Summary
Questo protocollo descrive la procedura dettagliata per cryopreserving cellule umane iPS nel medio KnockOut crioconservazione SR ed il recupero di queste cellule in completo alimentatore KnockOut gratuito SR (KSR-FF), medio o alimentatore a base di medie SR KnockOut.
Abstract
La scoperta nel 2006 che fibroblasti umani e mouse potrebbe essere riprogrammato per generare cellule iPS 1-3 con caratteristiche molto simili alle cellule staminali embrionali ha creato una nuova fonte preziosa di cellule pluripotenti per la scoperta di farmaci, terapia cellulare, e la ricerca di base.
Mezzi di comunicazione GIBCO e reagenti sono stati in prima linea nella ricerca sulle cellule staminali pluripotenti da anni. Knockout DMEM integrato con sostituzione Knockout siero è il media di scelta per la crescita delle cellule staminali embrionali e ora di cellule iPS cultura 3-9. Il gold standard del sistema dei media può ora essere utilizzato per alimentazione priva di cultura con l'aggiunta di Cocktail SR Factor Knockout crescita.
Tradizionale ES umane e metodi di coltura delle cellule iPS richiedono l'uso di mouse o strati alimentatore fibroblasti umani, o l'alimentatore condizionata media. Questi metodi sono cultura alta intensità di lavoro, difficili da scalare ed è difficile mantenere anche le cellule indifferenziate a causa delle condizioni indefinito. Invitrogen ha sviluppato SR Knockout Cocktail fattore di crescita per consentire di transizione facilmente i fianchi e le colture cellulari hES alla rinfusa, senza pur mantenendo l'uso di SR Knockout.
Protocol
Nota: Per mantenere condizioni di coltura sterili, tutte le procedure descritte in questo protocollo sono effettuate utilizzando pratiche di laboratorio sterile e condotto sotto una cappa a flusso laminare.
Prima di iniziare, assicurarsi che i media sono equilibrati a 37 ° C e opportunamente gasati.
Preparazione Geltrex rivestita Piatti Cultura
Nota: vedi appendice per l'uso di piatti CELLstart cultura rivestito.
- Scongelare un tubo di Geltrex (1 ml) lentamente a 2-8 ° C e diluire 1:100 in 99 ml di Knockout D-MEM/F-12. Mescolare delicatamente la soluzione.
Nota: alcune linee di cellule iPS possono richiedere una diversa diluizione Geltrex per una crescita ottimale. Vedi appendice per le diluizioni alternative. - Coprono l'intera superficie di ogni piatto cultura con la soluzione Geltrex (1 mL per un piatto da 35 mm, 1,5 ml per un piatto di 60 mm).
- Sigillare ogni piatto con Parafilm contro l'essiccamento e incubare i piatti per 1 ora a 37 ° C.
Nota: A questo punto si può memorizzare il Geltrex rivestite piatti di cultura a 4 ° C per un massimo di 1 mese. Sigillare ogni piatto con Parafilm per evitare che il Geltrex si secchi. - Prima di utilizzare, trasferire il Geltrex rivestite piatti di una cappa a flusso laminare e permettere loro di equilibrare a temperatura ambiente (circa 1 ora).
Preparazione completa alimentatore-Free SR KnockOut Media
- Per preparare 1 mL di 10 mg / ml soluzione di base FGF, asettico miscelare i componenti elencati di seguito. Aliquota della soluzione e conservare a -20 ° C fino a 6 mesi.
Di base FGF 10 mcg D-PBS 990μL 10% di BSA 10 L
Nota: BSA può essere sostituito con HSA o SR Knockout alla stessa concentrazione. - Per preparare 50 ml di 2 mg / ml soluzione dispasi, asettico miscelare i componenti elencati di seguito. Filtrare la soluzione sterilizzare e conservare a 4 ° C per un massimo di 2 settimane.
Dispasi 100 mg D-PBS 50 mL - Per preparare 100 mL di SR KnockOut completo alimentatore-Free (KSR-FF) asetticamente combinare i componenti elencati nella tabella sottostante.
Componente Concentrazione magazzino Concentrazione finale Volume Knockout DMEM/F12 (n ° cat. 12660-012) - 1X 76,8 mL GlutaMAX-I (Cat. No. 35050-061) 200 mM 2 mM 1 ml KnockOut SR (n ° cat. 10828-028) - 20% 20 ml KnockOut SR-GFC (n ° cat. A10580-01) 50X 1X 2 ml bFGF (n ° cat. PHG0024). 10 mcg / ml 20 ng / mL 200 l
Si può memorizzare il KSR-FF medio a 2-8 ° C per un massimo di una settimana. - Poco prima di pre-raggiunga l'equilibrio completo a temperatura e gas, in modo asettico aggiungere il volume richiesto di 2 mercaptoetanolo (55 concentrazione magazzino mm) per una concentrazione di 0,1 mM finale. Ad esempio, per preparare 100 ml di KSR-FMedio F aggiungere 182 microlitri di 55 mM di 2-mercaptoetanolo (diluizione 1:550) In alternativa, il 2-mercaptoetanolo possono essere aggiunti al mezzo di 1X completato e conservato a 2-8 ° C per un massimo di una settimana.
Preparazione di congelamento / Crioconservazione Media
Il mezzo di crioconservazione è composto da due mezzi di comunicazione; Media congelamento A e B. Media congelamento Essi sono aggiunti alle cellule in tempi diversi e devono rimanere separati. Ciascuno di essi è il 50% del volume totale delle medie Crioconservazione necessario. Il volume totale delle medie Crioconservazione necessario è di 1 ml per ogni flacone da congelare. Un 90% piatto confluenti 60mm hESC può essere utilizzato alla banca 2 flaconi di hESC nei media crioconservazione.
Preparare un volume sufficiente di ogni media di congelamento con un extra di 2-5mL per assicurare eccedenza.
Congelamento Media A (50% del volume finale): | 50% DMEM/F12 | 50% KSR |
Congelamento Media B (50% del volume finale): | 80% DMEM/F12 | 20% di DMSO |
Esempio:
Se siete congelamento 20 fiale di cellule, avrete bisogno di 20 mL di media crioconservazione. Aggiungere 4 ml di carico eccessivo per un totale di Media Crioconservazione 24ml. Ciò significa che avrete bisogno di 12 ml di Media congelamento A (50% di 24ml) e 12 ml di B Media di congelamento (50% di 24ml).
Congelamento Media A (12 ml): | 6 ml DMEM/F12 | 6 ml KSR |
Congelamento Media B (12 ml): | 9,6 mL DMEM/F12 | 2,4 mL di DMSO |
La composizione finale del Medio Crioconservazione DMEM/F12 è del 65%, 25% KSR, e il 10% di DMSO.
Cryopreserving iPSCs
- Preriscaldare il volume richiesto di dispasi in un bagno d'acqua a 37 ° C. Fare riferimento alla Tabella 1 riportata di seguito per i dettagli sui volumi richiesti.
- Pre-equilibrare il volume di KSR-FF in A ° C 37 bagnomaria per 15 min. Fare riferimento a 1below tabella per i dettagli sui volumi richiesti.
- Aspirare il terreno trascorso dalla nave cultura con una pipetta, e lavare le cellule due volte con D-PBS.
- Aggiungere delicatamente preriscaldato soluzione dispasi alla nave cultura (ad esempio, 1 mL di soluzione dispasi per 60 mm piatto di cultura). Agitare il recipiente di coltura per ricoprire l'intera superficie delle cellule.
- Incubare il recipiente di coltura a 37 ° C per 3 minuti.
- Rimuovere il recipiente dal termostato, aspirare la soluzione dispasi, e lavare delicatamente le cellule con D-PBS.
- Raschiare delicatamente le cellule dalla superficie del piatto cultura utilizzando un raschietto cellula, e trasferire le cellule in una provetta sterile centrifuga 15ml.
- Lavare il piatto cultura due volte con KSR-FF, dolcemente "spruzzo off" tutte le cellule che non si sono staccati. Piscina di risciacquo medio con le cellule nel tubo 15ml.
- Centrifugare la provetta a 200 xg per 5 minuti a temperatura ambiente per agglomerare le cellule.
- Con attenzione aspirare il sopranatante senza disturbare il pellet di cellule e smaltirlo.
- Preparare una quantità sufficiente di cryovials. Una volta che le cellule sono in contatto con DMSO, dovrebbero essere aliquotati e congelato entro 2-3 minuti.
- Picchiettare lievemente il tubo, per rimuovere completamente il pellet dal fondo del tubo e risospendere le cellule in A. Medio congelamento [pipettando gentilmente su e giù con un 5-mL sierologici pipetta]. A seguito di sospensione uniforme di grumi, aggiungere uguale volume di B Media congelamento ad esso, in maniera goccia a goccia, mentre rimestando delicatamente la sospensione cellulare per mescolare.
Nota: A questo punto, le cellule sono in contatto con DMSO, e il lavoro deve essere eseguito in modo efficiente. Una volta che le cellule sono in contatto con DMSO, dovrebbero essere aliquotati e congelato entro 2-3 minuti. - Aliquota 1 ml di sospensione cellulare in ogni provetta Microbank ™.
- Introdurre rapidamente le provette in un gelido Mr. [di congelare rapidamente] e trasferirlo a -80 ° C durante la notte.
- Dopo una notte di stoccaggio a -80 ° C, trasferire le cellule a un serbatoio di azoto liquido per la conservazione a lungo termine.
IPSC disgelo flaconcino e il recupero delle cellule
Nota: KSR-FF può essere sostituito con KSR contenenti MEF condizionata medio, o medio KSR per l'uso con alimentatori. Vedere l'appendice per le istruzioni per la preparazione dei media.
Preriscaldare 10 ml di KSR-FF media in un tubo da 50 ml.
- Equilibrare la quantità appropriata di Geltrex rivestite piatti a temperatura ambiente ed aspirare il liquido dai piatti poco prima di placcaturar cellule.
- Rimuovere con cura il hESC (o IPSC) fiala da serbatoio di stoccaggio di azoto liquido.
- Rapido disgelo fiala congelata di cellule in un bagno d'acqua a 37 ° C, fino a poco un piccolo pezzo rimane congelato nel flacone.
- Spray fiala con il 70% di isopropanolo per decontaminare e trasferimento alla cappa sterile coltura di tessuti.
- Trasferire asetticamente l'intero contenuto del flacone in un tubo da 15 ml con una pipetta da 5 ml.
- Sciacquare la fiala con 1 ml di KSR-FF e aggiungere questo al tubo da 15 ml per centrifuga.
- Lentamente, aggiungere 4 ml di KSR-FF goccia a goccia per le cellule nel tubo 15 ml conica. Mentre l'aggiunta del mezzo, spostare delicatamente il tubo avanti e indietro per mescolare le cellule. (Questo riduce shock osmotico alle cellule).
- Centrifugare il tubo di 15 ml con la sospensione cellulare a 1000rpm (200 x g) per 2 minuti a temperatura ambiente.
- Con attenzione aspirare e scartare il sopranatante senza disturbare il pellet.
- Risospendere il pellet di cellule in fase di pre-riscaldato KSR-FF (ad esempio 4mL/60 piatto mm) con una pipetta da 5 ml e pipettare delicatamente le cellule su e giù fino a pellet cellulare è completamente dispersa. Una vitalità maggiore del 70% è previsto, se la vitalità è inferiore al 70%, può richiedere più tempo per le cellule di raggiungere confluenza.
- Utilizzando la medesima pipetta, trasferire la sospensione cellulare goccia a goccia a Geltrex rivestite piatto cultura pre-equilibrati a temperatura ambiente.
- Porre la capsula la cultura in un incubatore a 37 ° C, con un atmosfera umidificata da 4 a 6% di CO 2 in aria. Con attenzione nave vortice in direzione nord a sud, da est a ovest modello per distribuire uniformemente le cellule.
- Delicatamente liquido cambiare il piatto cultura 24 ore post-disgelo e quindi giornalmente per rimuovere i detriti cellulari e per fornire nutrienti fresco fino a quando il piatto è circa il 70-80% confluenti. Per la cultura continua e passaging delle cellule iPS, fare riferimento al nostro protocollo dal titolo "Alimentazione-Free Cultura e Passaging di cellule umane iPS usando completa sostituzione siero KnockOut alimentatore-Free Media"
Risultati attesi
Le cellule dovrebbero essere circa il 70-80% confluenti prima di crioconservazione. Dispasi risultati digestione nel curling e piegatura delle colonie lungo i margini colonia. Dopo la raccolta le cellule sono congelati come piccoli ammassi in mezzi crioconservazione. Una volta che il flacone è scongelato, le cellule recuperare e allegare alla pre-rivestite piatto come grumi di piccole dimensioni. Crescono rapidamente porta a un piatto confluenti in 5-6 giorni.
Tabella 1 - Volumi consigliati
Componente | 35 millimetri Piatto | Piatto 60 millimetri | Dish 100 millimetri |
Completa KnockOut SR media | 2 ml | 4 mL | 10 mL |
Geltrex Soluzione | 1 ml | 1,5 ml | 4-5 mL |
Dispasi | 0,5 ml | 1 ml | 3-4 ml |
D-PBS per il risciacquo | 2 ml | 4 mL | 10 mL |
Si prega di cliccare qui per vedere l'appendice .
Disclosures
Gli autori di questo articolo sono impiegati da Life Technologies che produce reagenti e strumenti utilizzati in questo articolo.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Knockout DMEM/F12 | 12660-012 | Note: see appendix for the use of alternative DMEM products GlutaMAX-I (Cat. No. 35050-061) | |
KnockOut Serum Replacement | 10828-028 | ||
KnockOut Serum Replacement Growth Factor Cocktail | A10580-01 | ||
FGF-basic, human recombinant protein, 10 μg | PHG0024 | Note: see appendix for alternative bFGF pack sizes. | |
2-Mercapt–thanol | 21985-023 | ||
Dispase | 17105-041 | Note: see appendix for alternative passaging methods | |
Geltrex hESC-Qualified Reduced Growth Factor Basement Matrix, 1 mL | A10480-01 | ||
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS) without calcium and magnesium | 14190-144 | ||
DMSO, 500mL | JT Baker | JT9224-1 | |
Sterile Tissue Culture Hood | |||
Incubator set at 37°C | |||
Pipette-Aid | |||
Water Bath set at 37°C | |||
Sterile serological pipettes (5 mL, 10 mL) | |||
Centrifuge | |||
15 mL centrifuge tubes | |||
60 mm Tissue Culture treated dishes | |||
Liquid nitrogen storage tank | |||
Isopropanol freezing containers | |||
1.5 mL Cryovials |
References
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