Tejidos
- Tejido pulmonar, incrustados en los moldes de la temperatura óptima de corte (OCT) compuesto de 4583, se seccionó (5 micras) con una Leica CM 1950 criostato y montado en poli-L-lisina diapositivas.
Las muestras congeladas se obtuvieron del Dr. Simon Royce en Investigación Infantil Murdoch Institute. El tejido pulmonar se obtuvo de ratones Balb tratada / c ratones y de un modelo de ratón de la enfermedad alérgica crónica vías respiratorias, que muestra muchas de las características patológicas del asma humano 6. Los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con las directrices y normas establecidas por el Comité de Ética Animal del Instituto de Investigación Infantil Murdoch, que se adhiere al Código Australiano de Prácticas para el cuidado y uso de animales de laboratorio con fines científicos.
- Las secciones se dejan secar al aire a temperatura ambiente durante 1 hora.
La tinción de inmunofluorescencia
- Las secciones fueron fijadas con 2% (w / v) paraformaldehído en tampón fosfato salino (PBS) durante 20 minutos.
- Las secciones se equilibró con dos lavados en PBS durante 15 minutos cada uno.
- Las secciones fueron tratadas con etanol al 70% (refrigerados a -20 ° C) durante 20 minutos seguido de tres lavados en PBS durante 10 minutos cada uno.
En este punto diapositivas se pueden almacenar en recipientes cerrados a 4 ° C durante un máximo de 2 semanas.
- Las secciones se lavaron tres veces con PBS durante 10 minutos cada uno y luego bloquearon con 100μL recién preparada en PBS que contenía 8% de BSA en PBS que contenía 0,5% de Tween-20 y 0,1% Triton X-100 (PBS-TT) durante 1 hora a temperatura ambiente .
Todas las incubaciones se realizaron en un canal de tinción humidificado. - Las secciones fueron lavadas con PBS-TT durante 5 minutos y un perímetro hidrofóbica se ha caracterizado en todo el tejido con un lápiz de Papanicolaou.
- El exceso de tampón fue advertido y 100μl de conejo primario policlonal anti-γH2AX anticuerpos (diluido 1:500, en el 1% de BSA en PBS, Millipore), se añadió a cada sección de una incubación de 2 horas a temperatura ambiente.
La incubación con el anticuerpo primario puede llevar a cabo la noche a 4 ° C.
Para más evidencia, que representan focos γH2AX DSBs, un anticuerpo primario reconocer una proteína de reparación del OSD también se puede utilizar. Por ejemplo, co-localización de γH2AX y fosfo-ATM es una combinación de uso común. - Las secciones se lavaron dos veces en PBS-TT de 5 minutos cada uno y se incubaron con 100μl del anticuerpo secundario (Alexa Fluor 488 cabra anti-IgG de conejo diluido 1:500, en el 1% de BSA, Invitrogen) durante 1 hora a temperatura ambiente en la oscuridad . (Anticuerpo diluido se mantuvo en la oscuridad durante todo el procedimiento).
- Las secciones se lavaron tres veces con PBS-TT de 5 minutos cada uno y se incubaron con 0.5mg/mL RNAsa A durante 30 minutos a 37 ° C.
- Nucleares contratinción y el montaje se realizó con medio Vectashield que contiene yoduro de propidio.
- Las diapositivas fueron sellados con esmalte de uñas y se almacena la noche a 4 ° C en la oscuridad, antes del análisis.
Microscopía / Análisis
- Un microscopio confocal Zeiss LSM510 Meta fue utilizado para adquirir imágenes con la GFP estándar (por γH2AX - Alexa Fluor 488 cabra anti-conejo IgG) y PI (543 nm).
Las imágenes fueron adquiridas en un modelo de la serie Z con un tamaño de paso de 0,5 micras. Durante el análisis, los planos individuales deconvoluted y apilados para producir una imagen proyectada máxima para minimizar la superposición de los focos.
El método de creación de una imagen proyectada máxima antes de un conteo de partículas sólo debe utilizarse en circunstancias en que se utiliza una sección delgada (por ejemplo, 5μm) y en la tinción de fondo es insignificante. Donde las secciones más gruesas con un fondo importante debe ser analizado, un análisis más complejos, tales como contador de objetos 3D como se describe por Bolte y Cordelières (2006) debe ser utilizado 7.
- Metamorph (Molecular Devices, EE.UU.) se utilizó para crear fusión (rojo y verde) las imágenes para cuantificar el número de focos.
Aunque Metamorph se puede utilizar para cuantificar el número focos, por lo general cuando se utilizan las secciones de tejido focos se cuentan manualmente (a ojo) para mayor precisión.
Los tipos específicos de células de interés pueden ser seleccionados para la cuantificación, por ejemplo, las células pulmonares epiteliales. Esto se puede hacer sobre la base de la histología y con referencia a la hematoxilina y eosina secciones teñidas de serie.