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Artículo de método

Ex cultivo in vivo de la Plenaria, los cerebros en desarrollo de Drosophila

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DOI:

10.3791/4270

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27 de julio de 2012

En este artículo

Resumen

Este artículo describe un método por el cual se puede imitar En vivo Desarrollo de la Drosophila Cuerpo de hongo en un Ex vivo Sistema de cultivo.

Resumen

Se describe un método para el cultivo ex vivo de cerebros completos de Drosophila. Esto puede ser usado como un contrapunto de crónicas manipulaciones genéticas para investigar la biología celular y el desarrollo de estructuras cerebrales centrales al permitir agudas intervenciones farmacológicas y formación de imágenes en vivo de procesos celulares. Como un ejemplo de la técnica, antes de trabajar de nuestro laboratorio 1 ha demostrado que un compartimiento subcelular no reconocido previamente se encuentra entre los compartimentos axonales y somatodendrítica de los axones del cerebro de Drosophila central. El desarrollo de este compartimiento, referido como el segmento inicial del axón (AIS) 2, se muestra genéticamente a depender de la quinasa neuronal específica dependiente de ciclina, Cdk5. Mostramos aquí que el tratamiento ex vivo de tipo salvaje cerebro de Drosophila larvas con la roscovitina Cdk5 específico de los inhibidores farmacológicos y olomoucina 3 se producen cambios agudos en la organización de la actina, yen la localización de la proteína de la superficie celular fasciclin 2, que imitan los cambios observados en los mutantes que carecen de actividad de Cdk5 genéticamente.

Un segundo ejemplo de la técnica in vivo la cultura ex está prevista la remodelación de las conexiones del cuerpo de setas embrionario (MB), las neuronas gamma durante la metamorfosis de larva a adulto. El cuerpo de hongo es el centro de aprendizaje y la memoria olfativa en la mosca de 4, y estas neuronas gamma podar sus ramas dendrítica y axonal durante el desarrollo de la pupa y luego volver a extender las ramas en un punto de tiempo después para establecer el patrón de inervación de adultos 5. La poda de estas neuronas de la MB se ha demostrado que se producen a través de la degeneración local de ramas neuritas 6, por un mecanismo que se activa por la ecdisona, una hormona esteroide, que actúa en el receptor de ecdisona B1 7, y que es dependiente de la actividad del ubiquitina-proteasoma sistema 6. Nuestro método de cultivo ex vivo puede be utilizan para interrogar mejor el mecanismo de la remodelación de desarrollo. Se encontró que en la configuración de la cultura vivo ex, las neuronas gamma de la MB recapituló el proceso de la poda de desarrollo con un tiempo similar al que en vivo. Es esencial, sin embargo, que esperar hasta 1,5 horas después de la formación pupario antes explantar el tejido a fin de que las células de cometer irreversiblemente a la metamorfosis; disección de animales en el inicio de pupariation llevó a metamorfosis poca o ninguna en cultivo. Así, con las modificaciones apropiadas, el método in vivo cultivo ex puede ser aplicado para estudiar dinámica así como los aspectos de estado estacionario de la biología cerebro central.

Protocolo

A. Preparación de los medios

  1. Preparar medios completos por filtración esterilizante Drosophila Schneider medio suplementado con suero fetal bovino al 10% y 1% de penicilina / estreptomicina.
  2. Medios de comunicación deben estar preparados frescos cada vez. Alternativamente, una parte alícuota de la pre-congelados medios de comunicación pueden ser descongelado antes de cada uso.
  3. Antes de cultivo, añadir 10 g / ml de insulina y 2 g / ml ecdisona a los medios. Los fármacos se preparó como poblaciones concentradas y se congelaron en alícuotas pequeñas. Alícuotas descongeladas no volver a congelar.
  4. Todas las soluciones de tr....

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Discusión

Crónicas manipulaciones genéticas de la estructura del tejido y la función, incluyendo las mutaciones y la expresión de los transgenes, por lo general producen una combinación de efectos inmediatos y finales de las consecuencias indirectas que pueden ser muy difíciles de separar. Como complemento de los métodos genéticos con la farmacología puede facilitar el interrogatorio de la evolución en el tiempo detrás de un fenotipo. Por ejemplo, este ha sido un enfoque de gran alcance para la disección de las contribucion.......

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Divulgaciones

No hay conflictos de interés declarado.

Agradecimientos

Nos gustaría dar las gracias a todos los miembros de nuestro laboratorio para sus consejos, las discusiones y comentarios útiles sobre el manuscrito. También nos gusta especialmente dar las gracias a Marta Koch y Hassan Bassem para la excelente sugerencia que esperar hasta 1,5 horas antes de la disección de los cerebros de la APF para el cultivo en los experimentos de remodelación. Agradecemos también a la instalación de imágenes de NHGRI para el uso de su microscopio confocal. Este trabajo fue apoyado por el Programa de Neurociencia Básica del Programa de Investigación Intramural del NINDS, NIH (Z01 NS003106).

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Nombre de Reactivo Empresa Número de catálogo La concentración final
Schneider Drosophila medios de comunicación Invitrogen 21720-024
Suero bovino fetal (inactivado por calor) Invitrogen 10082-147 10%
La penicilina / estreptomicina Invitrogen 15140-122 1%
Insulina Invitrogen 12585-014 10μg/ml
Ecdisona Sigma-Aldrich H5142 2μg/ml
Roscovitina Sigma-Aldrich R7772 100 micras
Olomoucina Sigma-Aldrich O0886 100 micras
Suero normal de cabra Invitrogen 50062Z 1%
Albúmina de suero bovino Fisher Scientific M9501 1%
Formaldehído Sigma-Aldrich D4551 4%
Triton X-100 Fisher Scientific BP151 0,5%
Tampón fosfato salino Invitrogen 70011-044 1X
Vectashield Vector Laboratories H1000
Millicell Inserta cultivo celular Millipore PI8P01250
Multidish, 4 y Thermo Scientific 176740
Dumont # 5 Pinzas Herramientas de Bellas Ciencia 11251-20
Preparaciones para microscopio Fisher Scientific 12-544-7
Cierre de vidrio Fisher Scientific 12-548-5M

Referencias

  1. Trunova, S., Baek, B., Giniger, E. Cdk5 regulates the size of an axon initial segment-like compartment in mushroom body neurons of the Drosophila central brain. J. Neurosci. 31 (29), 10451-10462 (2011).
  2. Nakada, C., et al.

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

Disección cerebralcuerpo pedunculadopoda del desarrolloinhibidores de Cdk5imagen en vivoinmunotincióncultivo celularlapso de tiempo