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Todo el trabajo realizado como parte de este estudio se llevó a cabo de conformidad con las directrices éticas establecidas por la Ley de 1986 sobre animales del Reino Unido (procedimientos científicos) y la Directiva 2010/63/UE del Parlamento Europeo sobre la protección de los animales utilizados con fines científicos. Los experimentos fueron aprobados por la oficina en casa (ratón: PPL 30/2967 y PFDAAF77F, conejillo de indias: PPL PF75E5F7F) y las juntas de revisión institucional en la Universidad de Birmingham (ratón) y el King's College de Londres (conejillo de indias). Los métodos detallados para la recopilación de los datos sin procesar que se han analizado aquí se pueden encontrar en nuestras publicaciones anteriores5,6,14,19.
La interfaz principal desde la que se controla ElectroMap se muestra en la Figura 1A. Los pasos necesarios para analizar un conjunto de datos se controlan principalmente mediante los botones Cargar imágenes, Procesar imágenesy Generar mapas y se muestran resaltados en verde, azul y rojo, respectivamente en la Figura 1A. La figura 1B-D muestra las operaciones que se producen en la selección de cada uno de estos botones. Cargar imágenes aplica las opciones de umbral de imagen seleccionadas por el usuario (figura1B),mientras que procesar imágenes (figura1C) aplica el filtrado y la corrección de línea base. Por último, Produce Maps primero promediará los datos de acuerdo con la ventana de tiempo y la configuración de segmentación (a menos que se elija la segmentación de un solo ritmo) y, a continuación, realizará los análisis descritos anteriormente.
Un aspecto clave de ElectroMap es su flexibilidad con respecto al tipo de cámara y modelo experimental. Esto es crucial para la utilidad de un software de mapeo óptico debido a los distintos EP cardíacos y características anatómicas que existen entre los modelos ampliamente utilizados. La Figura 2A, por ejemplo, muestra la morfología potencial de acción de las aurículas murinas en comparación con el ventrículo del conejillo de indias, registrada utilizando detenciones sensibles al voltaje como se informó anteriormente6,14. A pesar de la forma distintiva del potencial de acción, y el uso de dos cámaras de mapeo óptico independientes con diferentes velocidades de fotogramas y tamaños de píxeles, ElectroMap se puede utilizar para analizar con éxito ambos conjuntos de datos. Sin embargo, esto requiere la modificación de algunos parámetros dentro de la interfaz de usuario (figura2B). Tenga en cuenta que el potencial prolongado de acción de conejillo de indias requiere una ventana de tiempo más grande. Además, para evitar la corrección de línea de base del sombrero superior modificando fisiológicamente las señales registradas ópticamente, su longitud de tiempo debe aumentarse para que sea mayor que el curso de tiempo del potencial de acción.
ElectroMap ofrece una multitud de opciones de procesamiento para ayudar a mejorar el SNR de señales grabadas ópticamente que pueden ser necesarias para recuperar eficazmente los parámetros del EP. Un ejemplo es el promedio automatizado del conjunto de picos después de la segmentación de datos. La Figura 3A-C muestra cómo la aplicación del promediado de conjunto, en lugar de otros métodos, puede mejorar el SNR de las árilos aislados de la izquierda murina (n .13). Esto reduce la heterogeneidad de la medición y la probabilidad de fallo de análisis (Figura3D). Por ejemplo, un cambio de frecuencia de ritmo de 3 Hz a 10 Hz no alteró APD50, cuando no se lleva a cabo un promedio de conjunto, sin embargo, se observó una disminución esperada de29 en APD50 a 10 Hz de ritmo cuando se midió a partir de datos promediados del conjunto ( Figura 3E).
La Figura 4 demuestra la eficacia y utilidad de la detección y segmentación automatizada de frecuencias de ritmo ofrecida según ElectroMap. Aquí, las atrias izquierdas del ratón (n a 5) se relacionaron con una longitud de ciclo de 120 ms y la longitud del ciclo se acortó gradualmente en 10 ms hasta que llegó a 50 ms. ElectroMap identificó automáticamente la longitud del ciclo de ritmo y los picos promediados del tejido agrupado en consecuencia (Figura4A ). Esto se logró con alta precisión en todos los conjuntos de datos (Figura4B). La segmentación automatizada de los datos permitió un análisis sencillo y de alto rendimiento de la ralentización de la velocidad de conducción con una mayor frecuencia de ritmo/longitud de ciclo acortada (Figura4C,D). Simultáneamente, APD50 (Figura4E)y intervalo diastólico (Figura 4F) acortado. La amplitud de los picos medidos ópticamente disminuyó, mientras que el tiempo hasta el pico aumentó (Figura 4G,H). Estas son de nuevo las respuestas de restitución esperadas en el tejido cardíaco29,30 y el uso de ElectroMap puede ayudar, por lo tanto, a dilucidar los cambios en respuesta a la frecuencia de ritmo en presencia de agentes farmacológicos, modificación genética, o los estados de la enfermedad.
Una consideración importante en el uso de un software como ElectroMap es la presencia de artefactos en los datos subyacentes. Figura 5, por ejemplo, demuestra que los artefactos de movimiento (la distorsión de la señal registrada ópticamente por el movimiento del tejido) pueden impedir mediciones precisas de la activación y especialmente la repolarización dentro de ElectroMap. Consulte Debate para más consideraciones.

Figura 1: Pasos principales de procesamiento de ElectroMap. (A) Interfaz gráfica de usuario de ElectroMap, con los botones Cargar imágenes (verde), Procesar imágenes (azul) y Producir mapas (rojo) resaltados. (B) Opciones de umbral de imagen que se pueden aplicar al seleccionar Cargar imágenes. (C) Las opciones de procesamiento de señales disponibles para el usuario incluyen el filtrado espacial y temporal y la corrección de línea base y se pueden aplicar a la pila de imágenes pulsando Procesar imágenes. (D) Promediación del conjunto y cuantificación de parámetros (medida APD mostrada) que se activa seleccionando Producir mapas. Figura adaptada de O'Shea et al., 201913. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2: Análisis de los datos del ratón y del conejillo de indias utilizando ElectroMap. (A) Potencial de acción grabado ópticamente de las aurículas de ratón y los ventrículos de conejillo de indias, junto con el primero (df/dt) y el segundo (d2f/dt2)derivado de estas señales. Se resaltan las diversas definiciones para los tiempos de activación y repolarización empleables dentro de ElectroMap. (B) Capturas de pantalla de la configuración de procesamiento de imágenes y señales utilizadas en la interfaz de ElectroMaps. Las casillas rojas resaltan los ajustes que requieren modificación entre los análisis de los datos del ratón y del conejillo de indias. Figura adaptada de O'Shea et al., 201913. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3: Promediación del conjunto para resolver los cambios de APD. (A) APD50 mapa y ejemplo de señal de un solo píxel de potenciales de acción óptica de un solo ritmo. (B) APD50 mapa y ejemplo de señal de un solo píxel de potenciales de acción óptica generados por el conjunto promediando 10 latidos sucesivos (método de pico). (C) SNR de un solo ritmo en comparación con 10 señales promediadas de ritmo. (D) APD50 heterogeneidad (i) y número de fallas de medición (ii) en función de SNR para un solo ritmo y 10 latidos promediados APD50 mapas. (E) APD50 a 3 y 10 Hz frecuencia de ritmo, medida a partir de mapas de un solo ritmo y 10 ritmos. (Datos mostrados como media s error estándar, n a 13 a la izquierda de las arículas, ****p < 0.001 por la prueba t-test emparejada del estudiante). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4: Uso de ElectroMap para estudiar las respuestas de frecuencia de ritmo en el tejido cardíaco. (A) Ejemplo de captura de pantalla electroMap de ritmo de reconocimiento de frecuencia y segmentación. (B) Comparación de longitudes de ciclo de ritmo conocidas y medidas por ElectroMap. (C) Mapas de activación a 120 ms y 60 ms longitudes de ciclo de ritmo. (D-H) Datos agrupados de velocidadde conducción (D ), APD50 (E), intervalo diastólico (F), amplitud (G) y tiempo hasta el pico (H) en función de la longitud del ciclo de ritmo disminuyendo de 120 ms a 60 ms en incrementos de 10 ms. (Datos mostrados como media - error estándar, n a 5 a la izquierda de las arículas) Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5: Efecto de los artefactos de movimiento. (A) APD50 mapa. (B) Mapa de activación. (C) Señales de ejemplo de ubicaciones marcadas (cruces) en aPD y mapas de activación. En el área del tejido marcado con la cruz roja, la contracción no se ha desacoplado con éxito, distorsionando la señal óptica medida. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.