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Cancer Research
Generation und Isolierung des Zellzyklus verhaftet Zellen mit komplexen Karyotyp
Generation und Isolierung des Zellzyklus verhaftet Zellen mit komplexen Karyotyp
JoVE Journal
Cancer Research
This content is Free Access.
JoVE Journal Cancer Research
Generation and Isolation of Cell Cycle-arrested Cells with Complex Karyotypes

Generation und Isolierung des Zellzyklus verhaftet Zellen mit komplexen Karyotyp

Full Text
11,094 Views
05:22 min
April 13, 2018

DOI: 10.3791/57215-v

Ruoxi W. Wang*1, Emily MacDuffie*1, Stefano Santaguida1

1Koch Institute for Integrative Cancer Research at MIT, Department of Biology,Massachusetts Institute of Technology

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a straightforward method for isolating aneuploid cells with complex karyotypes that are arrested in the cell cycle. The technique aims to enhance understanding of aneuploidy and its implications in cellular behavior and immune interactions.

Key Study Components

Area of Science

  • Cell Biology
  • Genetics
  • Neuroscience

Background

  • Aneuploidy is associated with genome instability.
  • Cells with complex karyotypes often cease to divide.
  • Understanding these cells can provide insights into cancer and other diseases.
  • Isolation of these cells can facilitate further research into their properties.

Purpose of Study

  • To develop a method for generating and isolating cell cycle-arrested cells.
  • To investigate the characteristics of aneuploid cells.
  • To explore the interaction between aneuploid cells and the immune system.

Methods Used

  • Synchronization of RPE-1 hTERT cells using thymidine and nocodazole.
  • Cell shake-off technique to isolate mitotic cells.
  • Immunoblot analysis to assess cell cycle inhibitors.
  • Senescence-associated beta-Galactosidase staining for identification of ArCK cells.

Main Results

  • ArCK cells exhibit increased levels of cell cycle inhibitors.
  • These cells are positive for senescence-associated markers.
  • Segmentation plots confirm aneuploidy in isolated cells.
  • The method effectively isolates cells with complex karyotypes.

Conclusions

  • The protocol provides a reliable way to study aneuploid cells.
  • Isolated ArCK cells can be used for further research on immune interactions.
  • Proper execution of the method can yield results within a week.

Frequently Asked Questions

What is aneuploidy?
Aneuploidy refers to the presence of an abnormal number of chromosomes in a cell.
Why is it important to study aneuploid cells?
Studying aneuploid cells can provide insights into cancer development and cellular behavior.
What are ArCK cells?
ArCK cells are aneuploid cells that are arrested in the cell cycle and exhibit complex karyotypes.
How does the isolation method work?
The method involves synchronizing cells and using a shake-off technique to remove mitotic cells.
What assays can be performed on isolated ArCK cells?
Cytokine assays and other analyses can be performed to study their interactions with the immune system.
Is nocodazole safe to handle?
Nocodazole is hazardous; appropriate personal protective equipment should be used when handling it.

Aneuploidie führt zu Genom Instabilität, die schließlich Zellzyklus verhaftet Zellen mit komplexen Karyotypen produziert. Dieses Papier stellt eine einfache und bequeme Methode zum aneuploiden Zellen mit komplexen Karyotyp zu isolieren, die aufhören zu teilen.

Das übergeordnete Ziel dieses Protokolls ist es, eine einfache Methode zur Erzeugung und Isolierung von zellzyklus-arrestierten Zellen mit komplexen Karyotypen bereitzustellen. Diese Methode kann Antworten auf zentrale Fragen der Aneuploidieforschung geben, etwa zur Interaktion des Immunsystems mit aneuploiden Zellen. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass sie eine Zellpopulation erzeugt, die nur komplexe Karyotypen beherbergt.

Um mit der Synchronisierung von RPE-1 hTERT-Zellen zu beginnen, verwenden Sie frisch aufgetaute Zellen und geben Sie sie mit acht Millilitern Standard-Wachstumsmedium in eine 10 Zentimeter große Gewebekulturschale. Verwenden Sie anschließend ein Hämozytometer, um die Zellzahl zu bestimmen. Inkubieren Sie die Zellen dann über Nacht.

Ersetzen Sie am nächsten Tag das Standard-Wachstumsmedium durch ein Medium, das fünf Millimolare Thymidin enthält. Inkubieren Sie 24 Stunden lang bei 37 Grad Celsius, um die Zellen an der G1S-Grenze zu synchronisieren. Waschen Sie die Zellen nach 24 Stunden dreimal mit PBS.

Geben Sie dann Standard-Wachstumsmedium zu den gewaschenen Zellen und inkubieren Sie sechs Stunden lang bei 37 Grad Celsius. Waschen Sie zuerst die Zellen mit 10 Millilitern PBS. Fügen Sie dann Medium hinzu, das 500 nanomolare Mps1-Inhibitor-Reversin enthält.

12 Stunden bei 37 Grad Celsius inkubieren. Waschen Sie die Zellen am nächsten Tag dreimal mit PBS. Fügen Sie dann Standard-Wachstumsmedium hinzu und stellen Sie die Platten wieder in den Inkubator.

Etwa 72 Stunden nach der ersten aberranten Mitose waschen Sie die Zellen mit 10 Millilitern PBS. Fügen Sie dann Medium hinzu, das 330 nanomolare Nocodazol enthält. 12 Stunden bei 37 Grad Celsius inkubieren.

Am nächsten Tag aspirieren Sie das Nocodazol-Medium. Geben Sie dann drei Milliliter PBS in die Schüssel und klopfen Sie auf die Seite des Tellers, um die mitotischen Zellen abzuschütteln. Drehen Sie die Platte zwischen jedem Klopfen, um eine gleichmäßige Entnahme der mitotischen Zellen zu ermöglichen.

Nach dem ersten Abschütteln die am Deckel und am Rand der Platte anhaftende Flüssigkeit ansaugen. Überprüfen Sie dann die Platte unter dem Mikroskop bei 10-facher Vergrößerung. Waschen Sie dann die Zellen mit fünf Millilitern PBS.

Als nächstes fügen Sie Medium hinzu, das 330 nanomolare Nocodazole enthält. 12 Stunden bei 37 Grad Celsius inkubieren. Nach dem abschließenden Schütteln fügst Du 10 Milliliter Standard-Wachstumsmedium hinzu.

Inkubieren Sie die Zellen 12 bis 24 Stunden lang bei 37 Grad Celsius, bevor Sie die Assays durchführen. Die auf der Platte verbleibenden Zellen werden als mit komplexen Karyotyp- oder ArCK-Zellen arrestiert bezeichnet. Dieses Protokoll beschreibt eine einfache Methode zur Isolierung von ArCK-Zellen und es werden mehrere für ArCK-Zellen spezifische Merkmale analysiert, um ihre Isolierung zu bestätigen.

ArCK-Zellen zeigen in der Immunoblot-Analyse erhöhte Spiegel der Zellzyklus-Inhibitoren p53, p21 und p16, während euploide und aneuploide Zykluszellen dies nicht tun. Darüber hinaus sind ArCK-Zellen positiv für die Seneszenz-assoziierte Beta-Galactosidase, die blau-grün färbt, während euploide Kontrollzellen dies nicht tun. Segmentierungsdiagramme zeigen, dass ArCK-Zellen aneuploid sind und durch mehrfache, zufällige Chromosomengewinne und Chromosomenverluste gekennzeichnet sind.

Segmentierungsdiagramme zeigen die Kopienzahl einzelner Zellen von Chromosom eins bis X relativ zu einer euploiden Referenz-Logarithmus-Skala von zwei. Beim Versuch dieses Verfahrens ist es wichtig, dass Sie bei jedem Shake-off alle mitotischen Zellen entfernen. Nach Durchführung dieses Verfahrens können andere Methoden wie Zytokin-Assays durchgeführt werden.

Diese Assays werden bei der Beantwortung weiterer Fragen helfen, wie z.B. der Fähigkeit von ArCK-Zellen, mit den Zellen des Immunsystems zu interagieren. Vergessen Sie nicht, dass Nocodazol gefährlich ist. Bei der Verwendung dieses Reagenzes sollte geeignete persönliche Schutzausrüstung getragen werden.

Einmal gemeistert, kann diese Technik verwendet werden, um ArCK-Zellen effizient in vitro zu isolieren. Dieser Eingriff kann bei ordnungsgemäßer Durchführung in sieben Tagen durchgeführt werden.

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Cancer Research Ausgabe 134 Aneuploidie MIS Segregation Chromosom Genom Instabilität komplexe Karyotyp Zellzyklus-Arrest Seneszenz

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