מאמר שיטה

מבחני ביוכימיים לניתוח פעילויות של ATP תלוי הכרומטין שיפוץ אנזימים

DOI:

10.3791/51721

25 באוקטובר 2014

במאמר זה

סיכום

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כאן אנו מתארים מבחנים ביוכימיים שניתן להשתמש בהם כדי לאפיין אנזימים לעיצוב מחדש של כרומטין תלויי ATP על יכולותיהם 1) לזרז החלקה של נוקלאוזום תלוי ATP, 2) לעסוק במצעי נוקלאוזום, ו-3) הידרוליזה של ATP באופן תלוי נוקלאוזום או DNA.

תקציר

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

חברים במשפחת SNF2 של ATPases מתפקדים לעתים קרובות כמרכיבים של קומפלקסים של שיפוץ כרומטין מרובי תת-יחידות המווסתים את הדינמיקה של הנוקלאוזומים ואת נגישות ה-DNA על ידי זירוז שיפוץ נוקלאוזומים תלוי ATP. ניתוח ביוכימי של התרומות של יחידות משנה בודדות של קומפלקסים כאלה לתגובת שיפוץ הכרומטין הרב-שלבית התלויה ב-ATP דורש שימוש במבחנים המנטרים את ייצור תוצרי התגובה ומודדים את היווצרותם של תוצרי ביניים לתגובה. פרוטוקול JOVE זה מתאר בדיקות המאפשרות למדוד את הפעילויות הביוכימיות של קומפלקסים או תת-קומפלקסים של שיפוץ כרומטין המכילים שילובים שונים של תת-יחידות. שיפוץ כרומטין נמדד באמצעות בדיקת הזזה של נוקלאוזום תלויה ב-ATP, המנטרת את תנועת הנוקלאוזום על מולקולת DNA בשיטה מבוססת בדיקת שינוי ניידות אלקטרופורטית (EMSA). פעילות קשירת נוקלאוזומים נמדדת על ידי ניטור היווצרות מחדש של מונונוקלאוזומים קשורים מורכבים בשיטה דומה מבוססת EMSA, ופעילות ATPase תלויה ב-DNA או נוקלאוזום נבדקת באמצעות כרומטוגרפיה של שכבה דקה (TLC) כדי למדוד את קצב ההמרה של ATP ל-ADP ופוספט בנוכחות DNA או נוקלאוזומים. באמצעות מבחנים אלה, ניתן לבחון את הפונקציות של יחידות משנה של קומפלקס שיפוץ כרומטין על ידי השוואת הפעילויות של הקומפלקס השלם לאלה שחסרות תת-יחידה אחת או יותר. קומפלקס שיפוץ הכרומטין האנושי INO80 משמש כדוגמה; עם זאת, ניתן להתאים את השיטות המתוארות כאן למחקר של מתחמי שיפוץ כרומטין אחרים.

מבוא

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מתחמי שיפוץ הכרומטין משפחת SNF2 כוללים מקטע ATPase מרכזי כמו SNF2-1,2. פונקציה מסוימת כמו SNF2-ATPases כאנזימים למקטע אחד, בעוד שאחרים לתפקד כמקטע קטליטי של מתחמים רב למקטע גדולים יותר. הבהרת המנגנונים המולקולריים שבאמצעותו כל אחד מיחידות המשנה של הכרומטין מתחמי שיפוץ לתרום לפעילויות שלהם דורש את היכולת לבצע מבחני ביוכימיים שלנתח את תהליך שיפוץ.

שיפוץ הנוקלאוזום תלוי ATP על ידי מורכב INO80 האנושי ואנזימי הכרומטין שיפוץ אחרים יכול להיות שחזה כתהליך רב שלבים שמתחיל בכריכה של אנזים שיפוץ לnucleosomes, ואחרי הפעלה של דנ"א ו / או ATPase הנוקלאוזום תלוי, טרנסלוקציה של אנזים שיפוץ על DNA nucleosomal, ומיצוב מחדש סופו של הדבר nucleosomes 1,2. הבנת הפרטים המולקולריים של r תהליך שיפוץ הכרומטין תלוי ATPequires נתיחה של תגובת שיפוץ לשלבים הבודדים שלה והגדרתה של תרומתם של יחידות משנה נפרדות של מתחם שיפוץ הכרומטין לכל צעד של התגובה. ניתוח מסוג זה דורש היכולת לנתח שיפוץ הנוקלאוזום ופעילויות אחרות באמצעות מצעים מולקולריים מוגדרים במבחנה.

בפרוטוקול יופיטר קודם, שתארנו תהליכים המשמשים ליצירת מתחמי INO80 שיפוץ הכרומטין וsubcomplexes עם יצירות למקטע מוגדרים 3. כאן, אנו מציגים שלושה מבחני ביוכימיים שיאפשר ניתוח כמותי של הנוקלאוזום המחייב, דנ"א וATPase מופעל הנוקלאוזום, ופעילויות שיפוץ הנוקלאוזום הקשורים למתחמים כאלה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מבחני Remodeling הנוקלאוזום .1 תלוי ATP

כדי למדוד ATP תלוי פעילויות הנוקלאוזום שיפוץ, immunopurified INO80 או subcomplexes INO80 מודגרת עם ATP ומצע mononucleosomal, המכיל הנוקלאוזום יחיד ממוקם בקצה אחד של קטע DNA 216-BP, שכותרתו-P 32. תוצרי התגובה לאחר מכן נתון לאלקטרופורזה בג'ל פולי-acrylamide ילידים.

  1. על מנת ליצור את, בר 32 שכותרתו P '601' DNA, להגביר מpGEM-3Z-601 4 שבר 216 נ"ב DNA המכיל 601 רצף מיצוב הנוקלאוזום מיקום סוף, באמצעות oligonucleotides 5'-ACAGGATGTATATATCTGACACGTGCCTGG ו5'-AATACTCAAGCTTGGATGCCTGCAG כ קדימה ולאחור פריימרים.
    1. הגדר את תגובת PCR 100 μl כפי שמתואר בטבלה 1.
    2. לבצע PCR התגובות בCycler תרמית באמצעות התכנית הבאה: 1 דקות ב96 מעלות צלזיוס, followeד על ידי 45 שניות על 94 מעלות צלזיוס, 30 שניות ב57 ° C, 60 שניות ב72 מעלות צלזיוס במשך 30 מחזורים; כלה ב7 דקות ב72 מעלות צלזיוס.
    3. לאחר תגובת PCR נגמרה, להסיר את נוקלאוטידים מאוגדים על ידי העברת תוצרי התגובה פעמיים באמצעות עמודות ספין nuclease חינם.
    4. לרוץ 5 μl של מוצר PCR המטוהר בagarose ג'ל 1.2% כדי לאשר שתגובת PCR שנוצרה קטע DNA נ"ב הרצוי ~ 216.
    5. לדלל 5 μl של מוצר PCR המטוהר פי 20, ולמדוד את ריכוז DNA באמצעות ספקטרופוטומטר UV. התשואה הממוצעת היא ~ 40 ng / μl.
    6. מדוד את הרדיואקטיביות של 1 μl של מוצר PCR המטוהר במונה נצנץ. להעריך את יעילות התיוג על ידי חישוב עותקים לדקה / ng. תגובת תיוג מוצלחת צפויה להניב ~ 15,000 עותקים לדקה / ng של 601 קטע DNA.
  2. העבר את nucleosomes תא הלה על DNA 601 שכותרתו באמצעות שיטת דילול סדרתי 5.
    1. לערבב 2 pmol של32 קטע DNA 601 עם כותרת P 6 מיקרוגרם של nucleosomes הלה (שהוכן כמתואר 5) ב50 μl של מאגר המכיל 1.0 M NaCl, 10 מ"מ טריס-HCl, pH 8.0, 1 mM EDTA, 0.1 מ"מ PMSF, ו1 מ"מ DTT ולדגור על 30 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות.
    2. רצף לדלל את התערובת ל0.8 M, 0.6 M, ו0.4 M NaCl על ידי דילול עם 12.5 μl, 20.8 μl, ו41.6 μl, בהתאמה, של 10 מ"מ טריס-HCl (pH 8.0), 1 mM EDTA, 0.1 מ"מ PMSF, ו 1 מ"מ DTT, עם דגירה 30 דקות ב30 מעלות צלזיוס לאחר כל דילול.
    3. יתר על כן לדלל את התערובת ל0.2 M ולאחר מכן ל0.1 M NaCl על ידי תוספת של 125 μl ולאחר מכן 250 μl מאותו המאגר המכיל 0.1% Nonidet P-40, גליצרול 20%, ו200 מיקרוגרם / מ"ל ​​BSA, עם דגירה 30 דקות ב30 מעלות צלזיוס בין שני דילולים הסופיים. אחסן את מצע mononucleosome ב 4 מעלות צלזיוס למשך עד 3 חודשים.
  3. לבצע תגובות הנוקלאוזום הזזה ATP תלויות בנפח כולל של 10 μl. המחשבהרכיבי ction מפורטים בטבלה 2. מאז ריכוז NaCl האופטימלי לפעילות שיפוץ הנוקלאוזום INO80 הוא ~ 50 mM NaCl (תוצאות לא פורסמו), להתאים את הריכוז הכולל של NaCl בכל תגובה ל50 מ"מ, תוך לקיחה בחשבון את כמות NaCl הכלולה ב הכנות של nucleosomes ואנזים.
    1. לפני שיתחיל בלהגדיר את מבחני, להטיל ג'לי פולי-acrylamide ילידים (18 x 16 סנטימטר). כדי להכין ג'ל יחיד המכיל 5% acrylamide (acrylamide: bisacrylamide 37.5: 1), TBE 0.5x (45 borate מ"מ טריס, 1 mM EDTA), 0.01% persulfate אמוניום (APS), ו0.001% N, N, N', -tetramethylethylenediamine N'(TEMED), לערבב את החומרים המפורטים בטבלה 3. אפשר ג'ל לפלמר לפחות שעה 2 ב RT.
    2. בינתיים, לכל תגובה שיש לבצע, לשלב בצינור 1.5 מ"ל microcentrifuge מראש צונן siliconized ~ 20 ננומטר INO80 או subcomplex INO80 (שהוכן כמתואר 3) עם סכום של חיץ EB100 ( לוח 4) מספיק כדי לתת נפח של 4.75 μl. מייד מחדש להקפיא כל שברים המכיל INO80 שנותרו בקרח יבש אבקה או חנקן נוזלי.
    3. הגדר את קוקטייל הורים עם שאר החומרים, גמלון בפקטור של "X" (כאשר X = מספר כולל של תגובות +3). הסכום של כל מרכיב הנחוץ לתגובת 10 μl בודדת מופיע בטבלה 5; המתכון צריך להיות בקנה מידה גדול בהתאם למספר של תגובות שיש לבצע. מערבבים היטב על ידי הקשה על הצינור או על ידי pipetting למעלה ולמטה עם Pipetman ולסובב את הצינור לכמה שניות בmicrocentrifuge המעבדתיים.
    4. לוותר 5.25 μl של קוקטייל האדון לכל אחד מצינורות התגובה הוקמו בצעד 1.3.2. מערבבים היטב על ידי pipetting למעלה ולמטה. התחל את התגובות על ידי העברת צינורות תגובה לאמבטית גוש חום C 30 מעלות או מים ודגירה עבור שעה 2.
    5. בינתיים, להכין את 'הסרת לערבב' קוקטייל המכיל DNA מתחרהוnucleosomes, גמלון בפקטור של X (X = מספר הכולל של תגובות + 4). הסכום של כל מרכיב הדרוש כדי להכין 1.5 μl הסרת תערובת לתגובה יחידה מופיע בלוח 6; המתכון צריך להיות בקנה מידה גדול בהתאם למספר מבחני שיש לבצע.
    6. לסיים תגובות על ידי הוספת 1.5 μl של תמהיל הסרת. מערבבים היטב, ספין למטה, ולדגור על 30 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות נוספות.
    7. בינתיים, לפני לרוץ ג'ל polyacrylamide הילידים ביחידת אלקטרופורזה אנכית ב100 V ל30 דקות ב 4 ° C, באמצעות TBE 0.5x כחיץ פועל עם בר ומערבב מגנטי בתוך החדר התחתון כדי לשמור על זרימת דם למאגר קבועה.
    8. כדי לטעון את המדגם, להוסיף 2.5 μl של טעינת צבע המכיל 3x TBE, גליצרול 30%, 0.25% כחול bromophenol, ו0.25% Cyanol FF קסילן. מערבבים היטב, ספין בקצרה הדגימות, ולהעמיס אותו על ג'ל באמצעות עצות לטעינה.
    9. הפעל את הג'ל על 200 V ל4.5 שעות על 4 מעלות צלזיוס עם זרימת חיץ.
    10. כדי לזהות את האות, להעביר את הג'ל לערימה של שני גיליונות של נייר סינון. לעטוף את נייר הסינון עם ג'ל על גבי באמצעות ניילון נצמד ברור, ולאחר מכן לחשוף אותו למסך זרחן האחסון ב 4 מעלות צלזיוס למשך הזמן הרצוי.
    11. סרוק את המסך עם מערכת סורק הדמיה איזוטופ ולנתח את הנתונים באמצעות תוכנה מתאימה.

2 מבחני כריכת Mononucleosome

לassay הזיקה המחייבת של מורכב INO80 ניתנו לmononucleosomes, לבצע Shift electrophoretic ניידות Assay (Emsa) באמצעות מצע mononucleosomal שנוצר בשלב 1.2.

  1. הגדר את תגובת תערובות לכריכה מבחני כפי שתואר עבור מבחני שיפוץ הנוקלאוזום אבל להשמיט ATP ותמהיל הסרת מהתגובות; לדגור על 30 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות.
  2. הוסף 2.5 μl של טעינת צבע לכל תערובת תגובה, ותחול על ג'ל polyacrylamide ילידים המכיל 3.5 acrylamide% (acrylamide: bis 31), 1% גליצרול, TBE 0.5x, APS 0.01%, ו0.001% TEMED: 7.5.
  3. באמצעות TBE 0.5x כחיץ פועל, הפעל את הג'ל על 200 V ל2.5 שעה על 4 מעלות צלזיוס עם זרימת חיץ ולחשוף למסך זרחן האחסון.

.3 דנ"א והנוקלאוזום תלוי מבחני ATPase

לבצע מבחני ATPase בתערובות תגובת 5 μl מכילות 20 מ"מ טריס-HCl (pH 7.5), 60 mM NaCl, 6.6 מ"מ MgCl 2, 0.8 mM EDTA, 0.015% Nonidet P-40, גליצרול 2.5%, 0.1 מ"ג / מ"ל BSA, 1 מ"מ DTT, 0.1 מ"מ PMSF, 2 מ"מ ATP, 2 μCi של [P 32 α-] ATP (3,000 Ci / mmol). עבור כל מורכב INO80 או כמות מורכבת INO80 להיות assayed הקים שלוש תגובות מקבילות, חיץ EB100 מכיל אחד למדוד דנ"א או הנוקלאוזום עצמאי ATPase, אחד מכיל סגורות פלסמיד דנ"א העגול (נ"ב 5,000, ~ 30 ננומטר) כדי למדוד דנ"א ATPase תלוי, ואחד המכיל oligonucleosomes הלה (~ 185 ננומטר) כדי למדוד ATPase הנוקלאוזום תלוי. הגדר את כל התגובות על קרח.

  1. עבור כל תגובה, לשלב 10-50 ננומטר של subcomplexes INO80 או INO80 immunopurified עם סכום של חיץ EB100 מספיק כדי לתת נפח של 2.2 μl ב1.5 מ"ל צינורות microcentrifuge משומן מראש צונן. מייד מחדש להקפיא כל שברים המכיל INO80 בקרח יבש אבקה או חנקן נוזלי.
  2. הגדר את הקוקטייל שני. הסכום של כל מרכיב הנחוץ לתגובה יחידה מופיע בלוח 7. בהיקף של עד המתכון לפי קנה מידה על ידי גורם של 3 (X + 2) +1, כאשר X = מספר הכנות INO80 להיות assayed.
  3. כדי להכין מאגר המכיל 'משנה הקוקטיילים' בלבד, DNA, או nucleosomes, לוותר 2.5 (X + 2) μl של קוקטייל האב לשלושה צינורות נפרדים. הוספת 0.3 (X + 2) μl של שתי EB100, DNA הסגור המעגלי פלסמיד (1.5 מיקרוגרם / μl), או (1.5 מיקרוגרם / μl) oligonucleosomes הלה ומערבבים היטב.
  4. לוותר 2.8 μl של תת הקוקטייל המתאים לצינורות תגובה המכיל אנזים שהוקמו בstep 3.1. פיפטה בעדינות מעלה ומטה כדי לערבב; למנוע החדרת בועות.
  5. כדי להתחיל את תגובות, להעביר את צינורות תגובה לגוש חום C 30 מעלות.
  6. לאחר 5, 15, 30, ו60 דקות של דגירה, לזהות 0.5 μl של כל תערובת תגובה על כרומטוגרפיה שכבה דקה polyethyleneimine תאית צלחת (TLC) (20 x 10 סנטימטר) בקו ישר לפחות 1.5 ס"מ מהקצה התחתון . מייד לחזור צינורות תגובה לגוש חום C 30 מעלות ניתן לקחת נקודות זמן כל כך רבות מצינור אחד. אחרי שהבחנתי ב, לייבש את צלחות TLC באמצעות מכת מייבש.
  7. העבר את צלחות TLC לתא זכוכית המכיל מספיק פוספט 0.375 M אשלגן (pH 3.5) כדי לאפשר 0.5 סנטימטר תחתית צלחת TLC להיות שקוע בפתרון.
  8. כסה את התא, ולפתח עד החלק הקדמי של השלב הנוזלי מגיע העליון של צלחות TLC. מיידי לייבש את הצלחות באמצעות מכת מייבש ביסודיות.
  9. לחשוף את צלחות TLC המיובשים למסך זרחני אחסון ב RT.סרוק את המסך עם מערכת סורק הדמיה איזוטופ ולקבוע את סכום מצע ATP רדיואקטיבי לבין מוצר ADP.
  10. כדי לחשב את הסכום של ATP הידרוליזה, להכפיל את ATP% הידרוליזה על ידי הכמות של הווה ATP בתערובת התגובה החל שימוש בנוסחה הבאה: ATP pmol הידרוליזה ATP pmol = 10 במתחילים x תגובה [ADP / (ATP + ADP)]

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הנתונים מראים תוצאות נציג של מבחני ביוכימיים משמשים כדי לאפיין פעילויות INO80, כוללים הנוקלאוזום הזזה (איור 1) ומחייב (איור 2) מבחני ודנ"א או מבחני הנוקלאוזום תלוי ATPase (איור 3).

הניסוי שמוצג באיור 1 משווה את היכולת של מתחמי INO80 שלמים מטוהר באמצעות FLAG-Ies2 או FLAG-INO80E ושל INO80 subcomplexes מטוהר או דרך FLAG-Ino80ΔN או Ino80ΔNΔHSA ל...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כדי להבטיח ששיפוץ הנוקלאוזום ופעילויות ATPase שאנו רואים במבחנים תלויים בפעילות הקטליטית של מתחמי INO80, ולא על זיהום ו / או אנזימי ATPase שיפוץ, אנו הנוקלאוזום באופן שגרתי assay שיפוץ ופעילות ATPase של גרסאות כקטליזאטור פעילים של מתחמי INO80, מטוהר ב במקביל עם הסוג בר INO80 תוך שימוש באותו ההליך. גם תגובת ביקורת שלילית חסרת ATP צריכה להתבצע כאשר מנסים לאמוד את פעילות שיפוץ הנוקלאוזום כדי לבדוק את קיומו של זיהום ATP ו / או פעולות שיפוץ ATP-עצמאיות, אשר עלול לסבך את הפרשנות של ניסו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מצהירים שאין להם אינטרסים פיננסיים מתחרים.

תודות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

העבודה במעבדת המחברים נתמכת על ידי מענק מהמכון הלאומי למדעי הרפואה הכללית (GM41628) ועל ידי מענק למכון Stowers למחקר רפואי מקרן המחקר הרפואי הלן נלסון בקרן הקהילתית של קנזס סיטי רבתי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
קוקטייל מעכב פרוטאזSigmaP8340
10x מאגר תגובת PCR רוש מדע יישומי 
רוש טאק DNA פולימראזרוש מדע יישומי 
NucAway עמודי ספין ללא נוקלאז' חתול אמביון# AM10070
ATP אולטרה-טהור  USB/Affymetrix77241 25 UM
סרום בקר אלבומין  סיגמאA9418 
40% אקרילאמיד/ביס 37.5:1אמרסקו0254-500 מ"ל
DNA של זרע סלמון סוניק GE Healthcare27-4565-01
10% אמוניום פרסולפט (APS)Thermo Scientific17874
בנזונאז חתול נובגן. מס' 70664
dCTP, [α-32P]- 6,000 Ci/mmolPerkinElmerBLU013Z250UC
PCR מחזורי תרמי PTC 200MJ ResearchPTC 200
יחידת אלקטרופורזה אנכית HoeferSE600X-15-1.5
צינורות מיקרוצנטריפוגה משומנים 1.5 מ"ל Costar3207
מסך זרחן אחסון דינמיקה מולקולרית63-0034-79
נייר סינון 3 מ"מWhatman 28458-005VWR
טייפון זרחןImager GE Healthcare8600
ImageQuant תוכנהGE Healthcarever2003.02
TLC לוחות זכוכית, PEI-Cellulose FMillipore5725-7
Immobilon-FL ממברנת העברה 7 x 8.4MilliporeIPFL07810
מד סקר לשימוש כללי עם חלון קצה או פנקייק GM (Geiger-Mueller) בדיקהBiodexדגם 14C
1143509400111435094001

מקורות

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Clapier, C. R., Cairns, B. R. The biology of chromatin remodeling complexes. Annual Review of Biochemistry. 78, 273-304 (2009).
  2. Narlikar, G. J., Sundaramoorthy, R., Owen-Hughes, T. Mechanisms and functions of ATP-dependent chromatin-remodeling enzymes. Cell. 154 (3), 490-503 (2013).
  3. Chen, L., Ooi, S. K., Conaway, J. W., Conaway, R. C. Generation and purification of human INO80 chromatin remodeling complexes and subcomplexes. , (2013).
  4. Lowary, P. T., Widom, J. New DNA sequence rules for high affinity binding to histone octamer and sequence-directed nucleosome positioning. J. Mol. Biol. 276 (1), (1006).
  5. Owen-Hughes, T., et al. Analysis of nucleosome disruption by ATP-driven chromatin remodeling complexes. Methods Mol. Biol. 119, 319-331 (1999).
  6. Udugama, M., Sabri, A., Bartholomew, B. The INO80 ATP-dependent chromatin remodeling complex is a nucleosome spacing factor. Mol. Cell Biol. 31 (4), 662-673 (2011).
  7. Jin, J., et al. A mammalian chromatin remodeling complex with similarities to the yeast INO80 complex. Journal of Biological Chemistry. 280 (50), 41207-41212 (1074).
  8. Chen, L., et al. Subunit organization of the human INO80 chromatin remodeling complex: an evolutionarily conserved core complex catalyzes ATP-dependent nucleosome remodeling. Journal of Biological Chemistry. 286 (13), 11283-11289 (2011).
  9. Hamiche, A., Sandaltzopoulos, R., Gdula, D. A., Wu, C. ATP-dependent histone octamer sliding mediated by the chromatin remodeling complex NURF. Cell. 97 (7), 833-842 (1999).
  10. Polach, K. J., Widom, J. Restriction enzymes as probes of nucleosome stability and dynamics. Methods Enzymol. 304, 278-298 (1999).
  11. Anderson, J. D., Thastrom, A., Widom, J. Spontaneous access of proteins to buried nucleosomal DNA target sites occurs via a mechanism that is distinct from nucleosome translocation, Mol.Cell Biol. 22 (20), 7147-7157 (2002).
  12. Saha, A., Wittmeyer, J., Cairns, B. R. Chromatin remodeling through directional DNA translocation from an internal nucleosomal site. Nature Structural and Molecular Biology. 12 (9), 747-755 (2005).
  13. Gottschalk, A. J., et al. Poly(ADP-ribosyl)ation directs recruitment and activation of an ATP-dependent chromatin remodeler, Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 106 (33), 13770-13774 (2009).
  14. Clapier, C. R., Cairns, B. R. Regulation of ISWI involves inhibitory modules antagonized by nucleosomal epitopes. Nature. 492 (7428), 280-284 (2012).
  15. Brune, M., Hunter, J. L., Corrie, J. E. T., Direct Webb, M. R. Real-Time Measurement of Rapid Inorganic Phosphate Release Using a Novel Fluorescent Probe and Its Application to Actomyosin Subfragment 1 ATPase, Biochemistry. 33 (27), 8262-8271 (1994).
  16. Luk, E., et al. Stepwise histone replacement by SWR1 requires dual activation with histone H2A.Z and canonical nucleosome. Cell. 143 (5), 725-736 (2010).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

EMSAATPaseINO80

מאמרים קשורים