Name: La infusión intravenosa continua es la Ruta Opción de tratamiento para la arginina vasopresina-bloqueante del receptor Conivaptan en ratones para Stroke Study-evocó edema cerebral (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 44 s
Description: Aprende a administrar conivaptan por infusión intravenosa continua en ratones tras ictus para reducir el edema cerebral evocado por el accidente. Este protocolo optimiza la recuperación neurológica y mejora el diseño de estudios preclínicos en neurociencia.

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Agradecemos a Swedish Medical Center para proporcionar los fondos e instalaciones. También agradecemos a Craig Hospital para el uso generoso de espacio de laboratorio.

Los experimentos se llevaron a cabo de acuerdo con las directrices de los Institutos Nacionales de la Salud para el cuidado y uso de animales en la investigación y fueron aprobados por el Comité de Cuidado de Animales y el empleo Swedish Medical Center. Todos los procedimientos se realizaron con técnicas asépticas adecuadas. Los animales experimentales utilizados para el estudio eran de sexo masculino, 3 meses de edad, los ratones C57 de tipo salvaje con el peso corporal del 25 al 27 g. 1. En Vivo inducción Stroke <ol><li> Pre-capa con el filamento de resina dental antes de la cirugía. <ol><li> Corte un 12 mm de largo trozo de filamento de una sutura de nylon 7-0. Mezclar 2 partes de la resina con 1 parte de endurecedor y, a continuación sumergir inmediatamente la punta del filamento en la mezcla para cubrir alrededor de un tercio de toda la longitud. Quitarlo de forma rápida y compruebe que está cubierto con una capa de resina dental de superficie lisa. </li><li> Deje secar al aire el filamento durante 2 horas antes de su uso. </li></ol></li><li> Coloque el ratón en unan cámara de inducción de la anestesia (2 L de volumen), y establecer el flujo de 1,5% de isoflurano en aire ambiente enriquecido con oxígeno de 25% a 2 l / min de entrar en la cámara. </li><li> Deje que el ratón para permanecer en la cámara de inducción hasta que esté completamente anestesiado, 8 según lo determinado por la falta de respuesta a pellizcar la cola. </li><li> Coloque el ratón sobre la mesa de operaciones con una almohadilla caliente, y establecer la concentración de isoflurano, el 1% para mantenimiento de la anestesia entregado espontáneamente a través del cono de la nariz. </li><li> Pinza de pelo en el frente y la parte posterior del cuello, y rociar el cuello con alcohol. Aplique un ungüento oftálmico veterinario en ambos ojos. </li><li> Para controlar continuamente la temperatura del cuerpo, utilizar una sonda de temperatura rectal conectado a la pantalla digital durante la cirugía. </li><li> Coloque el ratón en la posición supina, aplicar solución de lavado 10% de povidona yodada para la desinfección, cubrir con un paño estéril, y luego hacer una incisión en la línea media a lo largo del cuello con una cuchilla de bisturí quirúrgico talla 10. </li> &lt;li&gt; Temporalmente ligar la arteria carótida izquierda común (CCA) con sutura de seda 6.0. </li><li> Coloque otro lazo en la arteria carótida externa izquierda (CEPA). </li><li> Colocar un clip microvascular en la arteria carótida interna (ACI). </li><li> Corte un pequeño agujero en la arteria carótida externa con tijeras microvasculares. Inserte un filamento hecho de 7-0 sutura de nylon recubierto con resina dental en la abertura de la ECA, y avanzarlo cefálica, mientras se quita la pinza, hasta que se sienta resistencia (alrededor de 5-7 mm del punto de la bifurcación CCA). </li><li> Coloque un lazo temporal en la arteria carótida interna para asegurar el filamento en posición. Consulte el diagrama de la Figura 1A. Cierre la piel con sutura de seda, y de infiltrarse en la herida en la parte frontal del cuello con 0,2 ml de 0,5% de bupivacaína, como en el paso 2.6. </li><li> Deje que el ratón para despertar de la anestesia y recupera el conocimiento en una cámara de recuperación durante 60 minutos. No dejar al animal sin vigilancia hasta que se haya recuperadoconciencia suficiente para mantener la posición decúbito esternal. </li><li> Pruebe el mouse para neurológica déficit de puntuación (NDS) de la siguiente manera: 0 = función motora normal, 1 = flexión del torso y de la extremidad anterior contralateral en la plataforma de carga, 2 = dando vueltas con el lado contralateral, pero la postura normal en reposo, 3 = inclinarse hacia contralateral lado en reposo, 4 = sin actividad motora espontánea. 4,9 <ol><li> Para la prueba de NDS, levantar el ratón por la cola y colocarlo en una superficie plana para la observación (2-3 min). Alternativamente, los ratones observar en la cámara de recuperación. Excluir los ratones que exhiben NDS inferior a 2 a partir del experimento debido a la insuficiente oclusión de la ACM. Nota: técnica Laser Doppler flujometría se puede utilizar para confirmar la oclusión MCA 9-11. </li></ol></li><li> Re-anestesiar al animal después de 60 minutos de recuperación en la cámara de inducción como se describe anteriormente, volver a esterilizar la incisión de la piel anterior con solución de lavado de povidona yodada al 10%, y volver a abrir la herida quirúrgica en ladelante de cuello por el corte y la eliminación de la sutura de seda. </li><li> Para quitar el filamento de la CEPA lleve a cabo los siguientes pasos: <ol><li> Colocar un clip microvascular en el ICA. Desatar el hilo de sutura en el ICA y tirar del filamento mientras mantiene abierto el clip. </li><li> Cerrar la pinza y poner un lazo en el CEPA de manera proximal al corte. </li><li> Retire el clip y retire la ligadura de la CCA para restaurar el flujo de sangre al cerebro. Consulte el diagrama de la Figura 1B. </li></ol></li></ol> 2. Instalación de catéter IV en la vena yugular para el tratamiento continuo de 48 horas Nota: Proceder a la instalación del catéter inmediatamente después del paso 1.16.3 sin despertar del ratón. <ol><li> Usar dos tamaños diferentes de tubos flexibles: insertar el tubo interior (0,94 mm de diámetro exterior; para contener el fármaco que se está infundido) en el tubo exterior (3,18 mm de diámetro exterior; para la protección de la tubería interior). </li><li> PAGata el ratón en la posición prona, aplicar solución de lavado con povidona yodada al 10% para la desinfección, y hacer una incisión de 1 cm en la parte posterior del cuello con una cuchilla de bisturí quirúrgico talla 10. Ponga el ratón en la posición supina, volver a esterilizar la parte frontal del cuello con solución de lavado de povidona yodada al 10%, y volver a abrir la herida quirúrgica en la parte frontal del cuello. Túnel de la tubería bajo la piel de la incisión hecha en la parte posterior a la parte frontal del cuello, y exteriorizar que de la herida abierta 1 cm. </li><li> Quitar el tejido adiposo subcutáneo de la parte izquierda de la parte frontal del cuello alrededor de 1 cm lateralmente desde la línea media. Localizar la vena yugular izquierda, colocar dos lazos a lo largo de la vena 5 mm, y estirar un poco la vena. Hacer un pequeño agujero en la vena yugular entre los dos lazos con tijeras microvasculares; inserte la punta del tubo de 5 mm en sentido caudal profundo interior (hacia el corazón). </li><li> Asegurar el tubo con dos lazos con la vena yugular. Cerrar la piel en la parte frontal del cuello conuna sutura de seda 3-0. Consulte el diagrama, la figura 1C. </li><li> Asegurar el tubo a la piel en la parte posterior del cuello con un hilo de sutura, y conectar la tubería a una bomba de microinfusión IV a través de un eslabón giratorio. El giro permite la libre circulación de los ratones dentro de la jaula con pleno acceso a la comida y el agua. </li><li> Infiltrarse en las incisiones en la piel en el frente y la parte posterior del cuello con 0,2 ml de bupivacaína al 0,5% para prevenir el dolor post-operatorio. Nota: Dependiendo de los animales protocolos específicos institucionales, los animales pueden ser tratados con opiáceos, AINE, o antibióticos pre y post-operatorio. Sin embargo, los tratamientos mencionados pueden alterar los resultados de pronósticos del accidente cerebrovascular isquémico (véase la sección Discusión) 11-14. </li><li> Que el animal pueda despertar en la cámara de recuperación, y luego albergar al animal en una jaula separada hasta el punto final del experimento. No dejar al animal sin vigilancia hasta que se haya recuperado el conocimiento suficiente para mantener esternalposición de yacer. </li><li> Establecer la velocidad de infusión para el tratamiento continuo 48 hr IV de conivaptán (0,14 mg / ml en 5% de dextrosa) o vehículo a 1,5 ml / kg / hr, 4 y comenzar la infusión. Nota: La cantidad total de IV conivaptán infusión debe ser de aproximadamente 0,2 mg / ratón / día en un volumen total de 1,44 ml. Nota: Realizar la inyección intraperitoneal (IP) de conivaptán dos veces al día con la cantidad total de 0,2 mg en 1,44 ml de 5% de dextrosa. Implementar la inyección IP se describió previamente. 15 Restringir a los ratones sujetando la piel de la superficie posterior del cuerpo y la cola. Inyectar conivaptán o vehículo en el cuadrante inferior izquierdo del abdomen utilizando un / 1/2 pulgada aguja 26 G 15. </li><li> Observar los animales dos veces al día durante toda la duración del experimento (48 h). Que los animales puedan tener pleno acceso a comida y agua. Si el animal muestra signos de angustia o disnea consultar a un veterinario. Si la eutanasia es necesario que el animal en dist severaO prima se refiere a la etapa 3.1 a continuación, y excluye el animal del estudio. </li></ol> 3. Evaluación de Stroke-evocó edema cerebral en el punto final <ol><li> Sacrificar el ratón por un exceso de anestesiar con un 5% de isoflurano. </li><li> Utilice un bisturí para realizar una incisión en la piel sobre el hueso del cráneo a lo largo de la línea media, y retraer la piel para exponer todo el cráneo sobre el cerebro. Comenzando en el foramen magnum, cortar el hueso del cráneo lateralmente a lo largo del perímetro del cerebro en cada lado, y levante con cuidado sin tocar el cerebro debajo de ella. Cortar el cerebro de la columna vertebral y los nervios unidos en la base del cráneo. </li><li> Retire el cerebro, separarlo del bulbo olfatorio y el cerebelo, y diseccionar el cerebro a lo largo de la fisura interhemisférica en los hemisferios cerebrales isquémicos y no isquémicos, tal como se describe anteriormente. 9 </li><li> Evaluar el edema cerebral mediante la comparación de húmedo a seco-ratios (WDR) como se ha descrito previamente 4,9. Pesar tejidosantes y después de secar durante 3 días a 100 ° C en un horno. Calcular el contenido de agua del cerebro (BWC) como% H 2 O = (peso de 1-seco. / Peso húmedo.) X 100%. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Este estudio tiene un valor importante para la investigación preclínica accidente cerebrovascular. Este estudio revela que la infusión IV continua de conivaptán (0,2 mg / día) después del accidente cerebrovascular experimental en ratones reduce eficazmente el edema cerebral después de 48 h de tratamiento. También se investigó el efecto de la inyección IP de la misma dosis de conivaptán en edema cerebral. tratamiento Conivaptan por ambas IV e IP rutas produce acuaresis en ratones, como se indica por: 1) aumento de la osm...

El ictus sigue siendo una enorme carga para los pacientes y los médicos. Los modelos de accidentes cerebrovasculares en animales se han utilizado en el laboratorio durante casi dos décadas. 1 Sin embargo, los tratamientos experimentales que funcionan en animales a menudo fracasan en humanos. 2 Esta discrepancia en los resultados del tratamiento puede deberse a varios factores, como las vías de administración de los fármacos utilizados en la investigación con animales, el metabolismo y la tasa de eliminación de los fármacos, y muchos otros aspectos. Una de las principales complicaciones del accidente cerebrovascular, el edema cerebral, es un foco de investigación actual en neurociencia. Los mecanismos de formación de edema cerebral implican alteraciones en el equilibrio de agua y electrolitos desencadenadas por la respuesta de arginina-vasopresina (AVP) a la lesión cerebral isquémica. 3 Por lo tanto, la AVP y sus receptores (V1a y V2) son un foco importante de los estudios de investigación sobre la formación de edema cerebral post-isquémico. 3
Hemos desarrollado una metodología para estudiar los efectos del bloqueador mixto de los receptores de arginina-vasopresina (V1a y V2) conivaptán en el edema cerebral post-isquémico en ratones. 4 Las dianas moleculares del conivaptán5 hacen que el fármaco sea un candidato adecuado para la exploración de sus propiedades en el alivio del edema cerebral. Además, el conivaptán debe estudiarse en el contexto de los eventos fisiopatológicos del accidente cerebrovascular. 6 Al diseñar este estudio, consideramos comparar los resultados del tratamiento utilizando dos vías diferentes de administración de conivaptán: intravenosa (IV)4 e intraperitoneal (IP). 7 Se evaluaron los efectos de los tratamientos sobre el edema cerebral inducido por accidente cerebrovascular. Aquí se describen los protocolos detallados para la inducción quirúrgica del accidente cerebrovascular experimental mediante oclusión de la arteria cerebral media (MCAO), y se sigue con un tratamiento continuo con conivaptán mediante la instalación de un catéter intravenoso yugular. Después de la inducción del accidente cerebrovascular, los animales se asignaron aleatoriamente a los siguientes grupos: vehículo o conivaptán (0,2 mg/día) tratado por vía intravenosa o IP.

<table><tbody><tr><td>Almohadilla calefactada</td><td>K& H Manufacturing Inc</td><td>1060</td><td></td></tr><tr><td>Monitor de temperatura con sonda rectal</td><td>Physitemp</td><td>7029</td><td></td></tr><tr><td>Carrete de sutura de seda, 6-0</td><td>Surgical Specialties Corporation</td><td>SP114</td><td></td></tr><tr><td>Sutura de seda con aguja, 3-0</td><td>Ethicon</td><td>1684G</td><td></td></tr><tr><td>Sutura de nylon, 7-0</td><td>Ethicon</td><td>1696G</td><td></td></tr><tr><td>Resina dental Polisiloxano con endurecedor</td><td>Heraeus Bomba</td> intravenosa de microinfusión <td>Kulzer 65817930</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Kent Scietific</td><td>GT0897</td><td></td></tr><tr><td>Giratorio 22GA</td><td>Instech</td><td>375/22PS</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de laboratorio, 0,94 mm x 0,51 mm</td><td>Dow Corning</td><td>508-002</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de laboratorio, 3,18 mm x 1,98 mm</td><td>Dow Corning</td><td>508-009</td><td></td></tr></tbody></table>

la infusión intravenosa continua es la ruta opción de tratamiento para la arginina vasopresina-bloqueante del receptor conivaptan en ratones para stroke study-evocó edema cerebral

Continuous IV Infusion is the Choice Treatment Route for Arginine-vasopressin Receptor Blocker Conivaptan in Mice to Study Stroke-evoked Brain Edema

El accidente cerebrovascular es una de las principales causas de morbilidad y mortalidad en el mundo. El accidente cerebrovascular es complicada por el edema cerebral y otros eventos fisiopatológicos. Entre los jugadores más importantes en el desarrollo y evolución del edema cerebral derrame cerebral evocada es la hormona arginina-vasopresina y sus receptores V1a, y V2. Recientemente, el antagonista de los receptores V1a conivaptán y V2 ha estado atrayendo la atención como un posible fármaco para reducir el edema cerebral tras un accidente cerebrovascular. Sin embargo, los modelos animales que impliquen aplicaciones conivaptán en investigación del accidente cerebrovascular deben ser modificados con base en las rutas posibles de administración. Aquí los resultados de 48 hr intravenosa continua (IV) se comparan con los tratamientos intraperitoneal (IP) conivaptán después del accidente cerebrovascular experimental en ratones. Hemos desarrollado un protocolo en el que la oclusión de la arteria cerebral media se combinó con la instalación del catéter en la vena yugular para el tratamiento IV de conivaptán (0,2 mg) o vehículo. Diferentes cohortes de animales se trataron con 0,2mg bolo de conivaptán o vehículo IP diaria. Experimental edema cerebral derrame cerebral evocada se evaluó en ratones después de IV continua y tratamientos IP. Comparación de los resultados reveló que la administración IV continua de conivaptán alivia edema cerebral post-isquémico en ratones, a diferencia de la administración IP de conivaptán. Llegamos a la conclusión de que nuestro modelo puede ser utilizado para futuros estudios de aplicaciones conivaptán en el contexto de accidente cerebrovascular y edema cerebral.

La temperatura corporal de los animales estaba dentro del rango fisiológico y estable durante todo el procedimiento quirúrgico de la inducción del accidente cerebrovascular. Dos ratones que mostraron NDS inferior a 2 inmediatamente después de la MCAO fueron excluidos del estudio. MCAO en ratones produce el volumen del infarto en el hemisferio ipsilateral a las 48 horas. Evaluación de las rodajas de TTC-manchado muestra que alr...

Nuestros estudios han revelado que los efectos beneficiosos del conivaptán dependen del método de administración después de un accidente cerebrovascular experimental en ratones. Hemos desarrollado un protocolo de investigación para la administración del bloqueador de receptores a través de un catéter intravenoso en la formación de edema cerebral evocado por accidente cerebrovascular en ratones.

La infusión intravenosa continua es la Ruta Opción de tratamiento para la arginina vasopresina-bloqueante del receptor Conivaptan en ratones para Stroke Study-evocó edema cerebral

Stroke is one of the major causes of morbidity and mortality in the world. Stroke is complicated by brain edema and other pathophysiological events. Among ...

El objetivo general de este estudio preclínico consiste en crear un modelo exitoso en ratones de la administración de Conivaptán tras un accidente cerebrovascular, con el fin de ayudar a mejorar el diseño de futuros estudios de investigación en el campo del accidente cerebrovascular. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en la investigación sobre el accidente cerebrovascular, como por ejemplo, cuál es la importancia de la vía de administración en los efectos beneficiosos del Conivaptán sobre la recuperación tras un accidente cerebrovascular en ratones. La principal ventaja de esta técnica radica en que ayudará a los investigadores en los estudios de modelado del Conivaptán y sus efectos sobre el edema cerebral provocado por el accidente cerebrovascular.Al menos dos horas antes de la cirugía, corte un trozo de filamento de 12 milímetros de una sutura de nailon 7-0, luego mezcle dos partes de resina dental con una parte de endurecedor, y sumerja rápidamente el filamento en la mezcla, hasta que aproximadamente cuatro milímetros del filamento queden recubiertos. Verifique inmediatamente que la punta del filamento esté cubierta con una capa uniforme de resina dental. A continuación, deje secar el filamento al aire durante dos horas.Cuando la resina esté lista, coloque un ratón anestesiado sobre una almohadilla calefactora en la mesa de operaciones y confirme la ausencia de respuesta al pellizco en los dedos del pie. Retire el vello del frente y la parte posterior del cuello con una máquina de afeitar, rocíe el cuello con alcohol isopropílico y aplique pomada en ambos ojos. Para monitorear continuamente la temperatura corporal durante la cirugía, utilice una sonda de temperatura rectal conectada a una pantalla digital.Coloque al ratón en posición supina bajo un microscopio de disección y, si es necesario, coloque un trozo de gasa enrollada debajo del cuello para arquearlo. Luego, desinfecte el cuello con una solución jabonosa de yodo-povidona al 10%. A continuación, cubra al animal con un campo estéril y use una hoja quirúrgica tamaño 10 para realizar una incisión media a lo largo del cuello.Utilizando una sutura de seda 6-0, ligue temporalmente la arteria carótida común izquierda y, a continuación, realice un nudo en la arteria carótida externa izquierda. Coloque un clip microvascular en la arteria carótida interna y use tijeras microvasculares para hacer un pequeño orificio en la arteria carótida externa. Después de insertar el filamento recubierto de resina dental en la abertura, avance el filamento en dirección cefálica mientras retira el clip hasta sentir resistencia.Coloque un lazo temporal en la arteria carótida interna para asegurar el filamento en posición y cierre la piel con una sutura de seda. A continuación, infiltre la herida en la parte frontal del cuello con 0,2 milímetros de Bupivacaína al 0,5 % y transfiera el ratón a una cámara de recuperación con monitoreo hasta que mantenga recostado esternal. Para la puntuación de déficit neurológico, levante el ratón por la cola y coloque el animal sobre una superficie plana durante dos o tres minutos.Puntúe el comportamiento del animal según el texto, excluyendo ratones que presenten una puntuación de déficit neurológico inferior a dos, debido a una oclusión insuficiente de la arteria cerebral media. Para retirar el filamento, reesterilice la incisión con una solución jabonosa de yodo-povidona al 10 % y corte y retire la sutura para volver a abrir la herida quirúrgica. Luego, bajo un microscopio estereoscópico, coloque un clip microvascular en la arteria carótida interna y desate la sutura de la arteria carótida interna.Mantenga el clip abierto para extraer el filamento. Luego, cierre inmediatamente el clip nuevamente y sutúre la arteria carótida externa proximal al corte. Una vez que la ligadura de la arteria carótida externa esté segura, retire el clip y desate la sutura alrededor de la arteria carótida común para restablecer el flujo sanguíneo hacia el cerebro.Inmediatamente después de retirar el hilo de la arteria carótida común, desinfecte la parte posterior del cuello con una solución de limpieza al 10% de yodo de povidona y use una hoja de bisturí quirúrgico tamaño 10 para realizar una incisión de un centímetro. Luego, reesterilice la parte frontal del cuello y vuelva a abrir la herida quirúrgica. A continuación, pase por debajo de la piel del animal, desde la parte posterior hacia la anterior del cuello, un trozo de tubo con un diámetro externo de 0,94 milímetros insertado dentro de un tubo de 3,18 milímetros de diámetro externo, y exteriorice el tubo cuando alcance la incisión frontal.Retire el tejido adiposo subcutáneo del lado izquierdo de la parte frontal del cuello, aproximadamente un centímetro lateralmente de la línea media. Luego, localice la vena yugular izquierda bajo el microscopio de disección y coloque dos ligaduras a lo largo de la vena separadas por cinco milímetros, estirando ligeramente el vaso. A continuación, use tijeras microvasculares para hacer un pequeño orificio en la vena yugular entre las dos ligaduras e inserte la punta del tubo interno cinco milímetros en dirección caudal hacia el corazón.Sujete el tubo con ambos amarres a la vena yugular y use un punto de sutura de seda 3-0 para cerrar la piel en la parte frontal del cuello. Luego, sujete el tubo a la piel en la parte posterior del cuello con un punto de sutura y conecte el tubo a una bomba intravenosa de microinfusión mediante un conector giratorio. Infiltra las incisiones quirúrgicas en la parte frontal y posterior del cuello con 0,2 milímetros de Bupivacaína al 0,5 % para prevenir el dolor postoperatorio y permita que el animal despierte en la cámara de recuperación con monitoreo.Cuando el animal esté en posición recostada, establezca la velocidad de infusión para un tratamiento intravenoso continuo de 48 horas de conivaptán o vehículo, a 1,5 milimoles por kilogramo por hora, e inicie la infusión. Alternativamente, administre 0,2 miligramos de conivaptán y 1,44 mililitros de dextrosa al 5 % dos veces por vía intraperitoneal, diariamente durante dos días, seguido de una breve observación de los animales tras cada inyección. La oclusión de la arteria cerebral media en ratones produce un volumen de infarto en el hemisferio ipsilateral a las 48 horas, afectando aproximadamente al 50 % del hemisferio, tal como se visualiza mediante tinción con cloruro de tetrazolio.La evaluación del contenido de agua cerebral a las 48 horas después de la inducción de una oclusión arterial cerebral media de 60 minutos revela que la administración intravenosa de Conivaptán reduce significativamente el edema cerebral, tanto en los hemisferios ipsilateral como contralateral. En contraste, el tratamiento diario con Conivaptán por vía intraperitoneal mediante un bolo de 0,2 milímetros no logra producir efectos positivos similares sobre el edema cerebral provocado por el accidente cerebrovascular. Una vez dominada, esta técnica puede completarse en dos horas, si se realiza adecuadamente.Al realizar este procedimiento, es importante recordar evitar la pérdida excesiva de sangre en el animal experimental, ya que esto puede afectar los resultados del estudio y provocar una mayor mortalidad. Tras este procedimiento, se pueden realizar otros estudios, como la evaluación de la ruptura de la barrera hematoencefálica, para responder preguntas adicionales sobre la participación de la inflamación en el edema cerebral postisquémico. Tras su desarrollo, esta técnica abrió el camino para que los investigadores en el campo de las neurociencias exploraran la importancia de la vía de administración de fármacos en estudios clínicos.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo crear quirúrgicamente condiciones isquémicas en ratones, colocar un catéter intravenoso en la vena yugular y administrar Conivaptán mediante infusión intravenosa continua en ratones. No olvide que trabajar con animales vivos puede ser extremadamente peligroso y que siempre se deben tomar precauciones, como usar guantes y mascarillas quirúrgicas, al realizar este procedimiento.

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Este artículo muestra dos métodos muy diferentes de inyección: 1) en el cerebro (intracerebroventricular) y 2) sistémica (intravenosa) para introducir los agentes terapéuticos en el sistema nervioso central de ratones recién nacidos.

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En este video, demostramos el montaje de un sistema de infusión cerebral con bomba micro-osmótica seguido de su implantación quirúrgica en el cráneo del ratón. Este sistema permite la administración continua de fármacos potenciales y facilita el estudio de sus efectos en el cerebro y el tejido cerebral.

Sistema de infusión continua de fármacos en modelos de ratón: un procedimiento quirúrgico para implantar un sistema de infusión de bomba microosmótica en el cerebro de ratón para la administración continua de fármacos

Fuente: Zeynalov, E. et. al., La infusión intravenosa continua es la ruta de tratamiento de elección para el bloqueador del receptor de arginina-vasopresina conivaptán en ratones para estudiar el edema cerebral evocado por un accidente cerebrovascular. J. Vis. Exp. (2016)Este video demuestra la administración intravenosa de un antagonista del receptor de arginina-vasopresina (AVP) en un modelo de ratón. La oclusión transitoria de la arteria cerebral media induce edema cerebral. Se administra un...

Administración intravenosa de bloqueadores de receptores para reducir el edema cerebral en un modelo de ratón

Se describe un método para dirigir fármacos al sistema nervioso central ya sea por la implantación de un catéter o la realización de una inyección en bolo en el ventrículo lateral derecho en ratones. Nos centramos específicamente en la entrega de los oligonucleótidos antisentido. Esta técnica es fácilmente adaptable a otras drogas y para ratas.

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Los accesos vasculares para medir la hemodinámica, proporcionar líquidos y realizar muestras de sangre son importantes para cualquier estudio de modelo animal pequeño. Presentamos una técnica de implante de catéteres en la arteria carótida y en la vena yugular común en una rata anestesiada para su conexión a un sistema de monitorización, infusiones y toma de muestras.

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La administración mejorada por convección (CED) es un método que permite la entrega efectiva de terapias en el cerebro mediante la perfusión directa de grandes volúmenes de tejido. El procedimiento requiere el uso de catéteres y un procedimiento de inyección optimizado. Este protocolo describe una metodología para CED de un anticuerpo en un cerebro de ratón.

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Se ha notificado un método para la entrega de células madre neurales, adaptable para inyectar soluciones o suspensiones, a través de la arteria carótida común (ratón) o la arteria carótida externa (rata) después de un accidente cerebrovascular isquémico. Las células inyectadas se distribuyen ampliamente por todo el parénquima cerebral y se pueden detectar hasta 30 d después del parto.

Entrega intra-arterial de células madre neuronales a la rata y el cerebro del ratón: aplicación a la isquemia cerebral

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Aprende a administrar conivaptan por infusión intravenosa continua en ratones tras ictus para reducir el edema cerebral evocado por el accidente. Este protocolo optimiza la recuperación neurológica y mejora el diseño de estudios preclínicos en neurociencia.

La infusión intravenosa continua es la Ruta Opción de tratamiento para la arginina vasopresina-bloqueante del receptor Conivaptan en ratones para Stroke Study-evocó edema cerebral (Video) | JoVE Journal

La infusión intravenosa continua es la Ruta Opción de tratamiento para la arginina vasopresina-bloqueante del receptor Conivaptan en ratones para Stroke Study-evocó edema cerebral

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