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1. Solución y preparación de los medios de comunicación
- Solución de revestimiento de gelatina: 0,1% (w / v) de gelatina en ddH2O, autoclave y se almacena a 4 º C.
- Matrigel recubrimiento soluciones. Solución de archivo: lento deshielo Matrigel (10 ml) a 4 ° C durante la noche, añadir 10 ml de helado de DMEM o DMEM/F12, mezclar bien y alícuota de 1 ml / tubo por debajo de campana esterilizada cultivo de tejidos, almacenar a -20 ° C. Solución de trabajo: descongelación lenta 1 ml alícuota Matrigel a 4 ° C durante 1-2 horas, la transferencia de 14 ml DMEM frío o DMEM/F12 y mezcle bien bajo campana de cultivo de tejidos esterilizados inmediatamente antes del revestimiento.
- Humanos laminina solución de recubrimiento: diluir 1 ml de solución humana laminina (0,5 mg / ml en Tris Buffered NaCl, almacenar a -80 ° C, descongelación lenta a 4 ° C durante 1-2 horas) con helado de DMEM o DMEM/F12 a 12,5 ml de solución de trabajo (40 pg / ml) bajo campana de cultivo de tejidos esterilizados inmediatamente antes del revestimiento.
- El crecimiento de las soluciones madre de los factores (500-1000X): disolver el factor de crecimiento de 10 mg/ Ml en tampón esterilizada (0,5% de BSA, 1,0 mM DTT, 10% de glicerol, 1XPBS) y almacenar desde 50 hasta 100 l / tubo de alícuotas a -80 ° C.
- Todo-trans-retinoico solución de trabajo (1000X): 10 mM en DMSO, almacenar en alícuotas a -80 ° C.
- Los medios de comunicación HESC: DMEM/F12 o KO-DMEM (80%), KO reemplazo de suero (20%), L-alanil-L-gln o L-Gln (2 mM), MEM aminoácidos no esenciales (MNAA, 1X), y β-mercaptoetanol (100 M), se filtra y se almacena a 4 ° C, suplementado con 20 ng / ml de bFGF antes de su uso. O sustitución de "knock out (KO) de suero de reemplazo" con los componentes definidos: DMEM/F12 o KO-DMEM (100%), L-alanil-L-gln o L-Gln (2 mM), MNAA (1X), MEM esencial aminoácidos (MEAA, 1X), y β-mercaptoetanol (100 M), se filtra y se almacena a 4 ° C, complementados con bFGF (20 ng / ml), la insulina humana (20 mg / ml), ácido ascórbico (50 mg / ml), humanos activina A (50 ng / ml), la albúmina humana / Albumax (10 mg / ml), y la transferrina humano (8 mg / ml) antes de su uso.
- NSC los medios de comunicación: DMEM/F12 (100%), N-2 supplement (1X), heparina (8 mg / ml).
2. Placa de recubrimiento
- Placas de capa con la gelatina: añadir 2,5 ml / pocillo de solución de gelatina al 6 placas e incubar durante la noche en un 37 ° C humidificado incubadora.
- Placas de capa con la laminina: chill recubiertos de gelatina y remover las placas de gelatina, añadir 2,5 ml / solución de revestimiento de laminina y Matrigel o humanos que trabajan para pre-enfriado gelatinizado placas de 6 pocillos y se incuba a 4 ° C durante la noche.
3. Pases y siembra hESCs indiferenciado bajo condiciones definidas
- Permita que las colonias de células madre crecen hasta 5-7 días de edad, y tener la placa de células madre a la cultura de microscopio de disección (pre-calentar la disección de la etapa a 37 ° C) por debajo de la disección de campana esterilizada.
- Seleccione colonias células madre se dividan. Morfológicamente, estas colonias deben tener> 75% hESCs indiferenciadas (células pequeñas y compactas), por lo general ligeramente opaca (no blanca amontonada células no, claro-las células diferenciadas) con el borde de la ONU definederneath el microscopio de disección. Cuidado esquema de las colonias seleccionadas y eliminar la capa de fibroblastos diferenciados que rodea la colonia y todas las partes diferenciadas (si existe) de la colonia con el borde de la punta P2 pipeta o tirado capilares de vidrio. (Tenga en cuenta que hESCs pluripotentes están en una etapa transitoria, someterse a la diferenciación espontánea, incluso en condiciones óptimas, aunque prefiere, es difícil para las células tesis determinar son 100% indiferenciado bajo el microscopio de disección,> 75% no diferenciado se consideran generalmente como el punto de pasar. El células diferenciadas por lo general no las semillas y seguir creciendo, eliminado en el proceso de pases)
- Retire el papel viejo que contenga flotante células diferenciadas separadas por aspiración. Lavar con los medios de comunicación células madre (sin bFGF) una vez. Añadir 3 ml / media células madre y fresco que contiene 20 ng / ml de bFGF.
- Cortar las colonias células madre indiferenciadas en trozos pequeños, y separar con la punta de pipeta estéril o un vaso tirado capilar.
- Piscina los medios de comunicación que contiene piezas sueltas de colonias en un tubo cónico de 50 ml. Lavar la placa una vez con 1 ml / medios de comunicación, así células madre que contiene 20 ng / ml de bFGF y la piscina juntos.
- Aspirar la solución de Matrigel o laminina humanos de las nuevas placas recubiertas. Alícuota de 4 ml / así los medios de comunicación células madre que contiene piezas de colonias en una placa de 6 pocillos. Suavemente la placa de transferencia a la incubadora sin agitar y permitir que la colonia de semillas piezas durante la noche sin molestar a humidificado en una incubadora a 37 ° C con una atmósfera de 5% de CO 2.
4. Inducción neural de hESCs el marco del Sistema de cultivo definido con ácido retinoico
- En el día 3 después de la siembra, eliminar la mayor parte de los antiguos medios de cada pocillo de la placa y dejar los medios de comunicación suficiente para permitir que las colonias de células madre que se sumerge (nunca permita que hESCs se seque). Reemplazar con 4 ml / media células madre y fresco que contiene 20 ng / ml de bFGF y 10 M de ácido retinoico.
- Reemplazar los viejos medios con los medios de células madre fresco que contiene 20 ng / ml y bFGF10 M de ácido retinoico cada dos días, y permitir neuronales inducidas por las colonias de células madre crecen hasta el día 7 u 8. Todas las células dentro de la colonia va a sufrir cambios de la morfología de grandes células diferenciadas que se siguen multiplicando. Las colonias aumentarán de tamaño para cubrir el plato el día 7 u 8, y las células comienzan a acumularse en algunas zonas de las colonias.
5. La diferenciación neuronal continua en cultivo en suspensión
- Tome la placa de células madre a la cultura de microscopio de disección (pre-calentar la disección de la etapa a 37 ° C) por debajo de la disección de campana esterilizada. Cuidado esquema de las colonias y retirar la capa de fibroblastos que rodean la colonia (las células diferenciadas emigraron de la colonia) con el borde de la punta P2 pipeta estéril o se tira capilar de vidrio.
- Eliminar los viejos medios que contienen células de fibroblastos flotante desprendido por aspiración. Lavar con los medios de comunicación células madre (sin bFGF) una vez. Añadir 3 ml / medios de comunicación y nuevas células madre (sin bFGF).
- Cortar la neuro-icolonias nduced células madre en trozos pequeños, y separar con la punta de pipeta estéril o se tira capilar de vidrio.
- Piscina los medios de comunicación que contiene piezas sueltas de colonias en un tubo cónico de 50 ml. Lavar la placa una vez con 1 ml / medios de comunicación y células madre (sin bFGF) y la piscina juntos.
- Alícuota de 4 ml / pocillo medio libre de suero células madre que contiene piezas de colonias en una placa de ultra bajo de 6 pocillos y se incuban en apego a 37 ° C humidificado incubadora para permitir la flotación grupos celulares (neuroblastos) para formar durante 4-5 días.
6. Maduración fenotipo neuronal en la cultura adhesiva
- Piscina los medios de comunicación que contiene los neuroblastos flotando en un tubo cónico de 50 ml. Centrifugar a 1400 rpm durante 5 min. Aspirar los medios de comunicación antiguos como todo lo que pueda y agregue la misma cantidad de nuevos medios de comunicación NSC contienen VEGF (20 ng / ml), NT-3 (10 ng / ml), y el BDNF (10 ng / ml).
- Pipeta de arriba a abajo para mezclar neuroblastos flotante y alícuota de 4 ml / pocillo para placas de 6 pocillos. Los neuroblastos también puede ser en síEDED en un polimerizado laminina / colágeno (Matrigel) o laminina humana en 3 dimensiones de la matriz en el medio libre de suero que contiene NSC VEGF (20 ng / ml), NT-3 (10 ng / ml), y el BDNF (10 ng / ml) . La transferencia de las placas a un 37 ° C humidificado incubadora para permitir que los neuroblastos de adjuntar toda la noche.
- Vuelva a colocar NSC medios que contienen VEGF (20 ng / ml), NT-3 (10 ng / ml) y BDNF (10 ng / ml) cada dos días. Una extensa red de soporte de las neuritas las células neuronales y células pigmentadas comenzarán a aparecer dentro de 2 semanas de cultivo continuo y aumento en el número con el tiempo, y podría ser sostenido por más de 3 meses.
7. Los resultados representativos:
El ácido retinoico (RA) se vuelve suficiente para inducir hESCs mantiene en el sistema de cultivo definido para la transición de la pluripotencia exclusivamente a un fenotipo neuroectodérmico (Fig. 2A). Tras la exposición de hESCs indiferenciada a la AR, las células dentro de la colonia va a sufrir cambios en la morfologíagrandes células diferenciadas que dejen de expresar pluripotencia asociada a marcadores, como se indica en octubre-4, y comenzar a expresar diversos asociados neuroectodermo-marcadores, como HNK1, AP2 y TrkC (Fig. 2B). Estas células diferenciadas grandes se siguen multiplicando y las colonias aumentarán de tamaño, procediendo de manera espontánea para expresar el marcador temprano neuronal β-III-tubulina (Fig. 2B). El marcador neuronal más maduro Mapa-2 comenzará a aparecer en las zonas de las colonias donde las células se han acumulado (Fig. 2B). Coincide con la aparición de las células neuroectodérmico y diferenciación neuronal, el factor específico neuronal transcripcional Nurr1, implicados en la diferenciación neuronal dopaminérgica y la activación de la tirosina hidroxilasa (TH) gen 16, se translocan al núcleo (Fig. 2B). Después individual, el RA-hESCs tratados formarán grupos celulares flotante (neuroblastos) en un culto a la suspensiónUre para continuar con el proceso de diferenciación neuronal. Tras la eliminación de bFGF y después de permitir la neuroblastos para conectar a una placa de cultivo de tejidos o sembradas en un polimerizado laminina / colágeno en 3 dimensiones de la matriz en un medio libre de suero definido, β-III-tubulina y MAP-2 que expresan, las neuritas de soporte de las células y las células pigmentadas comenzarán a aparecer con un aumento drástico en la eficiencia, en comparación con espontánea multi-linaje diferenciación de hESCs sin tratamiento en el mismo período de tiempo, y podría ser sostenido por más de 3 meses (Fig. 2C).

Figura 1 un esquema de un buen control de inducción eficiente de las células madre pluripotentes exclusivamente a un linaje particular clínicamente relevantes por la simple provisión de moléculas pequeñas.

Figura 2 (A) Esquema que muestra de la línea de tiempo del protocolo de diferenciación neuronal de hESCs dirigido. (B) Tras la exposición de hESCs indiferenciada con el ácido retinoico (RA) en el sistema de cultivo definidos, gran diferencia octubre-4 (rojo), las células negativas dentro de la colonia comenzaron a surgir, en comparación con el modelo de tratado (DMSO) hESCs como el control . RA inducida por las células diferenciadas octubre-4-negativos comenzaron a expresar HNK-1 (rojo), AP-2 (rojo), TrkC (verde), y β-III-tubulina (rojo), de conformidad con principios de diferenciación neuroectodérmico. Estas células continuado madurando en última instancia, que expresan el marcador neuronal MAP-2 (verde), por lo general en áreas donde las células empezaron a acumularse. Coincide con la aparición de las células neuroectodérmico y diferenciación neuronal, el factor de transcripción específico neuronal Nurr1 (verde), implicados endiferenciación neuronal dopaminérgica y la activación de la tirosina hidroxilasa (TH) de genes, translocación al núcleo. Todas las células se muestran con DAPI de sus núcleos (azul). (C) tratamiento de la AR induce la diferenciación hacia un linaje neuronal con una alta eficiencia según la evaluación de extensas redes de neuritas de soporte de las células que expresan β-III-tubulina (rojo) y MAP-2 (verde, que se muestra en una matriz de 3 dimensiones). Las flechas indican las células pigmentadas típico de los del sistema nervioso central. Todas las células se muestran con DAPI de sus núcleos (azul) en las inserciones. Las barras de escala: 0,1 mm.