October 3rd, 2011
מאמר זה מדגים שתי שיטות שונות של הזרקת מאוד: 1) לתוך המוח (intracerebroventricular) ו 2) מערכתית (תוך ורידי) כדי להציג את סוכני טיפולית לתוך מערכת העצבים המרכזית של עכברים הילוד.
בסרטון זה יודגמו שיטות הזרקה תוך חדריות ותוך ורידיות בעכברים יילודים. להזרקה תוך חדרית, העכבר המורדם מונח תחילה על גבי מקור אור סיב אופטי כדי להאיר את הסגיטלי ולהעביר סינוסים. לאחר מכן מזריקים את החיסון בזהירות בנקודה רוחבית לתפר הסגיטלי ורוסטרל לתפר הכלילי.
אם מבוצע כהלכה, החיסון יופץ תחילה בחדר המוזרק ובסופו של דבר יגיע לחדר השני להזרקה תוך ורידית. העכבר מאובטח לטרנסלומינטור בצורה כזו שווריד הפנים נחשף. לאחר מכן החיסון מוזרק לאט ישירות לווריד והופך מופץ באופן מערכתי.
ההשלכות של טכניקות אלו משתרעות על טיפול במחלות והפרעות רבות מכיוון שהן מאפשרות מיקום אופטימלי של טיפולים. טכניקת ה-ICV מספקת אמצעי לחציית מחסום הדם-מוח, בעוד שטכניקת הווריד מאפשרת מתן טיפולי מערכתי. ראשית, הכינו את תמיסת ההזרקה בצינור מיקרו צנטריפוגה.
בדוגמה זו, החיסונים מכילים טריאם כחול להדמיה טובה יותר של אתר ההזרקה. כדי להזריק עכברים השתמש במחט מיקרופיפט זכוכית מעוקרת ומכוילת המחוברת לסדרה של צינורות פלסטיק, גדלה בהדרגה בקוטר ומסתיימת במזרק פלסטיק של שלושה מיליליטר. בעזרת פינצטה שטוחה שוברים את קצה מחט הזכוכית כך שאורכו שלושה מילימטרים.
זה יאפשר חדירה של לפחות שני מילימטרים למוח. טען בזהירות את התמיסה להזרקה למחט המיקרופיפט מזכוכית על ידי הנחתה באלכסון בצינור המיקרו צנטריפוגה ומשיכת בוכנת המזרק. הפסק למשוך את הבוכנה ברגע שטעינת המחט הושלמה.
כדי למנוע זיהום הצינור, הסר את המזרק ממערכת הצינורות המחוברת למיקרו פיפט הזכוכית. הארך את הבוכנה לחלוטין וחבר מחדש את המחט בחוזקה. החזק את מחט הזכוכית של המיקרו פייפ בין האגודל לאצבע המורה.
הנח את המזרק בין הטבעת לאצבעות הקטנות עם בוכנה הנוגעת בכף היד המזריקה, קריו הרדמה את העכבר בן היומיים. לאחר מכן תפסו בחוזקה את העכבר המורדם בעור בבסיס הראש, והניחו אותו על מקור אור סיב אופטי כדי להאיר את הסינוסים הסגיטלים העליונים. אתר ההזרקה ממוקם כרבע מילימטר לרוחב משני צידי מפגש הסינוסים הללו המחזיק את המזרק בניצב למשטח הגולגולת.
הכנס את המחט החודרת לעומק של שני מילימטרים. בעזרת כף היד המזריקה, דחף לאט את הבוכנה כלפי מטה כדי להזריק את התמיסה. המתן 15 שניות לפני הסרת המחט כדי למנוע זרימה חוזרת ולעקוב אחר העכבר לאיתור נפיחות בגולגולת או סימנים של קרעים בכלי הדם.
לאחר הזרקת העכבר, הניחו אותו בכלי חם מראש למשך חמש עד 10 דקות כדי לאפשר לו להתאושש. השווה את העכבר המוזרק לעכבר שאינו מוזרק. 10 עד 15 דקות לאחר הזרקה תוך חדרית של חיסון המכיל טריאם כחול.
יש להפיץ את הנוזל בצד המוזרק של המוח לאחר 60 דקות בשל הקישוריות של חדרי המוח, פיזור אחיד של טריאם כחול הן בהמיספרות המוח והן בנורות הריח צריכות להיות גלויות. לבסוף, לאחר 12 שעות, החיסון יהיה גלוי בתעלת עמוד השדרה המרכזית הרוסטרלית. הכן את תמיסת ההזרקה והוסף צבע מאכל ירוק בדילול של 1 עד 100.
כדי לדמיין את ההזרקה, חבר פיתיון פלסטיק קטן לקצה מזרק המילטון זכוכית של 100 מיקרוליטר. התקן את המזרק עם מחט היפודרמית בגודל 33 אינץ' 0.25 אינץ' וודא שכל החלקים מחוברים היטב. טען את המזרק בנפח שיש להזריק.
הקפד להסיר בועות אוויר מהחיסון מכיוון שהזרקת אוויר לווריד היא קטלנית. השתמש בסרט כירורגי וגזה כדי להדק את היילוד לטרנסלומינטור. על ידי אבטחת האמה והגוף תחילה לטרנסלומינטור ולאחר מכן אבטחת הראש כך שווריד הפנים יהיה גלוי.
ודא שהסרט רופף מספיק כדי שהחיה עדיין תוכל לנשום. השתמש בזכוכית מגדלת של 2.25 x כדי לאפשר הדמיה טובה יותר, הכנס לאט את המחט לווריד. מכיוון שהווריד שטחי, המחט תישאר גלויה מתחת לעור.
להחדיר לאט את החיסון לווריד. המתן 15 שניות לפני הסרת המחט כדי לאפשר את הוצאת כל הנוזלים. לאחר הסרת המחט, השתמש בחתיכת גזה כדי להפעיל לחץ על מקום ההזרקה עד שהדימום ייפסק.
החזירו את היילוד למקום חמים והניחו לו חמש דקות להתאושש. עקוב אחר זה לאיתור סימני מצוקה. אם ההזרקה בוצעה כהלכה, החיה לא אמורה להראות סימני אי נוחות.
לאחר התאוששות העכבר, החזר אותו לכלוב שלו. אם ההזרקה התוך ורידית בוצעה כהלכה, היילוד יהפוך לירוק. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד לתת זריקות ICV ו-IV בעכברים יילודים.
טכניקות אלו יכולות לשמש כאמצעי להזרקת החומר הטיפולי לבחירתך.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
מאמר זה מדגים שתי שיטות שונות מאוד של הזרקה: תוך-מוחית ותוך-ורידית, להכנסת חומרים טיפוליים למערכת העצבים המרכזית של עכברים ניונטיים.
Delivering therapeutic agents across the blood-brain barrier remains a critical challenge in CNS drug development, particularly for neurodegenerative disorders. Intracerebroventricular (ICV) and intravenous (IV) injection techniques in neonatal mice enable direct CNS access and systemic delivery, respectively, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking. These methods provide reproducible models for evaluating biodistribution and therapeutic efficacy prior to lead optimization.
These injection methods integrate into the discovery continuum from early target validation through lead identification and preclinical studies by enabling controlled delivery of therapeutic agents.