Abbiamo sviluppato un metodo che arricchisce e isola le popolazioni di astrociti umani da tessuti freschi congelati per l'uso in analisi molecolari a valle.
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Articolo metodologico
Abbiamo sviluppato un metodo che arricchisce e isola le popolazioni di astrociti umani da tessuti freschi congelati per l'uso in analisi molecolari a valle.
La complessità degli astrociti umani rimane scarsamente definita nel tessuto umano primario, richiedendo strumenti migliori per il loro isolamento e caratterizzazione molecolare. Lo smistamento dei nuclei attivati dalla fluorescenza (FANS) può essere utilizzato per isolare e studiare con successo le popolazioni di nuclei neuronali umani (NeuN +) dal tessuto d'archivio congelato, evitando così problemi associati alla manipolazione di tessuto fresco. Tuttavia, mancano sforzi per isolare in modo simile l'astroglia dall'elemento non neuronale (NeuN-). Una strategia di immunotagging recentemente sviluppata e convalidata utilizza tre anticorpi del fattore di trascrizione per isolare simultaneamente popolazioni di nuclei neuronali arricchiti (NeuN +), astrociti (paired box protein 6 (PAX6) + NeuN-) e oligodendrociti progenitori (OLIG2 + NeuN-) da tessuto temporale temporale umano postmortem non malato, fresco (non fisso) congelato a scatto.
Questa tecnica si è dimostrata utile per la caratterizzazione delle alterazioni del trascrittoma specifiche del tipo cellulare nella neocorteccia patologica primaria dell'epilessia. Le analisi trascrittomiche hanno confermato che le popolazioni selezionate pax6 + NeuN sono robustamente arricchite per i marcatori pan-astrocitari e catturano gli astrociti sia in condizioni di riposo che reattive. Questo articolo descrive la metodologia FANS per l'isolamento di popolazioni di nuclei arricchiti di astrociti dalla corteccia umana appena congelata, compresa la dissociazione dei tessuti in sospensione a nucleo singolo (sn); immunotagging di nuclei con anticorpi coniugati fluorescenti anti-NeuN e anti-PAX6; FANS gating strategie e metriche di controllo qualità per ottimizzare la sensibilità e la specificità durante lo smistamento e per confermare l'arricchimento degli astrociti; e l'approvvigionamento raccomandato per il sequenziamento dell'accessibilità del trascrittoma e della cromatina a valle alla risoluzione bulk o sn. Questo protocollo è applicabile per campioni corticali umani non necrotici, congelati freschi, con varie patologie e raccolta di tessuto post mortem raccomandata entro 24 ore.
La complessità molecolare degli astrociti umani rimane scarsamente definita nel tessuto primario, richiedendo strumenti migliori per il loro isolamento e caratterizzazione ad alta risoluzione, sia in salute che in malattia. La separazione dei neuroni umani intatti e della glia dalla loro nicchia si è dimostrata difficile a causa dell'accesso limitato di campioni di tessuto cerebrale fresco, della natura fortemente interconnessa dei processi gliali e neuronali e dell'inevitabile attivazione cellulare durante l'elaborazione, che limitano la caratterizzazione molecolare di questi tipi di cellule ex vivo1 . Lo smistamento dei nuclei attiva....
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NOTA: Il programma per la protezione dei soggetti umani presso la Icahn School of Medicine del Monte Sinai (ISMMS) e il suo Institutional Review Board (IRB) assicurano la condotta etica della ricerca e la conformità con le normative federali, statali e istituzionali. In questo studio, tutti i campioni post-mortem utilizzati sono stati de-identificati, ottenuti con il consenso appropriato attraverso il biorepository, e sono stati esenti dalla designazione di "ricerca umana" dall'IRB dell'ISMMS (HS # 14-01007).
1. Preparazione del buffer
NOTA: se si esegue il sequenziamento dell'RNA a valle....
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I nuclei sono stati raccolti da tessuto neocorteccia temporale fresco (non fissato) congelato a scatto con un tempo di raccolta post mortem di 12 ore. Dopo la dissociazione dei tessuti in sospensione nucleica, i campioni sono stati incubati con anticorpi contro NeuN, PAX6 e OLIG2 e ordinati in base al gating mostrato in Figura 1 e Figura 2. I nuclei sono stati raccolti da popolazioni ordinate NeuN+, PAX6+NeuN- e OLIG2+NeuN- (Figura 1E,F
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La progettazione sperimentale secondo il protocollo delineato dovrebbe essere finalizzata dopo aver considerato diversi fattori biologici e tecnici. I campioni di tessuto di partenza sono freschi di congelamento, senza essere stati fissati, e preferibilmente hanno un breve intervallo di raccolta post-mortem per massimizzare il recupero dei nuclei. Sulla base dell'esperienza, un PMI fino a 24 ore consente un adeguato recupero dei nuclei; tuttavia, un PMI di 12 ore o meno è preferibile per ottimizzare il recupero dei nucle.......
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Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Ci piace ringraziare i membri in Patologia e Neurochirurgia presso la Icahn School of Medicine del Monte Sinai per l'aiuto con l'approvvigionamento di tessuto cerebrale de-identificato e la citometria a flusso CORE di ISMMS per la consulenza di esperti. Lo studio è stato parzialmente finanziato da NIH RF1DA048810, R01NS106229, R03NS101581 (a N.M.T.) e R61DA048207 (a S.A.).
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| 10x PBS pH 7.2 | Invitrogen | 70013073 | |
| ANTICORPO ANTI-NEUN CLONE A60 | Millipore | MAB377A5MI | anti-NeuN di topo coniugato a un composto fluorescente AF555 (eccitazione, 553 nm; emissione, 568 nm) |
| ANTICORPO ANTI-OLIG2 CLONE 211 | Millipore | MABN50A4MI | anti-OLIG2 di topo coniugato a un composto fluorescente AF488 (eccitazione, 499 nm; emissione, 520 nm) |
| Bovino Albumina sierica | Fisher | BP9704-100 | |
| Camera di conteggio Bright-Line | Hausser Scientific | 3110V | |
| Cloruro di calcio Anidro | Fisher | C614-3 | |
| Filtri cellulari, 40 &; M | SP Scienceware | 136800040 | |
| DAPI (4',6-Diamidino-2-Fenilidolo, Dicloridrato) | Invitrogen | D1306 | |
| DL-Ditiotreitolo | Sigma | 43815-1G | |
| Kit libreria DNA | Illumina, Nextera | FC-121... 1030 | |
| DNAse I | Worthington | LS002139 | |
| Dounce Tissue Grinder | WHEATON | 357542 | |
| FACS Sorter | BD Biosciences | BD FACSAria III | |
| Acetato di magnesio tetraidrato | Fisher | M13-500 | |
| PAX6 (PAX6/496) - 100 TEST | Novus | NBP234705J | |
| RNA Clean & Concentratore | Zymo Research | R1013 | |
| RNaseZap Soluzione di decontaminazione RNasi | Invitrogen | AM9780 | |
| SMARTer Kit RNA-Seq totale a filamento Pico Input Mammalian | Clontech Laboratories | 635005 | Tempo di frammentazione di 2,5 minuti, come raccomandato per bassi valori di RNA RIN. |
| Saccarosio, certificato cristallo, ACS, 500 mg | Fisher | S5500 | |
| SW 41 Ti Rotore a secchiello oscillante | Coltro Beckman | 331362 | |
| Tris-HCl, soluzione 1M, pH 8.0, grado di biologia molecolare, ultrapuro | Thermo Scientific | J22638AE | |
| TritonX-100 | Fisher | BP151-500 | tensioattivo non ionico nel tampone di lisi |
| Reagente | TRIzol LSReagente Invitrogen | 10296028 | |
| TRIzol | Reagente Invitrogen | 15596026 | per l'isolamento di RNA |
| Soluzione blu di tripano, 0,4% | Gibco | 15250061 | |
| Ultracentrifuga | Beckman Coulter Optima XE-100 | A94516 | |
| Provette per ultracentrifuga PP 9/16 X 3-1/2 | Beckman Coulter | 331372 | |
| Acqua distillata ultrapura ( | Invitrogen | 10977023 | indicato come acqua distillata |
| EDTA ultrapuro | Life Technologies | 15576-028 |
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