Name: Dosificación múltiple en bolo intravenoso y evaluación hemodinámica invasiva en un modelo de hipertensión de la arteria pulmonar de ratón inducida por hipoxia (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-11-11T13:10:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: Aprende a realizar dosificación intravenosa múltiple y evaluación hemodinámica invasiva en ratones con hipertensión arterial pulmonar inducida por hipoxia. Este protocolo facilita el desarrollo de tratamientos cardiovasculares.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabajo fue apoyado, en parte, por una microbeca del Consorcio Conjunto de Biología proporcionada por el P30AR070253 de subvenciones de los NIH (PYC), el Fondo de Educación para la Investigación Médica Cardiovascular (PYC), el Fondo VasoRx, Inc. (MS) y las subvenciones de los NIH HL135582 (MS), HL152197 (MS).

<ol><li>McLaughlin, V. V., McGoon, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Pulmonary arterial hypertension.</a> Circulation. 114 (1), 1417-1431 (2006).</li>
<li>Hoeper, M. M., Humbert, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+new+haemodynamic+definition+of+pulmonary+hypertension%3A+evidence+prevails%2C+finally%5BTitle%5D)+AND+%22European+Respiratory+Journal%22%5BJournal%5D)">The new haemodynamic definition of pulmonary hypertension: evidence prevails, finally.</a> European Respiratory Journal. 53 (3), 1900038(2019).</li>
<li>Chen, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+of+pulmonary+hypertension+induced+by+mono+treatment+with+SU5416%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension+Research%22%5BJournal%5D)">A novel rat model of pulmonary hypertension induced by mono treatment with SU5416.</a> Hypertension Research. 43 (8), 754-764 (2020).</li>
<li>Xiong, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+model+of+experimental+pulmonary+hypertension%3A+Lung+angiogram+and+right+heart+catheterization%5BTitle%5D)+AND+%22Pulmonary+Circulation%22%5BJournal%5D)">Mouse model of experimental pulmonary hypertension: Lung angiogram and right heart catheterization.</a> Pulmonary Circulation. 11 (4), 20458940211041512(2021).</li>
<li>Kmiotek, E. K., Baimel, C., Gill, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+intravenous+self+administration+in+a+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Methods for intravenous self administration in a mouse model.</a> Journal of Visualized Experiments. (70), e3739(2012).</li>
<li>Potus, F., Martin, A. Y., Snetsinger, B., Archer, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biventricular+assessment+of+cardiac+function+and+pressure-volume+loops+by+closed-chest+catheterization+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Biventricular assessment of cardiac function and pressure-volume loops by closed-chest catheterization in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (160), e61088(2020).</li>
<li>Bueno-Beti, C., Hadri, L., Hajjar, R. J., Sassi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Sugen+5416%2Fhypoxia+mouse+model+of+pulmonary+arterial+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Models+of+Cardiovascular+Diseases%22%5BJournal%5D)">The Sugen 5416/hypoxia mouse model of pulmonary arterial hypertension.</a> Experimental Models of Cardiovascular Diseases. 1816, 243-252 (2018).</li>
<li>Chen, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF+regulates+TGF-beta+signaling+and+endothelial-to-mesenchymal+transition+via+control+of+let-7+miRNA+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">FGF regulates TGF-beta signaling and endothelial-to-mesenchymal transition via control of let-7 miRNA expression.</a> Cell Reports. 2 (6), 1684-1696 (2012).</li>
<li>Chen, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+TGF-beta+signalling+drives+vascular+inflammation+and+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Endothelial TGF-beta signalling drives vascular inflammation and atherosclerosis.</a> Nature Metabolism. 1 (9), 912-926 (2019).</li>
<li>Daugherty, A., Rateri, D., Hong, L., Balakrishnan, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+blood+pressure+in+mice+using+volume+pressure+recording%2C+a+tail-cuff+method%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Measuring blood pressure in mice using volume pressure recording, a tail-cuff method.</a> Journal of Visualized Experiments. (27), e1291(2009).</li>
<li>Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+blood+pressure+measurement+in+freely+moving+mice+using+telemetry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Long-term blood pressure measurement in freely moving mice using telemetry.</a> Journal of Visualized Experiments. (111), e53991(2016).</li>
<li>Luo, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invasive+hemodynamic+assessment+for+the+right+ventricular+system+and+hypoxia-induced+pulmonary+arterial+hypertension+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Invasive hemodynamic assessment for the right ventricular system and hypoxia-induced pulmonary arterial hypertension in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (152), e60090(2019).</li>
</ol>

K Zsebo, M Simons y P-Y Chen son fundadores científicos y accionistas de VasoRx, Inc. M Simons es miembro de la Junta Asesora Científica de VasoRx, Inc. HJ Duckers es empleado y accionista de VasoRx. Los demás autores declaran no tener intereses contrapuestos.

Se han establecido varios modelos animales de hipertensión pulmonar para imitar los eventos de resistencia vascular pulmonar elevada en sujetos humanos. Entre ellos, el modelo de HAP inducido por hipoxia en ratones ha sido ampliamente utilizado para evaluar la eficacia de nuevas terapias experimentales para la HAP. La investigación que utiliza este modelo a menudo requiere la administración de compuestos a los ratones. En comparación con otros protocolos publicados de evaluación hemodinámica invasiva y de inyección intra...

La hipertensión arterial pulmonar (HAP) se define por una presión sistólica media de la arteria pulmonar superior a 20 mmHg en reposo 1,2. Es una enfermedad progresiva y mortal caracterizada por una elevación sostenida de la presión arterial pulmonar, que conduce a la sobrecarga del ventrículo derecho y, finalmente, a la muerte por insuficiencia ventricular derecha1. Actualmente, no existe cura para la HAP.
El uso de modelos animales de hipertensión pulmonar es importante para probar la eficacia de las terapias experimentales para la HAP. Entre esos modelos, el modelo de HAP inducida por hipoxia en ratones ha proporcionado información clave sobre el desarrollo de la enfermedad del grupo 3 de la HAP humana 3,4. La investigación que utiliza este modelo a menudo requiere la administración de compuestos en ratones para evaluar la eficacia y seguridad del nuevo compuesto. Por lo tanto, los investigadores necesitan un procedimiento experimental detallado para la dosificación de compuestos y las mediciones hemodinámicas para garantizar la consistencia de la inyección y la reproducibilidad de la medición de la presión arterial desde el principio hasta el final.
Los métodos para la inyección intravenosa (IV) y la medición de la presión arterial han sido reportados en la literatura 5,6. Sin embargo, la metodología carece de ilustración visual y descripción detallada. Aquí ilustramos los pasos clave para una inyección intravenosa exitosa en bolo y una medición y registro precisos de la presión arterial sistémica y del ventrículo derecho. Los procedimientos presentados aquí son un recurso importante para los investigadores interesados en la vía intravenosa de la plataforma de administración de compuestos para desarrollar un tratamiento para la HAP.

<table><tbody><tr><td>Paquete de sutura de prolene 5-0</td><td>Ethicon</td><td>8698G</td><td>para el cierre de la incisión</td></tr><tr><td>Paquete de sutura de nailon 8-0</td><td>AROSurgical Instruments</td><td>T06A08N14-13</td><td>para ligadura</td></tr><tr><td>Cámara de inducción de anestesia</td><td>VETEQUIP</td><td>#941444</td><td>Sujeta al animal durante la exposición a la anestesia</td></tr><tr><td>Cable de interfaz de catéter PEC-4D</td><td>Millar</td><td></td><td>para conectar el catéter Millar Mikro-Tip a PCU-2000</td></tr><tr><td>Filtros de bote de carbón</td><td>VETEQUIP</td><td>#931401</td><td>&nbsp; para ayudar a eliminar&nbsp; anestésico de desechos&nbsp; gases</td></tr><tr><td>Bastoncillos de algodón</td><td>McKesson</td><td>24-106</td><td>para aplicar presión en el lugar de la inyección para evitar hemorragias</td></tr><tr><td>Tijeras finas</td><td>Fine Science Tools</td><td>14059-11</td><td>Herramientas quirúrgicas</td></tr><tr><td>Jeringa de insulina 28 G</td><td>EXEL</td><td>26027</td><td>para inyección intravenosa yugular</td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>COVETRUS</td><td>#029405</td><td>para anestesia en ratones</td></tr><tr><td>Software LabChart 8</td><td>Instrumentos para el</td><td></td><td>análisis</td></tr><tr><td>de datos Catéter de presión Mikro-Tip SPR-1000 (1.0 F)</td><td>Millar</td><td></td><td>para la medición invasiva de la presión arterial</td></tr><tr><td>Needle-25 G</td><td>BD</td><td>305124</td><td>para hacer un pequeño agujero en un recipiente</td></tr><tr><td>Controlador de oxígeno ProOx Sensor de oxígeno</td><td>BioSpherix</td><td>E702</td><td>para el control de la concentración</td></tr><tr><td>de oxígeno PCU-2000 Unidad de control de presión</td><td>Millar</td><td></td><td>para conectar el catéter Millar Mikro-Tip a PowerLab 4/35</td></tr><tr><td>PowerLab 4/35</td><td>ADInstrumentos</td><td></td><td>para la adquisición de datos. El investigador necesita conectar el PowerLab 4/35 a una computadora portátil personal que contenga el software LabChart 8 para su operación.</td></tr><tr><td>Prisma 8</td><td>GraphPad</td><td></td><td>para estadísticas y gráficos científicos</td></tr><tr><td>Cámara de hipoxia semisellable</td><td>BioSpherix</td><td></td><td>Un entorno artificial que simula las condiciones de gran altitud para los animales</td></tr><tr><td>Tijeras de resorte</td><td>Fine Science Tools</td><td>15021-15</td><td>Herramientas quirúrgicas</td></tr><tr><td>Tweezer Style 4</td><td>Ciencias de la Microscopía Electrónica</td><td>0302-4-PO</td><td>Herramientas</td></tr> <tr><td>quirúrgicasCompuesto VasoRx 7C1/let-7 miRNA</td><td>VasoRx, Inc.</td><td>Lote# B2-L-16Apr</td><td>IV compuesto de inyección</td></tr><tr><td>VIP 3000 Vaporizador Veterinario</td><td>COLONIAL MEDICAL SUPPLY CO., INC.</td><td></td><td>para una administración precisa de la anestesia</td></tr></tbody></table>

dosificación múltiple en bolo intravenoso y evaluación hemodinámica invasiva en un modelo de hipertensión de la arteria pulmonar de ratón inducida por hipoxia

Multiple Intravenous Bolus Dosing and Invasive Hemodynamic Assessment in a Hypoxia-Induced Mouse Pulmonary Artery Hypertension Model

La hipertensión arterial pulmonar (HAP) es una enfermedad progresiva potencialmente mortal, que afecta principalmente a las pequeñas arteriolas pulmonares del pulmón. Actualmente, no existe cura para la HAP. Es importante descubrir nuevos compuestos que puedan utilizarse para tratar la HAP. El modelo de HAP inducida por hipoxia en ratones es un modelo ampliamente utilizado para la investigación de la HAP. Este modelo recapitula las manifestaciones clínicas humanas de la enfermedad de la HAP del grupo 3 y es una importante herramienta de investigación para evaluar la eficacia de nuevas terapias experimentales para la HAP. La investigación que utiliza este modelo a menudo requiere la administración de compuestos en ratones. En el caso de un compuesto que debe administrarse directamente en el torrente sanguíneo, la optimización de la administración intravenosa (IV) es una parte clave de los procedimientos experimentales. Idealmente, el sistema de inyección intravenosa debería permitir múltiples inyecciones durante un curso de tiempo establecido. Aunque el modelo de HAP inducida por hipoxia en ratones es muy popular en muchos laboratorios, es técnicamente difícil realizar múltiples dosis de bolo intravenoso y una evaluación hemodinámica invasiva en este modelo. En este protocolo, presentamos instrucciones paso a paso sobre cómo llevar a cabo la dosificación de múltiples bolos intravenosos a través de la vena yugular del ratón y realizar el cateterismo arterial y del ventrículo derecho para la evaluación hemodinámica en el modelo de HAP inducida por hipoxia en ratón.

La anestesia a menudo reduce la presión arterial. Por lo tanto, se utilizó una dosis mínima de anestesia para abolir los movimientos en respuesta a un estímulo nocivo. El acceso exitoso a la cámara ventricular derecha se puede visualizar a medida que la forma de onda hemodinámica cambia en diferentes regiones de los sistemas venosos (Figura 8).
En este estudio, los ratones fueron asignados aleatoriamente al grupo normóxico (21% O2) (n = 10), al grupo hi...

Este protocolo proporciona un procedimiento paso a paso para la administración de múltiples dosis de bolo intravenoso y la monitorización hemodinámica invasiva en ratones. Los investigadores pueden utilizar este protocolo para futuras pruebas de detección de compuestos terapéuticos para la hipertensión de la arteria pulmonar.

Dosificación múltiple en bolo intravenoso y evaluación hemodinámica invasiva en un modelo de hipertensión de la arteria pulmonar de ratón inducida por hipoxia

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a progressive life-threatening disease, primarily affecting small pulmonary arterioles of the lung. Currently, ...

Para un compuesto que debe administrarse directamente en el torrente sanguíneo, la optimización de la administración intravenosa es la parte clave del procedimiento experimental. Nuestro protocolo detallado proporciona instrucciones paso a paso para llevar a cabo la dosificación múltiple de bolo intravenoso a través de la vena yugular del ratón, y cómo realizar cateterismos arteriales y del ventrículo derecho para una evaluación hemodinámica precisa en el modelo de hipertensión arterial pulmonar con hipoxia de ratón. Los procedimientos aquí presentados son resultados importantes para los investigadores interesados en la plataforma de administración de la raíz IV de compuestos para desarrollar un tratamiento para la hipertensión arterial primaria.Los investigadores pueden utilizar este método de inyección en bolo de la vena yugular para el cribado de compuestos de desarrollo de fármacos en cualquier modelo de enfermedad de ratón. La inyección intravenosa exitosa en bolo y las mediciones de la presión arterial requieren mucha práctica. Para comenzar, retire el ratón de la cámara de anestesia.Coloque el ratón anestesiado en posición supina sobre una plataforma de inyección debajo de un microscopio de disección. Mantenga la anestesia a través de un cono nasal con isoflurano al 1,5% y sujete suavemente las cuatro patas con cinta adhesiva para inmovilizar el cuerpo. Frote suavemente el área quirúrgica tres veces con tres rondas alternas de solución de povidona yodada y etanol al 70%.Después de hacer un corte longitudinal de 0,5 centímetros, utiliza unas pinzas para separar el músculo y los tejidos grasos y localizar la vena yugular externa derecha. A continuación, inserte una aguja estéril de 28G en la vena yugular. Con el bisel de la aguja hacia arriba.Presione lentamente el émbolo de la jeringa para inyectar el compuesto en la vena. Deje que la aguja permanezca dentro de la vena durante 10 segundos más para evitar el reflujo. Retire la aguja y use un hisopo de algodón para aplicar presión en el sitio de la inyección para evitar el sangrado.Suturar la piel con sutura 5/0 y colocar al animal en una jaula de recuperación con el fondo de la jaula cubierto con una toalla de papel sin ropa de cama. Primero, mida la distancia desde el sitio de inserción del catéter hasta la ubicación deseada de la punta del catéter. Marque dos marcas de distancia del catéter para proporcionar una indicación visual de la profundidad de inserción, aplique el ungüento veterinario directamente sobre la superficie ocular de los ojos del ratón para evitar la sequedad.Coloque el ratón en posición supina sobre una plataforma de inyección debajo de un microscopio de disección. Después de hacer una incisión en la piel desde la mandíbula hasta el esternón, separe las glándulas salivales y exponga la tráquea. Coloque 0,5 mililitros de PBS en la cavidad para retrasar el desarrollo del espasmo de los vasos sanguíneos mientras se manipula la arteria carótida.Aísle cuidadosamente una sección de cinco milímetros de la arteria carótida derecha colocando un trozo de papel blanco debajo del vaso como fondo. Con un 8-0 sutura, haga un nudo permanente para cerrar el extremo craneal del vaso. A continuación, haga el primer nudo suelto para ocluir temporalmente el flujo sanguíneo de la aorta.A continuación, haz el segundo nudo suelto entre las dos primeras suturas. Con una aguja de 25 G, haga un pequeño orificio que sea lo suficientemente grande como para pasar el catéter en línea con el vaso entre el nudo permanente y el segundo nudo suelto. Sostenga el catéter a 1.5 pulgadas de la punta e inserte suavemente la punta del catéter a través del orificio de la arteria.Apriete el segundo nudo suelto alrededor del catéter y el vaso sanguíneo que aún permite el paso del catéter. Suelta suavemente el primer nudo suelto. Continúe insertando el catéter hacia la aorta ascendente de acuerdo con la marca en el catéter hasta que el análisis de presión muestre un perfil de presión arterial.Registre los datos sistémicos de la presión arterial utilizando el sistema de adquisición de datos y el software. Afloje el ganglio de sutura central para permitir que se extraiga el catéter. A continuación, aprieta el primer nudo suelto para evitar el sangrado y saca el catéter de la arteria carótida.Aísle cuidadosamente la vena yugular externa derecha del tejido conectivo circundante. Con un 8-0 Sutura, liga todas las ramas pequeñas y haz un nudo permanente para cerrar el extremo craneal del vaso. A continuación, haz un nudo suelto en el extremo caudal del vaso.Usa una aguja de 25G para hacer un pequeño orificio proximal al nudo permanente. Sostenga el catéter e inserte el catéter en el corte de la vena y apriete el nudo caudal alrededor del catéter y el vaso. Introduzca lentamente el catéter en el corazón derecho.Controle la profundidad de la punta del catéter en función de la marca del catéter. Evalúe la posición de la punta del catéter de acuerdo con el trazado de la onda de presión en el software. Cuando la punta del catéter está en el ventrículo derecho, el monitor mostrará un trazado típico de la presión sistólica del ventrículo derecho.Mantenga el catéter estable y recoja los datos durante cinco minutos. Una vez finalizada la grabación, saque con cuidado el catéter y observe que no haya ningún registro de presión. Haz el nudo caudal alrededor del recipiente.Vuelva a colocar el catéter en la solución de PBS. Durante el cateterismo del ventrículo derecho en un ratón C57 negro controlado por normoxia, se obtuvo un acceso exitoso a la cámara ventricular derecha, como se ve por el cambio en la forma de onda hemodinámica en diferentes regiones del sistema venoso. Se midieron la presión arterial sistémica y la presión sistólica del ventrículo derecho en un ratón de tórax cerrado cuatro semanas después de la exposición a hipoxia o normoxia.En comparación con el grupo de normoxia, la presión sistólica del ventrículo derecho aumentó significativamente en el grupo de hipoxia. El tratamiento con el compuesto de micro ARN 7C1/let-7 resultó en una disminución significativa de la presión sistólica del ventrículo derecho en comparación con el grupo de hipoxia, mientras que la presión arterial sistémica no cambió en ninguno de los grupos. La evaluación de la presión sistólica del ventrículo rojo en ratones de tórax cerrado es un desafío debido a la compleja anatomía del ventrículo rojo.Los investigadores deben evitar los intentos prolongados y repetidos de cateterismo del ventrículo rojo. Nuestro procedimiento de dosificación yugular y en bolo se puede utilizar para el cribado de compuestos en el desarrollo de fármacos en cualquier modelo de enfermedad de ratón. Podemos utilizar la raíz intravenosa de la plataforma de administración de compuestos para desarrollar un tratamiento para la hipertensión de la arteria pulmonar.

multiple-intravenous-bolus-dosing-invasive-hemodynamic-assessment

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este video muestra el procedimiento de replicar un accidente cerebrovascular trombótico en un modelo de ratón mediante el bloqueo de la arteria carótida común derecha y la exposición del ratón a un entorno con poco oxígeno. Este proceso reduce el flujo de sangre y oxígeno al cerebro, lo que provoca la formación de coágulos sanguíneos y daño cerebral.

Inducción de accidente cerebrovascular trombótico a través de hipoxia e isquemia en un modelo de ratón

Este artículo proporciona un protocolo para la evaluación ecocardiográfica del tamaño ventricular derecha e hipertensión pulmonar en los ratones. Las aplicaciones incluyen la determinación del fenotipo y la evaluación de serie en modelos de ratón inducido por la toxina de la cardiomiopatía y la enfermedad vascular pulmonar transgénicos y.

Evaluación ecocardiográfica de la parte derecha del corazón en ratones

Esta película muestra cómo adquirir la hemodinámica sistémica y hepática en los ratones. Todo el monitoreo incluye la adquisición de los parámetros vitales, presión arterial sistémica, la presión venosa central, tasa de flujo de la arteria hepática común, y la presión de la vena porta, así como la velocidad de flujo portal en ratones.

Monitoreo de Parámetros sistémicos y hemodinámicos hepática en ratones

La hipertensión arterial pulmonar (HAP) es una enfermedad de las arteriolas pulmonares que conduce a su obliteración y al desarrollo de insuficiencia ventricular derecha. Los modelos de HAP en roedores son fundamentales para comprender la fisiopatología de la HAP. Aquí demostramos la caracterización hemodinámica, con cateterismo cardíaco derecho y ecocardiografía, en ratón y rata.

Hemodinámica Caracterización de roedores modelos de hipertensión arterial pulmonar

Este artículo describe cómo realizar la derivación cardiopulmonar en ratones. Este nuevo modelo facilitará la investigación de los mecanismos moleculares implicados en el daño del órgano.

Puente cardiopulmonar en un modelo de ratón: un nuevo enfoque

Aquí describimos un protocolo detallado para las mediciones invasivas de parámetros hemodinámicos como la presión portal, el flujo sanguíneo esplácnico y hemodinámica sistémica para caracterizar el síndrome de hipertensión portal en ratas.

Caracterización hemodinámica invasiva del síndrome de hipertensión Portal en cirróticos ratas

Presentamos un protocolo de crear disfunción ventricular derecha en un modelo de cerdo mediante la inducción de SDRA. Demostramos la monitorización invasiva del gasto cardíaco ventricular mediante flujo sondas alrededor de la aorta y la arteria pulmonar, así como mediciones de presión arterial en la aorta y la arteria pulmonar derecha e izquierda.

Monitorización hemodinámica invasiva de la hemodinámica de la arteria aorta y pulmonar en un modelo Animal grande del SDRA

Presentamos un protocolo para inducir y fenotipar una insuficiencia cardíaca derecha aguda en un modelo animal grande con hipertensión pulmonar crónica. Este modelo se puede utilizar para probar intervenciones terapéuticas, para desarrollar métricas del corazón derecho o para mejorar la comprensión de la fisiopatología de la insuficiencia cardíaca derecha aguda.

Inducción y fenotipado de la insuficiencia cardíaca derecha aguda en un modelo animal grande de hipertensión pulmonar tromboembólica crónica

Aquí presentamos un protocolo que describe la técnica de oxigenación extracorporal veno-venosa de la membrana (ECMO) en una no intubados, espontáneamente respiración de ratón. Este modelo murino de ECMO puede implementarse con eficacia en estudios experimentales de aguda y enfermedades de la pulmón de fase final.

Oxigenación por membrana extracorpórea veno-venosa en un ratón

Este protocolo describe la inducción de hipertensión pulmonar (PH) en ratones en función de la exposición a la hipoxia y la inyección de un antagonista del receptor VEGF. Los animales desarrollan PH e hipertrofia ventricular derecha (RV) 3 semanas después del inicio del protocolo. También se presenta la caracterización funcional y morfométrica del modelo.

Inducción y caracterización de la hipertensión pulmonar en ratones utilizando el modelo Hypoxia/SU5416

Aquí, presentamos un protocolo para realizar una evaluación hemodinámica invasiva del ventrículo derecho y la arteria pulmonar en ratones utilizando un enfoque de cirugía de pecho abierto.

Evaluación hemodinámica invasiva para el sistema ventricular derecho y hipertensión arterial pulmonar inducida por hipoxia en ratones

Aprende a realizar dosificación intravenosa múltiple y evaluación hemodinámica invasiva en ratones con hipertensión arterial pulmonar inducida por hipoxia. Este protocolo facilita el desarrollo de tratamientos cardiovasculares.

Dosificación múltiple en bolo intravenoso y evaluación hemodinámica invasiva en un modelo de hipertensión de la arteria pulmonar de ratón inducida por hipoxia (Video) | JoVE Journal

Dosificación múltiple en bolo intravenoso y evaluación hemodinámica invasiva en un modelo de hipertensión de la arteria pulmonar de ratón inducida por hipoxia

Explorar más videos