מאמר שיטה

הדמיה לא פולשנית של מורפולוגיה מיקרו-וסקולרית ממוסמרת בעכברים באמצעות קפילרוסקופיה

DOI:

10.3791/67529

⸱

28 בפברואר 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Ophthalmology and Visual Sciences, Vanderbilt Eye Institute, Vanderbilt University Medical Center, 2Department of Ophthalmology, Massachusetts Eye and Ear, Harvard Medical School, 3Department of Anesthesia and Critical Pain Medicine, Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 4Department of Ophthalmology, Icahn School of Medicine at Mount Sinai

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

קפילרוסקופיה היא כלי נגיש להדמיה ישירה, זולה ולא פולשנית של מיקרו-כלי דם. מטרת פרוטוקול זה היא לאפשר לחוקרים להשתמש בקפילרוסקופיה להדמיה של מורפולוגיה מיקרו-וסקולרית היקפית בציפורניים של עכברים.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הדמיית רשתות מיקרו-נימיות של העור בבני אדם באמצעות קפילרוסקופיה של ציפורניים (NFC) הדגישה את החשיבות של מיקרו-סירקולציה כמערכת איברי מטרה במחלות מערכתיות קריטיות. קפילרוסקופיה של ציפורניים מיושמת קלינית לאיתור הפרעות בתפקוד מיקרו-וסקולרי היקפי וחריגות במגוון מצבים מערכתיים, כולל הפרעות ראומטיות, לבביות, עיניים (למשל, גלאוקומה) ואנדוקריניות (למשל, יתר לחץ דם וסוכרת). NFC שימושי לא רק באיתור הפרעה במיקרו-כלי דם מערכתיים היקפיים אלא גם בהערכת יעילות התרופה. עם זאת, תרגום ממצאי NFC קליניים למודלים של מחלות בעלי חיים יכול להיות מאתגר. איתור הפרעות בתפקוד מיקרו-וסקולרי או חריגות בבעלי חיים הוא לרוב פולשני (למשל, אנדוסקופי), מבוצע ex vivo (למשל, הדמיה לאחר המוות של רקמות), או יקר, הדורש ציוד מיוחד כגון אלה המשמשים בטכניקות טומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת והדמיה פוטו-אקוסטית. פיתוח טכניקות מהירות, לא פולשניות וזולות להדמיית מיקרו-כלי דם היקפיים במודלים של מחלות בבעלי חיים מוצדק כדי להפחית את הוצאות המחקר ולהגדיל את יכולת התרגום למרפאה.

קפילרוסקופיה שימשה בעבר להמחשת המיקרו-כלי דם של הציפורניים במודלים של בעלי חיים, כולל בשרקנים ועכברים, ובכך הדגימה את היכולת של קפילרוסקופיה ככלי הדמיה לא פולשני במודלים של בעלי חיים. מחקר זה מספק פרוטוקול המיישם קפילרוסקופיה על מסמר עכבר, ומאפשר לחוקרים להעריך בקלות ובזול את המורפולוגיה של כלי הדם המיקרו-וסקולטוריים שלו. תמונות מייצגות של ארכיטקטורה מיקרו-וסקולרית טיפוסית עם מסמרים בעכברים מסוג בר המשתמשים בשני זני מעבדה נפוצים, SV129/S6 ו-C57/B6J, מסופקות. מחקרים נוספים המשתמשים בשיטה זו חיוניים ליישום קפילרוסקופיה ממוסמרת על מגוון רחב של מודלים של מחלות עכברים עם חריגות מיקרו-וסקולריות היקפיות.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הדמיית רשתות מיקרו-נימים היקפיות בבני אדם באמצעות קפילרוסקופיה של מסמרים (NFC) הדגישה את החשיבות של מיקרו-סירקולציה כמערכת איברי מטרה במגוון רחב של מחלות מערכתיות1. קפילרוסקופיה כוללת שימוש במיקרוסקופ כדי להגדיל ולדמיין כלי דם בקפל הציפורן in vivo. ככזו, זוהי טכניקה בשימוש נרחב במרפאה לאיתור הפרעות בתפקוד מיקרו-וסקולרי היקפי וחריגות במגוון מצבים מערכתיים, כולל ראומטי 2,3, לב4, עיניים (למשל, גלאוקומה)5,6, ומחלות אנדוקריניות (למשל, יתר לחץ דם וסוכרת 7,8). שינויים מורפולוגיים בנימי הציפורן, כולל שטפי דם, פיתול מוגבר של כלי הדם ואזורי כלי הדם, מזוהים בקלות באמצעות NFC. חריגות מורפולוגיות אלו מייצגות תהליכים פתולוגיים כגון שיפוץ מיקרו-וסקולרי מוגזם או חסר 9,10. NFC הוא כלי אבחון שימושי לאיתור פתולוגיות אלה. בנוסף, טכניקה זו שימושית בהערכת יעילות התרופה11.

עם זאת, תרגום ממצאי NFC קליניים למודלים של מחלות בבעלי חיים הוא מאתגר מסיבות רבות. הדמיה של מיקרו-כלי דם בבעלי חיים היא בדרך כלל פולשנית (למשל, אנדוסקופית), מבוצעת ex vivo (למשל, הדמיה לאחר המוות של רקמות), או יקרה, ודורשת ציוד מיוחד כגון טומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת12,13, אנגיוגרפיה טומוגרפיה קוהרנטית14 וטכניקות הדמיה פוטו-אקוסטית15. מכיוון שפתולוגיה מיקרו-וסקולרית היקפית ניכרת במגוון רחב של מחלות מערכתיות ומערכת העצבים המרכזית, כולל אוטם שריר הלב16, יתר לחץ דם17, ניוון עצבי הקשור לגיל של מערכת העצבים המרכזית כגון מחלת אלצהיימר18, ונוירופתיות אופטיות כגון גלאוקומה19, טכניקת הדמיה לא פולשנית וחסכונית in vivo מועילה מאוד.

קפילרוסקופיה שימשה להערכת המיקרו-כלי דם של הציפורניים במודלים של בעלי חיים, כולל שרקנים20 ועכברים21, ובכך הדגימה את יכולתה ככלי הדמיה לא פולשני. כאן, אנו מיישמים קפילרוסקופיה על חלק אחר של הציפורן, הציפורן. תוך רתימת השקיפות של ציפורן העכבר, קפילרוסקופיה ממוסמרת מציגה מיקום חדש להדמיה של מיקרו-כלי דם היקפיים. בהשוואה ל-NFC, שהוא שימושי במיוחד לניטור תנועת תאי דם21,22, פרוטוקול הקפילרוסקופיה הממוסמר המתואר כאן מספק שטח גדול יותר לתצפית טובה יותר על המורפולוגיה והמבנה של כלי הדם המיקרו-וסקולריים. אנו מספקים פרוטוקול המאפשר לחוקרים להעריך בקלות ובזול את המורפולוגיה של מיקרו-כלי דם ממוסמרים בעכבר, המהווה מיקום חדש להדמיית כלי דם היקפיים לא פולשנית. פרוטוקול זה מספק תמונות מייצגות של ארכיטקטורה מיקרו-וסקולרית טיפוסית עם מסמרים בעכברים מסוג בר באמצעות שני זני מעבדה נפוצים (SV129/S6 ו-C57/B6J). אנו מראים כי קפילרוסקופיה ממוסמרת היא שיטת הדמיה מיקרו-וסקולרית זולה ולא פולשנית. מחקרים נוספים המשתמשים בשיטת גישוש זו יהיו חיוניים ליישום קפילרוסקופיה ממוסמרת על מגוון רחב של מודלים עכבריים של מחלות בהן ניכרות חריגות מיקרו-וסקולריות היקפיות בפתולוגיה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל השיטות המתוארות כאן אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים (IACUC) של המרכז הרפואי של אוניברסיטת ונדרבילט ובית החולים הכללי של מסצ'וסטס.

1. הכנת ציפורני עכבר להדמיה

הערה: לבהירות מיטבית של כלי הדם ולהתאוששות העור, יש להמתין לפחות 24 שעות לפני ההדמיה.

  1. כדי לאפשר הדמיה ללא הפרעה של ציפורני עכברים, הסירו את הפרווה מכפות המכרסמים לפחות 24 שעות לפני הדמיית קפילרוסקופיה (איור 1A). כדי להסיר פרווה מכפות העכבר, בצע את השלבים 1.1.1-1.1.6.
    1. הרדימו את בעל החיים באמצעות הרדמה איזופלורן בשאיפה (2% איזופלורן ב-5% פחמן דו חמצני / 95% חמצן). ודא שהעכבר מורדם כראוי על ידי צביטה של כרית כף הרגל בשתי כפות הרגליים האחוריות. אם מורדמים כראוי, לא אמורה להיות תנועת טלטול (רפלקס נסיגת דוושה). אם יש תנועת רפלקס, אפשר לעכבר יותר זמן תחת איזופלורן להיות מורדם לחלוטין. בדוק שוב את רפלקס נסיגת הדוושה והמשך.
    2. לאחר הרדמה נכונה של העכבר, יש למרוח ג'ל עיניים סיכה או משחת עיניים סטרילית שאינה תרופתית על שתי העיניים כדי למנוע התייבשות של הקרנית בזמן ההרדמה.
    3. שמירה על בעל החיים בהרדמה באמצעות חרוט אף, מרחו כמות נדיבה של קרם להסרת שיער על כל הכפה בעזרת אפליקטור. הקפידו לכסות את כל אזורי הכפות והציפורניים, כפי שמוצג באיור 1B.
    4. יש להשאיר קרם להסרת שיער על הכפה למשך 2 דקות בטמפרטורת החדר (RT).
    5. יש לנקות בזהירות את הקרם להסרת שיער על ידי שפשוף עדין עם ממחטה נקייה.
    6. שטפו את הכפה במים פושרים וסטריליים.
      הערה: הכפות צריכות להיות נקיות מפרווה וציפורניים ללא הפרעה להדמיה, כפי שמוצג באיור 1C.
    7. החזר את העכבר לכלוב שלו כדי להבטיח התאוששות בטוחה מההרדמה. אל תשאיר את העכבר ללא השגחה עד שהוא חזר להכרה. לאחר שהעכבר חזר להכרה, החזירו אותו לכלוב המקורי בחברת בעלי חיים אחרים.

2. הדמיית קפילרוסקופיה ממוסמרת in vivo

  1. לאחר זמן התאוששות מינימלי של 24 שעות לאחר הסרת הפרווה, הגדר את ציוד הקפילרוסקופיה בחדר מבוקר טמפרטורה (נשמר בין 21.5-22.5 מעלות צלזיוס), כפי שמוצג באיור 2A. המערך השלם להדמיה במסמר כולל 1) ציוד הרדמה איזופלורן, 2) חרוט אף להרדמה, 3) שלב בעל חיים מתכוונן, 4) מיקרוסקופ קפילרוסקופיה ו-5) מחשב נייד עם תוכנת וידאו להדמיה.
  2. הרדימו את בעל החיים באמצעות הרדמה איזופלורן בשאיפה (2% איזופלורן ב-5% פחמן דו חמצני / 95% חמצן).
    1. ודא שהעכבר מורדם כראוי על ידי צביטה של כרית כף הרגל בשתי כפות הרגליים האחוריות. אם מורדמים כראוי, לא אמורה להיות תנועת טלטול (רפלקס נסיגת דוושה). אם יש תנועת רפלקס, חזור לשלב 1.1.1 ואפשר לעכבר יותר זמן להיות בהרדמה מלאה. לאחר מכן, בדוק שוב את רפלקס נסיגת הדוושה והמשך.
    2. לאחר הרדמה נכונה של העכבר, יש למרוח ג'ל עיניים סיכה או משחת עיניים סטרילית שאינה תרופתית על שתי העיניים כדי למנוע התייבשות של הקרנית בזמן ההרדמה.
  3. שמירה על החיה תחת טשטוש, מקם את הצד האחורי של הכף האחורית כלפי מעלה על גבי פלטפורמת סרט המעבדה מתחת למטרה, כפי שמוצג באיור 2B, זום.
  4. מורחים את אצבעות הרגליים בעדינות כדי להפריד ציפורניים מתחת למיקרוסקופ באמצעות אפליקטור. ודא שהציפורניים מופרדות זו מזו להדמיה אופטימלית של כלי הדם.
    הערה: איור 2C מציג את מערך ההדמיה המלא המציג את תמונת כלי השיט בתוכנת וידאו למחשב נייד.
  5. כדי להפחית סנוור ולשפר את הריכוז, יש למרוח בנדיבות שמן טבילה (שמן תירס) על הכף, כדי להבטיח כיסוי מלא של הציפורניים. הוסף סרט לבן או דומה מתחת לכף העכבר כדי לשפר את הניגודיות ולשפר את ההדמיה של מיטת הכלי (איור 3; חץ 3).
  6. התמקדו בציפורן בספרה השנייה של הכפה האחורית; בעכברים, זו המסמרת הגדולה ביותר והכי קלה לצילום. כדי למקד את מסמר העכבר, השתמש במכווני השלב x ו-y (איור 3; חץ 4) ובגלגל ההגדלה (עד פי 280 במכשיר זה; איור 3; חץ 1).
  7. סובב את המטרה כדי להפחית את מיקום הסנוור כדי להביא את רשת כלי הציפורן לתצוגה (איור 3; חץ 2).
    הערה: אם קשה לראות כלים או שזמן ההדמיה מתארך, יש למרוח מחדש בנדיבות את שמן הטבילה. כפות גופן של עכברים קטנות יותר מהכפות האחוריות; לפיכך, מומלץ לבצע הדמיה על כפות אחוריות.
  8. חבר את הקפילרוסקופ למחשב נייד באמצעות חיבור אפיק טורי אוניברסלי (USB).
  9. פתח את יישום תוכנת הווידיאו הראשון במחשב הנייד.
    הערה: ודא שההתקן מחובר כהלכה למחשב הנייד בהגדרות.
  10. על מסך המחשב הנייד, דמיין מה מוגדל על ידי הקפילרוסקופ והתמקד במסמר על ידי כוונון מכווני השלב x ו-y וגלגל ההגדלה כדי לקבל תמונה ברורה.
  11. ברגע שהמיקרוסקופ ממוקד ורואים תמונה ברורה של רשת כלי הדם במסמר, הקליטו סרטון על ידי לחיצה על כפתור ההקלטה האדום ב-Debut או בתוכנת וידאו דומה (איור 2C).
  12. שמור כל סרטון בתיקיית הפרויקט המתאימה ותייג כל סרטון בהתאם.

3. שמירת תמונות ממוסמרות

  1. פתח את הסרטון הממוסמר בתוכנה ובחר ידנית מסגרת בסרטון שבה כלי השיט נמצאים בפוקוס ברור.
  2. באמצעות כלי צילום המסך במחשב, צלם צילום מסך של מסך הווידאו הראשון המציג כלי דם ברורים בציפורן. שמור תמונה.
  3. פתח את תמונת צילום המסך בתוכנת ImageJ על ידי לחיצה על קובץ ופתח; בחר את הקובץ מתיקיית היעד שלו.
  4. במידת הצורך, כוונן את הבהירות והניגודיות על-ידי בחירה באפשרות Image > Adjust > Brightness/Contrast. כלי זה יכול לעזור לשנות את הניגודיות של התמונות כדי לדמיין טוב יותר את המורפולוגיה של כלי הדם.
  5. לאחר התאמת התמונה, לחץ על קבע בכלי בהירות/ניגודיות .
  6. שמור את התמונה כקובץ TIFF על-ידי לחיצה על קובץ ולאחר מכן על שמור בשם.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

באמצעות שיטת הקפילרוסקופיה המתוארת כאן, ניתן לדמות בקלות מורפולוגיה של כלי דם ממוסמרים, כפי שמוצג באיור 4A. כלי דם ממוסמרים טיפוסיים בעכבר מציגים שלושה מאפיינים עקביים, כפי שמודגש באיור 4B: לכל ממוסמר יש 1) כלי אפרנטי, 2) כלי נשפך, ו-3) רשת של נימים המחברים בין כלי הדם הנכנסים והזורמים. כדי להדגים את העקביות של מורפולוגיה ממוסמרת, אנו מראים באיור 4C רשת נימית מייצגת ממוסמרת בעכבר מסוג פרא על רקע SV129/S6 ובאיור ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

לסיכום, אנו מספקים פרוטוקול המאפשר לחוקרים להעריך בקלות ובזול את המורפולוגיה של מיקרו-כלי דם ממוסמרים בעכברים, מיקום חדש להדמיית כלי דם היקפיים לא פולשנית. בדומה לשיטות NFC המשמשות בשרקנים20 ובעכברים21, החוזק העיקרי של הפרוטוקול המתואר כאן הוא שהוא מאפשר הערכה מהירה ולא פולשנית של מיקרו-כלי דם היקפיים במודלים של מחלות בעכברים. זה יכול להיות שימושי במיוחד עבור מחקרים הכוללים הפרעות בכלי הדם ההיקפיים, כגון מחלות ראומטיות

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ללא קשר לעבודה זו, ד"ר פסקואלה היה יועץ בתשלום ל-Twenty Twenty. ללא קשר לעבודה זו, קלרה קאזינס היא יועצת בתשלום ל-Cartography Biosciences. לכותבים האחרים אין מה לחשוף.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו מומנה על ידי כספים מחלקתיים בלתי מוגבלים שהוענקו ללורן ק. וורהאם. ד"ר פסקואלה נתמך על ידי קרן הגלאוקומה (ניו יורק) ועל ידי מענק אתגר בלתי מוגבל ממחקר למניעת עיוורון (ניו יורק).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מיכל מסנן פחם הרדמהReFreshEZ-258
קפילרוסקופ Jiahua Electronic Instrument Co., ג'יאנגסו, סיןJH-1004
גז דחוס (5% פחמן דו חמצני, 95% חמצן)AirgasUN3156
שמן תירסSigmaC8-267 
לכידת וידאו לראשונהזמינה בחינם באינטרנט.
חניתות עינייםBVI Weck- Cel0008680למריחה והסרה של קרם להסרת שיער.
קרם להסרת שיערנאיר 
בקבוק איזופלורן 250 מ"לפיראמל טיפול נמרץNDC  
שקע מעבדה פישרברנד14-673-52משמש כפלטפורמה להחזקת העכבר.
חרוט אף (מסכת הרדמה בפרופיל נמוך)קנט סיינטיפיקSOMNO-0801
העברת פיפטותפישרברנד13-711-9AMמרחו שמן תירס בנדיבות על כף העכבר כשמן טבילה.
USB כרטיס לכידת וידאוVIXLWBR116
VetequipVWR89012-492ציוד איזופלורן
קלטת תיוג לבנה פישרברנד15-958משמש ליצירת רקע לבן/מנוגד מתחת לכף העכבר בעת צילום תמונות.
תוכנת 6103703236496679401725

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. El Miedany, Y., Ismail, S., Wadie, M., Hassan, M. Nailfold capillaroscopy: tips and challenges. Clin Rheumatol. 41 (12), 3629-3640 (2022).
  2. Etehad Tavakol, M., Fatemi, A., Karbalaie, A., Emrani, Z., Erlandsson, B. -E. Nailfold capillaroscopy in rheumatic diseases: Which parameters should be evaluated. BioMed Res Int. 2015 (1), 974530(2015).
  3. Cutolo, M., Smith, V. Detection of microvascular changes in systemic sclerosis and other rheumatic diseases. Nat Rev Rheumatol. 17 (11), 665-677 (2021).
  4. Lim, M. W. S., et al. Nailfold video-capillaroscopy in the study of cardiovascular disease: a systematic review. Blood Press Monit. 28 (1), 24-32 (2023).
  5. Philip, S., Najafi, A., Tantraworasin, A., Pasquale, L. R., Ritch, R. Nailfold capillaroscopy of resting peripheral blood flow in exfoliation glaucoma and primary open-angle glaucoma. JAMA Ophthalmol. 137 (6), 618-625 (2019).
  6. Taniguchi, E. V., et al. Peripheral microvascular abnormalities associated with open-angle glaucoma. Ophthalmol Glaucoma. 6 (3), 291-299 (2023).
  7. Maldonado, G., Guerrero, R., Paredes, C., Ríos, C. Nailfold capillaroscopy in diabetes mellitus. Microvasc Res. 112, 41-46 (2017).
  8. Gurfinkel, Y. I., Sasonko, M., Priezzhev, A. Digital capillaroscopy as important tool for early diagnostics of arterial hypertension Proc. SPIE 9448, Saratov Fall Meeting 2014: Optical Technologies in Biophysics and Medicine XVI; Laser Physics and Photonics XVI; and Computational Biophysics. , 944804(2015).
  9. Santamaría, R., González-Álvarez, M., Delgado, R., Esteban, S., Arroyo, A. G. Remodeling of the microvasculature: May the blood flow be with you. Front Physiol. 11, 586852(2020).
  10. Pries, A. R., Secomb, T. W. Making microvascular networks work: angiogenesis, remodeling, and pruning. Physiology. 29 (6), 446-455 (2014).
  11. Cutolo, M., Smith, V. State of the art on nailfold capillaroscopy: a reliable diagnostic tool and putative biomarker in rheumatology. Rheumatology. 52 (11), 1933-1940 (2013).
  12. Bentley, M. D., Ortiz, M. C., Ritman, E. L., Romero, J. C. The use of microcomputed tomography to study microvasculature in small rodents. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 282 (5), R1267-R1279 (2002).
  13. Zagorchev, L., et al. Micro computed tomography for vascular exploration. J Angiogenes Res. 2, 7(2010).
  14. Untracht, G. R., et al. Pilot study of optical coherence tomography angiography-derived microvascular metrics in hands and feet of healthy and diabetic people. Sci Rep. 13 (1), 1122(2023).
  15. Mirg, S., Turner, K. L., Chen, H., Drew, P. J., Kothapalli, S. -R. Photoacoustic imaging for microcirculation. Microcirculation. 29 (6-7), e12776(2022).
  16. Gkontra, P., et al. Dynamic changes in microvascular flow conductivity and perfusion after myocardial infarction shown by image-based modeling. J Am Heart Assoc. 8 (7), e011058(2019).
  17. Laurent, S., Agabiti-Rosei, C., Bruno, R. M., Rizzoni, D. Microcirculation and macrocirculation in hypertension: A dangerous cross-link. Hypertension. 79 (3), 479-490 (2022).
  18. Kisler, K., Nelson, A. R., Montagne, A., Zlokovic, B. V. Cerebral blood flow regulation and neurovascular dysfunction in Alzheimer disease. Nat Rev Neurosci. 18 (7), 419-434 (2017).
  19. Wareham, L. K., Calkins, D. J. The neurovascular unit in glaucomatous neurodegeneration. Front Cell Dev Biol. 8, 452(2020).
  20. Mandujano, A., Golubov, M. Animal models of systemic sclerosis: using nailfold capillaroscopy as a potential tool to evaluate microcirculation and microangiopathy: a narrative review. Life. 12 (5), 703(2022).
  21. Kim, M. Nail fold capillaroscopy as a potential tool to evaluate breast tumor. J Anal Sci Technol. 15 (1), 35(2024).
  22. McKay, G. N., et al. Visualization of blood cell contrast in nailfold capillaries with high-speed reverse lens mobile phone microscopy. Biomed Opt Express. 11 (4), 2268-2276 (2020).
  23. Zhang, X., Qian, X., Tao, C., Liu, X. In vivo imaging of microvasculature during anesthesia with high-resolution photoacoustic microscopy. Ultrasound Med Biol. 44 (5), 1110-1118 (2018).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

ImageJ

מאמרים קשורים