Name: Un método no invasivo para In situ Determinación de Éxito de apareamiento en americano femenino Langostas ( Homarus americanus) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 18 s
Description: Aprende un método no invasivo para determinar el éxito de apareamiento en langostas americanas (Homarus americanus) mediante muestreo de esperma. Esta técnica ayuda a investigar la dinámica reproductiva en pesquerías explotadas.

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Los autores desean agradecer a todos los pescadores de langostas comerciales de Nueva Inglaterra cuyos barcos se nos permitió muestra de - su cooperación es muy apreciada. Además, agradecemos a Little Bay Lobster Company (Newington, Nueva Hampshire) y de Champlin Mariscos (Point Judith, Rhode Island), que nos permitió realizar el muestreo en sus instalaciones. Los siguientes estudiantes UNH proporcionaron asistencia invaluable a lo largo de este estudio: Haley Blanco, Françoise Morrison, Sarah Havener, Audra Chaput, y mayo Grose. Este proyecto fue apoyado por becas de NH SeaGrant a WHW (proyecto # R/CFR-11) y una subvención del programa UNH Marino que JSG.

Parte A: El campo de muestreo Técnica 1. Medidas Femenino <ol><li> Para cada langosta hembra, medir la longitud del caparazón (CL) y la anchura del segundo segmento abdominal para los 1,0 mm más próximo utilizando un par de pinzas. NOTA: El segundo segmento abdominal porque se mide la anchura del abdomen (donde las mujeres llevan sus huevos) es un indicador de la madurez sexual. Además, podría ser ventajoso para determinar la etapa de muda para que coincida más adelante estos datos con la etapa reproductiva (véase el paso 1.2). </li><li> Clip una pequeña porción distal de uno de los pleópodos abdominales (un protocolo metodológico estándar de langostas) y almacenar el pleópodo en agua de mar limpia para su posterior visualización con un microscopio de disección 9. NOTA: Este paso también puede revelar la presencia de glándulas del cemento en los pleópodos, que son una indicación de que las mujeres se están preparando para la extrusión de los huevos 10. </li></ol> 2. Aguja InseRTion <ol><li> Inserte la aguja de la jeringa (18 G, véase el cuadro 1) ~ 1 cm en el receptáculo seminal, en ángulo hacia la cola en el ~ 45 ° (Figura 1). NOTA: En langostas con tapones de espermatozoides intactos, la aguja puede satisfacer cierta resistencia durante la inserción, ya que se empuja a través del tapón de esperma antes de alcanzar la más alta concentración de espermatozoides en la parte inferior del receptáculo seminal (Figura 1). NOTA: La presencia de la clavija, en sí mismo, es un indicador fiable de que las langostas se han apareado. En algunos animales puede haber poca resistencia, posiblemente porque no espermatóforo está presente, el espermatóforo es pequeño, no ha cristalizado en un enchufe todavía, o es posible que ya se han utilizado para fertilizar una o varias puestas de huevos. </li></ol><img alt="Figura 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/50498/50498fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50498/50498fig1.jpg" width = &quot;600px&quot; /&gt; Figura 1. La inserción de la aguja y la vista de la langosta receptáculo seminal. Inserción de la aguja en el receptáculo seminal de la langosta de punta roma para extraer una muestra de esperma. El ángulo y la profundidad de la aguja son tanto crítico para la obtención de muestras consistentes. Derecha: Vista de un receptáculo seminal que ha sido diseccionada y dividida verticalmente. El tapón de esperma ocupa la parte superior o exterior del receptáculo, mientras que los espermatozoides se encuentra en la parte inferior (el punto más profundo) del receptáculo. Es importante tener en cuenta que el muestreo por debajo de esta profundidad puede perforar el receptáculo y el resultado en una muestra contaminada con sangre. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50498/50498fig1highres.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver la imagen más grande</a> . 3. Penetrar el esperma Plug <ol><li> Después de la inserción inicial, más pronunciada el ángulo de la aguja a casi vertical (perpendicular al eje del cuerpo), y muy lentamente comenzar a trabajar sehacia abajo en el receptáculo. </li><li> Mantenga la aguja inclinada en un ángulo tal que la punta está apuntando ligeramente hacia la cola. En este caso, la punta de la aguja está comprimiendo la parte superior del tapón, hasta que eventualmente penetra en la matriz. </li><li> Continuar para empujar la aguja lentamente hacia abajo hasta sentir una resistencia, una vez más - esta es la parte inferior del recipiente y donde se toma la muestra. </li></ol> 4. Extracción de esperma <ol><li> Extraer una muestra (a menudo material del tapón sólido, líquido y espermatozoides otro fluido) desde la parte inferior del receptáculo y depositar la muestra en un tubo de plástico de 2,0 ml etiquetados. </li><li> Enjuague el recipiente con ~ 0,1 a 0,5 ml de agua de mar fría. </li><li> Retire aproximadamente 0,3 ml de líquido y coloque en el mismo tubo. </li><li> Muestras de esperma tienda en hielo hasta que puedan ser examinados en el laboratorio. Parte B: El examen de las muestras de semen en el laboratorio NOTA: Las muestras extraídas de los receptáculos seminales de l individuo<html> obsters deben ser examinados para determinar si los espermatozoides estaban presentes o ausentes. </li><li> Retire ~ 50 l de fluido de cada tubo de plástico, lugar en un portaobjetos de vidrio con una hoja de cubierta, y vista a 100X con un microscopio compuesto. </li><li> Puntuación muestras como: esperma escaso, numerosas, o ausentes (este estudio no cuantificó el número de espermatozoides reales, Figura 2). </li></ol><img alt="Figura 2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/50498/50498fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50498/50498fig2.jpg" width="600px" /> Figura 2. Imágenes de muestra de esperma de langosta. Imágenes de las muestras de semen de langosta tomadas de receptáculo seminal de una mujer, tal como se observa con un microscopio compuesto a 40X de aumento. La imagen en la izquierda muestra una muestra que contenía numerosos espermatozoides mientras que el otro (derecha) ilustra una muestra escasa (barra de escala = 10 micras).. &quot;Target =&quot; _blank jpg &quot;&gt; Haga clic aquí para ver la imagen más grande.

<ol><li>FAO and Agriculture Organization of the United Nations). Fisheries and Aquaculture Department. , Available from: 
 
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<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atlantic+States+Marine+Fisheries+Commission+%28ASMFC%29.+American+lobster+stock+assessment+report+for+peer+review%5BTitle%5D)+AND+%22ASMFC+Stock+Assessment%22%5BJournal%5D)">Atlantic States Marine Fisheries Commission (ASMFC). American lobster stock assessment report for peer review.</a> ASMFC Stock Assessment. , Washington, D.C. (2009).</li>
</ol>

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Este esquema de vídeo y papel y demostrar un método para determinar si langostas hembra se han apareado con éxito. Este enfoque es bastante simple que se puede utilizar para la toma de muestras a gran escala de langostas en el mar por una variedad de usuarios. El método se basa en la detección de la presencia de un espermatóforo en el receptáculo seminal que se transmite de hombre a langostas hembra durante el apareamiento. Estos espermatóforos endurecen parcialmente en un tapón de esperma poco después de que se deposit...

<html> Langosta americana (Homarus americanus) es una de las pesquerías más productivas del Atlántico Norte (~ 56 000 toneladas en 2011, valorado en más de $ 390 millones) 1. Sin embargo, hay una falta general de comprensión de la dinámica de reproducción de esta especie en las poblaciones silvestres. La generación de estimaciones más precisas de producción reproductiva, incluyendo el número y tamaño de los individuos que participan activamente en la reproducción, se puede mejorar el proceso de evaluación de la población. Por ejemplo, las mujeres que se les impide alcanzar su potencial reproductivo completo debido a la limitación de esperma se han identificado como una preocupación para varios crustáceos marinos explotados comercialmente, incluyendo: langostas, cangrejos azules 2 3, 4 cangrejos rey, cangrejos de piedra 5, y los cangrejos de nieve 6. El objetivo general es determinar si la limitación de esperma podría ser un factor en algunas regiones de la pesquería de la langosta americana. nt &quot;&gt; Se observaron los primeros signos de un problema potencial limitación de esperma en langostas, mientras que la realización de un estudio de marcado no relacionada con las langostas hembras ovígeras (con huevos visiblemente intactos, recientemente extruidos). recaptura informes de los pescadores indicó que ~ 15% de estos animales había disminuido sus puestas de huevos después de sólo 1-2 meses. La hipótesis de trabajo fue que algunas langostas estaban llevando los huevos que no habían sido fertilizados y, como resultado, &quot;se cayó&quot; 7. Los datos preliminares de un estudio posterior ha confirmado el hecho de que las langostas se extrusión de huevos, incluso si no se han apareado con éxito y estos huevos no fertilizados sólo se llevan durante ~ 1 meses 8. Por lo tanto, teniendo en cuenta la observación de las hembras llevan los huevos no fertilizados en las poblaciones naturales, hemos tratado de determinar el grado en el cual la prescripción de esperma podría estar contribuyendo a un nivel submáximo de reproducción por las langostas sexualmente maduros. Para lograr este objetivo, se desarrolló una técnica para detectar la espermatogénesisphore depositada por los machos durante el apareamiento. Este documento y el vídeo se describen un método no invasivo, simple desarrollada para determinar el éxito de apareamiento de las langostas hembras. La técnica se puede utilizar de forma rápida y fiable en el mar, ya sea a bordo de la investigación o de buques pesqueros comerciales. Los detalles de este método de muestreo, así como algunos resultados representativos se presentan para ilustrar la aplicación de la técnica.

<table><tbody><tr><td>Pinzas</td><td>Mitutoyo Digimatic</td><td>500-196-20</td><td>http://www.globalindustrial.com</td></tr><tr><td>3 ml Jeringa Luer-Lok</td><td>Beckton-Dickinson</td><td></td><td>309585 www.bd.com</td></tr><tr><td>Monoject Agujas romas de buje de aluminio, 18 G x 1</td><td>Webster Veterinary</td><td>8881202348</td><td>www.mywebstervet.com</td></tr><tr><td>2.0 ml Tubos de almacenamiento de plástico</td><td>Eppendorf</td><td>wu-06333-72</td><td>http://www.coleparmer.com</td></tr><tr><td>Enfriador de espuma de poliestireno con hielo</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio óptico compuesto</td><td>Sistema Olympus</td><td>BH</td><td></td></tr><tr><td>http://www.olympusamerica.com Lados de vidrio con cubreobjetos</td><td></td><td></td><td>75 mm x 25 mm, ~1 mm de espesor</td></tr><tr><td>Pipeta con puntas</td><td></td><td></td><td></td> desechables</tr></tbody></table>

un método no invasivo para<em&gt; in situ</em&gt; determinación de Éxito de apareamiento en americano femenino langostas (<em&gt; homarus americanus</em&gt;)

A Noninvasive Method For In situ Determination of Mating Success in Female American Lobsters (Homarus americanus)

A pesar de ser una de las pesquerías más productivas del Atlántico Noroeste, aún queda mucho por conocer acerca de la dinámica reproductiva naturales de langostas americanas. Trabajos recientes en las poblaciones de crustáceos explotados (cangrejos y langostas) sugiere que hay circunstancias en las hembras maduras son incapaces de alcanzar su potencial reproductivo completo debido a la limitación de los espermatozoides. Para examinar esta posibilidad en diferentes regiones de la pesquería de langosta de América, un método confiable y no invasivo fue desarrollado para el muestreo de un gran número de langostas hembras en el mar. Este método consiste en insertar una aguja en el receptáculo seminal de la hembra de punta roma para determinar la presencia o ausencia de un tapón de esperma y para extraer una muestra que puede ser examinada para detectar la presencia de espermatozoides. Una serie de estudios de control se llevaron a cabo en el muelle y en el laboratorio para poner a prueba la fiabilidad de esta técnica. Estos esfuerzos implicaron muestreo 294 langostas hembra para confirmar que la presencia oenchufe de esperma FA era un indicador fiable de los espermatozoides dentro del receptáculo y, por tanto, el apareamiento. Este documento detalla la metodología y los resultados obtenidos a partir de un subconjunto de las hembras total de la muestra. De los 230 langostas hembra muestreados de Banco de George y Cape Ann, MA (rango 71-145 size = mm de longitud del caparazón), el 90,3% fueron positivas para el esperma. Las posibles explicaciones para la ausencia de espermatozoides en algunas mujeres incluyen: falta de madurez (falta de madurez fisiológica), la ruptura del tapón de esperma después de ser utilizado para fertilizar una nidada de huevos, y la falta de actividad de apareamiento. Las encuestas indican que esta técnica para examinar el éxito de apareamiento de langostas hembra es un proxy fiable que se puede utilizar en el campo para documentar la actividad reproductiva en las poblaciones naturales.

<html> Los datos aquí presentados son para un subconjunto de las langostas hembras que se originaron en tanto cerca de la costa y de los centros extraterritoriales. El grupo constaba de 44 nearshore langostas que fueron capturadas en las aguas costeras cerca de Cape Ann, Massachusetts y transportan en neveras al laboratorio para su análisis. Se capturaron un total de 186 langostas en alta mar en el Banco de George y se tomaron muestras a un centro de detención comercial en Nueva Hampshire. La...

Los cambios inducidos por la pesca-para la pesca de crustáceos explotados, como la pesca de la langosta americana, potencialmente podrían influir en su dinámica reproductiva, lo que lleva a una reducción en el éxito de apareamiento. El objetivo de este estudio fue desarrollar un método no invasivo para determinar el éxito de apareamiento de las langostas hembras que pueden ser fisiológicamente o funcionales madura.

Un método no invasivo para<em&gt; In situ</em&gt; Determinación de Éxito de apareamiento en americano femenino Langostas (<em&gt; Homarus americanus</em&gt;)

Despite being one of the most productive fisheries in the Northwest Atlantic, much remains unknown about the natural reproductive dynamics of American ...

La langosta americana es un elemento icónico en toda su distribución geográfica, desde el Atlántico canadiense hasta Nueva Inglaterra. Es el objetivo de una de las pesquerías de una sola especie más grandes del este de Estados Unidos en muchas áreas. El éxito continuo de esta pesquería se atribuye a una variedad de medidas de gestión, incluyendo controles biológicos destinados a conservar el stock reproductivo.Estas regulaciones incluyen límites mínimos y máximos de tamaño, protección para hembras portadoras de huevos y prohibición de la captura de hembras con muesca en V, que se consideran reproductoras comprobadas. El futuro de la pesquería de langosta depende en parte de un suministro saludable de nuevos reclutas, los cuales dependen del éxito del sistema de apareamiento de la langosta. Sin embargo, la naturaleza intensamente explotada de esta pesquería, similar a otras pesquerías de crustáceos en todo el mundo, podría influir en la dinámica reproductiva de esta especie.Por lo tanto, el objetivo de este trabajo fue desarrollar un método sencillo y no invasivo para determinar el éxito reproductivo de langostas hembra sexualmente maduras. El sexo de una langosta se distingue mejor observando su superficie ventral, que se muestra a la izquierda como una hembra caracterizada principalmente por el primer par de apéndices PLE, que son planos y plumosos. Las hembras también tienen un receptáculo seminal de forma ovalada en el cual almacenan el esperma recibido del macho.El macho se muestra a la derecha, identificable por el primer par de pleópodos que son algo cónicos y endurecidos. Estos gónopodos ayudan a transferir el espermatóforo al receptáculo seminífero de la hembra.También se muestran los poros gonádicos del macho, de los cuales se extruye esta metáfora de ESP. Durante el proceso de cortejo, los langostas macho y hembra exhiben comportamientos complejos, incluyendo comunicación mediada químicamente y el uso compartido de madrigueras. El comportamiento de compartir madriguera ocurre tanto antes como después de la muda de la hembra y puede interpretarse como una vigilancia de la hembra por parte del macho; la cópula típicamente ocurre dentro de una hora después de la muda de la hembra y dura solo un tiempo muy breve.El macho gira a la hembra recién mudada sobre su espalda para transferir el S SPM metaphor al receptáculo seminal de ella. Una langosta hembra es capaz de almacenar esperma de un apareamiento durante dos años o más, tras lo cual extrude su masa de huevos. Los huevos se adhieren a los pleópodos de la hembra en la parte inferior de su abdomen.El desarrollo del huevo generalmente dura entre nueve y 11 meses y depende en gran medida de la temperatura del agua de mar. Los huevos eclosionan como larvas planctónicas en primavera y verano, y pasan por varias etapas larvales antes de asentarse en el fondo como juveniles. El método que describimos aquí proporciona una técnica para obtener muestras de esperma de un gran número de langostas hembra mientras se encuentran a bordo de embarcaciones comerciales de langosta u otras plataformas de estudio en el mar.Se inserta una aguja de punta roma en el receptáculo seminal femenino y se extrae una porción del espermatóforo junto con el esperma asociado. Luego, la muestra de esperma puede almacenarse y examinarse posteriormente en el laboratorio. Debido a la estructura del receptáculo seminal, no hemos encontrado mortalidad asociada con esta técnica.Los materiales necesarios para el muestreo de campo incluyen un recipiente térmico con hielo para mantener frías las muestras pequeñas. Viales de muestra de 2 mL. Utilizamos tubos plásticos einor, una aguja romo de calibre 18 fijada a una jeringa de 3 cc y agua de mar fría y limpia.El material estéril es ideal pero no necesario. Además, necesitará un calibrador para registrar las características morfométricas de la langosta, como la longitud del carpo, el ancho abdominal y las dimensiones de las pinzas, si se desea. Se utilizan hojas de datos preimpresas para registrar estas mediciones junto con el número de identificación de los tubos de muestra.El muestreador también debe registrar detalles como la fecha, el lugar de muestreo y el método de captura, por ejemplo, trampa comercial. Por ejemplo, mida cada langosta al milímetro más cercano utilizando el calibrador; la longitud del caparazón debe tomarse dorsalmente desde la parte posterior de la cuenca del ojo hasta el extremo del caparazón. A veces, mediciones adicionales, como el ancho abdominal, pueden ser útiles para estimar un índice de madurez.Posteriormente, utilizando un par de calibradores, mida la longitud estándar del cárabo. Luego, gire el animal con el lado ventral hacia arriba para medir el ancho abdominal. Para recoger la muestra de esperma del receptáculo seminal, sostenga la langosta hembra con el lado ventral hacia arriba y el abdomen orientado hacia usted.Introduzca la aguja de la jeringa en el receptáculo seminal. Si está presente un espermatóforo, habrá un tapón de esperma muy firme. Deberá penetrar con cuidado, vaciar la jeringa en un tubo previamente etiquetado, llenar la jeringa con una pequeña cantidad de agua de mar limpia e inyectarla en el receptáculo seminal.Esto ayudará a disociar los espermatozoides del tapón endurecido. Luego, eleve nuevamente el émbolo y depósito esta muestra adicional en el mismo tubo de muestra. El ángulo y la profundidad de la aguja son fundamentales para obtener muestras consistentes.En esta imagen, se ha diseccionado y dividido verticalmente el receptáculo seminal. El tapón de esperma ocupa la porción superior del receptáculo, mientras que los espermatozoides se encuentran en la parte inferior, el punto más profundo del receptáculo. El receptáculo tiene una profundidad aproximada de un centímetro, dependiendo del tamaño de la hembra, y será necesario que la aguja atraviese el tapón endurecido para recolectar la muestra de esperma.Tenga cuidado de no atravesar la sustancia similar a una cáscara en la parte inferior del receptáculo. Ahora mostraremos el proceso de muestreo más lentamente. En un entorno de laboratorio.Recomendamos que cualquier persona que desee utilizar esta técnica practique primero en el laboratorio antes de intentar recolectar muestras en el campo. Nuevamente, sostenga la langosta con su lado ventral hacia arriba y el abdomen orientado hacia usted. Utilice una aguja de punta roma comenzando con un ángulo de 45 grados y la punta orientada hacia el abdomen para penetrar el receptáculo seminal y comprobar la presencia de un tapón de esperma.Si hay un tapón, aquí es donde se sentirá la resistencia al aplicar presión constante. Gire ligeramente la aguja para facilitar esta penetración. Pase a través del tapón de esperma, insertando la aguja aproximadamente un centímetro, tal como indica la marca de referencia negra en la aguja que se muestra.Vacíe la jeringa en un tubo de muestra. Luego, llene la jeringa con una cantidad muy pequeña de agua de mar fría y fresca para lavar el receptáculo seminal y, nuevamente, vacíe el contenido en el tubo de muestra entre los organismos. Asegúrese de lavar minuciosamente la jeringa para evitar contaminación.Limpie la aguja, luego llene y vacíe la jeringa varias veces para asegurarse de que se haya eliminado todo el material de la muestra. Antes de tomar una muestra de otra langosta, recomendamos reemplazar la jeringa y la aguja después de varios usos para el procesamiento y la identificación del esperma. Necesitará puntas desechables para pipeta de 200 microlitros, portaobjetos, y cubreobjetos.Tome un tubo de muestra de esperma y retire aproximadamente 200 microlitros de material líquido. Pase este volumen a una preparación microscópica debidamente etiquetada, con cubreobjetos, utilizando un microscopio compuesto estándar con un aumento de 100 x, y determine la cantidad de espermatozoides presente. Los espermatozoides en la preparación microscópica pueden estar orientados en muchas posiciones diferentes, incluyendo vistas verticales y laterales.Como se observa en estas imágenes de ejemplo, recomendamos utilizar descripciones cualitativas como muchas, pocas o ninguna para describir la cantidad de espermatozoides presentes. Hemos empleado con éxito esta técnica en muchos lugares mar adentro y al muestrear langostas en puertos. Los resultados mostrados aquí provienen de langostas de aguas profundas capturadas en el banco Georges, que pudimos muestrear en una instalación comercial de retención.Un total del 84 % de estas hembras tenían espermatozoides en sus receptáculos seminales. Sorprendentemente, aquellas que no los tenían se encontraban en el rango medio de tamaño, no en los tamaños más pequeños, potencialmente inmaduros. Esta técnica no pretende cuantificar las cantidades reales de espermatozoides en la metáfora espermática.Por el contrario, proporciona un método no invasivo que puede utilizarse en el mar para determinar si una langosta hembra ha logrado reproducirse con éxito. Cuanto más sepamos sobre el éxito reproductivo en las langostas, mejor podremos comprender los impactos de la explotación de esta especie y, por tanto, gestionar adecuadamente este valioso recurso marino.

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Este protocolo de video demuestra un método para estudiar los efectos del líquido seminal en gasterópodos, utilizando el caracol hermafrodita de agua dulce Lymnaea stagnalis.

Efecto de la Mujer Accesorios Glándula productos en la puesta de huevos en gasterópodos

El objetivo de este protocolo es proporcionar a los usuarios un conjunto de métodos para la desencapsulación de alto rendimiento de embriones y larvas de Lymnaea stagnalis en preparación para la hibridación in situ de montaje completo, y para posteriores tratamientos de pre y post-hibridación.

A todo el montaje<em&gt; In Situ</em&gt; Método de hibridación para el molusco gasterópodo<em&gt; Lymnaea stagnalis</em

Aquí, presentamos un protocolo para aislar y caracterizar la estructura, potencia olfativa y respuesta comportamiento de compuestos de feromonas putativos de lampreas de mar.

La identificación de las feromonas de la lamprea de mar usando fraccionamiento guiado por bioensayo

Aquí presentamos un protocolo para el seguimiento individual de animales durante un largo período de tiempo. Utiliza visión por computadora métodos para identificar un conjunto de etiquetas manualmente construidas mediante un grupo de langostas como caso de estudio, al mismo tiempo proporcionando información sobre cómo casa, manipulan y marcan las langostas.

Seguimiento a largo plazo del vídeo de animales acuáticos Cohoused: un estudio de caso de la actividad locomotriz de la langosta Noruega (Nephrops norvegicus)

En este protocolo, se describen métodos para la realización de cruzamientos de consanguinidad y para evaluar el éxito de esas cruces, de la hormiga Vollenhovia emeryi. Estos protocolos son importantes para experimentos para entender la base genética de los sistemas de determinación de sexo en himenópteros.

Inducción y evaluación de cruces de consanguinidad con la hormiga, Vollenhovia Emeryi

Este artículo ilustra el procedimiento para la implantación de una micro etiqueta acústica en juvenil Pacífico lamprea y anguila americana. Nuestra aplicación se basa en ensayos de laboratorio, que indican que etiquetas acústicas pueden ser implantados con éxito sin efectos aparentes de natación capacidad o sobrevivencia y pérdida mínima de la etiqueta.

Implantación de una nueva etiqueta acústica Micro en juvenil Pacífico lamprea y anguila americana

El objetivo de este protocolo es genotipo la anémona de mar Nematostella vectensis durante la gastrulación sin sacrificar el embrión.

Genotipado de anémona sin mar durante el desarrollo temprano

El esperma debe navegar con éxito a través del oviducto para fertilizar un ovocito. Aquí describimos un ensayo para medir la migración de espermatozoides dentro del útero hermafrodita de C. elegans . Este ensayo puede proporcionar datos cuantitativos sobre la distribución de espermatozoides dentro del útero después del apareamiento, así como sobre la velocidad, velocidades direccionales y frecuencia de reversión.

Medición de la orientación y la motilidad del esperma dentro del tracto reproductivo de la Caenorhabditis elegans hermafrodita

La conservación del mejillón de agua dulce depende del monitoreo de los patrones y procesos reproductivos de las especies. Este estudio estandariza un protocolo no letal para tomar muestras de contenidos de branquias, caracterizar el desarrollo larvario y proporcionar un repositorio digital para los datos recopilados. Este paquete de protocolo-base de datos será una herramienta importante para los investigadores de mejillones en la recuperación de especies en busca.

Estandarización de un método no letal para caracterizar el estado reproductivo y el desarrollo larvarios de los mejillones de agua dulce (Bivalvia: Unionida)

La medición de la frecuencia cardíaca durante un desafío térmico proporciona información sobre las respuestas fisiológicas de los organismos como consecuencia de un cambio ambiental agudo. Utilizando la langosta americana (Homarus americanus) como organismo modelo, este protocolo describe el uso de neumografía de impedancia como un enfoque relativamente no invasivo y no letal para medir la frecuencia cardíaca en invertebrados de etapa tardía.

Neumografía de impedancia para la medición mínimamente invasiva de la frecuencia cardíaca en invertebrados en etapa tardía

Aquí, presentamos un método general para determinar la viabilidad embrionaria y el número total de embriones producidos (cría) utilizando el organismo modelo C. elegans.

Medición de la viabilidad embrionaria y el tamaño de la cría en Caenorhabditis elegans

Aprende un método no invasivo para determinar el éxito de apareamiento en langostas americanas (Homarus americanus) mediante muestreo de esperma. Esta técnica ayuda a investigar la dinámica reproductiva en pesquerías explotadas.

Un método no invasivo para

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