Summary
ここで腎臓皮質細胞外マトリックス由来ハイドロゲル ネイティブ腎臓の細胞外マトリックス (ECM) 構造および生化学的組成を保持するを作製するためのプロトコルを提案する.作製プロセスとその応用を説明します。最後に、このゲルを使用して腎臓固有の細胞およびティッシュの再生とバイオ エンジニア リングをサポートする視点を説明します。
Abstract
細胞外マトリックス (ECM) は、組織の恒常性を維持するために重要な生物物理学的・生化学的手がかりを提供します。現在合成ハイドロゲルは、体外で細胞培養、細胞からの生理学的な行動を引き出すために必要なタンパク質とリガンド組成を欠いている機械の堅牢なサポートを提供しています。この原稿は、適切な機械的な堅牢性と支持の生化学的組成腎臓皮質 ECM から派生したハイドロゲルの作製方法をについて説明します。ヒドロゲルを作製するには、機械的に均質化と脱ひと腎臓皮質 ECM を可します。マトリックスも生理的機械剛性にゲル化を有効にするネイティブ腎臓皮質 ECM タンパク質比を維持します。ヒドロゲルは、生理的条件下で維持できる皮質細胞が腎臓に基板として機能します。さらに、腎臓病の今後の研究を可能にする病的環境をモデル化するゲル組成を操作できます。
Introduction
細胞外マトリックス (ECM) は、組織の恒常性を維持するために重要な生物物理学的・生化学的手がかりを提供します。複雑な分子の構成は、組織の構造と機能の両方のプロパティを調節します。構造タンパク質空間認識を細胞に提供し、の接着や移動の1を可能にします。バインドされた配位子は、2セルの動作を制御する細胞表面の受容体と対話します。腎臓 ECM 分子の組成と構造の解剖学的位置、発達段階と疾患状態3,4によって異なりますの茄多が含まれます。腎臓由来細胞で培養の研究に重要な側面は、ECM の複雑さをさたします。
ECM 微小をレプリケートする以前の試みは、recellularization のできる足場を作成する decellularizing の全体の組織に焦点を当てています。ドデシル硫酸ナトリウム (SDS) など化学洗剤または非イオン性洗剤で decellularization を実行し、それはどちらか全体の臓器灌流または液浸と撹拌方法5,6,7 を利用して ,8,9,10、11,12,13。ここに示す足場ネイティブ組織 ECM; は、構造および生化学的手がかりを保持します。さらに、ドナー固有のセルと recellularization は、臨床外科14,15,16,17,18, 19です。 ただし、これらの足場の構造の柔軟性を欠いているとの in vitro研究のため多くの現在のデバイスと互換性がありません。この制限を克服するために、多くのグループはさらにゲル20,21,22,23,24に脱 ECM を処理しています。これらのゲルは、射出成形、bioink と互換性のあるおよび細胞足場場所を脱マイクロ メートル スケールの空間的制約を回避します。さらに、分子組成とネイティブの ECM の比は、3、25が保持されます。ここで我々 は腎皮質 ECM (kECM) から派生したゲルを作製する方法を示します。
このプロトコルの目的は、腎臓の皮質領域の微小環境を複製するゲルを生成することです。腎臓皮質組織は、細胞内容物質を削除する定数撹拌下で 1 %sds の溶液で脱です。SDS は、免疫学的細胞材料6,7,9,26をすばやく削除する能力のための組織を decellularize に使用されます。KECM、機械の均質化と凍結乾燥5,6,9,11,26対象になります。ペプシンと強い酸で可溶化は、最終的なハイドロゲル原液20,27の結果します。ネイティブ kECM 蛋白質構造の重要なサポートし、信号の伝達3,25は保持されます。ヒドロゲルは、ネイティブのひと腎臓皮質28,29,30の一桁内にゲルことができます。この行列は、他のマトリックス蛋白質のゲルに比べて腎臓固有の細胞の活動の静穏化を維持するために使用されている生理学的な環境を提供します。さらに、マトリックス組成を通じて操作できます、たとえば、コラーゲン添加-私は、腎線維化およびその他の腎疾患31,32の研究モデル疾患環境に。
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Protocol
人間の腎臓は臓器調達機関の協会が定めた倫理的なガイドラインに従う LifeCenter 北西で隔離されました。このプロトコル ワシントン大学で動物のケアと細胞文化のガイドラインに従います。
1. ひと腎臓組織の準備
- Decellularization 溶液の調製
- 5000 mL ビーカー、70 × 10 mm 攪拌棒を滅菌します。
- 1: 1000 (重量: ボリューム) ドデシル硫酸ナトリウム (SDS) ビーカーに脱イオン水をオートクレーブをミックスします。約 200 rpm 24 h または SDS を完全に溶解するまで撹拌プレートにソリューションを残します。
注: 通常、1 %sds 溶液 2500 mL decellularize 単一ひと腎臓に十分です。 - 500 mL 滅菌真空フィルターに溶液を移し、滅菌密閉式コンテナーにフィルターを適用します。
- 腎臓組織の処理
- 2 つの止血鉗子のペア クランプの洗浄、オートクレーブは、一般的なサービス グレードはさみ、2 つのメス刃ハンドル、アルミ箔と 36 x 9 mm 攪拌棒で覆われて 1000 mL ビーカー
- Underpad、ティッシュ文化フードを行します。ビーカー、無菌培養皿 (150 x 25 mm)、および全体の腎臓器官をボンネットに配置します。1 %sds 溶液 500 ml ビーカーを入力します。
注: LifeCenter 北西から氷上人間の腎臓をいただきました。 - 滅菌のティッシュ文化皿 (図 1 a) で腎臓を配置します。すべての腎周囲の脂肪を削除するには、メス (図 1 b) と腎被膜周辺軽く剃毛します。
- メス、ちょうど腎臓の優れた終わり間で根本的な皮質組織を損傷することがなく腎被膜をこじ開けるに十分な深さの浅い 8-10 cm の切開を行います。腎被膜を削除するには、2 つの止血クランプ (図 1) で皮質組織から離れてそれを剥離します。
- (図 1) 腎臓の側面に沿ってメスを使用して、コロナの平面に沿って腎臓を二等分します。メス (図 1E) 髄質領域を切り開くによって両方の半分から皮質組織を分離し、0.5 cm3個セット (図 1 階) に皮質組織をサイコロします。任意の大規模な目に見える血管を削除します。
- 細胞外マトリックスの分離
- ティッシュ文化フード 1 %sds 溶液 500 mL と 1000 mL ビーカーをご記入ください。SDS 溶液ビーカーにさいの目に切った皮質組織と攪拌バーを配置します。オートクレーブのアルミ箔でビーカーをカバーし、ティッシュ文化フードの外約 400 rpm で攪拌プレートの上に置きます。
- 皮質組織した 24 時間撹拌プレートの後、ティッシュ文化フードにビーカーを持参し、ナイロン メッシュで作られた 40 μ m 無菌細胞ストレーナを追加します。漂白剤 200 ml 別 1000 mL ビーカーを入力し、ティッシュ文化フードに配置します。
- 漂白剤を含むビーカーにセル ストレーナーを介して SDS 溶液をピペットします。310 とセル ストレーナーだけビーカーになるまでのすべての SDS 溶液をピペットします。
注: セル ストレーナーは、ソリューション吸引中に削除されてから任意の組織を防ぐ必要があります。 - 新鮮な SDS 溶液 500 mL をビーカーで塗りつぶしセル ストレーナーを残します。同じアルミ箔でビーカーをカバーし前に、と同じ速度で撹拌プレートの上に置きます。
- 5 日間の合計のための手順 1.3.1-1.3.3 新鮮な SDS ソリューションでは 24 時間ごとを繰り返します。
- オートクレーブ ・ ディ ・水の 3 日間の合計、次の手順 1.3.1-1.3.3 のテクニックのすべての 24 h で脱組織をすすいでください。
- 脱組織細胞培養グレード水 2 日間合計、次の手順 1.3.1-1.3.3 のテクニックのすべての 24 h をすすいでください。
- 1.3.1-1.3.2 の手順を繰り返します。(呼ばれる kECM このポイントから上) 30 mL の円錐管が自立に decellularized 組織を転送し、すべての組織が水没するまで細胞培養グレードの水でそれを埋めます。
2. ハイドロゲル ストック溶液の作製
- 310 の機械加工
- ティッシュ文化フードの機械的に 2 分のティッシュのホモジェナイザーの円錐形の管の内で kECM を均質化します。
注: 均質化 kECM ECM のない目に見える部分と不透明なソリューションのようになります。 - もはや解決しない周囲のチューブを沸騰まで液体窒素で kECM を含む円錐管が水没します。一晩-4 ° C で kECM を格納します。
- ティッシュ文化フードの機械的に 2 分のティッシュのホモジェナイザーの円錐形の管の内で kECM を均質化します。
- 凍結脱組織の凍結乾燥
- 若干ガス交換を可能にする凍結乾燥機にチューブを配置し円錐管キャップを緩めます。3 日間または同じ白い粉末になるまで、kECM を凍結乾燥します。-4 ° C でストア。
- 化学的消化とゲルの可溶化
- オートクレーブ 20 mL シンチレーション バイアルとキャップ、15.9 × 7.9 mm 攪拌棒とファイン ・ チップ鉗子の一組。
- 凍結乾燥 kECM の重量を量ると塩酸とペプシンmペプシンがペプシンの質量を次の数式を使用して 3% (30 mg/mL) 溶液に kECM の可溶化に必要な量のボリュームを計算、 m組織の質量凍結乾燥組織VHClは、0.01 N 塩酸の量。
- ティッシュ文化フードのシンチレーション バイアルにブタの胃のペプシン、0.01 N HCl と攪拌棒を追加し、すべてのペプシンが溶けるまで約 500 rpm で攪拌板にそれを残します。シンチレーション バイアル凍結乾燥 kECM に転送し、3 日間約 500 rpm で攪拌プレートに対してソリューションをおきます。
3. ゲルのゲル化
- 腎臓 ECM ハイドロゲル準備
- メディア サプリメント (M199) x 10、1 N NaOH で kECM ハイドロゲル原液を混合することによって、ゲルのゲルし、細胞培養媒体。氷の上のすべてのソリューションをしてください。
メモ: 最終的なゲル 7.5 mg/mL の濃度は、細胞培養に使用されました。kECM ゲルの 1 mL は提示細胞培養実験のために十分だった。 - V在庫 kECMは、必要に応じてストック kECM ハイドロゲルのボリューム、実行可能な kECM ジェルの量ストック kECM ハイドロゲルV最終が作成したゲル量次の式を使用して必要な量を判断C株式 kECMはストック kECM ハイドロゲルの濃度とC最後は最終的なゲルの濃度。
- 中和V水酸化ナトリウムが 1 N NaOH の量を次の式を使用して必要な試薬の量を決定する、 V10 Xは、M199 の体積 10 倍速のメディアを補完、そしてV1 Xが、細胞培養媒体の容積:
- ティッシュ文化フードのピペット滅菌 30 mL の円錐管が自立に中和試薬 (NaOH、M199、および細胞培養媒体) の。中和試薬溶液を混ぜて、microspatula。
- 1 mL の滅菌注射器を使用すると、中和試薬溶液に在庫 kECM ハイドロゲルの適切なボリュームを転送します。軽く混ぜ均一色ゲル溶液が得られるまでに、microspatula を使用します。
メモ: は、ゆっくりと静かに攪拌によって空気の泡を導入しないでください。 - KECM ハイドロゲルに細胞を組み込む、ステップ 3.1.1.3 中和のソリューション ボリューム計算からの細胞培養媒体 (V1 X) の 10 μ L を減算します。
- 10 μ L の細胞培養媒体にセルを中断します。#セルが中断するセルの数を意味する次の方程式を使用して停止するセルの数を決定する、V最終が作成したゲルのボリューム。
注: 300,000 細胞/ml kECM ゲルで使用されるセルの濃度であります。 - KECM 原液を中和試薬溶液と混合されている後、最終 kECM ゲルに中断細胞液の 10 μ L をピペットします。セルが均等になるまで、microspatula を備えたソリューションをかき混ぜます。
- 10 μ L の細胞培養媒体にセルを中断します。#セルが中断するセルの数を意味する次の方程式を使用して停止するセルの数を決定する、V最終が作成したゲルのボリューム。
- メディア サプリメント (M199) x 10、1 N NaOH で kECM ハイドロゲル原液を混合することによって、ゲルのゲルし、細胞培養媒体。氷の上のすべてのソリューションをしてください。
- 1 mL の注射器を使用して kECM ハイドロゲルに目的のセル培養デバイスを塗りつぶします。
- 転送またはセルをめっきする前に 1 時間 37 ° C に設定するゲルを許可します。
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Representative Results
KECM ハイドロゲルは、ネイティブ腎臓の微小環境と類似の化学構造を持つ腎臓細胞培養のためのマトリックスを提供します。ヒドロゲルを作製するには、腎臓皮質組織は全体腎臓器官とさいの目に切った (図 1) から機械的に分離されます。洗剤粒子 (図 2 a.4 A.6) を除去する水でリンスが続く化学洗剤 (図 2 a.1 A.3) と decellularization は、孤立した腎臓皮質 ECM を得られます。組織学的評価はコラーゲンなど IV 型コラーゲンとラミニンと構造タンパク質など典型的な基底層流蛋白質を確認する-私は保持されます、ビトロネクチン唯一注意例外 (図 2 b)。さらに、ECM で、アイソ フォームの保存を含むタンパク質組成のままネイティブ腎臓 ECM (図 3) 観測値と一致です。ECM (図 4 a) は、機械的に均質化し、凍結乾燥 (図 4 b) は、最終的な kECM ハイドロゲル (図 4) を生成する可溶化します。KECM ハイドロゲル目に見える組織の少量の不透明な登場し、伝統的なコラーゲンとして、粘性ではなかった-私ハイドロゲルです。15 mg/mL の濃度のゲルの kECM のレオロジー測定に約 800 の複素弾性率 (動的弾性率) が明らかにしたひずみの線形範囲にわたって Pa 値、7.5 mg/mL コラーゲンより大幅-私 (p = 1.602E-14)。ひと腎臓精細微小血管内皮細胞 (HKMECs) 培養コラーゲン-I、kECM、および 1:1 の混合物のゲルは CD31 式細胞の表面および接合 (図 5) のまわりで特に表現の違いを示した。コラーゲン上で培養した HKMECs-HKMECs を含む kECM が表示されます 2 つのゲル上で培養された減少不均一な分布の CD31 式制服 CD31 式を表示されます。マトリックス型は高 PV1 に影響を与えると、HKMECs で低 VWF 式に表示されませんでした。
図 1: 腎臓皮質組織の分離します。KECM ハイドロゲル基材として皮質組織を分離する全体腎臓器官の機械的処理をします。機械分離から始まる (A) 腎周囲脂肪組織を除去します。脂肪組織の大部分は、止血クランプで腎臓から引き裂かれることができます。残りの脂肪の部分は、角度で腎被膜に対してメスを実行することによって削除できます。(B) の腎被膜が最高止血クランプで基になる組織から腎被膜を剥離腎臓および (C) の優れた終わりに沿って浅い切開することによって削除されます。(D) 歯冠軸腎臓を二等分された皮質と髄質領域の可視化が可能です。(E) 皮質組織の分離は最高メスと髄質組織の部分を彫りによって行われます。大脳皮質の領域の色の髄質領域に比べて著しく暗いで、使用することができます 2 つの異なる解剖学的組織を区別するため。皮質組織の最終的な処理で (F) は、0.5 cm3個以降 decellularization を支援するために組織をダイシングします。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 2: 皮質組織の Decellularization.310 の視覚的および組織学的特性。さいの目に切った (A.1) Submerging 1 %sds 溶液皮質組織により、細胞と細胞材料の取り外しの溶解します。(A.2) 後、組織が色を失うを開始 1 h、(A.3) 24 h を示す細胞内容物質が削除されています。組織の湯通し (A.4) 120 h で、ECM だけ残ります。(A.6) 120 h (A.5) 24 時間で水とリンスは組織に目に見える変化を示さない。(B) 免疫蛍光染色未処理と脱皮質組織の細胞内容物質を完全に除去し、主要な構造蛋白質の保存の近くを明らかにする (IV 型コラーゲン = コル-IV; ラミニン = ラム; フィブロネクチン = FN; 硫酸プロテオグリカン ヘパリン= HSPG;およびビトロネクチン値 = VN)。スケール = 100 μ m.この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 3: 310 の質量分析します。ECM タンパク質組成を決定する質量分析法による脱皮質組織の分析。すべての比率は、パーセントとして表されます。(A) 構造と基底膜に関連付けられている他の蛋白質と IV 型コラーゲン - 表される最も高度に存在していた。すべての基底膜のユビキタス (B.1) IV 型コラーゲン A1 と A2 チェーンが保存されていた。IV 型コラーゲン A3 と A5 チェーンのみ、糸球体の基底膜に存在も検出されました。Laminins の (B.3) コラーゲン (B.2) 一般的なアイソ フォーム-私も検出されました。この図は、アクセス許可12で再現しました。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 4: kECM ハイドロゲルの作製します。脱皮質組織の機械的および化学的処理中和試薬とゲル化に続く十分な機械的特性を有する流動 kECM ハイドロゲルが得られます。(ECM の可視部分が残っていないまで、A) 脱皮質組織が機械的に組織ホモジナイザーを用いた均質化します。(凍結乾燥下の 3 日後 B) の粗粉もたらされました。(C) シンチレーション バイアルでペプシンと塩酸と化学的消化の溶解は、実行可能な kECM ハイドロゲルで起因しました。ヒドロゲルは不透明と低粘度のだった(次の試薬を中和することでゲル化 kECM ハイドロゲルの D) 物理的な性格描写。30 mm 径の平行平板システムとレオロジー的実験を行った。サンプル エッジは鉱物油で保護され、読み込みプラットフォームは 37 ° C に設定されました。KECM ハイドロゲルは、テスト前に 1 h のゲルを許可されました。ゲルの粘弾性特性は、0.01 〜 20% 間のひずみスイープで測定しました。KECM とコラーゲンの 3 つのサンプル-私がテストした (n = 3)。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
図 5: 細胞の増殖特性。異なる行列上に成長した HKMECs の形態学的差異の性格描写。ヒドロゲルは中和試薬と混合され、open-faced ポリジメチルシロキサン金型で 45 分間 37 ° C に設定。HKMECs ゲルの表面でシード、固定、染色前に 72 時間のための文化を保持します。培養した HKMECs の蛍光画像 (A と D) 7.5 mg/mL コラーゲン ・ ゲルは。(B と E) 7.5 mg/mL kECM ゲル。(C および F) 7.5 mg/mL の 1:1 の混合物のゲル。(A ~ C): 赤 = CD31;緑 = VWF;青 = 核;スケールバー = 50 μ m. (D-F): 赤 = F アクチン;緑 = PV1;青 = 核;スケールバー = 50 μ m。この図は、アクセス許可12で再現しました。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。
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Discussion
マトリックスは、細胞の挙動を支配する重要な機械および化学の手がかりを提供します。合成ハイドロゲルは、複雑な 3 次元パターンをサポートしますが、微小生体マトリックスは、多様な細胞の手がかりを提供するために失敗することができます。ネイティブの ECM から派生したゲルは、体内と体外の研究のための理想的な材料です。以前の研究はホスト免疫応答33,34, 幹細胞35,36,37を区別することを防ぐために合成生体材料をコートに脱 ECM ヒドロゲルを使用しています。,38、2 D とソフト リソグラフィ細胞文化39,40,41,42, および 3 次元印刷43,の bioinks の準備で基板として44,45,46. ECM ヒドロゲルは適切な接着を開始し、さらに増殖・分化2,47を制御するシグナル伝達と細胞を提供します。
比とコラーゲン、laminins、エラスチン、フィブロネクチン、グリコサミノグリカンなど、ECM の主要な成分は、解剖学的位置および組織48,49の機能に大きく依存 50。それは非特異的または非 ECM 由来のゲルを使用してセル21,51,52,53,54から不適切な応答を引き出すため、定着します。腎臓に ECM 組成は解剖学的位置1,2間広く異なります。したがって、皮質、髄質、実験用ゲルを作製する前に乳頭などの領域を区別することが重要です。
ここで作製した kECM マトリックス ネイティブ腎臓皮質 ECM タンパク質比率も生理学的に関連する機械的剛性3、に25,28、ゲル化を可能にしながら decellularization、次を保持します。 29,30。55,56を洗浄し、decellularization をエスケープ ヘパリンへのバインドのための脱皮質組織内微量の血血しょう蛋白質、血清アルブミンが検出されました。ペプシン、腎皮質 ECM に非ネイティブ化学はストックの kECM ソリューションに存在が、だけ最終的なゲル製品の 2.5% (w/v) を占めます。さらに、ペプシンが中和試薬ソリューション57を追加して非アクティブ化します。
KECM ハイドロゲルは、腎皮質細胞を生理学的な条件の下で維持ことができる基質として機能します。この行列が平面の HKMEC 成長をサポートできることを示しました。これらの HKMECs は、機能アッセイ、形質発現と遺伝子発現58を通じて決定される静止の生理学的状態を維持しました。対照的に、これらの細胞は活性化になったときコラーゲン-1:1 の比率59kECM ハイドロゲル腎線維症と相関行列の成分はされました。ひと臍帯静脈内皮細胞がコラーゲンで培養した場合を比較すると、-、私たちは、静止となった kECM が12を活性化と混合すると。したがって、コラーゲン-私は臍帯内基底膜組成の不可欠なコンポーネントであると知られている、子癇前症38,60など病理学的状態の下で低下しました。これらの結果は、細胞を活動の静穏化と ECM 環境の操作が恒常性に与える影響を維持する組織特異的な合図を提供する重要性を強調します。
記載の手順のすべての手順が重要であるに対しいくつかの手順が作製したハイドロゲルの生存を確保するために重要です。脱皮質組織の均質化の度合いは、技術や使用機器によって異なります。組織を均質化、最高技術を見つけることが重要です。可溶化、中に pH は、3 - 4、ペプシンがアクティブなことを確認するべき。ヒドロゲル混合試薬を中和、徹底的に、気泡の導入なしにゲルを混在させる必要があります。均一混合物の入手が困難な場合は、ニュートラルを確認してゲル溶液の pH を確認してください。
代表的な結果は、この方法で提示は、腎臓細胞の生体外で研究の生理学的関係行列を実現する方法を示しています。脱腎臓皮質 ECM は、最終的なハイドロゲル製品報3,25で ECM タンパク質比を保存として腎臓由来細胞の成長をサポートするための理想的なベース材料を提供します。ゲル化製品は、生理学的に関連する機械的性質28,29,30を実現できます。KECM ハイドロゲル適切な細胞マトリックスの相互作用を可能にしコラーゲンより腎臓の細胞から大きい生理学的な行動を引き出すために示されている-平面サーフェス上で培養したとき。さらに、もっと生理学的に関連する 3 次元環境をモデル化するゲル化する前に腎臓固有の細胞のヒドロゲルをシードできます。KECM ゲルの合成も簡単に操作できます。たとえば、コラーゲンの変化量と、ハイドロゲルを混合-ゲル化する前に私は腎線維化31,32の進行状態を模した行列を作り出すことができます。知られている病気にかかった ECM 組成を模倣するこの ECM 由来のハイドロゲルの可変性はさらに調査を保証し、腎臓病の今後の研究が有効になります。
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Disclosures
著者が明らかに何もありません。
Acknowledgments
著者は、リンと幹細胞と再生医療 LifeCenter 北西の研究所のマイク ガービー イメージング研究室を確認したいと思います。彼らはまたへ北西腎臓の中心から制限されていないギフトと NIH T32 のトレーニングの許可 DK0007467 (R.J.N.) に DP2DK102258 (Y.Z.) に UH2/UH3 TR000504 (公団) に国立衛生研究所の助成金の助成を受けたい、腎臓研究所
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Preparation of Kidney Tissue | |||
| 5000 mL Beaker | Sigma-Aldrich | Z740589 | |
| Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) | Sigma-Aldrich | 436143 | |
| Sterile H2O | Autoclaved DI H2O | ||
| Stir Bar (70 x 10 mm) | Fisher Science | 14-512-128 | |
| 500 mL Vacuum Filter | VWR | 97066-202 | |
| Stir Plate | Sigma-Aldrich | CLS6795420D | |
| 1000 mL Beaker | Sigma-Aldrich | CLS10031L | |
| Forceps | Sigma-Aldrich | F4642 | Any similar forceps may be used |
| Scissor-Handle Hemostat Clamp | Sigma-Aldrich | Z168866 | |
| Dissecting Scissors | Sigma-Aldrich | Z265977 | |
| Scalpel Handle, No. 4 | VWR | 25859-000 | Any similar scalpel handle may be used |
| Scalpel Blade, No. 20 | VWR | 25860-020 | Any similar scalpel blade may be used |
| Stir Bar (38.1 x 9.5 mm) | Fisher Science | 14-513-52 | |
| Absorbent Underpad | VWR | 82020-845 | |
| Petri Dish (150 x 25 mm) | Corning | 430597 | |
| Autoclavable Biohazard Bag | VWR | 14220-026 | |
| Sterile Cell Strainer (40 um) | Fisher Science | 22-363-547 | |
| Cell Culture Grade Water | HyClone | SH30529.03 | |
| 30 mL Freestanding Tube | VWR | 89012-778 | |
| Fabrication of ECM Gel | |||
| Tissue Homogenizer Machine | Polytron | PCU-20110 | |
| Freeze Dryer | Labconco | 7670520 | |
| 20 mL Glass Scintillation Vials and Cap | Sigma-Aldrich | V7130 | |
| Stir Bar (15.9 x 8 mm) | Fisher Science | 14-513-62 | |
| Pepsin from Porcine Gastric Mucosa | Sigma-Aldrich | P7012 | |
| 0.01 N HCl | Sigma-Aldrich | 320331 | Dilute to 0.01 N HCl with cell culuture water |
| Kidney ECM Gelation | |||
| 1 N NaOH (Sterile) | Sigma-Aldrich | 415413 | Dilute to 1 N in cell culture grade water |
| Medium 199 | Sigma-Aldrich | M4530 | |
| 15 mL Conical Tube | ThermoFisher | 339651 | |
| Cell Culture Media | ThermoFisher | 11330.032 | Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12 (DMEM/F12) |
| Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco | 10082147 | |
| Antibiotic-Antimycotic 100X | Life Technologies | 15240-062 | |
| Insulin, Transferrin, Selenium, Sodium Pyruvate Solution (ITS-A) 100X | Life Technologies | 51300-044 | |
| 1 mL Syringe | Sigma-Aldrich | Z192325 | |
| Microspatula | Sigma-Aldrich | Z193208 |
References
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