therapy+for+patients+with+early-stage+breast+cancer%3A+current+modalities+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22The+Annals+of+Surgical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Obtaining adequate surgical margins in breast-conserving therapy for patients with early-stage breast cancer: current modalities and future directions.</a> The Annals of Surgical Oncology. 16, 2717-2730 (2009).</li>
<li>Singletary, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+margins+in+patients+with+early-stage+breast+cancer+treated+with+breast+conservation+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Surgery%22%5BJournal%5D)">Surgical margins in patients with early-stage breast cancer treated with breast conservation therapy.</a> American Journal of Surgery. 184 (5), 383-393 (2002).</li>
<li>Jacobs, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Positive+margins%3A+the+challenge+continues+for+breast+surgeons%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Surgical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Positive margins: the challenge continues for breast surgeons.</a> Annals of Surgical Oncology. 15 (5), 1271-1272 (2008).</li>
<li>Krekel, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excessive+resections+in+breast-conserving+surgery+a+retrospective+multicentre+study%5BTitle%5D)+AND+%22The+Breast+Journal%22%5BJournal%5D)">Excessive resections in breast-conserving surgery a retrospective multicentre study.</a> The Breast Journal. 17 (6), 602-609 (2011).</li>
<li>Wood, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Close%2Fpositive+margins+after+breast-conserving+therapy%3A+additional+resection+or+no+resection%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Breast%22%5BJournal%5D)">Close/positive margins after breast-conserving therapy: additional resection or no resection?</a> Breast. 22, 115-117 (2013).</li>
<li>Van Dam, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraoperative+tumor-specific+fluorescence+imaging+in+ovarian+cancer+by+folate+receptor-%CE%B1+targeting%3A+first+in-human+results%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">Intraoperative tumor-specific fluorescence imaging in ovarian cancer by folate receptor-α targeting: first in-human results.</a> Nature Medicine. 17 (10), 1315-1319 (2011).</li>
<li>Pleijhuis, R. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Near-infrared+fluorescence+%28NIRF%29+imaging+in+breast-conserving+surgery%3A+assessing+intraoperative+techniques+in+tissue-simulating+breast+phantoms%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Surgical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Near-infrared fluorescence (NIRF) imaging in breast-conserving surgery: assessing intraoperative techniques in tissue-simulating breast phantoms.</a> European Journal of Surgical Oncology. 37 (1), 32-39 (2011).</li>
<li>Baeten, J., Niedre, M., Dunham, J., Ntziachristos, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+fluorescent+materials+for+Diffuse+Fluorescence+Tomography+standards+and+phantoms%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Express%22%5BJournal%5D)">Development of fluorescent materials for Diffuse Fluorescence Tomography standards and phantoms.</a> Optics Express. 15 (14), 8681-8694 (2007).</li>
<li>Luker, G. D., Luker, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+imaging%3A+current+applications+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nuclear+Medicine%22%5BJournal%5D)">Optical imaging: current applications and future directions.</a> Journal of Nuclear Medicine. 49 (1), 1-4 (2007).</li>
<li>Keereweer, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+image-guided+surgery+-+Where+do+we+stand%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Imaging+Biology%22%5BJournal%5D)">Optical image-guided surgery - Where do we stand?</a> Molecular Imaging Biology. 13 (2), 199-207 (2011).</li>
<li>Themelis, G., Yoo, J. S., Soh, K. S., Shulz, R., Ntziachristos, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+intraoperative+fluorescence+imaging+system+using+light-absorption+correction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Real-time intraoperative fluorescence imaging system using light-absorption correction.</a> Journal of Biomedical Optics. 14 (6), 064012(2009).</li>
<li>Themelis, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhancing+surgical+vision+by+using+real-time+imaging+of+%CE%B1v%CE%B23-integrin+targeted+near-infrared+fluorescent+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Surgical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Enhancing surgical vision by using real-time imaging of αvβ3-integrin targeted near-infrared fluorescent agent.</a> Annals of Surgical Oncology. 18 (12), 3506-3513 (2011).</li>
<li>De Grand, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-like+phantoms+for+near-infrared+fluorescence+imaging+system+assessment+and+the+training+of+surgeons%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Tissue-like phantoms for near-infrared fluorescence imaging system assessment and the training of surgeons.</a> Journal of Biomedical Optics. 11 (1), 014007(2006).</li>
<li>Intes, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time-domain+optical+mammography+SoftScan%3A+initial+results%5BTitle%5D)+AND+%22Academic+Radiology%22%5BJournal%5D)">Time-domain optical mammography SoftScan: initial results.</a> Academic Radiology. 12 (10), 934-947 (2005).</li>
<li>Kirsch, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+spatially+and+temporally+restricted+mouse+model+of+soft+tissue+sarcoma%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Medicine%22%5BJournal%5D)">A spatially and temporally restricted mouse model of soft tissue sarcoma.</a> Nature Medicine. 13 (8), 992-997 (2007).</li>
<li>Tafreshi, N. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+detection+of+breast+cancer+lymph+node+metastasis+using+carbonic+anhydrases+IX+and+XII+targeted+imaging+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Noninvasive detection of breast cancer lymph node metastasis using carbonic anhydrases IX and XII targeted imaging probes.</a> Clinical Cancer Research. 18 (1), 207-219 (2012).</li>
<li>Nguyen, Q. T., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence-guided+surgery+with+live+molecular+navigation+-+a+new+cutting+edge%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cancer%22%5BJournal%5D)">Fluorescence-guided surgery with live molecular navigation - a new cutting edge.</a> Nature Reviews Cancer. 13 (9), 653-662 (2013).</li>
<li>Orosco, R. K., Tsien, R. Y., Nguyen, Q. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+imaging+in+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Reviews+in+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Fluorescence imaging in surgery.</a> IEEE Reviews in Biomedical Engineering. 6, 178-187 (2013).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts zu offenbaren.

Wir simulieren mögliche klinische Anwendungen der NIRF-BCS geführt durch die Verwendung von Brust-förmigen Phantome mit integrierter Tumor-Simulation Einschlüsse. Intraoperativen Tumorlokalisation, NIRF geführte Tumorentfernung, Bewertung über das Ausmaß der Operation und der postoperativen Beurteilung der operativen Margen wurden alle gefunden machbar mit einem individuell bauen NIRF Kamera-System. Nichtinvasiven Nachweis von fluoreszierenden Tumor simulierende Einschlüsse nur für Einschlüsse im Phantom Gewebe in einer...

Brust-Operation (BCS), gefolgt von einer Strahlentherapie ist die Standard-Behandlung für Brustkrebs-Patientinnen mit T1-T2 Mammakarzinom 1,2. Ungenauigkeiten in der intraoperativen Beurteilung des Ausmaßes der Operation zu positiven operativen Margen in 20 bis 40% der Patienten, die BCS unterzog, erfordern zusätzliche chirurgische Eingriffe oder Strahlentherapie 3,4,5. Obwohl umfangreiche Resektion des angrenzenden gesunden Brustgewebe kann die Häufigkeit der positiven operativen Margen reduzieren, wird dies auch behindern kosmetische Ergebnis und erhöhen Komorbidität 6,7. Neue Techniken sind daher notwendig, dass die intraoperative Rückmeldungen über die Lage des Primärtumors und dem Ausmaß der Operation zu schaffen. Die optische Bildgebung, insbesondere im nahen Infrarot-Fluoreszenz (NIRF) Bildgebung, könnte die Häufigkeit der positiven operativen Margen folgende BCS durch die Bereitstellung der Chirurg mit einem Werkzeug für Pre-und intraoperativen Tumorlokalisation in r reduzierenEAL-Zeit. Kürzlich berichteten unserer Gruppe auf dem ersten in-Studie am Menschen von Tumor-Fluoreszenz-Imaging gezielt bei Eierstockkrebs-Patienten, die die Machbarkeit dieser Technik, um Primärtumoren und Metastasen intraperitoneale mit hoher Empfindlichkeit 8 zu erkennen. Bevor zu klinischen Studien bei Patientinnen mit Brustkrebs, aber der Durchführbarkeit der verschiedenen Tumor gerichtet NIRF Imaging-Anwendungen im BCS bereits präklinisch mit Phantomen ausgewertet werden. Die folgenden Forschungsprotokoll beschreibt die Verwendung von NIRF Bildgebung in Gewebe-Simulation Brust Phantome mit fluoreszierenden Tumor-Simulation Einschlüsse 9. Die Phantome ein kostengünstiges und vielseitiges Werkzeug, um prä-und intraoperativen Tumorlokalisierung, Echtzeit-NIRF-geführte Tumorentfernung, Beurteilung des chirurgischen Marge Status und Nachweis von Resterkrankung simulieren. Die gallertartige Phantome elastische Eigenschaften ähnlich dem menschlichen Gewebe und kann mit üblichen s geschnitten werdenurgical Instrumente. Während des simulierten chirurgischen Eingriffs kann der Chirurg durch taktile Informationen (im Fall von tastbaren Einschlüsse) und visueller Inspektion des Operationsfeldes geführt. Zusätzlich wird NIRF Bildgebung angewendet, um den Chirurgen mit Echtzeitintra Feedback über den Umfang der Operation bereitzustellen. Es sollte betont werden, dass die NIRF-Bildgebung erfordert die Verwendung von Fluoreszenzfarbstoffen. Idealerweise sollten fluoreszierende Farbstoffe verwendet werden, die Photonen im nahen Infrarotbereich emittieren (650-900 nm), um die Absorption und Streuung von Photonen durch Moleküle im Gewebe physiologisch reichlich zu minimieren (beispielsweise Hämoglobin, Lipiden, Elastin, Kollagen und Wasser) 10,11. Außerdem Autofluoreszenz (dh die Eigenfluoreszenz-Aktivität in Geweben aufgrund von biochemischen Reaktionen in lebenden Zellen) in dem nahen Infrarotbereich minimiert, wodurch optimale Tumor-zu-Hintergrund-Verhältnisse 11. Durch Konjugation NIRF färbt tumor TargeTed Einheiten (zB monoklonale Antikörper), können gezielte Abgabe von Fluoreszenzfarbstoffen für die intraoperative Bildgebung Anwendungen gewonnen werden. Da das menschliche Auge unempfindlich ist im nahen Infrarotbereich Licht, ist eine hochempfindliche Kameravorrichtung für NIRF Bildgebung erforderlich. Mehrere NIRF Bildgebungssystemen für den intraoperativen Einsatz bisher 12 entwickelt worden. In der aktuellen Studie verwendeten wir eine benutzerdefinierte bauen NIRF Imaging-System, die für die intraoperative Anwendung in Zusammenarbeit mit der Technischen Universität München entwickelt wurde. Das System ermöglicht die gleichzeitige Erfassung von Farbbildern und Fluoreszenzbildern. Um die Genauigkeit der Fluoreszenzbilder zu verbessern, wird ein Korrekturprogramm für Variationen in der Lichtintensität im Gewebe umgesetzt. Eine detaillierte Beschreibung wird von Themelis et al. 13

<table><tbody><tr><td>Rinderhämoglobin</td><td>Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, Niederlande</td><td>H2500</td><td>Simuliert die Absorption von Photonen im Gewebe&nbsp;</td></tr><tr><td>Intralipid 20%</td><td>Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, Niederlande</td><td>I141</td><td>Simuliert die Streuung von Photonen im Gewebe</td></tr><tr><td>Silikon A transluzent 40 (2-Komponenten-Polyadditionssilikon)</td><td>NedForm, Geleen, Niederlande</td><td></td><td>Das Paket besteht aus den Komponenten A und B, die eins zu eins gemischt werden sollen (A:B=10:1).&nbsp; Link zur Herstellerseite: http://tinyurl.com/ncjq7jx</td></tr><tr><td>Gelatine 250 Bloom</td><td>Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, Niederlande</td><td>48724</td><td>Konstruktion von brustförmigen Phantomen</td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Hispanagar, Burgos, Spanien</td><td></td><td>Konstruktion von tumorsimulierenden Einschlüssen</td></tr><tr><td>Tris</td><td>Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, Niederlande</td><td>T1503&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>HCl</td><td>Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, Niederlande</td><td>258148</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich, Zwijndrecht, Niederlande</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>NaN3</td><td>Merck, Darmstadt, Deutschland</td><td>822335</td><td>ACHTUNG: schweres Gift. Die Toxizität dieser Verbindung ist vergleichbar mit der von löslichen Alkalicyaniden und die tödliche Dosis für einen erwachsenen Menschen beträgt etwa 0,7 Gramm.</td></tr><tr><td>Beispiele für NIRF-Bildgebungsgeräte für intraoperative Anwendungen:</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>T2 NIRF-Bildgebungsplattform&nbsp;</td><td>SurgVision BV, Heerenveen, Niederlande</td><td></td><td>Kundenspezifisches NIRF-Bildgebungssystem, das in der aktuellen Studie verwendet wurde. Weitere Informationen finden Sie unter www.surgvision.com</td></tr><tr><td>Photodynamic Eye</td><td>Hamamatsu Photonics Deutschland GmbH, Herrsching am Ammersee, Deutschland</td><td>PC6100</td><td>www.iht-ltd.com</td></tr><tr><td>FLARE Imaging System Kit</td><td>The FLARE Foundation Inc, Wayland, MA, USA</td><td></td><td>www.theflarefoundation.org</td></tr><tr><td>Fluobeam</td><td>Fluoptics, Grenoble, Frankreich</td><td></td><td>www.fluoptics.com</td></tr><tr><td>Artemis Handkamera</td><td>Quest Medical Imaging BV, Middenmeer, Niederlande</td><td></td><td>www.quest-mi.com</td></tr><tr><td>Beispiele für NIRF-Fluoreszenzfarbstoffe für die intraoperative Anwendung:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Indocyaningrün</td><td>ICG-PULSION,&nbsp; Feldkirchen, Deutschland</td><td>PICG0025DE&nbsp; &nbsp;</td><td>Fluoreszenzfarbstoff in klinischer Qualität für die NIRF-Bildgebung, der in der aktuellen Studie verwendet wird. Weitere Informationen finden Sie unter www.pulsion.com</td></tr><tr><td>IRDye 800CW NHS Ester</td><td>LI-COR Biosciences, Lincoln, NE, USA</td><td>929-70021</td><td>www.licor.com</td></tr></tbody></table>

gewebe-simulation phantoms zur bestimmung der potentiellen near-infrarot-fluoreszenz-imaging-anwendungen in brustkrebschirurgie

Tissue-simulating Phantoms for Assessing Potential Near-infrared Fluorescence Imaging Applications in Breast Cancer Surgery

Ungenauigkeiten in der intraoperativen Tumorlokalisation und Auswertung der Status der Resektionsränder Ergebnis einer suboptimalen Ergebnis der brusterhaltenden Operation (BCS). Die optische Bildgebung, insbesondere im nahen Infrarot-Fluoreszenz (NIRF) Bildgebung, könnte die Häufigkeit der positiven operativen Margen folgende BCS durch die Bereitstellung der Chirurg mit einem Werkzeug für Pre-und intraoperativen Tumorlokalisation in Echtzeit zu reduzieren. In der aktuellen Studie wird das Potenzial der NIRF-geführte BCS ausgewertet mit gewebe Simulation Brust Phantome aus Gründen der Standardisierung und Schulungszwecke. Brust Phantome mit optischen Eigenschaften, die denen von normalem Brustgewebe wurden verwendet, um brusterhaltenden Operationen zu simulieren. Tumor-Simulation Einschlüsse, die die Fluoreszenz-Farbstoff Indocyaningrün (ICG) in der Phantome an vorgegebenen Stellen eingearbeitet und für prä-und intraoperativen Tumorlokalisierung, Echtzeit-NIRF-geführt Tumorresektion NIRF-geführt abzubildendenAuswertung über den Umfang der Operation und postoperative Bewertung der Schnittränder. Eine angepasste NIRF Kamera wurde als Prototyp für die klinische Bildgebung verwendet. Brust Phantome enthalten Tumor-Simulation Einschlüsse bieten eine einfache, kostengünstige und vielseitiges Werkzeug zur Simulation und Bewertung der intraoperativen Tumordarstellung. Die gallertartige Phantome elastische Eigenschaften ähnlich dem menschlichen Gewebe und können mit herkömmlichen chirurgischen Instrumenten geschnitten werden. Darüber hinaus enthalten die Phantome Hämoglobin und Intralipid zum Nachahmen Absorption und Streuung von Photonen bzw. Erstellen ähnlich der menschlichen Brustgewebe gleichmäßige optische Eigenschaften. Der Hauptnachteil der NIRF Bildgebung ist die begrenzte Eindringtiefe von Photonen, wenn durch das Gewebe, das (nicht-invasive) Bildgebung von tief sitzenden Tumoren mit Auflicht-Strategien behindert ausbreiten.

Die Ergebnisse dieser Studie wurden bereits an anderer Stelle 9 gemeldet. Unsere Daten zeigen, dass NIRF Bildgebung angewendet, um fluoreszierende Tumor-Simulation Einschlüsse in Gewebe-Simulation Brust Phantome zu erkennen, die Simulation NIRF geführte brusterhaltende Operation bei Patientinnen mit Brustkrebs werden. Mit unserem Phantommodell fanden wir intraoperativen Tumorlokalisation, NIRF geführte Tumorentfernung, intraoperative Beurteilung der Operationshöhle Ränder, und den...

Nahinfrarot-Fluoreszenzbildgebung (NIRF) kann das therapeutische Ergebnis von Brustkrebsoperationen verbessern, indem sie die intraoperative Tumorlokalisierung und die Bewertung des chirurgischen Randstatus ermöglicht. Unter Verwendung von gewebesimulierenden Brustphantomen, die fluoreszierende tumorsimulierende Einschlüsse enthalten, können potenzielle klinische Anwendungen der NIRF-Bildgebung bei Brustkrebspatientinnen zu Standardisierungs- und Schulungszwecken bewertet werden.

Gewebe-Simulation Phantoms zur Bestimmung der potentiellen Near-Infrarot-Fluoreszenz-Imaging-Anwendungen in Brustkrebschirurgie

Inaccuracies in intraoperative tumor localization and evaluation of surgical margin status result in suboptimal outcome of breast-conserving surgery ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, Nahinfrarot-Fluoreszenzbildgebungsanwendungen bei brusterhaltenden Operationen mit Geweben wie Brustphantomen zu simulieren. Dies wird erreicht, indem zunächst tumorartige fluoreszierende Einschlüsse unterschiedlicher Größe und Form erzeugt werden. Der zweite Schritt besteht darin, die fluoreszierenden Einschlüsse in brustförmige Phantome zu integrieren, deren optische Eigenschaften denen des menschlichen Brustgewebes ähneln.Als nächstes wird das Nahinfrarot-Fluoreszenzbildgebungssystem angewendet, um den Chirurgen intraoperativ bei der Lokalisierung und Entfernung des fluoreszierenden tumorartigen Einschlusses zu unterstützen. Der letzte Schritt besteht darin, den Rand der Operationshöhle nach Entfernung des fluoreszierenden tumorartigen Einschlusses auf das Vorhandensein einer Resterkrankung zu scannen. Falls zutreffend, kann der Chirurg dann das verbleibende Tumorgewebe herausschneiden, das mit dem Nahinfrarot-Fluoreszenzbildgebungssystem gesteuert wird.Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden wie Bett-CT oder MRT ist die Nahinfrarot-Fluoreszenz. Die optische Bildgebung liefert hochauflösende Bilder in Echtzeit und kann problemlos in einer intraoperativen Umgebung angewendet werden. Darüber hinaus ist diese Technik kostengünstig und nutzt nichtionisierende Strahlung.Das Verfahren wird von einem Doktoranden aus unserer Forschungsgruppe demonstriert. Sammeln Sie zunächst feste Gegenstände in der gewünschten Form und Größe, die als Modelle für tumorsimulierende Einschlüsse wie Kügelchen oder Murmeln dienen können. Reinigen Sie die Tumormodelle gründlich und entfernen Sie alle Unregelmäßigkeiten.Platzieren Sie jedes Modell in einer separaten, dünnwandigen, quadratischen Kunststoffbox mit glatter Oberfläche. Befestigen Sie das Modell bei Bedarf am Boden der Box, um es in Position zu halten. Gießen Sie dann die benötigte Menge Silikonkomponente A in eine Rührschüssel und fügen Sie Silikonkomponente B im Verhältnis 10 zu eins nach Gewicht hinzu.Beide Komponenten gründlich vermischen. Gießen Sie die Silikonmischung vorsichtig in die Kunststoffbox, um Luftblasen zu vermeiden. Lassen Sie die Silikonmischung mindestens sechs Stunden lang erstarren, bevor Sie die Form schneiden und das Tumormodell entfernen.Optional kann die Silikonform im Zickzack-Muster geschnitten werden, damit sie wieder sauber zusammenpasst. Um fluoreszierende Einschlüsse zu erzeugen, fügen Sie zwei Gramm aros zu 50 Millilitern gepufferter Tris-Kochsalzlösung oder TBS hinzu, die mit Natriumazid hergestellt wurde, wie im Textprotokoll beschrieben. Die Arous-Aufschlämmung in der Mikrowelle erhitzen, bis der Siedepunkt erreicht ist.Gründlich rühren, bis sich der Aros vollständig aufgelöst hat. Fügen Sie 1,1 Gramm Hämoglobin und fünf Milliliter Intralipid, 20 % bis 50 Milliliter TBS hinzu und fügen Sie dies der aros-Mischung unter ständigem Rühren hinzu, um den optischen Eigenschaften der umgebenden Brust zu ähneln. Phantomgewebe fügen Sie 20,0 Milligramm des Fluoreszenzfarbstoffs Incy und Grün zu 83,8 Millilitern deionisiertem Wasser hinzu.Pipettieren Sie fünf Milliliter aus dieser Lösung und fügen Sie sie der aros-Mischung hinzu. Um eine Endkonzentration von 14 Mikromolaren zu erhalten. Füllen Sie die Silikonformen vorsichtig mit einer Spritze mit der H aros-Mischung.Lassen Sie den fluoreszierenden Einschluss etwa eine Stunde lang bei Raumtemperatur erstarren. Schützen Sie die Einschlüsse vor Licht, indem Sie die gesamte Form mit Aluminiumfolie abdecken. Nach dem Erstarren die Form vorsichtig öffnen und den Einschluss ausdrücken.Schützen Sie die Aros-Einschlüsse vor Licht und Austrocknung, indem Sie sie in Alufolie einwickeln und in einem befeuchteten Vorratsbehälter bei vier Grad Celsius aufbewahren. Besorgen Sie sich eine becherförmige Form, um Brustphantome der gewünschten Größe und des gewünschten Volumens zu erstellen, um ein Brustphantom zu erstellen. Mit einem Volumen von 500 Millilitern 50 Gramm Gelatine, 250 Bloom zu 500 Millilitern TBS hinzufügen.Erhitzen Sie die Gelatineaufschlämmung unter ständigem Rühren auf 50 Grad Celsius. Sobald sich die Gelatine vollständig aufgelöst hat, lassen Sie die Gelatinemischung allmählich abkühlen und halten Sie sie auf einer konstanten Temperatur von 35 Grad Celsius. Fügen Sie in einem heißen Wasserbad unter ständigem Rühren 5,5 Gramm Rinderhämoglobin hinzu, um die Absorption von Photonen zu simulieren, und 25 Milliliter Intralipid.20%, um die Streuung von Photonen im Gewebe zu simulieren. Kühle die becherförmige Form mindestens eine Stunde lang bei vier Grad Celsius vor. Einmal abgekühlt.Gießen Sie die Gelatinemischung in die Form bis zu einem Niveau, das der vordefinierten Tiefe des Aros-Tumors entspricht. Inklusion simulieren. Lassen Sie die Gelatinemischung bei vier Grad Celsius 30 Minuten bis eine Stunde lang festigen.Nach der Erstarrung positioniert sich ein fluoreszierender Tumor auf der Oberfläche des Phantoms und fixiert den Einschluss vorübergehend mit einer kleinen Nadel. Gießen Sie den Rest der warmen Gelatinemischung in das verbleibende Formvolumen, damit beide Schichten haften bleiben, ohne Brechungsartefakte zu erzeugen. Markieren Sie die Position des fluoreszierenden Tumors, um Einschlüsse auf der Form zu simulieren, bevor Sie das Phantom über Nacht bei vier Grad Celsius erstarren lassen.Entfernen Sie nach dem Erstarren die Nadeln, die zur vorübergehenden Fixierung der Einschlüsse verwendet wurden, und entfernen Sie das Brustphantom vorsichtig aus seiner Form. Schützen Sie das Brustphantom vor Licht und Austrocknung, indem Sie es in Alufolie einwickeln und in einem befeuchteten Vorratsbehälter bei vier Grad Celsius aufbewahren. Für die Simulation der gezielten Fluoreszenzbildgebung in der Brustkrebschirurgie wird ein Nahinfrarot-Fluoreszenzkamerasystem für die intraoperative Anwendung benötigt.Siehe das Textprotokoll zur Einrichtung des fluoreszierenden Kamerasystems. Nehmen Sie das Gewebe, das das Brustphantom simuliert, aus seinem Behälter und legen Sie es auf eine flache, nicht fluoreszierende Oberfläche. Positionieren Sie als nächstes das fluoreszierende Bildgebungsgerät über dem Brustphantom und lassen Sie einen ausreichenden Arbeitsabstand für die Entfernung des Tumors.Simulation von Einschlüssen, Lokalisierung des Tumors durch Simulation von Fluoreszenzeinschluss durch Palpation und/oder Fluoreszenzbildgebung der Phantombrust, falls kein Fluoreszenzsignal nachgewiesen werden kann. Der Einschluss wird entweder zu tief im Phantom positioniert, um ihn zu detektieren, oder die Bildaufnahmezeit sollte erhöht werden, sobald der Einschluss in der Größe lokalisiert ist, die Phantombrust und die Entfernung des Tumors. Simulation des Einschlusses unter Echtzeit-Fluoreszenzführung unter Verwendung konventioneller chirurgischer Geräte unmittelbar nach der Entfernung des Tumors Simulation des Einschlussbildes, des chirurgischen Hohlraums für eine verbleibende Fluoreszenzaktivität, die auf eine unzureichende Exzision hinweist, falls eine verbleibende Fluoreszenzaktivität vorhanden ist.Den Einschlussrest unter direkter Fluoreszenzkontrolle herausschneiden, bis kein Fluoreszenzsignal mehr im Bild vorhanden ist. Die herausgeschnittenen Phantomfragmente sollen für den fluoreszierenden makroskopischen Randstatus simuliert werden. Hier sind repräsentative Ergebnisse der fluoreszenzgesteuerten intraoperativen Tumorlokalisation dargestellt.Fluoreszierende tumorartige Einschlüsse wurden bis zu einer Tiefe von etwa zwei Zentimetern nachgewiesen. Tiefere samierte Einschlüsse wurden nach Inzision von überlagerndem Phantomgewebe detektiert. Der Chirurg wurde kontinuierlich von dem Fluoreszenzsignal geleitet, das von dem fluoreszierenden tumorartigen Einschluss ausging.Bei der brusterhaltenden Operation an den Phantomen nach Entfernung des tumorartigen Einschlusses beurteilte der Chirurg das Ausmaß der Operation durch Scannen der Operationshöhle. Jedes verbleibende Fluoreszenzsignal deutete auf eine unvollständige Tumorexzision hin, und der Tumorrest wurde während desselben chirurgischen Eingriffs entfernt. Nach der Exzision des tumorartigen Einschlusses wurde der exzidierte Knoten abgebildet, um den Status des chirurgischen Bruttomargens zu beurteilen.Die Fluoreszenzbildgebung kann die Beurteilung des mikroskopischen Randstatus durch einen Pathologen unterstützen, indem Bereiche lokalisiert werden, die für enge oder positive Ränder verdächtig sind. Die Implikationen dieser Technik erstrecken sich auf bessere Ergebnisse für brusterhaltende Operationen, indem Nahinfrarot-Fluoreszenz- und optische Bildgebungsmittel mit gezielten Myers, wie z. B. monoklonalen Antikörpern, konjugiert werden. Eine gezielte Verabreichung von Fluoreszenzmitteln kann für intraoperative Bildgebungsanwendungen erreicht werden.

tissue-simulating-phantoms-for-assessing-potential-near-infrared

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Diffuse Fluoreszenz-Tomographie bietet eine relativ kostengünstige und potenziell hoher gesamten Ansatz für...

Computertomographie-gesteuerte Time-Domain diffuse Fluoreszenz-Tomographie in der Kleintiere für die Lokalisierung von Krebs-Biomarker

Dieser Beitrag beschreibt die hausinternen Verfahren zur Konstruktion eines präklinischen Multimodalität Phantom von Gewebe-Nachahmung gemacht (TM)-Materialien für die Qualitätssicherung (QS) der Tumorgröße Messung in der Tier-Bildgebungsverfahren wie Ultraschall (US), Computertomographie (CT) und Magnetresonanztomographie Resonanz-Tomographie (MRT).

Bau eines Präklinische Multimodalität Phantom Mit Tissue-ähnlichen Materialien für die Qualitätssicherung in der Tumor Größe Maß

Optische Gewebe Phantome sind unverzichtbare Werkzeuge für Kalibrierung und Charakterisierung von optischen bildgebenden Systemen und Validierung von theoretischen Modellen. Dieser Artikel beschreibt eine Methode für die phantom Fertigung, die Replikation von optischen Gewebeeigenschaften und dreidimensionale Gewebestruktur enthält.

Herstellung und Charakterisierung von optischen Gewebe Phantome, die Makrostruktur enthalten

Orthotopen intrakraniellen Injektion von Tumorzellen wurde in der Krebsforschung zur Gehirn Tumorbiologie, Fortschreiten, Evolution und therapeutische Reaktion zu studieren. Hier präsentieren wir Ihnen Fluoreszenz Molekulare Tomographie der Tumor Xenografts vorsieht, dass Echtzeit-intravitalen Bildgebung und Quantifizierung eines Tumors in präklinischen Glioblastom Modelle Masse.

Fluoreszenz Molekulare Computertomographie für die In-Vivo Bildgebung des Glioblastoms Xenotransplantate

Hier zeigen wir wie Agarose-basierte Gewebe imitiert optische Phantome vorgenommen werden und wie ihre optischen Eigenschaften werden mit einem herkömmlichen optischen System mit einer Ulbricht-Kugel bestimmt.

Agarose-basierte Gewebe imitiert optische Phantome für Diffuse Reflexion Spektroskopie

Diese Arbeit setzt ein fortschrittliches Protokoll vor, um die Tumorbelastung durch den Nachweis von grünen Fluoreszenzprotein- und Biolumineszenzsignalen sowie die Integration quantitativer molekularer Detektionstechniken genau zu bewerten.

Studieren von dreifach negativem Brustkrebs mit orthotopischem Brustkrebsmodell

Spin-Beschichtung, Polyjet-Druck und Sicherungsabscheidungsmodellierung sind integriert, um mehrschichtige heterogene Phantome zu produzieren, die strukturelle und funktionelle Eigenschaften von biologischem Gewebe simulieren.

Multimodaler 3D-Druck von Phantomen zur Simulation von biologischem Gewebe

Frisch ausgeschnittene menschliche Brustkrebstumoren zeichnen sich durch Terahertz-Spektroskopie und Bildgebung nach Protokollen zur Handhabung von frischem Gewebe aus. Die Gewebepositionierung wird berücksichtigt, um eine effektive Charakterisierung zu ermöglichen und gleichzeitig eine zeitnahe Analyse für zukünftige intraoperative Anwendungen bereitzustellen.

Terahertz Imaging and Characterization Protocol for Freshly Excised Breast Cancer Tumors

Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung eines patientenspezifischen Schädel-, Hirn- und Tumor-Phantoms. Es verwendet 3D-Druck, um Formen zu erstellen, und Polyvinylalkohol (PVA-c) wird als Gewebe-Imitierenmaterial verwendet.

Patientenspezifische Polyvinylalkohol-Phantomfertigung mit Ultraschall- und Röntgenkontrast für die Planung von Hirntumorchirurgie

In diesem Artikel wird das Protokoll zur Herstellung von Tumor-Gewebe-Phantomen vorgestellt, die optische Eigenschaften für die plasmonische photothermische Therapie replizieren. Es beschreibt die Phantompräparation, photothermische Bewertungen und die Validierung des entwickelten numerischen Modells auf der Grundlage photothermischer Temperaturmessungen zur Bewertung therapeutischer Parameter und bietet eine ethische, kostengünstige Alternative zu In-vivo-Studien für Vortests.

Plasmonische photothermische Krebstherapie: Nanopartikel-eingebettete Tumorgewebe-imitierende Phantome zur Visualisierung der photothermischen Temperaturverteilung

Erfahren Sie die Anwendung von Nahinfrarot-Fluoreszenz-Imaging in der Brustkrebschirurgie mittels gewebeähnlicher Phantome. Diese Methode ermöglicht die präzise intraoperative Tumorlokalisation und Bewertung chirurgischer Ränder.

Gewebe-Simulation Phantoms zur Bestimmung der potentiellen Near-Infrarot-Fluoreszenz-Imaging-Anwendungen in Brustkrebschirurgie

Weitere Videos entdecken