Name: Hidrófobo sal modificada Nafion para inmovilización de enzimas y Estabilización (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-07-11T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 16 s
Description: Aprende a sintetizar Nafion modificado hidrofóbicamente para inmovilizar enzimas y mejorar su estabilidad en ensayos de actividad. Este método optimiza la reutilización de enzimas en aplicaciones bioquímicas.

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Los autores agradecen a la Oficina de Investigación Naval, Junta Unidas de soja, y la Fundación Nacional de Ciencias para la financiación.

1. Modificación de Nafion con sales de amonio cuaternario <ol><li> Agitar una botella de suspensión Nafion 5% w / v vigorosamente durante aprox. 30 segundos para asegurar que Nafion está suspendida de manera uniforme en la solución. </li><li> Pipetear a cabo 2 ml de la Nafion ahora re-suspendido en un vial de vidrio (volumen vial podría contener de 2,5 ml a 10 ml). </li><li> Medir un exceso molar de 3 veces (en relación con los grupos ácidos sulfónicos en el polímero Nafion) de la sal de amonio bromuro de alquilo (masas apropiadas se muestran en la Tabla 1) y añadir esta al vial que contiene el 2 ml de Nafion. </li><li> Vórtice del vial a 1500 rpm durante 10-15 minutos. </li><li> Vierta la solución viscosa en una bandeja de plástico un peso que mide aprox. 3 x 3 cm, y utilizar una pipeta para transferir cualquier solución residual del vial a la bandeja de pesaje. </li><li> Permitir los disolventes que se evapore de la barca pesan, dejando un color amarillo / marrón, película transparente en la parte inferior de la bandeja de pesaje (FiFigura 2). La tasa de evaporación del disolvente debe ser tal que se necesita más de 6 horas durante todo el disolvente se evapore. Si el solvente se evapora demasiado rápido, un material blanco, crujiente formará en lugar de una película transparente que indica que la estructura micelar del polímero ha sido destruido, y debe volver a iniciar el procedimiento. Si la evaporación del disolvente es demasiado lento, un deshumidificador puede ser necesario, debido a la evaporación demasiado lenta por lo general conduce a un gel pegajoso, de color naranja y debe volver a iniciar el procedimiento. Los rangos típicos de temperatura para la evaporación del disolvente son 20 a 37 ° C. Las condiciones reales para el secado son una función de la humedad relativa y temperatura de la habitación, pero es importante que el secado es lento para mantener la estructura micelar, pero no demasiado lento para permitir la formación de gel. </li><li> Llenar el bote con un peso 18M Ωcm agua desionizada (10-20 ml de agua), tapar y dejar en remojo durante 12-24 horas para eliminar el exceso de sales de bromuro de alquil amonio y HBr. </li><li&gt; Vierta (o pipeta) el agua y enjuague 3 veces con agua desionizada suficiente para llenar la bandeja cada vez. Tenga cuidado de no perder ninguna de la película de polímero durante este paso. </li><li> Permitir la bandeja de pesaje para sentarse cubierto hasta que el polímero está completamente seco En este punto, el polímero debe ser una película de plástico transparente y quebradizo algo. De nuevo, si el aire es muy húmedo, un deshumidificador puede ser necesario para completar la evaporación de una manera oportuna. </li><li> Usando una espátula, retire con cuidado la película seca de la bandeja de pesaje y la transfiere en un frasco de vidrio limpio. </li><li> Añadir 2 ml de etanol y 3 perlas de mezcla de cerámica, y vórtice durante 4 horas o hasta que la película de polímero está completamente re-suspendido. </li></ol> 2. La inmovilización de las enzimas en TBAB-Modified Nafion de Ensayos de actividad <ol><li> Para una enzima seca, pésese 1-10 mg de la enzima en un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml, y se añade 1 ml de 100 mM de tampón fosfato de pH 7 para crear un 1-10 mg / ml de solución enzimática. For una enzima que está en solución, utilizar un ácido bicinconínico (BCA) ensayo 13 para determinar la cantidad de proteína, y añadir una cantidad apropiada de tampón fosfato 100 mM a reducir la concentración de proteína a 1-10 mg / ml. Ml 1-10 mg / normalmente corresponde a 1-50 nanomoles por ml. </li><li> Para 120 l de la de 1 mg / ml de solución enzimática, añadir 60 l de la solución Nafion alquilo amonio-modificado, y vórtice durante 10 segundos. (Esta mezcla puede ser ampliado para un gran número de repeticiones. Mantener la relación de solución de enzima a polímero a 2:1.) </li><li> Pipeta 60 l de la solución de enzima / polímero en la parte inferior de 3 separados 1 cm 2 cubetas, y dejar secar durante la noche. </li></ol> 3. Ensayo de la enzima inmovilizada deshidrogenasa NAD-dependiente <ol><li> Para la cubeta, añadir 1,3 ml de 50 mM de pirofosfato de sodio (pH 8,8), 1,5 ml de 15 mM de NAD (recién preparada) y 0,1 ml de agua. </li><li> Coloque la cubeta en un espectrofotómetro UV / Vis (Evolut ThermoScientific es decir,iones de Bio 260 y Thermo Spectronic Genesys 20) establece en una longitud de onda de 340 nm. </li><li> Poner a cero el espectrómetro y, a continuación, añadir 0,1 ml de etanol. Mezcle los reactivos pipeteando suavemente la solución arriba y hacia abajo 5 veces. Para un blanco, utilizar 0,1 ml de agua adicional en lugar de la 0,1 ml de etanol. </li><li> Anotar la absorbancia a 340 nm a 5 minutos después de que los reactivos se añadieron a la cubeta y 20 minutos después. Trazar los dos puntos de datos para conseguir una pendiente que puede ser utilizado para los cálculos de actividad. </li></ol> 4. Ensayo de inmovilizados PQQ-deshidrogenasas dependientes <ol><li> Para la cubeta, añadir 1,5 ml de fosfato sódico (pH 7,3) y 200 l de 600 uM PMS. </li><li> Colocar la cubeta en un espectrofotómetro UV / Vis establece en una longitud de onda de 600 nm y luego ajustar el cero del espectrómetro. </li><li> Añadir 100 l de 700 l DCIP y 200 l de sustrato de interés (etanol, acetaldehído, glicerol, glucosa, o gliceraldehído), y mezclar los reactivos pipeteando suavemente la solutión arriba y hacia abajo 5 veces. Para un blanco, utilice 200 l de agua en lugar del substrato de interés. </li><li> Anotar la absorbancia a 600 nm a 5 minutos después de que los reactivos se añadieron a la cubeta y 20 minutos después. </li></ol> 5. Ensayo de glucosa oxidasa inmovilizada <ol><li> Para la cubeta, añadir 2,0 ml de una solución que contiene 0,2 M ácido p-hidroxibenzoico, 0,02% (w / v) de azida de sodio, 128 U de peroxidasa, 0,3 mM de 4-aminoantipirina, 1 M de fosfato de potasio, y 50 mM de glucosa. Mezclar la solución con la pipeta hacia arriba y abajo 5 veces. </li><li> Colocar la cubeta en un conjunto espectrofotómetro UV / Vis a una longitud de onda de 510 nm. </li><li> Leer la absorbancia a 510 nm a 5 minutos después de que los reactivos se añadieron a la cubeta y de nuevo a 20 minutos después. </li></ol> 6. Los resultados representativos La estructura micelar del polímero Nafion modificado puede ser interrumpido por el secado de la sal original / polímero fundido co-película también fast. La figura 2 muestra una mezcla de sal / polímero que se ha secado correctamente resultante en una película transparente, de color marrón claro. Una película que se seca demasiado rápido puede resultar en escamas blancas opacas, de polímero debido al hecho de que el proceso de secado puede destruir la estructura micelar. Una vez que la modificación Nafion polímero y la enzima se han mezclado y co-vierte sobre el fondo de una cubeta, los ensayos de actividad enzimática se puede utilizar para evaluar la estabilidad de la enzima dentro de la película de polímero. Tablas 2-4 muestran los resultados del ensayo de dos enzimas deshidrogenasa y glucosa oxidasa inmovilizada en varias películas Nafion modificados, respectivamente. Nótese la mayor actividad de las enzimas que están inmovilizadas vs las enzimas en solución tampón, que muestra que los polímeros modificados Nafion puede realmente aumentar la actividad de ciertas enzimas (llamado superactivity). Otras enzimas tienen limitaciones de transporte que disminuyen su actividad específica, cuando inmovilizarlos en el polímero (es decir, celulasas y amilasas, cuyos sustratos son macromoléculas bastante grande). <table border="1"><tbody><tr><td> Sal de amonio cuaternario usado </td><td> 3 veces el exceso </td></tr><tr><td> T3A (bromuro de tetrapropilamonio) </td><td> 32,37 mg / ml </td></tr><tr><td> TBAB (bromuro de tetrabutilamonio) </td><td> 39,19 mg / ml </td></tr><tr><td> TPAB (bromuro de tetrapentilamonio) </td><td> 46,01 mg / ml </td></tr><tr><td> TEHA (bromuro de triethylhexylammonium) </td><td> 32,37 mg / ml </td></tr><tr><td> TMHA (bromuro de trimethylhexylammonium) </td><td> 27,25 mg / ml </td></tr><tr><td> TMOA (bromuro de trimethyloctylammonium) </td><td> 30,66 mg / ml </td></tr><tr><td> TMDA (bromuro de trimethyldecylammonium) </td><td> 34,07 mg / ml </td></tr><tr><td> TMDDA (bromuro de trimethyldodecylammonium) </td><td> 37,48 mg / ml </td></tr><tr><td> TMTDA (bromuro de trimethyltetradecylammonium) </td><td&gt; 40,89 mg / ml </td></tr><tr><td> TMHDA (bromuro de trimethylhexadecylammonium) </td><td> 44,31 mg / ml </td></tr><tr><td> TMODA (bromuro de trimethyloctadecylammonium) </td><td> 47,71 mg / ml </td></tr></tbody></table> Tabla 1. Las cantidades de sales de amonio tetra-alquil utilizar para Nafion modificación de polímeros. <table border="1"><tbody><tr><td> Tipo de Nafion </td><td> La actividad enzimática (U / g) </td></tr><tr><td> Tampón (sin polímero) </td><td> 16,63 ± 8,11 </td></tr><tr><td> Nafion (un-mod.) </td><td> 9,25 ± 2,21 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 3,23 ± 2,92 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 3,93 ± 3,33 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 4,19 ± 1,04 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 3,51 ± 1,11 </td></tr><tr><td> TMDA </td><td> 8,00 ± 4,53 </td></tr><tr><td> TMHA </td><td> 1,68 ± 1,39 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 4,83 ± 0,99 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 10,45 ± 3,20 </td></tr></tbody></table> Tabla 2 NAD-dependiente de la actividad deshidrogenasa de glucosa inmovilizada en determinados polímeros modificados Nafion (nota: actividad inmovilizada es una función de la actividad inicial específica de la enzima).. <table border="1"><tbody><tr><td> Tipo de Nafion </td><td> La actividad enzimática (mU / g) </td></tr><tr><td> Tampón (sin polímero) </td><td> 7,18 ± 0,51 </td></tr><tr><td> Nafion (un-mod.) </td><td> 70,1 ± 0,5 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 133 ± 6 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 244 ± 4 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 221 ± 6 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 1,78 ± 0,63 </td></tr><tr><td> TMDA </td><td> 206 ±5 </td></tr><tr><td> TEHA </td><td> 40,1 ± 50,6 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 0 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 1,45 ± 0,06 </td></tr></tbody></table> Tabla 3 PQQ-dependiente de la actividad deshidrogenasa de glucosa inmovilizada en determinados polímeros modificados Nafion (nota: actividad inmovilizada es una función de la actividad inicial específica de la enzima).. <table border="1"><tbody><tr><td> Tipo de Nafion </td><td> La actividad enzimática (U / g) </td></tr><tr><td> Tampón (sin polímero) </td><td> 103,61 ± 3,15 </td></tr><tr><td> Nafion (un-mod.) </td><td> 19,93 ± 10,10 </td></tr><tr><td> TMTDA </td><td> 247,25 ± 12,49 </td></tr><tr><td> TBAB </td><td> 152,27 ± 5,29 </td></tr><tr><td> TMDDA </td><td> 262,05 ± 6,26 </td></tr><tr><td> TMOA </td><td> 129,18 ± 2,31 </td></tr&gt; <tr><td> TMDA </td><td> 141,23 ± 1,97 </td></tr><tr><td> TMHA </td><td> 131,75 ± 2,89 </td></tr><tr><td> TMHDA </td><td> 132,50 ± 1,18 </td></tr><tr><td> TMODA </td><td> 136,50 ± 0,96 </td></tr></tbody></table> . Representante Tabla 4 glucosa oxidasa actividad específica inmovilizado en determinados polímeros modificados Nafion (nota: actividad inmovilizada es una función de la actividad inicial específica de la enzima). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3949/3949fig1.jpg" /> Figura 1. Esquema de incorporación TBAB en Nafion polímero y su uso posterior en la inmovilización de enzimas. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3949/3949fig2.jpg" /> Figura 2. Fotografía óptica de un primer reparto de co-películas de Nafion y TBAB. Reduzca la velocidad de secado se obtiene un film transparente, de color marrón claro que cubre el bottom de la bandeja de pesaje.

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</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

En el procedimiento descrito, tetra-alquil sales de amonio se utilizan para modificar Nafion comercial para crear polímeros micelares que se pueden utilizar para inmovilizar y estabilizar las enzimas. Los ensayos descritos en el procedimiento muestran que el polímero puede ser usado para inmovilizar una amplia variedad de enzimas con una alta retención de la actividad. Si la enzima de interés tiene una actividad muy baja o es impura, una mayor concentración puede ser necesario y no debe afectar el proceso de inmovilizac...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Nafion </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 70160 </td></tr><tr><td> Tetra sales de bromuro de alquilamonio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> n / a </td></tr><tr><td> El alcohol deshidrogenasa </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A3263 </td></tr><tr><td> Dinucleótido de nicotinamida adenina (NAD) </td><td> SIGMA-Aldrich </td><td> N7004 </td></tr><tr><td> Sodio pirofosfato </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P8010 </td></tr><tr><td> Fenazina metosulfato (PMS) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P9625 </td></tr><tr><td> 2,6-Dichloroindophenol (DCIP) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D1878 </td></tr><tr><td> La glucosa oxidasa </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G7141 </td></tr><tr><td> Ácido 4-hidroxibenzoico </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 240141 </td></tr><tr><td> Azida de sodio </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> S8032 </td></tr><tr><td> Peroxidasa </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P8375 </td></tr><tr><td> 4-aminoantipirina </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 06800 </td></tr><tr><td> Espectrofotómetro UV / VIS </td><td> Thermo </td><td> Evolución 260 Bio o Spectronic Genesys 20 </td></tr><tr><td> Vortex Genie </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Balanza analítica </td><td></td><td></td></tr></tbody></table&gt;

hidrófobo sal modificada nafion para inmovilización de enzimas y estabilización

Hydrophobic Salt-modified Nafion for Enzyme Immobilization and Stabilization

Durante la última década, ha habido una gran cantidad de solicitud de enzimas inmovilizadas y estabilizado incluyendo biocatálisis, biosensores, y las células de biocombustible. 1-3 En aplicaciones más bioelectrochemical, enzimas u orgánulos se inmovilizan sobre una superficie del electrodo con el uso de algún tipo de polímero de matriz. Este andamio polímero debe mantener las enzimas estable y permitir la difusión superficial de las moléculas y los iones en y fuera de la matriz. La mayoría de los polímeros utilizados para este tipo de inmovilización se basan en poliaminas o polialcoholes - polímeros que imitan el entorno natural de las enzimas que se encapsulan y estabilizar la enzima a través de hidrógeno o un enlace iónico. Otro método para estabilizar las enzimas implica el uso de micelas, que contienen regiones hidrofóbicas que pueden encapsular y estabilizar las enzimas 4,5. En particular, el grupo Minteer ha desarrollado un polímero basado en micelar Nafion comercialmente disponible. 6,7 Nafionen sí es un polímero micelar que permite la difusión del canal con ayuda de protones y otros cationes pequeños, pero las micelas y los canales son extremadamente pequeñas y el polímero es muy ácida debido a las cadenas laterales de ácido sulfónico, que es desfavorable para la inmovilización de enzimas. Sin embargo, cuando Nafion se mezcla con un exceso de sales de amonio hidrófobos alquilo tales como bromuro de tetrabutilamonio (BTBA), los cationes de amonio cuaternario reemplazar los protones y se convierten en los contra-iones de los grupos sulfonato en las cadenas laterales del polímero (Figura 1). Esto se traduce en mayores micelas y canales dentro del polímero que permiten la difusión de sustratos grandes e iones que son necesarios para la función enzimática, tales como nicotinamida adenina dinucleótido (NAD). Esta modificación Nafion polímero se ha utilizado para inmovilizar muchos tipos diferentes de enzimas, así como las mitocondrias para su uso en biosensores y células de combustible biológico. 8-12 Este artículo describe un nuevo procedimiento para la fabricación de este micrófonoEllar enzima polímero inmovilización membrana que puede estabilizar las enzimas. La síntesis de la membrana de inmovilización de enzimas micelar, el procedimiento para inmovilizar enzimas dentro de la membrana, y los ensayos para estudiar la actividad enzimática específica de la enzima inmovilizada se detallan a continuación.

En este artículo se describe el procedimiento para la síntesis de una enzima modificada hidrófobamente membrana Nafion inmovilización y cómo inmovilizar las proteínas y / o enzimas dentro de la membrana y probar su actividad específica.

Hidrófobo sal modificada Nafion para inmovilización de enzimas y Estabilización

Durante la última década, ha habido una gran cantidad de aplicaciones para las enzimas inmovilizadas y estabilizadas, que incluyen la biocatálisis, los biosensores y los biocombustibles...

El objetivo general de este procedimiento es sintetizar un polímero micelar para inmovilización y estabilización enzimática. Para lograrlo, primero combine la suspensión de neón con la sal de bromuro de colina amónica y vortexee la mezcla para intercambiar la forma protonada de nafion por sales de amonio. El segundo paso consiste en secar el polímero resultante vertiendo la mezcla en un recipiente para evaporación y permitiendo que los disolventes se evaporen.A continuación, remoje el polímero en agua desionizada durante 12 a 24 horas para eliminar la sal en exceso. Después de la extracción de la sal, enjuague el polímero con agua y luego deje secar completamente el polímero por evaporación. El paso final consiste en transferir el polímero a un vial limpio y resuspenderlo en disolvente para su uso en la inmovilización de enzimas. En última instancia, este polímero para la inmovilización de enzimas micelares se utiliza para mejorar la estabilidad de las enzimas en ensayos de actividad.Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades porque este procedimiento parece extremadamente sencillo, pero el proceso de secado es fundamental para la fabricación de un polímero funcional. El procedimiento será demostrado por Shu, un estudiante de posgrado en mi laboratorio, para comenzar el proceso de modificación del nafion con sales de amonio de Nerium. Mida un exceso molar tres veces mayor con respecto a los grupos ácido sulfónico en el polímero de nafion de la sal de bromuro de alquilamonio.Transfiera la sal de bromuro de alquilamonio a un vial de vidrio vigorosamente. Agite un frasco de suspensión de nafion al 5% peso por volumen durante aproximadamente 30 segundos para asegurar que el nafion esté suspendido uniformemente en la solución. Pipetee dos mililitros de la suspensión de nafion recién resuspendida y añádalos al vial de vidrio que contiene la sal de bromuro de amonio de AGU.Vortex la muestra a 900 RPM durante 10 a 15 minutos. A continuación, vierta la solución viscosa en una bandeja de pesaje de plástico y utilice una pipeta para transferir cualquier solución residual del vial a la bandeja de pesaje. En este ejemplo, la bandeja se cubre parcialmente y se deja sobre el banco de laboratorio para permitir que los disolventes se evaporen completamente de la bandeja a una velocidad de evaporación que toma más de seis horas.La evaporación completa de todo el disolvente a la velocidad adecuada debería dejar tras de sí una película transparente de color amarillo o marrón en el fondo de la bandeja de pesaje, como se muestra aquí. Si el disolvente se evapora demasiado rápido, se formará un material crujiente o cristalino en lugar de una película transparente, lo que indica que la estructura micelar del polímero ha sido destruida. Si la evaporación del disolvente es demasiado lenta o si se permite que la sal de amonio reaccione durante demasiado tiempo y absorba exceso de vapor de agua, se formará ya sea un gel naranja pegajoso o un material cristalino blanco.En cualquiera de los dos casos, el procedimiento debe reiniciarse. Una vez que todo el disolvente haya evaporado a la velocidad adecuada de evaporación, llene la bandeja de pesaje con 10 a 20 mililitros de agua desionizada de 18 megaohmios por centímetro, cúbrala y deje en remojo durante 12 a 24 horas para eliminar los excesos de sales de bromuro de alquilamonio y HBr. Doce a veinticuatro horas después, aspire el agua con una pipeta y añada suficiente agua desionizada para llenar la bandeja. Tenga cuidado de pipetear siempre alejándose de la película polimérica para evitar perder parte de ella.Lave un total de tres veces después de los lavados. Deje la bandeja de pesaje descubierta hasta que el polímero esté completamente seco. Cuando esté completamente seco, el polímero debe ser una película plástica transparente y algo frágil.En contraste, los polímeros que no se secaron adecuadamente tendrán una apariencia muy diferente tras la extracción de la sal, como se muestra aquí. Con una espátula, retire cuidadosamente la película seca de la bandeja de pesaje y transfiérala a un vial de vidrio limpio. Añada dos mililitros de etanol y tres esferas cerámicas de mezclado, y vortexee durante cuatro horas o hasta que la película de polímero se resuspenda completamente.La solución de nathe modificada con alquilamonio ya está lista para usarse en la inmovilización de enzimas. Si la enzima que se va a inmovilizar es una enzima seca, pese un miligramo de la enzima en un tubo microcentrífugo de 1,5 mililitros y añada un mililitro de tampón fosfato de cien milimolar y pH siete para crear una solución de enzima de un miligramo por mililitro. Transfiera 120 microlitros de la solución de enzima de un miligramo por mililitro a un tubo nuevo.Añada 60 microlitros de la solución de nafion modificada con amonio ALK y vortexee durante 10 segundos. La relación entre la enzima y la solución polimérica debe mantenerse en dos a uno si es necesario escalar esta mezcla para un gran número de réplicas. Finalmente, pipetee 60 microlitros de la solución de enzima-polímero en el fondo de cada una de las tres cubetas separadas de un centímetro cuadrado y déjelas secar durante la noche.La estabilidad de la enzima dentro de la película polimérica puede evaluarse entonces mediante ensayos de actividad enzimática, como se demuestra. A continuación, para iniciar este ensayo, agregue los siguientes reactivos en el vial recubierto con el polímero nafión modificado y la enzima deshidrogenasa dependiente de NAD: 1,3 mililitros de pirofosfato de sodio 50 milimolar, 1,5 mililitros de nicotinamida adenina dinucleótido 15 milimolar recién preparado o NAD y 0,1 mililitros de agua.Coloque el vial en un espectrofotómetro UV-visible ajustado a una longitud de onda de 340 nanómetros. Añada 0,1 mililitros de etanol al vial y mezcle los reactivos pipeteando suavemente la solución hacia arriba y hacia abajo cinco veces; para el blanco, utilice 0,1 mililitros de agua adicional en lugar de los 0,1 mililitros de etanol. Cinco minutos después de haber añadido los reactivos al vial, registre la absorbancia a 340 nanómetros.Registre la absorbancia nuevamente 20 minutos después de añadir los reactivos al vaso de reacción cuarzo (qve); estos dos puntos de datos se graficarán para obtener una pendiente que pueda utilizarse en los cálculos de actividad para evaluar la actividad enzimática específica de pq inmovilizada. Pipetee estos reactivos en el qve coprocesado con el polímero de nafion modificado y la deshidrogenasa dependiente de PQQ. 1,5 mililitros de fosfato de sodio y 200 microlitros de sulfato de pH metílico 600 micromolar o PMS.Coloque el vete en un espectrofotómetro UV visible ajustado a una longitud de onda de 600 nanómetros y cero. El espectrómetro añade 100 microlitros de una mezcla de 700 microlitros de cloro endemol o DCIP y 200 microlitros del sustrato de interés. Mezcle los reactivos pipeteando suavemente la solución hacia arriba y hacia abajo cinco veces para un blanco.Utilice 200 microlitros de agua en lugar del sustrato de interés. Cinco minutos después de que se agregaron los reactivos, registre la absorbancia a 600 nanómetros.Registre la absorbancia nuevamente 20 minutos después de agregar los reactivos para iniciar este ensayo. Añada a la Q VET coelectrodeposicionada con el polímero de nafion modificado y glucosa oxidasa. Dos mililitros de una solución que contiene los siguientes componentes: ácido para-hidroxibenzoico 0,2 molar, azida sódica al 0,02 %, 128 unidades de peroxidasa, cuatro aminoantipirina 0,3 milimolar, fosfato potásico 1 molar y glucosa 50 milimolar.Prepare la solución pipeteando hacia arriba y hacia abajo cinco veces. Coloque el Q vet en un espectrofotómetro UV visible ajustado a una longitud de onda de 510 nanómetros. Cinco minutos después de que los reactivos se agregaron al qve.Registre la absorbancia a 510 nanómetros. Luego registre nuevamente la absorbancia a los 20 minutos posteriores a la adición de los reactivos. Esta tabla muestra los resultados del ensayo de la actividad de la glucosa deshidrogenasa dependiente de NAD inmovilizada y de polímeros de nafion modificados seleccionados.Se observó que la glucosa deshidrogenasa dependiente de NAD inmovilizada presentaba una actividad específica menor que la del enzima en solución con tampón. Esto se debe a que las membranas poliméricas reducen el transporte de moléculas grandes, y aunque la glucosa, sustrato del ensayo, es pequeña, el coenzima NAD debe difundirse hacia dentro y hacia fuera de la membrana. Para la deshidrogenasa dependiente de NAD, la limitación en el transporte provocada por la inmovilización en el polímero disminuye la actividad enzimática observada.La siguiente tabla muestra los resultados de ensayos de actividad de la glucosa deshidrogenasa dependiente de PQQ inmovilizada en polímeros de nafion modificados seleccionados. Es importante observar aquí la mayor actividad de las enzimas inmovilizadas en la mayoría de las películas de nafion en comparación con las enzimas en solución tampón. Dado que la glucosa deshidrogenasa dependiente de PQQ es una proteína asociada a membrana, el nafion modificado hidrofóbico proporciona un entorno más similar a una membrana que el tampón, lo que estabiliza mejor la glucosa deshidrogenasa dependiente de PQQ activa y, por tanto, mejora la actividad enzimática.Por último, los resultados representativos del ensayo de actividad específica de la glucosa oxidasa. En esta tabla se muestran los polímeros de nafion inmovilizados y modificados seleccionados. Los ensayos enzimáticos para cada uno de los polímeros con cada una de las tres enzimas muestran que las tendencias en la actividad específica relativa, en comparación con la enzima en solución, son una función del sistema enzimático.Por consiguiente, debe optimizarse el polímero exacto necesario para cada enzima. Al intentar este procedimiento, es importante recordar que el paso de secado es crítico para este procedimiento en particular.

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