Name: La liberación controlada de dióxido de cloro en un sistema de envasado perforado para extender la vida de almacenamiento y mejorar la seguridad de los tomates de la uva (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 7 s
Description: Aprenda a utilizar dióxido de cloro de liberación controlada en envases perforados para extender la vida útil de tomates uva y mejorar la seguridad alimentaria contra patógenos como Escherichia coli.

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1. Medición de ClO2 gaseoso en el espacio de cabeza de una cámara cerrada <ol><li> Obtener los materiales: ClO 2 bolsa (0,5 g de ClO 2 suspensión (9,5% ai) en una película de polímero seleccionado por su velocidad de liberación (área de superficie total de 6 cm 2); los componentes exactos son de propiedad), una cámara de vidrio (19,14 L), y una tapa con entrada de gas conmutable y de salida. </li><li> Coloque la bolsa de ClO 2 a la tapa con cinta adhesiva de doble cara. </li><li> Cerrar la cámara mediante el sellado de la tapa con vaselina. </li><li> Conectar la entrada y salida de un detector de gas ClO 2 a la cámara. NOTA: Este es un sistema de circulación de gas, y no se produjo ninguna pérdida de gas al realizar las mediciones. </li><li> Encender el flujo de entrada y de salida del gas y medir la concentración de ClO 2 en la cámara después de incubar durante 0, 1, 2, 3, 4, 24, 26, 28, y 48 h. </li><li> Controlar la temperatura y la humedad relativa (RH) en la cámara con los estribosAture y RH registradores de datos. </li></ol> 2. Preparación de la fruta y de almacenamiento <ol><li> Obtener 15 kg de tomates de la uva frescas (Solanum lycopersicum var. Cerasiforme) de un minorista local. Asegurar que los frutos están sanos y no tienen defectos visuales. </li><li> Preparación del inóculo <ol><li> Utilice cepas de E. coli (tipo salvaje) y A. alternata de las superficies de cítricos 27 para la inoculación. </li><li> Cultivo de E. coli en E. coli agar (ECA) a 35 ° C durante 1 día 27 y luego volver a cultivar los organismos en una nueva placa durante 1 día. Confirmar los organismos mediante el muestreo de las placas de ECA con un bac-loop, rayar las bacterias en Levine eosina azul de metileno agar (EMB), e incubando durante 24 h a 35 ° C; culturas que convierten reflectante, de color verde metálico son positivos para E. coli. </li><li> Cultura A. alternata en agar de dextrosa de patata (PDA) a 25 °; C hasta esporas aparece. </li><li> Raspar las células de E. coli de la placa de agar en 50 ml de agua destilada estéril hasta que la concentración estimada alcanza 9 log CFU / mL usando una comparación con estándares de equivalencia de turbidez McFarland. Añadir 1,950 ml de agua estéril que contiene 0,1% de Tween-20 para hacer 2 L total del inóculo final. </li><li> Verificar la concentración de células por dilución en placas en placas de agar de la CE. Raspar las esporas A. alternata del medio de cultivo y suspenderlas en 2 L de agua destilada estéril que contiene 0,1% de Tween-20. NOTA: La población final E. coli fue de 7,5 log UFC / g, y la población A. alternata fue de 5,5 log UFC / g. </li></ol></li><li> Coloque 7 kg de los tomates en un plato de acero inoxidable 10 L que está completamente cubierto por una bolsa autoclavable. Coloque la bolsa y la bandeja en una campana de seguridad. Aplicar la solución de inóculo (2 L) a los frutos usando un pulverizador de disparo aplicada desde la parte superior mientras se agita suavemente elfrutas con una mano enguantada. <ol><li> Después de 5 min, colocar los tomates en una sola capa en las hojas esterilizadas y permitir que se sequen al aire durante 2 h. Ponga sobre 200 g de fruta cada uno en clamshells perforadas twent y cuatro 1 lb (~ 1,14 l). </li></ol></li><li> Cuidadosamente doblar las láminas contaminados y colocarlos en la bandeja de acero. Quitarse los guantes y ponerlos en la sartén. Envolver la bolsa autoclavable y autoclave todos los suministros contaminados a 121 ° C durante 25 min. </li><li> Adjuntar ClO 2 bolsas de los párpados de 12 conchas de almeja. Usa los otros 12 clamshells como controles. Pesar todo cada hoja abatible. Almacenar la fruta a 20 ° C durante 14 días. </li><li> Tomar muestras en los días 3, 7, 10, y 14. Ejemplo de tres clamshells, representando 3 repeticiones, por tratamiento por día. </li></ol> 3. Seguimiento de ClO 2 Concentración en los Clamshells <ol><li> Introduzca el tubo de entrada y la salida del detector de gas ClO 2 en el centro de las conchas de almeja, with una distancia de 2 cm entre los dos extremos, y tomar la medición de ClO 2 en los días 3, 7, 10 y 14. </li></ol> 4. Determinación de la población microbiana de frutas y Atributos de Calidad <ol><li> Agitar 5 frutas (aproximadamente 60 g) de cada replicar a 100 rpm durante 1 h en una bolsa de muestreo esterilizado junto con 99 ml de tampón de fosfato potásico estéril (0,01 M, pH 7,2) en un agitador orbital. <ol><li> Diluciones en serie de placas (1-, 10- y 100 veces) de la Tampón de Lavado, 50! L cada uno, en ECA (para E. coli) y PDA (para A. alternata), utilizando un dispensador en espiral. </li><li> Incubar las placas de ECA a 35 ° C durante 24 h y las placas de PDA a 25 ° C durante 3 días. Leer el recuento de colonias microbiana usando un lector de placa óptica. Desinfectar todo el equipo, que en contacto con la fruta contaminada después de su uso. </li></ol></li><li> Medir la firmeza de la fruta con un probador de firmeza de la fruta utilizando el protocolo del fabricante. Calibrar el probador antesde cada uso. Medir 20 fruta para cada replicar y expresar los resultados como la fuerza de presión, Newton (N), requerida para comprimir la fruta por 1 mm (convertido en N · m - 1). </li><li> Pesar toda la concha con la fruta al comienzo de y durante el almacenamiento y el cálculo de la pérdida de peso en comparación con el peso inicial. </li></ol> 5. Análisis estadístico <ol><li> Replicar todos los experimentos por triplicado. Analizar los datos mediante análisis de varianza (ANOVA). Determinar la separación media mediante la prueba de rangos múltiples de Duncan; el significado se define a p &lt;0,05. </li></ol>

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

El dióxido de cloro es un biocida ideal para prevenir la caries alimentos. Sin embargo, es inestable a altas concentraciones y no transportable, que requieren generadores costosos o ineficiente de mezcla en polvo de dos partes. Este estudio examinó la aplicación de una forma estable, lista para el uso de dióxido de cloro para reducir el deterioro del alimento y la incidencia de enfermedades transmitidas por alimentos. A diferencia de otras tecnologías de aplicación de dióxido de cloro que se utilizan actualmente, el ClO...

Una dieta rica en frutas y verduras frescas puede ayudar a reducir el riesgo de muchas enfermedades, incluyendo las enfermedades coronarias y ciertos tipos de cánceres 1. Sin embargo, hay una serie de microbios patógenos transmitidos por los alimentos, tales como Escherichia coli, Salmonella enterica, y Listeria monocytogenes, asociados con el consumo de frutas y verduras frescas que pueden causar enfermedades o incluso la muerte entre los consumidores que comer productos contaminados 2. Por ejemplo, E. coli O157: H7 se han asociado con las uvas, tomates y fresas 3, 4, y los brotes de la hepatitis A se han asociado con arándanos frescos 5. Además, la contaminación microbiana puede causar pérdida de producto sustancial a través de la descomposición postcosecha 6. Alternaria alternata es una importante planta de hongo patógeno t<html> sombrero se sabe que causa manchas en las hojas y otras enfermedades en más de 380 especies de huéspedes de plantas 7. Se ha demostrado ser la causa de un punto de Alternaria negro 8, una enfermedad cancro del tallo y un tizón de la hoja de tomates 9. Por lo tanto, es necesario un tratamiento poscosecha de descontaminación segura y eficaz para ambos patógenos transmitidos por los alimentos de control y para prevenir la caries postcosecha en productos frescos. tecnologías de bajos y no de residuos son las nuevas tendencias de los desinfectantes alternativos. Una variedad de fungicidas postcosecha se han utilizado para reducir los organismos de descomposición y para prevenir las enfermedades transmitidas por los alimentos. El ozono, un agente antimicrobiano fuerte, se ha demostrado para preservar la calidad y la frescura de fresas y arándanos 10, 11. Sin embargo, el ozono puede causar la oxidación de tejido de la superficie de la fruta y puede resultar en la decoloración y el deterioro de la calidad del sabors = &quot;xref&quot;&gt; 12. El cloro se ha usado para desinfectar productos frescos, tales como arándanos y manzanas 13. Aunque eficaz, el cloro puede reaccionar con compuestos o amoníaco que contienen nitrógeno, dando como resultado subproductos cancerígenos 14, especialmente cuando se usa para la sanitización de fruta fresca 15. El dióxido de cloro (ClO 2), una alternativa desinfectante, fue aprobado por ambas China y los EE.UU. para el tratamiento poscosecha de frutas y verduras 16. ClO 2 es un agente oxidante soluble en agua con una capacidad de oxidación de 2,5 veces mayor que la de cloro libre 17. ClO 2 es altamente eficaz a bajas concentraciones y con un tiempo de contacto corto 18. ClO 2 tiene baja toxicidad y corrosividad mínimo a las concentraciones utilizadas para la desinfección, y se reconoce como uno de los bactericida más eficazy agentes fungicidas para uso en una variedad de configuraciones 19, 20, 21. Numerosos resultados de la investigación han demostrado que el ClO 2 puede controlar los patógenos transmitidos por los alimentos y el deterioro postcosecha 16. Por ejemplo, ClO 2 de gas se ha usado para inactivar L. monocytogenes, Salmonella y E. coli O157: H7 y para prevenir arándano y fresa deterioro 22, 23. ClO 2 gas reduce el riesgo de contaminación microbiana manteniendo al mismo tiempo los atributos de fruta fresca, y que era eficaz en el control de la caries postcosecha de fresas 24. Sin embargo, es inestable a altas concentraciones y no transportable, lo que requiere históricamente generadores costosas en el lugar o ineficiente de mezcla en polvo de dos partes. Sin embargo, un nuevo ClO2 producto con una formulación de liberación controlada ya preparado (es decir, que no requiere un generador o la premezcla de los ingredientes) ha demostrado ser muy eficaz en el control de los organismos de descomposición de alimentos y agentes patógenos en experimentos preliminares 25. Es un no corrosivo, y forma segura, rentable, fácilmente transportable de liberación controlada de ClO 2, sin efectos adversos sobre el medio ambiente. Experimentos previos han demostrado que este de liberación lenta ClO 2 polvo envuelto en material de filtración y se coloca en empaquetado de la cubierta reduce significativamente la descomposición de arándanos frescos y fresas, disminución de la pérdida de agua de la baya, y se mantiene la firmeza de la fruta durante el almacenamiento postcosecha 25, 26. Recientemente, un ClO 2 paquete de liberación controlada fue desarrollado por el sellado de una forma de suspensión de ClO 2 en una película de polímero semipermeable. Los objetivos de este trabajo fuerona: 1) controlar ClO propiedades de liberación 2 de gas, tanto en un recipiente cerrado y en clamshells perforadas, 2) investigar el efecto de una liberación controlada ClO 2 bolsa encerrada en un contenedor sobre los patógenos transmitidos por los alimentos y la decadencia de tomates de la uva, y 3) evaluar los efectos de la liberación controlada ClO 2 en la calidad de almacenamiento de tomates de la uva.

<table><tbody><tr><td>Curoxin&#174; bolsa de dióxido de cloro</td><td>Worrell Water Technologies</td><td></td><td>Slurry, a.i. 9.5% en película de polímero semipermeable sellada</td></tr><tr><td>Tomate uva</td><td>Santa Sweets, Inc</td><td></td><td>Santa Sweets Authentic&nbsp;</td></tr><tr><td>Detector de gas ClO2</td><td>Analytical Technology, Inc., Collegeville, PA</td><td></td><td>PortaSens II&nbsp;</td></tr><tr><td>Concha perforada</td><td>Packaging Plus LLC, Yakima, WA</td><td></td><td>OSU #1, 1 lb</td></tr><tr><td>Escherichia coli&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Tipo silvestre (WT) de la superficie de la fruta</td></tr><tr><td>Alternaria alternata</td><td></td><td></td><td>de la superficie de la fruta</td></tr><tr><td>E. coli agar&nbsp;</td><td>Caldo EC, Oxoid, Reino Unido</td><td></td><td>Caldo EC con agar al 1,5%</td></tr><tr><td>Agar patata dextrosa&nbsp;</td><td>BD Difco, Sparks, MD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Levine eosina agar azul de metileno</td><td>BD Difco, Sparks, MD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Botella de spray Trigger&nbsp;</td><td>Impact Products, LLC., Toledo, OH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bolsa de muestreo esterilizada&nbsp;</td><td>Fisherbrand, Fisher Scientific, Pittsburgh, PA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agitador de órbita&nbsp;</td><td>New Brunswick Scientific, New Brunswick, NJ</td><td></td><td>Innova 2100</td></tr><tr><td>IUL Instruments Neutec Eddy sistema de recubrimiento de inoculación en espiral de chorro</td><td>Neutec Group Inc., Farmingdale, NY</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lector de placas micro ópticas EZ&nbsp;</td><td>Synoptics, Ltd., Cambridge, Reino Unido</td><td></td><td>ProtoCOL</td></tr><tr><td>Probador de firmeza de frutas&nbsp;</td><td>Bioworks Inc, Wamego, KS</td><td></td><td>FirmTech 2&nbsp;</td></tr><tr><td>Registrador de datos de temperatura y HR Tinytag</td><td>Gemini Data Loggers, West Sussex, Reino Unido</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Estándar de turbidez de equivalencia de McFarland</td><td>Fisherbrand, Fisher Scientific, Pittsburgh, PA</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

la liberación controlada de dióxido de cloro en un sistema de envasado perforado para extender la vida de almacenamiento y mejorar la seguridad de los tomates de la uva

Controlled-release of Chlorine Dioxide in a Perforated Packaging System to Extend the Storage Life and Improve the Safety of Grape Tomatoes

Un dióxido de cloro de liberación controlada (ClO 2) bolsa fue desarrollado por el sellado de una forma de suspensión de ClO 2 en película de polímero semipermeable; las propiedades de liberación de la bolsa se monitorizaron en recipientes con o sin fruta. La bolsa se fija al interior de una concha de almeja perforado que contiene tomates de la uva, y el efecto sobre la población microbiana, firmeza, y se evaluó la pérdida de peso durante un período de almacenamiento 14 días a 20 ° C. Dentro de los 3 días, la concentración de ClO 2 en las conchas de almeja alcanzó 3,5 ppm y se mantuvo constante hasta el día 10. A partir de entonces, se redujo a 2 ppm por día 14. El ClO 2 bolsa exhibió fuerte actividad antimicrobiana, reducción de las poblaciones de Escherichia coli por 3,08 log UFC / g y Alternaria alternata poblaciones de 2,85 log UFC / g después de 14 días de almacenamiento. El tratamiento ClO 2 también redujo la pérdida de reblandecimiento y peso y extendió la vida total útil de los tomates. Nuestros resultadossugieren que el tratamiento ClO 2 es útil para extender la vida útil y mejora de la seguridad microbiana de los tomates durante el almacenamiento, sin perjudicar su calidad.

La liberación de ClO 2 exhibió un patrón lineal en las primeras horas. La concentración aumentó aproximadamente 2,38 ppm / h sobre el primero 4 h. La velocidad de liberación más lento después de 24 h de incubación, y la concentración de ClO 2 alcanzó 25,4 ppm. Sin embargo, la concentración tiende a ser estable después de 24 h de incubación (Figura 1). El espacio de cabeza concentración Cl...

Aquí, describimos un protocolo para la aplicación de un novedoso producto ClO2 de liberación lenta que reduce el deterioro y prolonga la vida útil de la fruta fresca. El producto ClO2 de liberación lenta se añadió a los envases comerciales estándar de tomate uva y se probó contra Escherichia coli y Alternaria alternata.

La liberación controlada de dióxido de cloro en un sistema de envasado perforado para extender la vida de almacenamiento y mejorar la seguridad de los tomates de la uva

A controlled-release chlorine dioxide (ClO2) pouch was developed by sealing a slurry form of ClO2 into semipermeable polymer film; the release properties ...

El objetivo general de este experimento es utilizar un nuevo producto de liberación controlada de dióxido de cloro para reducir el riesgo de enfermedades transmitidas por los alimentos y el deterioro de los alimentos, y para prolongar la vida útil de las frutas frescas. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo agrícola poscosecha sobre la conservación de frutas y verduras frescas. La principal ventaja de esta técnica es que la dosis de liberación y la duración del tratamiento con dióxido de cloro pueden controlarse durante todo el almacenamiento y manejo de los productos empaquetados.Aunque este método puede proporcionar información sobre la liberación controlada de agentes antimicrobianos para la conservación de productos agrícolas, también puede aplicarse a otros sistemas, como la sanitización del agua y la desodorización. Antes de comenzar el procedimiento, fije la bolsa de dióxido de cloro a la tapa de la cámara de vidrio con cinta adhesiva de doble cara y selle la cámara con gelatina de petróleo. Conecte la entrada y la salida de un detector de gas de dióxido de cloro a la cámara, y active el flujo de gas de entrada y salida.Luego, mida la concentración de dióxido de cloro en la cámara en los puntos de tiempo indicados, y supervise la temperatura y la humedad relativa mediante registradores de datos de temperatura y humedad relativa. A continuación, reactive la E. coli descongelando el cultivo bacteriano congelado, y siembre la suspensión en agar para E. coli para una incubación de 24 horas a 35 grados Celsius. Al día siguiente, recultive los organismos en una placa nueva mediante una incubación de 24 horas a 35 grados Celsius.Luego, siembre una colonia en una placa de agar Eosina Verde de Levine-Metileno Azul durante otras 24 horas a 35 grados Celsius. Los cultivos que adquieran un color verde metálico reflectante son positivos para E.coli. Raspe las células de E.coli identificadas desde su placa de agar hacia 50 mililitros de agua destilada estéril hasta que la concentración estimada alcance nueve log CFU por mililitro en comparación con los estándares de turbidez de equivalencia McFarland, y luego vierta los 50 mililitros de bacterias en 1950 mililitros de agua estéril que contenga 0,1 % de Tween 20 para obtener un volumen final del inóculo de dos litros.Para A.alternata, cultive los hongos en agar de dextrosa de papa a 25 grados Celsius hasta que aparezcan esporas, y prepare una muestra de inóculo de dos litros de volumen como se acaba de demostrar. Cuando el inóculo esté listo, coloque siete kilogramos de tomates en una bandeja de acero inoxidable de 10 litros que esté completamente encerrada dentro de una bolsa autoclavable. Mueva la bolsa y la bandeja a una campana de seguridad y utilice un pulverizador manual para aplicar la solución de inóculo experimental de interés, mientras agita suavemente las frutas con una mano enguantada.Después de cinco minutos, coloque los tomates en una sola capa sobre láminas esterilizadas durante dos horas. Cuando las frutas estén secas, transfiera 200 gramos de tomates a 24 conchas individuales perforadas de una libra. Doble cuidadosamente las láminas contaminadas y colóquelas junto con los guantes en la bandeja para la esterilización en autoclave.Ahora, sujete bolsas de dióxido de cloro a las tapas de la mitad de las conchas de almeja y pese cada concha completa. Almacene todas las conchas de almeja a 20 grados Celsius durante 14 días. Luego, en los puntos temporales experimentales adecuados, inserte los tubos de entrada y salida del detector de gas de dióxido de cloro en el centro de las conchas de almeja con una distancia de dos centímetros entre ambos extremos, y obtenga la medición de dióxido de cloro.Para calcular la pérdida de peso en comparación con el peso inicial, pese todo el molusco con la fruta. Para medir la población microbiana presente en la superficie de la fruta en cada punto de tiempo, agite cinco frutas de cada réplica con 99 mililitros de solución salina fosfato estéril tamponada en una bolsa de muestreo esterilizada a 100 revoluciones por minuto durante una hora en un agitador orbital. Al final de la agitación, use un plater espiral para sembrar diluciones seriadas de 50 microlitros del lavado con tampón en la placa de agar apropiada durante el período de incubación adecuado, y use un lector óptico de placas para medir el recuento de colonias microbianas.Para medir la firmeza del fruto, utilice un medidor de firmeza de frutos siguiendo las instrucciones del fabricante para analizar 20 frutos de cada réplica, recordando desinfectar el equipo después de su uso, expresando los resultados como la fuerza de presión necesaria para comprimir el fruto un milímetro. Luego, analice los datos mediante análisis de varianza y determine la separación media mediante la prueba de rangos múltiples de Duncan. La liberación de dióxido de cloro inicialmente presenta un patrón lineal con un aumento de concentración de aproximadamente 2,38 partes por millón por hora durante las primeras cuatro horas.La velocidad de liberación disminuye durante las próximas 20 horas hasta alcanzar una concentración de dióxido de cloro de 25,4 partes por millón, momento en el cual la concentración del gas parece estabilizarse. La concentración de dióxido de cloro en el espacio de cabeza dentro de un envase tipo concha de tomates uva suele medir aproximadamente cuatro partes por millón entre los días tres y diez, momento a partir del cual la concentración de gas disminuye hasta alcanzar alrededor de dos partes por millón en el día 14. Las concentraciones iniciales de población bacteriana en la fruta tras la inoculación son de 4,3 log unidades formadoras de colonias por gramo para E.coli y de 3,4 log unidades formadoras de colonias por gramo para A.alternata, niveles que se reducen en 3,08 y 2,85 log unidades formadoras de colonias por gramo, respectivamente, tras 14 días de almacenamiento en envases tratados con dióxido de cloro.Además, el tratamiento con dióxido de cloro no solo mantiene la firmeza y el peso del fruto en comparación con los tomates control no tratados, sino que estos efectos también parecen aumentar con el tiempo. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo utilizar este nuevo producto de dióxido de cloro para conservar y prolongar la vida útil de los productos frescos.

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El P ortable C hemical S terilizer (PCS) es un revolucionario, la tecnología de esterilización casi sin agua-energía independiente para las unidades médicas del ejército. El PCS genera dióxido de cloro a partir de reactivos secos mezclados con agua en el lugar, a voluntad, y en el punto de uso (POU) en una maleta de plástico. El isinfectant D - pulverizador oods F y ES ambientalmente amigable anitation S (D-FENS a) y el isinfectant D para EN ambientalmente amigable econtamination D, para todo...

El esterilizador portátil Química (PCS), D-Fens, y D-Fend TODOS: Dióxido de Cloro nuevas tecnologías de descontaminación para las Fuerzas Armadas

Fuente: Hassan, J. A., et al. Identificación de alto rendimiento de resistencia a Pseudomonas syringae pv. Tomate en tomate usando el ensayo de inundación de plántulas. J. Vis. Exp. (2020).Este video demuestra un método para detectar resistencia bacteriana en diferentes cepas de tomate utilizando plántulas de diez días inoculadas con una suspensión bacteriana. Explica cómo las bacterias invaden a través de los estomas, entregan proteínas efectoras para suprimir la inmunidad de las plantas y...

Ensayo de inundación de plántulas para detectar la resistencia bacteriana en tomates

Este video muestra un método para la generación de una plataforma novedosa basada en burbujas de polímero o poliburbujas que permite la liberación de ráfagas retardadas. Los polímeros a base de poliéster se utilizan para formar las poliburbujas con estructura de núcleo-cáscara, y las moléculas pequeñas y los antígenos se pueden utilizar como carga.

Una técnica para generar una nueva plataforma de administración para una liberación retardada de moléculas

Clostridium difficile es una bacteria patógena que es un anaerobio estricto y causa diarrea asociada a antibióticos (DAA). Aquí, métodos para aislar, cultivar y mantener C. se describen las células vegetativas y esporas difficile. Estas técnicas requieren una cámara anaeróbica, que requiere un mantenimiento regular para garantizar las condiciones adecuadas para una óptima C. cultivo difficile.

El cultivo y mantenimiento<em&gt; Clostridium difficile</em&gt; En un ambiente anaeróbico

Este método se explica cómo construir y operar un 13 C continua y 15 N isótopo cámara de etiquetado para el uniforme o el etiquetado de tejidos vegetales diferencial. Se discuten los resultados representativos de metabólicas y etiquetado estructural de gerardii Andropogon.

Diseño y aplicación de un continuo<sup&gt; 13</sup&gt; C y<sup&gt; 15</sup&gt; N Cámara Etiquetado de Uniforme o Diferencial, metabólico y estructural, Planta de isótopos de etiquetado

Los protocolos descritos en este documento facilitan la investigación conveniente de las respuestas bacterianas al etileno mediante la utilización de ácido 2-cloroetilfosfónico (CEPA).  El etileno se produce in situ a través de la descomposición de CEPA en un medio acuoso de crecimiento bacteriano, eludiendo el requisito de gas etileno puro.

Utilizando el compuesto que libera etileno, ácido 2-cloroetilfosfónico, como una herramienta para estudiar la respuesta de etileno en bacterias

Este papel describe el óxido nítrico (NO) protocolos de fumigación para el control de plagas de postcosecha. Cámaras de fumigación se vuelcan con el nitrógeno (N2) establecer condiciones de oxígeno ultralow antes NO se inyecta. Al final, cámaras se vuelcan con N2 para diluir NO antes de exponer los productos al aire ambiente para evitar la exposición a2.

Procedimientos de laboratorio fumigación Control de plagas con Gas de óxido nítrico

El objetivo de este estudio fue determinar los efectos de la esterilización con gas cloro y el cloro en la germinación de la semilla de un genotipos gama de Arabidopsis crecen en medios estériles. Se han desarrollado protocolos de esterilización optimizado para prevenir el crecimiento de contaminantes microbianos mientras que proporciona la supervivencia satisfactoria de la semilla.

Método estandarizado para la esterilización de alto rendimiento de semillas de Arabidopsis

La semilla de tomate es un modelo importante para estudiar la genética y la biología del desarrollo durante la reproducción de las plantas. Este protocolo es útil para limpiar las semillas de tomate en diferentes etapas de desarrollo para observar la estructura embrionaria más fina.

Un protocolo de limpieza eficiente para el estudio del desarrollo de semillas en tomate (Solanum lycopersicum L.)

Este manuscrito describe un novedoso dispositivo de infusión directa de plantas para evaluar la efectividad de moléculas contra la bacteria (Candidatus Liberibacter asiaticus) o su insecto vector (Diaphorina citri, Kuwayama) que, en combinación, están asociadas con la enfermedad de los cítricos de Huanglongbing.

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Este protocolo describe un sistema eficiente de protoplasto mesophyll de repollo. Se probaron varios tratamientos con deficiencia de oxígeno y el sistema mostró una alta activación de genes que responden a la hipoxia, lo que facilitó los estudios de los mecanismos genéticos y moleculares de la tolerancia a la inundación en vegetales Brassicaceae .

Desarrollo de un sistema de protoplasto de repollo para el estudio de la tolerancia a la hipoxia en Brassica

Aprenda a utilizar dióxido de cloro de liberación controlada en envases perforados para extender la vida útil de tomates uva y mejorar la seguridad alimentaria contra patógenos como Escherichia coli.

La liberación controlada de dióxido de cloro en un sistema de envasado perforado para extender la vida de almacenamiento y mejorar la seguridad de los tomates de la uva (Video) | JoVE Journal

La liberación controlada de dióxido de cloro en un sistema de envasado perforado para extender la vida de almacenamiento y mejorar la seguridad de los tomates de la uva

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