Summary
مراقبة الضغط داخل الجمجمة في نماذج القوارض من النزف داخل البطيني غير الرضحي ليست شائعة في الأدبيات الحالية. هنا ، نوضح تقنية لقياس الضغط داخل الجمجمة ، ومتوسط الضغط الشرياني ، وضغط التروية الدماغية أثناء النزف داخل البطيني في نموذج الفئران.
Abstract
غالبا ما يترك الناجون من النزف داخل البطيني مع ضعف كبير في الذاكرة على المدى الطويل. وبالتالي ، فإن البحث باستخدام نماذج حيوانية للنزيف داخل البطيني أمر ضروري. في هذه الدراسة ، بحثنا عن طرق لقياس الضغط داخل الجمجمة ، ومتوسط الضغط الشرياني ، وضغط التروية الدماغية أثناء النزف داخل البطيني غير الرضحي في الفئران. تضمن التصميم التجريبي ثلاث مجموعات Sprague Dawley: الوهمية ، والنزف القياسي داخل البطيني 200 ميكرولتر ، ومجموعات التحكم في المركبات. من خلال إدخال مستشعر ضغط الألياف البصرية داخل متني ، تم الحصول على قياسات دقيقة للضغط داخل الجمجمة في جميع المجموعات. تم حساب ضغوط التروية الدماغية بمعرفة الضغط داخل الجمجمة ومتوسط قيم الضغط الشرياني. كما هو متوقع ، شهدت كل من مجموعات النزف داخل البطيني والتحكم في المركبات ارتفاعا في الضغط داخل الجمجمة وانخفاضا لاحقا في ضغط التروية الدماغية أثناء الحقن داخل البطيني للدم الذاتي والسائل الدماغي الشوكي الاصطناعي ، على التوالي. تعد إضافة مستشعر ضغط الألياف الضوئية داخل المتني مفيدة في مراقبة التغيرات الدقيقة في الضغط داخل الجمجمة.
Introduction
النزف داخل البطيني (IVH) ، وهو نوع من النزف داخل الجمجمة (ICH) ، هو مرض مدمر يحمل وفيات ومراضة كبيرة. يتميز IVH بأنه تراكم منتجات الدم داخل البطينين داخل الجمجمة. IVH معزول في غير شائع ويحدث عادة في البالغين1. قد يترافق مع نزيف ارتفاع ضغط الدم أو تمدد الأوعية الدموية داخل الجمجمة أو تشوه آخر في الأوعية الدموية أو أورام أو صدمة1. IVH يؤدي إلى إصابة دماغية ثانوية وكذلك تطور استسقاء الرأس2. غالبا ما يترك الناجون من IVH مع إعاقات وظيفية وذاكرة وإدراكية كبيرة بعد إصابتهم. تم الإبلاغ عن هذا العجز المعرفي والذاكرة على المدى الطويل بنسبة تصل إلى 44٪ من الناجين من ICH3. في النزف تحت العنكبوتية (SAH) ، وهو نوع آخر من التراث الثقافي غير المادي ، من المعروف أن ما يقرب من نصف الناجين سيعانون من عجز في الذاكرة ، وبالنسبة لأولئك الذين لديهم IVH بالإضافة إلى SAH ، تميل النتائج إلى أن تكون أسوأ بكثير4،5،6.
لا يزال يتعين توضيح الآليات الأساسية لضعف الذاكرة بعد IVH. يعد البحث في الجسم الحي باستخدام نماذج حيوانية IVH غير مؤلمة مع خلل وظيفي وذاكرة أمرا ضروريا لاكتشاف الأهداف العلاجية المحتملة لمثل هؤلاء المرضى. النماذج الحيوانية ذات الذاكرة الأكثر حدة والخلل الوظيفي بعد IVH ستكون الأفضل لدراسة هذه التغييرات. كما قام مختبر المؤلف الرئيسي بالتحقيق على وجه التحديد في دور الضغط العالي داخل الجمجمة (ICP) في تطوير عجز الذاكرة في نماذج الفئران IVH. ومن ثم ، كانت طرق قياس ICPs بدقة خلال IVH مهمة للتحقيق. هنا ، نقدم تقريرا عن طرق قياس ICPs بدقة في نموذج الفئران IVH. على الرغم من أن رصد برنامج المقارنات الدولية قد استخدم سابقا في ICH الرضحي وكذلك النماذج الحيوانية النزفية تحت العنكبوتية ، إلا أن مراقبة برنامج المقارنات الدولية في نماذج القوارض IVH العفوية لم يتم الإبلاغ عنها بشكل شائع في الأدبيات 7,8. ومن ثم ، تضمن التصميم التجريبي المقدم هنا ثلاث مجموعات من فئران Sprague Dawley: الوهمية ، والنزف القياسي داخل البطيني 200 ميكرولتر ، والتحكم في السيارة. بالنسبة لمجموعة IVH ، تم استخدام نموذج حقن الدم داخل البطينات الذاتية. بالنسبة لحيوانات التحكم في المركبات ، تم استخدام الحقن داخل البطيني لمحلول Lactated Ringer المعقم. تم تسجيل ICPs ومتوسط الضغوط الشريانية (MAPs) وضغوط التروية الدماغية (CPPs) أثناء الجراحة ، وتم الإبلاغ عن النتائج هنا.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
تم إجراء جميع طرق البحث ورعاية / صيانة الحيوانات وفقا للمبادئ التوجيهية المؤسسية في جامعة كاليفورنيا ، ديفيس. وافقت اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوانات (IACUC) بجامعة كاليفورنيا ، ديفيس ، على جميع بروتوكولات استخدام الحيوانات والإجراءات التجريبية (بروتوكول IACUC # 21874).
1. إسكان الحيوانات
- الحصول على الفئران Sprague-Dawley من سن 8-10 أشهر. قبل أي إجراء تجريبي ، قم بإيواء الفئران في حظيرة والسماح لمدة أسبوع واحد على الأقل للتكيف العام في أقفاصها بعد دورة ضوء / مظلمة مدتها 12 ساعة مع الطعام والماء حسب الطلب.
2. التخدير وإجراءات ما قبل الجراحة
- تخدير الجرذ بنسبة 4٪ إيزوفلوران لمدة 4 دقائق. الجرذ من أسنانه في وضع ضعيف على منصة التنبيب ، وقم بالتنبيب داخل القصبة الهوائية باستخدام قنية القصبة الهوائية ومنظار الحنجرة.
- ضع الجرذ المخدر والمتنبب على جهاز التنفس الصناعي (2٪ إيزوفلوران وغاز حامل O2 / N2). يتم تخدير الفئران بشكل كاف إذا لم يلاحظ أي استجابة لمحفز مؤلم مثل قرصة عائق.
- أدخل مقياس حرارة المستقيم لمراقبة درجة الحرارة باستمرار.
- تنفيذ جميع الإجراءات الجراحية باستخدام تقنية معقمة. قص الشعر على الرأس ومنطقة الفخذ وتحضير الجلد بثلاثة مقشرات متناوبة من Betadine و 70٪ كحول قبل الجراحة.
- استنشاق أي إفرازات تنفسية متراكمة عن طريق إزالة الفئران مؤقتا من جهاز التنفس الصناعي واستنشاق الإفرازات باستخدام أنبوب PE-50 المتصل بحقنة سعة 10 مل.
- حماية عيون الفئران مع مرهم العين الدموع الاصطناعية المعقمة.
- حقن بوبيفاكايين المحلي (~ 0.1 مل من محلول 0.25٪) في الجلد والأنسجة تحت الجلد قبل شق فروة الرأس.
3. بروتوكول الجراحة
- وضع إبرة داخل البطينات ومراقبة الضغط داخل الجمجمة (ICP)
- ضع الجرذ في وضعية الانبطاح في إطار تجسيمي وشريط الأذن الفأر.
- قم بعمل شق فروة رأس 1.5 سم على طول خط الوسط باستخدام مشرط مكون من 15 شفرة.
- تطبيق ضغط خفيف مع الشاش للإرقاء.
- باستخدام قضيب طرف قطني معقم ، افصل السمحاق عن الجمجمة حتى يصبح معلم bregma مرئيا.
- حدد موقع bregma وقم بتمييزه باستخدام stereotaxis وحدد موقع فتحتين ثنائيتين ، 1.4 مم جانبية و 0.9 مم خلفية للبريغما.
- باستخدام مثقاب محمول باليد ، قم بإنشاء هذين الثقبين الصغيرين (حتى 2 مم) في نصفي الكرة الأيمن والأيسر. قم بري أي رقائق عظمية زائدة بمحلول Lactated Ringer المعقم.
- في نصف الكرة الأيمن ، ضع قنية توجيه 22-G على مستوى ثقب الأزيز لإدخال إبرة 28-G عبر القنية إلى عمق البطين الجانبي الأيمن (4.6 مم بالنسبة إلى bregma) من أجل إنشاء IVH.
- قم بتوصيل مستشعر ضغط الألياف الضوئية بوحدة القراءة. قم بتشغيل وحدة القراءة وتأكد من أن الوحدات المحددة بالمم زئبق. ثم قم بتجهيز المستشعر عن طريق غمر طرفه في دورق صغير بمحلول Lactated Ringer حتى تقرأ وحدة القراءة الصفر. بمجرد أن يتم تصفيره في محلول Lactated Ringers ، يتم ضبطه بالكامل ليتم إدخاله.
- في نصف الكرة الأيسر ، أدخل مستشعر الضغط برفق على عمق 2-3 مم في القشرة لمراقبة برنامج المقارنات الدولية في الوقت الفعلي.
- قنية الشريان الفخذي وإدخال جهاز مراقبة الضغط الشرياني المتوسط (MAP)
- بعد إدخال جهاز مراقبة برنامج المقارنات الدولية ، أدر الجذع السفلي للفأر لسهولة الوصول إلى منطقة الفخذ والفخذ الأيسر.
- بعد التحضير المعقم وإدارة البوبيفاكايين المحلي ، قم بعمل شق جلدي 1.5 سم فوق الطرف الخلفي بمشرط ذو 15 شفرة.
- تشريح الشريان الفخذي الأيسر أولا بشكل سطحي باستخدام مرقئ ثم طبقات أعمق باستخدام ملقط مع أطراف دقيقة تحت المجهر. حدد الوريد الفخذي الأزرق العميق للمساعدة في تحديد موقع الشريان المجاور.
- اربط الشريان الفخذي البعيد باستخدام خياطة حريرية 3-0 وضع مشبكا معدنيا مؤقتا على الجزء القريب من الشريان الفخذي.
- قم بتوصيل مستشعر ضغط ألياف ضوئية ثان بوحدة القراءة المعدة بالفعل. أدخل مستشعر الضغط في أنبوب البولي إيثيلين (PE-50) ، والذي يتم إدخاله في Tuohy Borst الذي يتم إغلاقه بعد ذلك. قم بتوصيل Tuohy Borst بمحبس ثلاثي الاتجاهات متصل بحقنة سعة 1 مل في أحد طرفيه وإبرة 22-G مع أنبوب PE-50 في الطرف الآخر.
- تحت المجهر ، قم بعمل بضع الشريان الفخذي 2 مم باستخدام مقص دقيق وقم بتثبيته باستخدام أنبوب PE-50 متصل ببقية الإعداد.
- الحقن داخل البطيني
- قم بشفط 500 ميكرولتر من الدم باستخدام حقنة سعة 1 مل وقم بتدوير محبس ثلاثي الاتجاهات لجعل مستشعر الضغط يقرأ MAP.
- قم بتجهيز الإبرة داخل البطينية 28-G المتصلة بأنابيب PE-50 بالدم المستنشق لحيوانات IVH و Lactated Ringer لحيوانات التحكم في السيارة. ثم أدخل هذه الإبرة في قنية التوجيه إلى عمق البطين الجانبي الأيمن.
- باستخدام معدل 100 ميكرولتر / دقيقة ، قم بحقن الدم أو محلول رينغر المعقم (200 ميكرولتر) في البطين الجانبي الأيمن عن طريق ضخ حقنة 1 مل بالإبهام. قبل ذلك وأثناء الحقن داخل البطيني ، يجب مراقبة وتسجيل برنامج المقارنات الدولية وضغط الدم الشرياني ودرجة حرارة المستقيم.
- مراقبة وتسجيل قيم ICP و MAP بعد الحقن.
- اغلاق
- بعد الانتهاء من الحقن داخل البطينات ، اسحب أنبوب PE-50 الذي يحتوي على مستشعر الضغط الذي تم إدخاله في الشريان الفخذي وقم بتطبيق المشبك المؤقت على الشريان الفخذي لمنع النزيف.
- اربط الجزء القريب من الشريان الفخذي باستخدام خياطة الحرير 3-0.
- أغلق شق الفخذ بطريقة متقطعة باستخدام 3-0 حرير.
- قم بإزالة قنية التوجيه باستخدام الإبرة داخل البطينية وجهاز مراقبة برنامج المقارنات الدولية.
- أغلق ثقوب الأزيز بشمع العظام.
- أغلق شق الجمجمة بخياطة حريرية 3-0 بطريقة متقطعة.
- ضع بوبيفاكايين الموضعي على الشق وحقن 0.35 مل من كاربروفين (5 مجم / كجم) بعد الجراحة. لا تترك الحيوانات دون مراقبة حتى تستعيد وعيها الكافي للحفاظ على راقد القص.
- السماح للفئران بالتعافي التام بعد الجراحة تحت الإشراف وإعادتها إلى أقفاصها المنزلية مع حرية الوصول إلى الطعام والماء بعد الشفاء.
4. إدارة ما بعد الجراحة
- افحص جميع الحيوانات بعد الجراحة يوميا لمدة سبعة أيام بعد الجراحة لمراقبة تعافيها وحالتها العصبية وسلوكها ووزنها وشقوقها.
- يتم تطبيق 0.35 مل من كاربروفين (5 ملغ/ كغ) عن طريق الحقن تحت الجلد في وقت الجراحة وفي الأيام1 و 2 بعد الجراحة.
- إزالة الغرز في يوم 7عشر بعد الجراحة بطريقة معقمة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
ضغوط التروية داخل الجمجمة والمتوسط الشرياني والدماغي
تم رصد كل من ICPs و MAPs أثناء الجراحة في جميع الحيوانات (الشكل 1). كانت الفئران من 8-10 أشهر بمتوسط وزن 495 ± 17 جم. كما تم جمع الرسوم البيانية لبرنامج المقارنات الدولية في الوقت الحقيقي (الشكل 2). باستثناء المجموعة الوهمية ، زادت ICPs بشكل ملحوظ أثناء الحقن داخل البطيني في IVH وكذلك مجموعات التحكم في المركبات (الشكل 3). بلغت ICPs ذروتها أكثر في مجموعة IVH (43 مم زئبق) مقارنة بالتحكم في السيارة (36.5 مم زئبق). ثم انخفضت ICPs بسرعة وتطبيع في غضون خمس دقائق بعد الحقن داخل البطيني في تلك المجموعات الحيوانية. تم استخدام مستشعر الألياف الضوئية بنجاح لمراقبة ICPs و MAPs في الوقت الفعلي. وقد لوحظ أن MAPs ظلت متشابهة طوال الإجراء ، في حين انخفضت CPPs أثناء الحقن داخل البطيني إما في الدم أو محلول Lactated Ringer (الشكل 3).
الشكل 1: الإعداد التجريبي . (أ) موقع الثقوب ذات النتوءات. (ب) تصوير الإعداد التجريبي بأكمله. الاختصارات: A-P ، المحور الأمامي إلى الخلفي ؛ M-L ، المحور الإنسي إلى الجانبي. الرجاء الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
الشكل 2: تسجيلات برنامج المقارنات الدولية. تسجيلات الضغط داخل الجمجمة (ICP) في الوقت الفعلي في (A) وهمية ، (B) IVH ، و (C) التحكم في المركبات. يشير السهم إلى بداية حقن IVH / LR. N = 1 في كل مجموعة. الرجاء الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
الشكل 3: الرسوم البيانية لبرنامج المقارنات الدولية وخطة عمل البحر الأبيض المتوسط وCPP. (أ) متوسط الضغط داخل الجمجمة (ICP) ، (ب) متوسط الضغط الشرياني (MAP) ، و (ج) متوسط ضغط التروية الدماغية (CPP) قيم ما قبل حقن البطين ، أثناء حقن البطين ، وحقن البطين اللاحق في IVH التحكم في المركبات. N = 1 في كل مجموعة. الرجاء الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
بحثت هذه الدراسة في آليات قياس ICPs و MAPs و CPPs في نموذج حيواني لفئران IVH غير الصدمة. تم تسجيل النتائج من المجموعات التالية: الوهمية ، VH 200 μL ، والتحكم في المركبات (حقن السائل الدماغي الشوكي الاصطناعي داخل البطيني). تم اختيار هذا التصميم التجريبي للتحقيق في كيفية مراقبة ICPs أثناء حقن IVH حيث افترضنا أن الارتفاع في ICPs قد يساهم في إصابة الدماغ الثانوية الأكثر أهمية وبالتالي عجز الذاكرة في النماذج الحيوانية IVH. لذلك ، كانت أهداف هذه الدراسة هي إنشاء نموذج حيواني IVH مع مراقبة موضوعية ل ICPs و MAPs و CPPs بعد IVH غير الرضحي حتى نتمكن من تطبيق ذلك بشكل أكبر في التجارب المستقبلية التي ستركز على تأثيرات ICPs التي يسببها IVH على ضعف الذاكرة اللاحق. وجدت هذه الدراسة التجريبية أنه يمكن مراقبة ICPs و MAPs بدقة باستخدام مستشعر ضغط الألياف الضوئية الذي يتم إدخاله في البطين الجانبي الأيسر والشريان الفخذي ، على التوالي. يزيد برنامج المقارنات الدولية بشكل ملحوظ أثناء الحقن داخل البطيني للدم والسائل النخاعي الاصطناعي. بالإضافة إلى ذلك ، تنخفض CPPs المقابلة أثناء الحقن داخل البطيني.
كان أحد الشواغل الرئيسية لهذه الدراسة هو إيجاد طريقة لرصد وتسجيل التغيرات الصغيرة جدا في الضغوط (ICPs و MAPs) بدقة. تم ذلك باستخدام مستشعر ضغط الألياف الضوئية. يجب أن يكون مستشعر الألياف الضوئية صغيرا لقياس الحد الأدنى من التغييرات في الضغط بدقة. يتم عزل مستشعر الألياف الضوئية الذي تم استخدامه في غلاف كابل لحمايته. يبلغ القطر الخارجي للغمد 0.9 مم ، وقطر طرف المستشعر نفسه 420 ميكرومتر. لقد تأكدنا من أن قيم برنامج المقارنات الدولية للفئران و MAP يمكن أن تقع في نطاق التشغيل العادي لضغوط هذا المستشعر (-50 مم زئبق إلى +300 مم زئبق). أيضا ، تم ضمان دقة مستشعر الألياف الضوئية لتكون صغيرة ، ±1 مم زئبق (حلول Opsens).
تستخدم غالبية نماذج ICH الحالية قبل السريرية في هذا الوقت القوارض مع ضخ الدم الكامل وكولاجيناز (حقن إنزيم كولاجيناز من أجل إصابة المصفوفة خارج الخلية الناتجة عن IVH) كتصميمين تجريبيين شائعين 9,10. يتضمن نموذج ضخ الدم بالكامل ضخ الدم عن طريق حج القحف أو ثقب الأزيز وقد تم الإبلاغ عنه ليس فقط في الفئران ولكن أيضا في الخنازير وأنواع الرئيسيات. ومع ذلك ، لا يوجد نموذج حيواني مثالي ، ولكل منها مزاياه وعيوبه 9,10. فيما يتعلق بالنتائج ، يعد السلوك والوذمة الدماغية وموت الخلايا وحجم الورم الدموي من أكثر نقاط النهاية شيوعا التي تم اختبارها في دراسات التراث الثقافي غير المادي. من بين الاختبارات السلوكية التي تقيم الخلل المعرفي والذاكرة ، تستخدم الغالبية اختبار متاهة موريسالمائية 10. لم نعثر على دراسات تقيس بشكل موضوعي ICPs في نماذج الفئران غير الرضحية IVH.
وجدت مراجعة حديثة أجراها MacLellan et al. العديد من المشكلات الرئيسية في أدبيات التراث الثقافي غير الماديقبل السريرية 9. وجد MacLellan et al. أن الغالبية العظمى من الدراسات تبلغ فقط عن آثار العلاج الإيجابية. يتم نشر العديد من الدراسات ذات النتائج السلبية في المجلات ذات المستوى الأدنى أو لا يتم نشرها على الإطلاق ، مما يساهم في عدم تحيز النشر الضئيل. ووجدوا أيضا أن العديد من الدراسات لا تصف منهجية مثل التوزيع العشوائي وعمر وجنس الحيوانات ، من بين أمور أخرى. عدم التعمية ، وعدم الإبلاغ عن المتغيرات الفسيولوجية وكذلك القوة الإحصائية هي نقاط ضعف إضافية لوحظت في تلك المراجعة. كل هذا يجعل الأمر صعبا بالنسبة للآخرين الذين يحاولون تكرار التجربة10. بالإضافة إلى ذلك ، أظهرت بعض الدراسات ، مثل Hatman et al. ، أن عجز التعلم والذاكرة يميل إلى أن يكون حادا ويتضاءل في وقت مبكر من 8 أسابيع بعد ICH التجريبي في النماذج الحيوانية11. ومن ثم، فإن تأثيرات الذاكرة قصيرة المدى هذه في النماذج الحيوانية قد لا تعكس بدقة الذاكرة طويلة المدى والخلل المعرفي الذي يحدث بعد التراث الثقافي غير المادي في البشر.
هذه الدراسة لا تخلو من القيود. القيد الرئيسي هو انخفاض خشب الحيوانات. كانت هذه دراسة تجريبية ، وستحتوي الدراسات المستقبلية على الحيوانات على عدد أكبر من الحيوانات لترسيخ النتائج التي لوحظت هنا. هناك قيد آخر لهذه الدراسة وهو عدم القدرة على مراقبة MAPs بشكل كاف طوال مدة الجراحة بأكملها حيث يتجلط كل من الشريان الفخذي ونظام Tuohy Borst بسهولة على الرغم من استخدام محلول ملحي منخفض الهيبارين لطرد الأنبوب.
في الختام ، نقدم هنا تقريرا عن طرق المراقبة الدقيقة ل ICPs و MAPs و CPPs في نموذج فأر IVH غير صادم. ستمهد مثل هذه الدراسات الطريق نحو إنشاء نموذج حيواني IVH أكثر اتساقا وبالتالي إجراء أبحاث أكثر صرامة قبل السريرية. تعد الأبحاث قبل السريرية عالية الجودة على النماذج الحيوانية غير المؤلمة IVH أمرا بالغ الأهمية لتوضيح الخيارات العلاجية المحتملة للناجين من IVH في المستقبل.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
لم يبلغ جميع المؤلفين عن أي تضارب في المصالح.
Acknowledgments
تم تمويل هذا العمل من خلال منحة NINDS: K08NS105914
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.25% bupivacaine | Hospira, Inc. | 409115901 | |
| 1 mL syringe | Covetrus | 60734 | |
| 10% providine iodine solution | Aplicare | MSD093947 | |
| 20 mL syringe | Covidien | 8881520657 | |
| 22 G needles | Becton Dickinson | 305155 | |
| 28 G intraventricular needles | P technologies | 8IC313ISPCXC | C313I/SPC 28-Gneedles to fit 22-G guide cannula with 6 mm projection |
| 3-0 silk suture | Henry Schein, Inc. | SP116 | |
| 3-way-stopcock | Merti Medical Systems | M3SNC | |
| 4% paraformaldehyde | Fisher Chemical | 30525-89-4 | |
| AnyMaze software | Any-Maze behavioral tracking software | Stoelting CO, USA | |
| Artificial ointment | Covetrus | 48272 | |
| Blood collection vials with EDTA | Becton Dickinson | 367856 | |
| Bone wax | CP Medical, Inc. | CPB31A | |
| Carprofen | Zoetis, Inc. | 54771-8507-1 | |
| Centrifuge | Beckman | BE-GS6R | Model GS-6R |
| Cotton tip applicators | Covetrus | 71214 | |
| Drill | Dremel | 1600A011JA | |
| Fiberoptic pressure sensors with readout units | Opsens Medical | OPP-M200-X-80SC- 2.0PTFE-XN-100PIT-P1 and LIS-P1-N-62SC | Opp-M200 packaged pressure sensors with LifeSens system |
| Forceps | 11923-13, 11064-07 | ||
| Gauze | Covetrus | 71043 | |
| Guillotine | World Precision Instruments | 51330 | |
| Heating pad with rectal thermometer | CWE, Inc. | 08-13000 ,08-13014 | TC1000 Temperature controller |
| Hemostats | 13013-14, 13008-12 | ||
| Isoflurane | Covetrus | 29405 | |
| Lactated ringers | Baxter Healthcare Corp. | Y345583 | |
| Laryngoscope | American Diagnostic Corporation | 4080 | |
| Metal clip | Fine Scientic Tools | 18056-14 | |
| Micro scissors | Fine Scientic Tools | 15007-08 | |
| Microscope | Leica | model L2 | |
| Needle driver | 12003-15 | ||
| Polyethylene tubing | Thermo Fisher Scientific | 14-170-12B | PE-50 tubing |
| Rats | Envigo | Sprague Dawley rats 8–10 months old | |
| Scalpel | 10010-00 | ||
| Scissors | 14090-11 | ||
| Stereotaxic instrument | Kopf instruments | Model 940 with ear bars | |
| Syringe pump | KD Scientific | 780100 | Model 100 series |
| Tuohy Borst | Abbott | 23242 | |
| Ventilator | Harvard rodent ventilator | 55-0000 | Model 683 |
References
- Gates, P. C., Barnett, H. J. M., Vinters, H. V., Simonsen, R. L., Siu, K.
- Strajle, J., Garton, H. J. L., Maher, C. O., Muraszko, K., Keep, R. F., Xi, G. Mechanisms of hydrocephalus after neonatal and adult intraventricular hemorrhage. Translational Stroke Research. 3, Suppl 1 25-38 (2012).
- Murao, K., Rossi, C., Cordonnier, C. Intracerebral hemorrhage and cognitive decline. Revue Neurologique. 169, 772-778 (2013).
- Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Stroke. 41, 519-536 (2010).
- Kreiter, K. T., et al. Predictors of cognitive dysfunction after subarachnoid hemorrhage. Stroke. 33, 200-208 (2002).
- Zanaty, M., et al. Intraventricular extension of an aneurysmal subarachnoid hemorrhage is an independent predictor of a worse functional outcome. Clinical Neurology and Neurosurgery. 170, 67-72 (2018).
- Gabrielian, L., Willshire, L. W., Helps, S. C., vanden Heuvel, C., Mathias, J., Vink, R. Intracranial pressure changes following traumatic brain injury in rats: lack of significant change in the absence of mass lesions or hypoxia. Journal of Neurotrauma. 28, 2103-2111 (2011).
- Kolar, M., Nohejlova, K., Duska, F., Mares, J., Pachl, J. Changes of cortical perfusion in the early phase of subarachnoid bleeding in a rat model and the role of intracranial hypertension. Physiological Research. 66, 545-551 (2017).
- Ariesen, M. J., Claus, S. P., Rinkel, G. J. E., Algra, A. Risk factors for intracerebral hemorrhage in the general population. A systematic review. Stroke. 34, 2060-2066 (2003).
- MacLellan, C. L., Paquette, R., Colbourne, F. A critical appraisal of experimental intracerebral hemorrhage research. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 32, 612-627 (2012).
- Hartman, R., Lekic, T., Rojas, H., Tang, J., Zhang, J. H. Assessing functional outcomes following intracerebral hemorrhage in rats. Brain Research. 1280, 148-157 (2009).
