-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

FR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

French

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Biology
Dosage de la réponse optocinétique : une méthode pour mesurer l’acuité visuelle chez le poisson-z...
Dosage de la réponse optocinétique : une méthode pour mesurer l’acuité visuelle chez le poisson-z...
Encyclopedia of Experiments
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Biology
Optokinetic Response Assay: A Method to Measure Visual Acuity in Zebrafish

Dosage de la réponse optocinétique : une méthode pour mesurer l’acuité visuelle chez le poisson-zèbre

Protocol
3,308 Views
04:02 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

- Fixez un poisson anesthésié sur une plate-forme avec ses yeux et ses branchies s'étendant au-delà du bord de la plate-forme. Placez le poisson à la verticale dans un cylindre rempli d’eau à l’intérieur d’un tambour bien éclairé qui peut tourner librement. Une fois que le poisson revit, indiqué par le mouvement des branchies et des yeux, placez une grille ou un motif de rayures verticales blanches et noires alternées dans le tambour. Placez maintenant un occluseur noir solide sur les rayures dans le champ de vision de l’œil gauche.

Commencez la rotation et enregistrez la réponse optocinétique, OKR, pour l’œil droit. L’OKR consiste en des mouvements oculaires réflexes en réponse à un stimulus visuel. Remplacez le motif par des bandes noires et blanches de plus en plus petites jusqu’à ce que le mouvement des yeux ne soit plus observé. Effectuez la même procédure pour l’œil gauche.

Pour calculer l’acuité visuelle monoculaire, la capacité de distinguer les détails fins, mesurer la distance entre le centre du cristallin de l’œil et le motif et la longueur du plus petit motif d’une paire de bandes blanches et noires sur lesquelles un mouvement oculaire a été observé. Dans l’exemple de protocole, nous utiliserons la réponse optocinétique pour mesurer l’acuité visuelle monoculaire et binoculaire chez le poisson-zèbre adulte.

- Les études optocinétiques sont réalisées à l’aide d’un appareil d’enregistrement sur mesure à l’aide d’un tambour rotatif de 14,5 centimètres de diamètre, d’un stéréomicroscope avec des réglages d’intensité lumineuse réglables, d’un ordinateur et d’une caméra pour la capture d’images et l’enregistrement. Un microcontrôleur commandé par ordinateur est utilisé pour régler la vitesse de rotation du tambour et les directions de rotation. À l’aide de poissons maintenus dans des conditions standard, commencez une analyse en anesthésiant un poisson dans de la tricaïne à 0,016 % pendant deux à trois minutes, puis en le plaçant sur une petite plate-forme avec les yeux et les branchies suspendus sur le bord.

Pour garder le poisson immobilisé tout en évitant de se blesser, placez une éponge fine ou une serviette sur le corps du poisson et épinglez deux à trois morceaux de mousse sur le poisson, en veillant à ce que le mouvement de la queue soit limité. Placez le poisson dans un réservoir cylindrique rempli d’eau qui s’insère dans le tambour rotatif de l’appareil d’enregistrement OKR. Utilisez des aimants sur la plate-forme pour positionner le poisson à la verticale avec les yeux à environ 7,3 centimètres du bord du tambour.

Une fois que le poisson se ranime de l’anesthésie, et qu’une respiration normale et des mouvements oculaires aléatoires sont observés, placez une grille de base de 0,07 cycle par degré, ou CPD, dans le tambour rotatif et engagez les commandes de l’ordinateur pour commencer la rotation et la capture vidéo. Une fois qu’un OKR initial est provoqué par le réseau de base, interrompez brièvement la rotation et remplacez le réseau par un réseau plus petit avec une fréquence spatiale plus élevée. Répétez ce processus avec des réseaux séquentiellement plus petits jusqu’à ce qu’il ne soit plus possible d’obtenir un OKR. Pour vérifier la perte d’OKR, en suivant une approche en escalier modifiée, effectuez un nouveau test avec le plus petit réseau qui a provoqué un OKR, puis avec le réseau qui n’a pas réussi à susciter une réponse pour vérifier la perte de l’OKR.

Pour obtenir des mesures d’acuité monoculaire, placez un occluseur en plastique noir sur les bandes adjacentes à l’œil opposé et répétez le processus de collecte de données. Passez ensuite à l’autre œil en repositionnant l’occluseur et en prenant des mesures. Utilisez la bande de mesure de référence sous l’aquarium pour noter la distance de chaque œil par rapport à la bande afin d’effectuer des mesures d’acuité précises.

Pour déterminer l’acuité visuelle, calculez la DPC à l’aide de la formule suivante, où a est la distance entre le centre de la lentille et le réseau, et h est la durée d’un cycle du plus petit réseau auquel l’OKR a été observé. Pour les mesures combinées de l’acuité visuelle, utilisez une valeur moyenne calculée à partir de l’œil gauche et de l’œil droit.

Related Videos

Utilisation de feuilles Lumière Fluorescence Microscopy à l'image du développement Zebrafish Eye

13:01

Utilisation de feuilles Lumière Fluorescence Microscopy à l'image du développement Zebrafish Eye

Related Videos

34.8K Views

Étudier le diabète à travers les yeux d’un poisson : Microdissection, la visualisation et l’analyse de le tg(fli:EGFP) adulte vascularisation rétinienne de poisson-zèbre

10:07

Étudier le diabète à travers les yeux d’un poisson : Microdissection, la visualisation et l’analyse de le tg(fli:EGFP) adulte vascularisation rétinienne de poisson-zèbre

Related Videos

14K Views

Préparation tranches rétiniennes fraîches de poisson-zèbre adulte pour Ex Vivo des expériences d’imagerie

11:01

Préparation tranches rétiniennes fraîches de poisson-zèbre adulte pour Ex Vivo des expériences d’imagerie

Related Videos

9.8K Views

Un test pour mesurer la réactivité comportementale du poisson-zèbre à l'évolution des intensités de lumière

09:39

Un test pour mesurer la réactivité comportementale du poisson-zèbre à l'évolution des intensités de lumière

Related Videos

17.2K Views

En utilisant la réponse optocinétique pour étudier la fonction visuelle du poisson zèbre

08:59

En utilisant la réponse optocinétique pour étudier la fonction visuelle du poisson zèbre

Related Videos

19K Views

VisioTracker, une approche novatrice automatisé pour l'analyse oculomotrice

05:51

VisioTracker, une approche novatrice automatisé pour l'analyse oculomotrice

Related Videos

11.6K Views

Essai de réponse photomotrice : une méthode pour mesurer la réponse comportementale des larves de poisson-zèbre à un changement soudain des conditions d’éclairage

02:20

Essai de réponse photomotrice : une méthode pour mesurer la réponse comportementale des larves de poisson-zèbre à un changement soudain des conditions d’éclairage

Related Videos

3.1K Views

Essai d’évitement et de thigmotaxie chez le poisson-zèbre : une méthode à haut débit pour examiner le comportement larvaire en réponse à un stimulus visuel aversif

03:04

Essai d’évitement et de thigmotaxie chez le poisson-zèbre : une méthode à haut débit pour examiner le comportement larvaire en réponse à un stimulus visuel aversif

Related Videos

2.8K Views

La réponse optocinétique comme une mesure quantitative de l'acuité visuelle chez le poisson zèbre

04:56

La réponse optocinétique comme une mesure quantitative de l'acuité visuelle chez le poisson zèbre

Related Videos

21.1K Views

Un test comportemental simple pour tester la fonction visuelle dans Xenopus laevis

08:34

Un test comportemental simple pour tester la fonction visuelle dans Xenopus laevis

Related Videos

10.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code