Name: Non-Bonding פלזמה של PDMS עבור ייצור זולה של מכשירים microfluidic (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-11-01T00:41:54.000+00:00
Duration: 4 min 45 s
Description: למדו שיטה ליצירת קשר הפיך בין מכשירי PDMS לזכוכית ללא צורך בפלזמה. טכניקה זו מאפשרת איטום מים ומתאימה לתרביות תאים במעבדות ללא ציוד יקר.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

הכנת התקנים microfluidic עבור התרבות התא Neuron 1) ניקוי קורנינג מס &#39;1 24 מ&quot;מ X 40 מ&quot;מ זכוכית שקופיות <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Sonicate שקופיות הזכוכית sonicator אמבט מים במשך 30 דקות </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו את השקופיות זכוכית עם EtOH 70% </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף שקופיות שלוש פעמים עם DH 2 O </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מגלשות יבש במנדף רקמה תרבות במשך כמה שעות, רצוי לילה </li></ul> הערה: יש לנו מגשי מתכת מיוחד שאנחנו עומס עם השקופיות. השקופיות מופרדות בנפרד להציב חריצי במעמד זה מתכת. אז אנו יכולים למקם את טעינת מגשי מתכת בכלי זכוכית כי אנחנו ממלאים את המקום במים, sonicator האמבטיה במים, sonicate במשך 30 דקות. שוטף לאחר מתבצעות המנה הזו. 2) הכנת התקנים PDMS <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגזור את התבנית PDMS מן פרוסות סיליקון סיליקון, חורים אגרוף השחקנים PDSM ורבע זה </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נקו את מכשירי PDMS ידי הראשון פיצוץ גז אינרטי (ארגון או חנקן) על פני אותם. ואז להשתמש 3M סקוטש 471 קלטת מותג להרים את כל הפסולת הנותרת </li></ul> הערה: חשוב לשמור על המכשירים עם הפנים כלפי מעלה. בתחילה, כאשר אנו לגזור את PDMS ממנו פרוסות סיליקון, הצד במגע עם פרוסות סיליקון הוא הצד נקי: הוא מכיל את ערוצי microfluidic. אנחנו מנסים להיות זהירים ככל שאנחנו יכולים שלא לגרום נזק להתקן, ולשמור על פני הצד לנקות עד שאנחנו מוכנים מליטה פלזמה. <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכשירי החיטוי במכלי פלסטיק </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר, מעוקר נקי מס &#39;1 שקופיות הזכוכית קורנינג פלזמה לטפל באמצעות מכשירים פלזמה המותג Harrick נקי, <a href="http://www.harrickplasma.com/" target="_blank">www.harrickplasma.com</a> </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקום המכשירים נקי בצד למטה בשקופית זכוכית. </li></ul> המכשיר הוא עכשיו פלזמה מלוכדות לשקופית זכוכית. 3) לציפוי מכשירים עם פולי-L-ליזין (PLL) <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> PLL מתווסף גם בכל צד של המכשיר מותר לזרום לתוך הבאר הבא </li></ul> =&gt; 150 μl של PLL של בארות גדול 30 μ l PLL עבור בארות קטנות יותר. זה לא חייב להיות מדויק כל עוד בארות מלאים. הערה: אם אתה מסתכל על המכשיר תוכלו לראות 4 בארות: כל שני מחוברים. אתה רוצה לשים את PLL באחד היטב כך שהוא יזרום דרך המכשיר לתוך הבאר הבא. <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר PLL לזרום דרך המכשיר למשך כ -10 דקות ולאחר מכן להוסיף PLL יותר את הבארות כדי למלא אותם </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את המכשירים המכיל PLL באינקובטור ב 37 מעלות צלזיוס למשך תקופה מינימלית של 4 שעות (עדיף לילה) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אבק את PLL עודף לאחר הטיפול, אבל להיזהר לא לשאוב את כל הנוזל מתוך המכשיר </li></ul> הערה: אתה לא רוצה להציג את בועות האוויר לערוצי או קאמרית. רק ואקום את PLL עודף בארות. <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף autoclaved DH 2 O היטב בכל צד של המכשיר, ואפשר לזרום גם אחר על ידי פעולה נימי </li></ul> איור 1 הוא דיאגרמה של מכשיר microfluidic. שימו לב איך הכחול (סומה בצד) מחובר האדום (צד axonal) מחוברים. כאשר אנו אומרים את PLL, או מים או התקשורת, על אחד טוב בכל צד של המכשיר, למה אנחנו מתכוונים, למשל, היא: מקום 150 ul של autoclaved DH 2 O באחד μl כחול 150 טוב, אז במקום autoclaved DH 2 0 האדום לתוך באר אחת. המים (או PLL, או מדיה, או תאים) יזרמו דרך המכשיר היטב המקביל אחרים. <img src="/files/ftp_upload/old/410_2008_8_27_3/410_Figure-01.png" alt="איור 1" width="362" height="216" /> איור 1 הערה: שים לב, מעתה ואילך, כאשר אני אומר &quot;כלי התקשורת במקום, תאים, מים או PLL בבארות TOP&quot;, אני מתכוון בתרשים לעיל שם סומה יהיה בצד שמאל ואת האקסונים יגדל זכות. <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב את המים (שוב נזהרים שלא להסיר לחלוטין את כל הנוזלים מהמכשיר), ואז להוסיף עוד 150 μl של autoclaved DH 2 O אחד בכל מקושר היטב ולאפשר לו לזרום אל המקביל היטב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את מכשיר המכיל DH 2 O באינקובטור ב 37 מעלות צלזיוס במשך שעה 1, ולאחר מכן לחזור על השלב לשטוף שוב. שטפו את התקנים שלוש פעמים עם DH 2 O למשך שעה אחת, שהיא בסך הכל. </li></ul> הערה: בשל האפשרות כי borate מן PLL יכול לספוג לתוך PDMS, חלק ב מעבדת Jeon ממליצים דוגרים המכשירים לילה עם autoclaved DH 2 O אחרי כמה אנישטיפות מהיר nitial. זה יבטיח כי כל borate חינם יסתננו החוצה של PDMS לפני הטעינה של התאים. אם זה לא נעשה, ייתכן שיש לשחרר borate לתוך התקשורת לאורך זמן, מה שעלול להוביל cytotoxicity. <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף מדיה בסל עצבית (NBM) עם הגורמים הנדרשים (glutamax, B27, PenStrep) אל בארות העליון </li></ul> הערה: התקנים ניתן מודגרות לילה ו מצופה עם תאים למחרת, או מודגרות מינימום של 3 שעות עם גורמים NMB + לפני ציפוי התאים. הכנת הנוירונים לטעינה לתוך התקני אנו משתמשים היום בן 18 בקליפת עוברי העכברים שאנחנו גם לקנות מחברה בשם Bits המוח או כי הוא מוכן כאן בשבילנו בקמפוס. אנו מעדיפים לקבל את הרקמה טריים. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השג 1 קליפת המוח של העובר (2 פיסות הרקמה) המאוחסן שינה E </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קח 3 pipettes זכוכית ארוך אש לכל אחד מהם לתוך בגדלים קטנים יותר ברציפות באמצעות מנורת אלכוהול </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להסיר את הרקמות של שינה E עם טפטפת זכוכית מקום 2 מ&quot;ל של גורמים NMB + בצינור 15 מ&quot;ל סטרילי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> טחינה דקה: בעזרת פיפטה הנורה וזכוכית קליפת המוח היא עברה למעלה ולמטה על 5 עד 10 פעמים. ואז, פיפטה קטן הבא משמש פיפטה במעלה ובמורד רקמות. לבסוף, פיפטה הקטן משמש פיפטה במעלה ובמורד רקמות. אנחנו רוצים לוודא שאין גושים נראים לעין. הערה: לאחרונה, החלה המעבדה Jeon השוואת תאים מרקמות מאוחסנים שינה E תאים שהוכנו מרקמות שטופלו תחילה 50% עם טריפסין 0.125% Ca + + בחינם Mg + + חוצץ לנתיחה חינם. הקונצנזוס הוא כי רקמת מוכן באמצעות טריפסין תשואה תאים קיימא יותר מאשר רקמת להציב תחילה שינה E. אם אתה לא הולך להשתמש ברקמות מיד, אז אתה צריך לאחסן את הרקמה שינה E. אם אתה הולך להשתמש ברקמות מיד רוצה כדאיות מוגברת, ואז לטפל הרקמה עם טריפסין לפני טחינה דקה מכני כדלקמן: 1) לדלל 1 מ&quot;ל טריפסין 0.25% (Gibco, Invitrogen) עם 1 מ&quot;ל של Ca + + חינם Mg + + חינם חיץ דיסקציה (טריפסין הסופי = 0.125%) לתוך צינור 15 מ&quot;ל (לשמור קר קרח) 2) רקמת מקום חיץ לדגור מיד 37 מעלות צלזיוס למשך 8 דקות, 3) להוסיף 10 מ&quot;ל DMEM/10% FBS לעצור את טריפסין התגובה ולהמשיך פרוטוקול להלן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה תאים בסל&quot;ד 1100 למשך דקה 1 </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התקשורת aspirated בזהירות את התא גלולה </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 1 מ&quot;ל של גורמים NMB + על גלולה מחדש על תנאי זה על ידי pipetting למעלה ולמטה </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Pass מחדש תאים מושעה על ידי זרימת הכבידה דרך מסנן להסיר גושים (BD פלקון תא מסננת 40 ניילון אממ) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספירת תאים בצלחת: <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לתוך צינור microfuge, להוסיף 60 + NMB μl גורמים, 20 μl של השעיה תא, 20 μl של trypan כחול ואז לערבב </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף על μl 10 של פתרון זה hemocytometer ולספור את תאים חיים (לא כחול) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם את הריכוז 2.5-4.5 x10 6 תאים / מ&quot;ל הערה: אנו בדרך כלל לקבל ריכוז של כ 2.5-4.5 x 106 תאים / מ&quot;ל. בהתאם לכמות התאים resuspended ב (בדרך כלל 1 מ&quot;ל NBM + B27/Glutamax/PenStrep percortex). אם הרקמה הוכנה עם טריפסין, התשואה צפויה להיות מוגברת. </li></ul></li></ol> ציפוי התקנים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> טען תאים (נוירונים העיקרי) לתוך אחד טוב של המכשיר </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 5 פלייט μl לכל מכשיר קטן ו 20 μl לכל מכשיר גדול הערה: ניתן לטעון 10 μl של תאים בחלק העליון של המכשיר 10 μl על החלק התחתון של המכשיר (הנפח הכולל וחצי), או ישירות את כל 20 μl של תאים בבאר somal העליון (5 μl ב somal בראש טוב עבור מכשירים קטנים). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה במשך 10 דקות ב 37 מעלות צלזיוס חממה כל כך התאים יכולים להתחיל לצרף </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף μl 150/30 כ גורמים NMB + זה גם תלוי בגודל המכשיר הערה: כרכים עשוי להשתנות בהתאם לעובי של PDMS. כל מה שחשוב הוא כי בארות מלאים. </li></ol> משלימה על שימוש בהתקני ללא פלזמה Bonding ללא טיפול פלזמה, כריסטינה ט&quot;ו, טכנאי, אשר עושה זאת בהצלחה כל שבוע ללא פלזמה, אומר רק לטעון את התאים מיד. זכור להסיר את התקשורת משני בארות בצד סומה (צד האקסון לא משנה אם אתה משאיר את התקשורת). זה זרימת נוזל המאפשר לתאים להיכנס לערוץ הראשי. אם יש לך מדיה הבארות, לא תקבל זרימת הנוזל.

<ol><li>Park, J. W., Vahidi, B., Taylor, A. M., Rhee, S. W., Jeon, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+culture+platform+for+neuroscience+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Microfluidic culture platform for neuroscience research.</a> Nat Protoc. 1 (4), 2128-2136 (2006).</li>
<li>Taylor, A. M., Blurton-Jones, M., Rhee, S. W., Cribbs, D. H., Cotman, C. W., Jeon, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfluidic+culture+platform+for+CNS+axonal+injury%2C+regeneration+and+transport%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A microfluidic culture platform for CNS axonal injury, regeneration and transport.</a> Nat Methods. 2 (8), 599-605 (2005).</li>
</ol>

למחברים אין ניגודי עניינים להצהיר עליהם.

הנה הראינו כיצד להשתמש במכשיר ללא צורך נוירון microfluidic שואב פלזמה. אנו מתייחסים מליטה זה כלא פלזמה.

<table><tbody><tr><td>PDMS</td><td>ריאגנט</td><td>Dow Corning</td><td></td><td>Sylgard 184 עם חומר מקשה; נא להתייעץ עם Dow Corning כדי למצוא ספק באזורכם</td></tr><tr><td>זכוכית כיסוי Cornig No. 1</td><td>זכוכית כיסוי</td><td>Corning</td><td>Corning No. X2935 244</td><td>זמין דרך Fisher Scientific, מספר קטלוג Fish 12-531D</td></tr><tr><td>B27</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td>B27 הוא תוסף קנייני הזמין דרך Invitrogen תחת קו ריאגנטי תרביות התאים של Gibco.</td></tr><tr><td>Glutamax</td><td>ריאגנט</td><td>Invitrogen</td><td>35050-061</td><td>Glutamax זמין דרך Invitrogen תחת קו ריאגנטי תרביות התאים של Gibco.</td></tr><tr><td>צלוחית פטרי 60 mm</td><td>כלי</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-757-13A</td><td>צלוחיות פטרי סטריליות מפוליסטירן בנפח 60 mm משמשות להצבת ההתקן הקשור לזכוכית.</td></tr><tr><td>Poly-L-Lysine</td><td>ריאגנט</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-1274</td><td></td></tr><tr><td>מבחנה BD Falcon 50 ml</td><td>כלי</td><td>BD Biosciences</td><td>Falcon No. 352098</td><td>זמין דרך Fisher Scientific, מספר קטלוג 14-959-49A</td></tr><tr><td>מבחנה BD Falcon 15 ml</td><td>כלי</td><td>BD Biosciences</td><td>Falcon No. 352097</td><td>זמין דרך Fisher Scientific, מספר קטלוג 14-959-70C</td></tr></tbody></table>

non-bonding פלזמה של pdms עבור ייצור זולה של מכשירים microfluidic

Non-plasma Bonding of PDMS for Inexpensive Fabrication of Microfluidic Devices

בסרטון זה אנו מדגימים כיצד להשתמש במכשיר נוירון microfluidic בלי מליטה פלזמה. במקרים מסוימים זה עשוי להיות רצוי מכשירי הקשר הפיך על כוס מס &#39;1 כיסוי קורנינג. זה יכול להיות בגלל, אולי, שואב פלזמה לא להיות זמין. במקרים אחרים, זה יכול להיות רצוי להסיר את ההתקן מן הכוס לאחר culturing של נוירונים עבור סוגים מסוימים של מיקרוסקופ או immunostaining, אם כי זה לא הכרחי כדי להסיר את ההתקן עבור immunostaining מאז הנוירונים יכול להיות מוכתם במכשיר. כמה חוקרים, עם זאת, עדיין מעדיפים להסיר את ההתקן. במקרה זה, מליטה הפיך של המכשיר כדי לכסות את הכוס עושה את זה אפשרי. יש כמה חסרונות מליטה לא פלזמה של התקנים שאינם צמודים כמו חותם נוצר. במקרים מסוימים אקסונים עשוי לגדול תחת חריצים ולא דרכם. כמו כן, בגלל הזכוכית PDMS הם הידרופובי, נוזלים לא להיכנס בקלות את המכשיר ומכריח לעתים לאלץ את התקשורת ריאגנטים אחרים לתוך המכשיר. נוזלים יכנסו למכשיר דרך פעולה נימי, אבל זה לוקח זמן רב יותר באופן משמעותי בהשוואה למכשירים שכבר פלזמה ערובה. שואב פלזמה יוצר חיובים הידרופילי זמני על הזכוכית מכשיר להקל על זרימת נוזלים דרך המכשיר לאחר מליטה בתוך שניות. עבור הלא פלזמה התקנים מחויב, זרימת הנוזל דרך המכשירים לוקח כמה דקות. כמו כן, חשוב לציין כי התקנים לשימוש עם אי - פלזמה מליטה צריכים להיות מעוקרים הראשון, בעוד מכשירים פלזמה טיפול לא צריך לעבור עיקור לפני השימוש, כי יהיה נקי פלזמה לעקר אותם.

בסרטון הזה אנחנו מדגימים איך להשתמש במכשיר נוירון microfluidic בלי מליטה פלזמה.

Non-Bonding פלזמה של PDMS עבור ייצור זולה של מכשירים microfluidic

בסרטון זה, אנו מדגימים כיצד להשתמש בהתקן המיקרופלואידי לנוירונים ללא bonding בפלזמה. במקרים מסוימים, ייתכן שיהיה רצוי לבצע bonding הפיך...

מעבדות המבצעות באופן שגרתי פוטוליתוגרפיה וליתוגרפיה רכה מחזיקות בדרך כלל במכשיר הנקרא מנקה פלזמה (plasma cleaner). מנקה פלזמה כולל סליל חשמלי, היוצר גז מיונן חלקית המורכב מאלקטרונים, יונים, אטומים ומולקולות ניטרליים. הפלזמה יוצרת מינים רהאיביים על פני השטח של הזכוכית וההתקן, אשר כאשר הם מונחים זה על זה, יוצרים קשר קבוע.הפלסמה הופכת בנוסף את פני השטח של המכשיר להידרופיליים, דבר המקל על הוספת נוזלים. עם זאת, במקרים מסוימים, קשר קבוע ובלתי הפיך אינו רצוי. כמו כן, במעבדות רבות אין גישה למנקה פלסמה.כדי להתמודד עם סוגיה זו, נדגים היום הדבקה הפיכה של התקן הנוירוני לזכוכית כיסוי ללא שימוש בפלסמה; כוחות אלקטרוסטטיים בין ה-PDMS לזכוכית יוצרים חיבור אטום למים שמתאים לתרבית תאים. אני רוצה להכיר לכם את קיאנה לי, שתבצע היום את ההדגמות.זכוכית כיסוי מסוג Corning מספר 1 בגודל 24 מילימטר על 40 מילימטר מנוקות באמצעות מקראה אולטרסונית (sonicate). הזכוכיות מונחות במגש נירוסטה, אשר מוצב לאחר מכן בתוך כלי זכוכית מלא במים דה-יוניים. כלי הזכוכית מוצב לאחר מכן בתוך המקראה האולטרסונית.לאחר מכן, מבצעים סוניקציה ללמיות הזכוכית למשך 30 דקות. לאחר הסוניקציה, שופכים את המים הדאיוניים מתוך כלי הזכוכית. ממלאים את כלי הזכוכית עם למיות הזכוכית ב-70% ethanol, ולאחר מכן מעבירים אותו לתוך קבנית בטיחות ביולוגית סטנדרטית על מנת לשמור על סטריליותן.לאחר שטיפה ב-70% ethanol, מוציאים את מתקן הפלדת אל-חלד מהמיכל הזכוכית ומניחים למשטחים להתייבש לחלוטין למשך מספר שעות או למשך הלילה. לאחר מכן, בתוך קבלינה בטיחותית, מצפים את משטחי הזכוכית ב-PLL על ידי השרייתם במיכל מלא בתמיסת PLL. משטחי הזכוכית נשארים להשריה בתמיסת ה-PLL למשך שלוש שעות לפחות או למשך הלילה.לאחר ציפוי ה-PLL, מסלקים את נוזל ה-PLL מהצלחת ולאחר מכן שוטפים היטב את למסות הזכוכית במים דה-יוניים. לאחר שטיפת הזכוכית המצופה ב-PLL במים מספר פעמים, ממלאים את הצלחת במים ומשרים את למסות הזכוכית במים למשך מספר שעות. לאחר השריה של מספר שעות במים דה-יוניים, שואבים את המים מהצלחת.יש לשטוף את תזריתי הזכוכית במהירות, ולאחר מכן להוציא אותן מהצלחת, להניחן במעמד מנירוסטה ולהניח להן להתייבש למשך הלילה. בתוך קבينة בטיחות ביולוגית, יש להכניס את מכשירי ה-Neuron ולשטוף אותם ביסודיות ב-70% ethanol לצורך עיקור. לאחר מכן, יש לשאוב את עודפי ה-ethanol מהמכשיר. יש להניח למכשירים להתייבש בתוך קבينة הבטיחות הביולוגית למשך הלילה עד ליום למחרת.התקן נוירונים סטרילי זה מונח פשוט על גבי זכוכית נקייה, סטרילית ומטופלת ב-PLL. ה-PDMS יוצר קשר הפיך עם הזכוכית שהוא אטום לנוזלים. התקן מודבק לזכוכית באמצעות הפעלת לחץ עדין, או שמוסיפים למכשיר מדיה באופן מיידי.המתנה ממושכת מדי לפני הוספת מצע גידול או תאים למכשיר לאחר ההרכבה עלולה להקשות על חדירת הנוזל למכשיר. חשוב לציין כי הנוזל אינו חודר למכשירים שלא עברו טיפול בפלזמה במהירות שבה הוא חודר למכשיר שעבר טיפול בפלזמה. מכשירים שעברו טיפול בפלזמה הם הידרופיליים מיד לאחר הטיפול, ולכן נוזלים זורמים אליהם בקלות, בעוד שהזרימה דרך מכשירים שלא עברו חיבור באמצעות פלזמה היא איטית בהרבה.במקרים מסוימים, ייתכן שיהיה צורך להשתמש בפיפט כדי להזרים נוזל לתוך המכשיר. בסרטון זה, הדגמנו כיצד לחבר את מכשיר הנוירונים לזכוכית כיסוי ללא שימוש בפלסמה. זוהי שיטה יעילה וזולה לחיבור הפיך של PDMS למשטחי זכוכית.אנו מקווים שמצאתם סרטון זה למעשיר ומועיל. זהו כל השיר מהמעבדה של John. תודה שצפיתם.

non-plasma-bonding-pdms-for-inexpensive-fabrication-microfluidic

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

בסרטון הזה אנחנו מדגימים את הטכניקה של ליתוגרפיה רך עם polydimethyl siloxane (PDMS) שבו אנו משתמשים כדי farbricate מכשיר microfluidic עבור נוירונים culturing.

המצאה של המכשיר microfluidic עבור מידור של Neuron סומה האקסונים

PDMS ייצור המכשיר ושינוי פני השטח

מכשירים microfluidic יכול לשמש כדי לחזות תהליכים טבעיים מורכבים בזמן אמת על המאזניים פיזי המתאים. פיתחנו מכשיר microfluidic פשוט המחקה התכונות העיקריות של התקשורת נקבובי טבעי ללימוד הצמיחה הובלה של חיידקים מתחת לפני הקרקע.

חלון על המיקרו: מערכות Microfluidic פשוט לחקר התחבורה מיקרוביאלית בתווך נקבובי

במאמר זה אנו מתארים טכניקות שונות עבור פלטפורמות אב טיפוס מהירות מיקרופלואידיות. הטכניקות המוצעות מבוססות על אפוקסי אולטרה סגול (UV) וריפוי טמפרטורה, צינורות מבוססי פולידימתילסילוקסן (PDMS), הדבקת חוטים וסרטי דבק אנזוטרופיים. הליכי ההרכבה המוצגים פותחו הן עבור מכשירים לשימוש חד פעמי והן עבור מערכות מיקרופלואידיות לשימוש חוזר.

שיטות אריזה של אב-טיפוס מיקרו-נוזלי בתפוקה גבוהה מהירה ובעלות נמוכה

אנו מציעים טכניקת הרכבה עצמית פשוטה של ננו-חלקיקים קולואידיים של סיליקה כדי ליצור צומת ננו-פלואידית בין שני מיקרו-ערוצים בפולידימתילסילוקסן (PDMS). באמצעות טכניקה זו, קרום חרוז ננו-נקבובי בגודל נקבוביות של עד ~45 ננומטר נבנה בתוך מיקרו-ערוץ והוחל על ריכוז מוקדם אלקטרוקינטי של דגימות DNA.

יצירת צומת תת-50 ננומטר ננו-נוזלי ב PDMS Microfluidic שבב באמצעות תהליך ההרכבה העצמית של חלקיקים קולואיד

מליטה מרככת היא שיטה פשוטה תכליתית עבור בודת מכשירי microfluidic תרמופלסטיים עם אג"ח באיכות גבוהה. אנו מתארים פרוטוקול להשיג חזק, אג"ח ברור אופטי ב PMMA והתקני microfluidic COP המשמרים פרטי microfeature, על ידי שילוב מושכל של לחץ, טמפרטורה, ממס מתאים, וגיאומטריה מכשירה.

מליטה מרככת עבור ייצור של PMMA ו COP מכשירי microfluidic

פרוטוקול זה מתאר את הזיוף של התקנים microfluidic מ- MY133-V2000 כדי לסלק חפצים שעולות לעתים קרובות microchannels עקב המדדים השבירה המאולתר בין מבנים microchannel של תמיסה מימית. פרוטוקול זה משתמש של מחזיק אקרילי כדי לדחוס את המכשיר שעברו אנקפסולציה, שיפור הדבקות הן מבחינה כימית והן מבחינה מכנית.

ייצור של התקנים השבירה-אינדקס-מתאימים עבור מיקרופלואידיקה ביו

כאן אנו מציגים פרוטוקול כדי לעצב והרכיבו מכשירים מיקרופלואידים מותאמים אישית עם השקעה פיננסית וזמן מינימלי. המטרה היא להקל על אימוץ טכנולוגיות microflu, מעבדות מחקר ביו והגדרות חינוכיות.

ייצור מהיר של התקני מיקרופלואידיג מותאמים אישית למחקר וליישומים חינוכיים

פרוטוקול זה מתאר את טכניקות המיקרו-פבריקציה הנדרשות לבניית התקן אלקטרופורציה מיקרופלואידי במעבדה על שבב. מערך הניסוי מבצע טרנספקציות מבוקרות ברמת תא בודד בזרימה רציפה וניתן להרחיב אותן לתפוקות גבוהות יותר עם בקרה מבוססת אוכלוסייה. ניתן ניתוח המציג את היכולת לעקוב באופן חשמלי אחר מידת החדירה של קרום התא בזמן אמת.

ייצור והפעלה של זרימה רציפה, מערכת מיקרו-אלקטרופורציה עם זיהוי חלחול

פרוטוקול זה מפרט את התכנון והייצור של מכשיר מיקרופלואידי, המתאים לחקירת מכניקת פולימרים מיקרו-צינוריים. הסינתזה של מיקרו-ייצור, בקרת זרימה אוטומטית וטכניקות מידול חישוביות מאפשרת מערכת גמישה המתאימה באופן אידיאלי לחקירת השלד התאי במבחנה.

פיתוח גישה מבוססת מיקרופלואידיקה לחקר מכניקת פולימרים מיקרו-צינוריים

פרוטוקול זה מתאר שלוש שיטות אטימה פשוטות לייצור מכשיר מיקרופלואידי היברידי המשלב רכיבי פוליקרבונט וסיליקון. על ידי יישום קשרי ממס, דחיסה תרמית ואסטרטגיות דחיסה מכנית, אנו מאפשרים טכניקות אטימה אמינות בטמפרטורות נמוכות, הנמנעות מציוד מיוחד למכשירים מיקרופלואידיים היברידיים.

שיטות בנייה למכשירים מיקרופלואידיים היברידיים מפוליקרבונט-סיליקון

למדו שיטה ליצירת קשר הפיך בין מכשירי PDMS לזכוכית ללא צורך בפלזמה. טכניקה זו מאפשרת איטום מים ומתאימה לתרביות תאים במעבדות ללא ציוד יקר.

Non-Bonding פלזמה של PDMS עבור ייצור זולה של מכשירים microfluidic

גלה סרטונים נוספים