Waiting
Procesando inicio de sesión ...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Criopreservação e recuperação das células humanas iPS usando KnockOut Completa Feeder livre de substituição de soro Médio

Published: July 15, 2010 doi: 10.3791/2237

Summary

Este protocolo descreve o procedimento detalhado para a criopreservação de células iPS humanas no meio de criopreservação KnockOut SR e recuperação destas células em completa KnockOut Feeder SR Free (KSR-FF) médio ou alimentação baseada em médias KnockOut SR.

Abstract

A descoberta em 2006 que fibroblastos humanos e mouse poderia ser reprogramado para gerar células iPS 1-3 com qualidades muito semelhantes às células-tronco embrionárias criou uma valiosa fonte de novas células pluripotentes para descoberta de medicamentos, terapia celular, e pesquisa básica.

Media GIBCO e reagentes têm estado na vanguarda da pesquisa com células-tronco pluripotentes por anos. Knockout DMEM suplementado com Knockout Serum substituição é a mídia de sua escolha para o crescimento de células-tronco embrionárias e, agora, de cultura de células iPS 3-9. Este padrão ouro sistema de mídia agora pode ser usado para alimentação livre de cultura com a adição de Knockout SR Cocktail Fator de Crescimento.

ES humana e métodos tradicionais de cultura de células iPS requerem o uso de mouse ou camadas de alimentação humana de fibroblastos, ou alimentador condicionado médio. Estes métodos cultura são de trabalho intensivo, difícil de escala e é difícil manter quadris células indiferenciadas, devido às condições indefinido. Invitrogen desenvolveu Knockout SR Cocktail Fator de Crescimento para permitir que você facilmente transição seus quadris e culturas de células-tronco embrionárias humanas para alimentação livre, mantendo o uso do SR Knockout.

Protocol

Nota: Para manter as condições de cultura estéril, todos os procedimentos neste protocolo são realizadas utilizando práticas de laboratório estéril e conduzidos sob uma capela de fluxo laminar.

Antes de começar, certifique-se que qualquer mídia é equilibrado a 37 ° C e adequadamente gaseados.

Preparar pratos Geltrex revestido Cultura

Nota: ver anexo para o uso de placas de cultura de CELLstart revestido.

  1. Tubo de descongelar um dos Geltrex (1 mL) lentamente a 2-8 ° C e diluir 1:100 em 99 mL de Knockout D-MEM/F-12. Misturar a solução suavemente.

    Nota: Algumas linhagens de células iPS podem requerer uma diluição Geltrex diferentes para o crescimento ideal. Veja o apêndice para diluições de alternativa.
  2. Cobrir toda a superfície de cada placa de cultura com a solução Geltrex (1 mL para um prato de 35 mm, 1,5 mL para um prato de 60 mm).
  3. Seal cada prato com Parafilm para evitar a secagem e incubar os pratos para 1 hora a 37 ° C.

    Nota: Neste ponto, você pode armazenar os pratos Geltrex revestido cultura a 4 ° C por até 1 mês. Seal cada prato com Parafilm para impedir a Geltrex sequem.
  4. Antes de usar, transferir os pratos Geltrex revestido a uma capela de fluxo laminar e permitir-lhes atingir a temperatura ambiente (cerca de 1 hora).

Preparando Alimentador-Free SR Completa KnockOut Médio

  1. Para preparar 1 mL de 10 mcg / ml solução FGF Basic, assepticamente misturar os componentes listados abaixo. Alíquota da solução e armazenar a -20 ° C por até 6 meses.
    FGF básico 10 mg
    D-PBS 990μL
    10% BSA 10 L

    Nota: BSA pode ser substituído com HSA ou SR Knockout na mesma concentração.
  2. Para preparar 50 mL de solução 2 Dispase mg / mL, assepticamente misturar os componentes listados abaixo. Filtro de esterilizar a solução e armazenar a 4 ° C por até duas semanas.
    Dispase 100 mg
    D-PBS 50 mL
  3. Para preparar 100 mL de SR KnockOut completa Alimentador-Free (KSR-FF) assepticamente combinar os componentes listados na tabela abaixo.
    Componente Concentração de ações Concentração Final Volume
    Knockout DMEM/F12 (Cat. n º. 12.660-012) - 1X 76,8 mL
    Glutamax-I (Cat. No. 35050-061) 200 mM 2 mM 1 mL
    KnockOut SR (sem Cat.. 10.828-028) - 20% 20 mL
    KnockOut SR-GFC (sem Cat.. A10580-01) 50X 1X 2 mL
    bFGF (Cat. n º. PHG0024). 10 mcg / mL 20 ng / mL 200 mL

    Você pode armazenar o meio KSR-FF a 2-8 ° C por até uma semana.
  4. Pouco antes de pré-equilibrar o meio completo à temperatura e gases, adicionar assepticamente o volume necessário de 2-mercaptoetanol (55 mM de concentração de ações) para uma concentração de 0,1 mM final. Por exemplo, para preparar 100 mL da KSR-FMédio F adicionar 182 mL de 55 mM 2-mercaptoetanol (1:550 diluição) Alternativamente, o 2-mercaptoetanol podem ser adicionadas ao meio 1X preenchido e armazenado a 2-8 ° C por até uma semana.

Preparando congelamento / Criopreservação Médio

O meio de criopreservação consiste em dois meios de comunicação; Médio Congelamento A e B. Congelamento Médio Eles são adicionados às células em momentos diferentes e devem permanecer separados. Eles estão cada 50% do volume total de Medium Criopreservação necessário. O volume total de Medium Criopreservação necessário é 1 mL para cada frasco a ser congelados. Um prato de 90% confluentes 60mm de CTEh pode ser usado para o banco 2 frascos de CTEh na mídia criopreservação.

Prepare volume suficiente de cada meio de congelamento, com um extra de 2-5 mL para garantir excedente.

Congelamento Médio A (50% do volume final): 50% DMEM/F12 KSR 50%
Congelamento Médio B (50% do volume final): 80% DMEM/F12 20% DMSO

Exemplo:

Se você está congelando 20 frascos de células, você precisará de 20 mL de Criopreservação Médio. Adicionar 4 ml de sobrecarga para um total de Medium Criopreservação 24mL. Isso significa que você vai precisar de 12 ml Médio Congelamento A. (50% de 24mL) e 12 ml de B Freezing Medium (50% de 24mL)

Congelamento Médio A (12 ml): 6 mL DMEM/F12 6 mL KSR
Congelamento Médio B (12 mL): 9,6 mL DMEM/F12 2,4 mL DMSO

A composição final do Médio Criopreservação é de 65% DMEM/F12, KSR 25% e DMSO 10%.

Criopreservação iPSCs

  1. Pré-aquecer o volume necessário de Dispase em um banho de água 37 ° C. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  2. Pré-equilibrar o volume necessário de KSR-FF em um banho de água a 37 ° C for15 min. Consulte a Tabela 1below para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  3. Aspirar o meio de gastos do navio cultura usando uma pipeta, e lavar as células duas vezes com D-PBS.
  4. Delicadamente adicionar pré-aquecido Dispase solução para o navio de cultura (por exemplo, 1 mL de solução Dispase por 60 mm placa de cultura). Redemoinho do navio cultura para revestir a superfície da célula inteira.
  5. Incubar a embarcação cultura a 37 ° C por 3 minutos.
  6. Remover o navio da incubadora, aspire a solução Dispase e lavar cuidadosamente as células com D-PBS.
  7. Raspe as células da superfície da placa de cultura com uma espátula de células, e transferência das células para um tubo de centrifugação estéril 15ml.
  8. Lavar o prato de cultura duas vezes com KSR-FF, gentilmente "pulverização off" as células que não tenham destacado. Piscina do enxágüe meio com as células no tubo de 15mL.
  9. Centrifugar o tubo a 200 xg por 5 minutos em temperatura ambiente para agregar as células.
  10. Aspirar cuidadosamente o sobrenadante sem perturbar o pellet celular e descartá-lo.
  11. Prepare uma quantidade suficiente de criotubos. Uma vez que as células estão em contato com DMSO, devem ser aliquotado e congelado dentro de 2-3 minutos.
  12. Agite suavemente o tubo, para desalojar totalmente o pellet celular a partir do fundo do tubo e volte a suspender as células em A. Medium Congelamento [cuidado pipetando para cima e para baixo usando a 5 mL pipeta sorológica]. Após suspensão uniforme de aglomerados, adicionar igual volume de B Freezing Medium para ele, de uma forma sábia queda, enquanto gentilmente agitando o suspensão de células para misturar.

    Nota: Neste ponto, as células estão em contato com DMSO e trabalho deve ser realizado de forma eficiente. Uma vez que as células estão em contato com DMSO, devem ser aliquotado e congelado dentro de 2-3 minutos.
  13. Ml 1 alíquota da suspensão de células em cada cryovial.
  14. Rapidamente colocar os frascos em um Mr. Frosty [para congelar rapidamente] e transferi-lo para -80 ° C durante a noite.
  15. Após o armazenamento durante a noite a -80 ° C, a transferência das células para um tanque de nitrogênio líquido para o armazenamento de longo prazo.

iPSC descongelar frasco e recuperação das células

Nota: KSR-FF pode ser substituído com KSR meio contendo MEF-condicionado, ou médio KSR para uso com alimentadores. Veja o apêndice para obter instruções para a preparação de meios de comunicação.

Pré-aquecer 10ml de KSR-FF médio em um tubo de 50 mL.

  1. Equilibrar a quantidade adequada de Geltrex revestido pratos à temperatura ambiente e aspirar qualquer tipo de líquido a partir os pratos antes que você platingr células.
  2. Remova cuidadosamente a CTEh (ou iPSC) frasco de Tanque de armazenamento de nitrogênio líquido.
  3. Descongelar rapidamente frasco frozen de células em um banho de água 37 ° C, até que apenas um pequeno pedaço congelado permanece no frasco.
  4. Pulverizador frasco com 70% isopropanol para descontaminar-lo e transferi-la para a capa estéreis de cultura de tecidos.
  5. Transferir assepticamente todo o conteúdo do frasco em um tubo cônico de 15 mL utilizando uma pipeta de 5 mL.
  6. Lavar o frasco com 1 mL de KSR-FF e adicione este ao tubo de centrifugação de 15 mL.
  7. Lentamente, adicionar 4 mL da KSR-FF gota a gota, para as células no tubo de 15mL cônico. Ao adicionar o meio, gentilmente mova o tubo para trás e para misturar as células. (Isto reduz choque osmótico para as células).
  8. Centrifugar o tubo de 15 mL com a suspensão de células em 1000rpm (200 x g) por 2 minutos em temperatura ambiente.
  9. Aspirar cuidadosamente e descartar o sobrenadante sem perturbar o pellet celular.
  10. Re-suspender o pellet celular pré-aquecido KSR-FF (por exemplo, prato 4mL/60 milímetros), utilizando uma pipeta de 5 mL e gentilmente pipeta as células para cima e para baixo até pellet celular está totalmente dispersa. A viabilidade de mais de 70% é esperado, no entanto, se a viabilidade é inferior a 70%, pode demorar mais tempo para as células para chegar a confluência.
  11. Usando a mesma pipeta, transferir a suspensão celular gota a gota, a Geltrex revestido placa de cultura pré-equilibradas à temperatura ambiente.
  12. Coloque o prato de cultura em uma incubadora de 37 ° C, com uma atmosfera húmida de 4 a 6% CO 2 no ar. Cuidadosamente redemoinho em um navio norte a sul, de leste a oeste padrão para distribuir uniformemente as células.
  13. Suavemente fluido mudar a placa de cultura de 24 horas pós-descongelamento, e depois diariamente para remover os restos celulares e para fornecer nutrientes fresco até que o prato é de aproximadamente 70-80% confluentes. Para a cultura e continuou passaging de células iPS seu, consulte nosso protocolo intitulado "Alimentador-Livre Cultura e Passaging das células humanas iPS usando Completa KnockOut substituição Feeder Serum-Free Medium"

Resultados esperados

As células devem ser cerca de 70-80% confluentes antes da criopreservação. Dispase resultados na digestão enrolando e dobrando das colônias ao longo das margens da colônia. Após a colheita as células são congeladas como pequenos aglomerados na mídia criopreservação. Uma vez que o frasco é descongelado, as células se recuperar e anexar o prato pré-revestidos como pequenos aglomerados. Eles crescem rapidamente levando a um prato confluentes em 5-6 dias.

Tabela 1 - Volumes recomendadas

Componente Dish 35 milímetros Dish 60 milímetros Dish 100 milímetros
Completa KnockOut SR médio 2 mL 4 mL 10 mL
Geltrex Solution 1 mL 1,5 mL 4-5 mL
Dispase 0,5 mL 1 mL ML 3-4
D-PBS para lavagem 2 mL 4 mL 10 mL

Por favor, clique aqui para ver o apêndice .

Disclosures

Os autores deste artigo são empregados por Life Technologies, que produz reagentes e instrumentos utilizados neste artigo.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Knockout DMEM/F12 12660-012 Note: see appendix for the use of alternative DMEM products GlutaMAX-I (Cat. No. 35050-061)
KnockOut Serum Replacement 10828-028
KnockOut Serum Replacement Growth Factor Cocktail A10580-01
FGF-basic, human recombinant protein, 10 μg PHG0024 Note: see appendix for alternative bFGF pack sizes.
2-Mercapt–thanol 21985-023
Dispase 17105-041 Note: see appendix for alternative passaging methods
Geltrex hESC-Qualified Reduced Growth Factor Basement Matrix, 1 mL A10480-01
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS) without calcium and magnesium 14190-144
DMSO, 500mL JT Baker JT9224-1
Sterile Tissue Culture Hood
Incubator set at 37°C
Pipette-Aid
Water Bath set at 37°C
Sterile serological pipettes (5 mL, 10 mL)
Centrifuge
15 mL centrifuge tubes
60 mm Tissue Culture treated dishes
Liquid nitrogen storage tank
Isopropanol freezing containers
1.5 mL Cryovials

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Takahashi, K. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  3. Yu, J. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  4. Maherali, N. Guidelines and techniques for the generation of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 3, 595-605 (2008).
  5. Li, W. Generation of rat and human induced pluripotent stem cells by combining genetic reprogramming and chemical inhibitors. Cell Stem Cell. 4, 16-19 (2009).
  6. Liao, J. Generation of induced pluripotent stem cell lines from adult rat cells. Cell Stem Cell. 4, 11-15 (2009).
  7. Dimos, J. T. Induced pluripotent stem cells generated from patients with ALS can be differentiated into motor neurons. Science. 321, 1218-1221 (2008).
  8. Aasen, T. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nat Biotechnli. 26, 1276-1284 (2008).
  9. Park, I. H. Generation of human-induced pluripotent stem cells. Nat Protoc. 3, 1180-1186 (2008).

Tags

Biologia Celular Edição 41 iPS pluripotentes as células-tronco cultura de células médio mídia alimentação livre
Criopreservação e recuperação das células humanas iPS usando KnockOut Completa Feeder livre de substituição de soro Médio
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wagner, K., Welch, D. Cryopreserving More

Wagner, K., Welch, D. Cryopreserving and Recovering of Human iPS Cells using Complete KnockOut Serum Replacement Feeder-Free Medium. J. Vis. Exp. (41), e2237, doi:10.3791/2237 (2010).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter