Name: Microelettrodo guidata impianto di elettrodi nel subtalamico Nucleo di Ratti per lungo termine stimolazione cerebrale profonda (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: Scopri l'impianto guidato di microelettrodi nel nucleo subtalamico di ratti per stimolazione cerebrale profonda a lungo termine. Questa tecnica migliora la localizzazione precisa e consente studi neurofisiologici avanzati.

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Desideriamo ringraziare il signor Wabbel per aver preparato i fili e il signor Tietsch per aver costruito le spine e le gabbie secondo i nostri piani. Questo lavoro è stato sostenuto dalla Deutsche Forschungsgemeinschaft (Sonderforschungsbereich 688). Felix Fluri è titolare di una borsa di studio dell'Interdisziplinäre Zentrum für Klinische Forschung (IZKF), Cliniche Universitarie di Würzburg, Germania.

Gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dall&#39;Università di Würzburg e le autorità statali legali (Bassa Franconia, numero di omologazione: 54-2531.01-102 / 13) ed eseguita secondo le raccomandazioni per la ricerca in corsa sperimentale studia 17 e la corrente di Test sugli animali: Segnalazione di In Vivo Linee guida Esperimenti (http://www.nc3rs.org.uk/arrive-guidelines). 1. Anestesia <ol><li> Controllare il sistema anestetico per assicurare un&#39;adeguata quantità di gas di alimentazione (ossigeno) e isoflurano per la durata della procedura. Collegare il musetto con la barra incisivo dello strumento stereotassico e posizionare la barra incisivo su -3.3 mm. </li><li> Accendere il gas di alimentazione (2 L / min). Posizionare il ratto in una scatola e sigillare la parte superiore. Accendere il vaporizzatore isoflurano al 3,5%. </li><li> Quando il ratto è reclinata, commutare il sistema in modo che il gas anestetico fluisce al nosecone che è fissato alla barra degli incisivi. </li><li> Rimuovere rat dalla camera scatola e radere l&#39;area tra le orecchie e gli occhi; utilizzando un batuffolo di cotone imbevuto di Jodosept PVP, tamponare la zona rasata per rimuovere tutti i capelli sciolti. </li><li> Posizionare il topo nel nosecone (Figura 1) e continuare l&#39;anestesia con isoflurano 2,5% in O 2 (1 L / min). Controllare il livello di anestesia pizzicando l&#39;area interdigitale. Se il ratto è anestetizzato in modo adeguato, i riflessi difensivi sono aboliti (cioè il ritiro del piede). </li><li> Monitorare la respirazione e risposta alla stimolazione durante la procedura e regolare il vaporizzatore secondo necessità. </li><li> Applicare veterinario pomata sugli occhi per prevenire la secchezza mentre sotto anestesia. Monitorare e mantenere la temperatura corporea a 37 ± 0,5 ° C da un sistema di riscaldamento di feedback controllato. </li></ol> 2. Chirurgia <ol><li> Mantenere il campo chirurgico sterile durante tutta la chirurgia. Una volta che le mani surgeon&#39;s sono sterili e il campo operatorio è sterile, solo spostare carefully e ricordarsi di non rompere la sterilità. Questo implica anche un campo sterile (ad esempio, tende impermeabili sterili) su cui si può posare strumenti. </li><li> Iniettare 0,2 ml mepivacaina sottocutanea nel centro dell&#39;area rasata. Mepivacaine è un anestetico locale che ha una durata di azione di fino a 3 ore. Sarà anestetizzare ulteriormente la zona chirurgica. </li><li> Usando un bisturi, fare una incisione mediana di partenza tra le orecchie e si estende verso 2 cm. Assicurarsi che il periostio (membrana lucida sotto la pelle) è anche inciso. Esporre il cranio con quattro pinze (Figura 2). </li><li> Usando un batuffolo di cotone, rimuovere delicatamente il periostio fino a quando le suture coronali e sagittali sono esposti; da allora in poi, fermare il sangue con un batuffolo di cotone. </li><li> Determinare le coordinate del bregma utilizzando un ago fissato ad un supporto sonda, e segnare la punta dell&#39;ago con un pennarello nero. Utilizzando l&#39;anteriore / posteriore (AP), linea mediana / laterali(ML) e le viti dorsoventrale (DV) di unità, posizionare la punta dell&#39;ago direttamente sopra il bregma. </li><li> Prendere la AP e ML letture nonio: sottrarre 3,6 millimetri dalla lettura di AP e 2,5 mm dalla lettura ML per impianto di elettrodi nel STN destra, o aggiungere 2,5 millimetri per impianto di elettrodi nel STN sinistra. Questa posizione sarà caratterizzata dal colorante del pennarello dopo abbassando la punta dell&#39;ago alla superficie del cranio. </li><li> Fissare il trapano dentistico sul grande porta sonda dello strumento stereotassico. Spostare il trapano dentale all&#39;area calcolata - cioè, il punto marcato sul cranio. Guardando attraverso il microscopio, un foro (diametro circa 1 mm) attraverso il cranio finché la dura è visibile (cranio è spesso circa 1 mm). Ritrarre la dura con pinze micro-dissezione o un ago sterile. La dura è abbastanza resistente per distruggere la punta dell&#39;elettrodo. </li><li> Praticare un foro con il trapano dentale in ogni squama frontale e nella interparietal squama fronte al foro dell&#39;elettrodo. Scollegare il supporto della sonda dallo strumento stereotassico. Non trapanare su una sutura cranio vasi venosi seguono le suture sotto il cranio. </li><li> Avvitare una vite ossea in ciascuno dei cinque fori. Evitare di infilare le viti troppo in profondità. Per viti di acciaio inossidabile (M1.6), 2-3 giri della vite un&#39;adeguata tenere la vite senza mettere pressione sul cervello. Il numero di giri dipende dal passo della vite. Bloccare il supporto sonda con l&#39;elettrodo nel micromanipolatore (Figura 3). </li><li> Utilizzando le viti dell&#39;unità AP, ML e DV, spostare il supporto della sonda con l&#39;elettrodo fino a quando la punta è quasi a toccare il bregma. Nota le letture nonio AP, ML e DV al bregma. Quando le letture sono fatte, sollevare l&#39;elettrodo di pochi millimetri per impedire l&#39;elettrodo dal raschiare cranio durante il movimento. Per determinare le coordinate della posizione in cui l&#39;elettrodo deve essere inserita inal foro, aggiungere 3,6 mm alla lettura AP e aggiungere (o sottrarre) 2,5 mm alla lettura ML. </li><li> Utilizzando le viti AP e azionamento ML, spostare l&#39;elettrodo in posizione calcolata. A questo punto, la punta dell&#39;elettrodo dovrebbe essere situato direttamente sopra il foro trapanato dell&#39;elettrodo. Poi, guardando attraverso il microscopio, abbassare l&#39;elettrodo al livello della dura (Figura 4). Questo livello serve come livello zero nella direzione DV. Successivamente, inserire delicatamente la punta dell&#39;elettrodo nel cervello, cercando attraverso il microscopio. </li><li> Collegare il perno dell&#39;elettrodo al connettore del sistema di registrazione. Mettere una gabbia di Faraday (o sostituirlo con un foglio di alluminio) su ratto nello strumento stereotassico (Figura 5). A terra lo strumento stereotassico con il contrappeso della stanza che si sta lavorando in. </li><li> Avviare il sistema di registrazione. Se disponibile, utilizzare anche un altoparlante per ottenere un segnale acustico di scarichi / pomate di singole unità durante advancing dell&#39;elettrodo. </li><li> Lentamente inserire l&#39;elettrodo nel cervello registrando l&#39;attività elettrica durante l&#39;avanzamento dell&#39;elettrodo. Ad una profondità compresa tra 7,5 e 8,1 mm dalla dura madre, l&#39;attività elettrica specifica del STN è generalmente rilevabili (Figura 6). L&#39;attività tipica dei neuroni nel STN è caratterizzata da un schema di accensione irregolare e un alto tasso di fuoco (frequenza media: 40.9 ± 12.9 Hz) 18. </li><li> Durante la registrazione, ridurre anestesia per quanto possibile (ad esempio, a 0.8-1.0%); animali anestetizzati basso mostrano attività cerebrale elettrica chiara. </li><li> Tampone distanza sangue o liquido cerebrospinale che è stato spostato alla superficie del cranio quando si abbassa l&#39;elettrodo. </li><li> Mescolare una piccola quantità di cemento dentale e applicarlo intorno all&#39;elettrodo ed intorno quattro dei cinque viti utilizzando una piccola spatola (Figura 7). Il quinto vite sarà utilizzato per fissare il cavo di terra della spina. </li><li> Staccare la spina elettrodo dal portaelettrodo e il connettore del sistema di registrazione all&#39;atto della fissazione del cemento dentale. </li><li> Svitare la vite che non è stato fissato dal cemento dentale. Mettere il tappo sul perno dell&#39;elettrodo. Fissare il cavo di terra della spina con la quinta vite (Figura 8). </li><li> Mescolare cemento dentale e applicarlo intorno al tappo. Come il cemento si ispessisce, plasmarlo intorno al tappo per formare un tappo. Evitare bordi taglienti del cemento dentale che possono danneggiare l&#39;animale e rimuoverli durante l&#39;indurimento (Figura 9A e B). </li><li> Sbrigliare bordi della ferita e chiudere con una sutura sul davanti e dietro il tappo. Disinfettare i bordi della ferita. </li><li> Collegare la spina testa per il filo che è fissato su un supporto girevole. Rimuovere il ratto dallo strumento stereotassico. </li><li> Applicare tramadolo (12,5 mg / kg, per via intraperitoneale) alla fine dell&#39;intervento e poi una volta al giorno per 2-3 giorni. Mettere il topo in una gabbia pulita con thermasupporto l, fissare la girella su questa gabbia (Figura 10) e controllare con attenzione per 1 ora. </li><li> Non lasciare un animale incustodito fino a quando non ha ripreso conoscenza sufficiente a mantenere decubito sternale. Non restituire un animale che ha subito un intervento chirurgico per la compagnia di altri animali fino alla completa guarigione. </li></ol> 3. Stimolazione <ol><li> Determinare la resistenza nell&#39;animale prima della stimolazione mediante un misuratore di impedenza. </li><li> Collegare la spina del girevole con un filo e le spine all&#39;altra estremità del filo con la corrente di uscita e l&#39;uscita per il cavo di massa dello stimolatore. Collegare lo stimolatore con un computer per programmare lo stimolatore. </li><li> Scegliere i parametri di stimolazione nel programma; per esempio, i parametri utilizzati nella malattia di Parkinson sono lunghezza dell&#39;impulso: 60 msec; Frequenza: 130 Hz. Stimolare il topo con una ampiezza della corrente crescente fino discinesia sono riconosciuti. Ridurre °e l&#39;intensità elettrica del 10-20% al di sotto l&#39;intensità che ha suscitato discinesia o fino a segni neurologici scompaiono e l&#39;animale è confortevole. Impulsi rettangolari monofasici sono stati utilizzati in questo studio. </li><li> Dopo aver completato l&#39;esperimento, l&#39;eutanasia l&#39;animale con isoflurano: Regolare il flusso isofurane o la concentrazione al 5% o superiore. Continuare esposizione isoflurano fino al 1 ° min dopo il respiro si ferma. </li></ol>

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Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

<html> Questo studio presenta una serie passo-passo di istruzioni per impiantare un elettrodo monopolare cronica nel STN di ratti. Sebbene elettrodi di tungsteno con bassa impedenza sono spesso utilizzati per DBS 18,19, un elettrodo monopolare di platino / iridio (Pt / Ir) è stata impiegata che aveva un&#39;impedenza di circa 1 MW. Elettrodi Pt / Ir sono utilizzati anche nei pazienti con malattia di Parkinson a causa delle loro proprietà favorevoli: dimostrano minima erosione 20 e non producono dann...

La stimolazione cerebrale profonda (DBS) è un trattamento basato sulla fornitura di impulsi elettrici tramite elettrodi impiantati a specifiche strutture cerebrali, come il globo pallido interno 1, nucleo subtalamico (STN) 2 - 4 o ventrale talamo intermedia 5. Negli ultimi due decenni, questo trattamento è stato stabilito come un potente strumento terapeutico per la malattia di Parkinson, 1-4, distonia 6 e tremori 7, e viene usato anche per modulare il dolore cronico 7, disturbi psichiatrici (ad esempio, disturbo ossessivo-compulsivo 8, depressione maggiore 9) o epilessia intrattabile 10,11. Inoltre, DBS potrebbe, in futuro, diventare una opzione di trattamento per l&#39;ipertensione arteriosa refrattaria 12 o ipotensione ortostatica 13. I meccanismi fisiologici alla base degli effettidi DBS rimanere poco conosciuta. Studi in roditori anestetizzati hanno fornito spaccato risposte neurali alla stimolazione ad alta frequenza che riproducono clinicamente applicato DBS 14. Tuttavia, questi studi non solo non hanno conferme comportamentale dell&#39;effetto DBS ma anche provocare una notevole variabilità a seconda dei parametri di stimolazione applicata 14. Per studiare in modo più conciso gli effetti comportamentali e dei meccanismi alla base della DBS nei roditori cosciente, è necessaria una stimolazione di set-up che soddisfa i requisiti specifici. DBS è principalmente usato come una terapia a lungo termine (ad esempio, il morbo di Parkinson, il dolore cronico). Così, la stimolazione set-up in roditori dovrebbe essere progettato in modo che il gruppo è costituito da un elettrodo con un tappo, così come un filo dalla spina di uno stimolatore esterno; e questa unità deve essere leggero ma infrangibile quando fissato sul cranio. Inoltre, la libertà di movimento è indispensabile per i ratti durante stimolizione per un periodo prolungato. Le strutture di destinazione della DBS sono piccole; per esempio, il STN in ratti ha una lunghezza di 1,2 mm ed un volume di 0,8 mm 3,15. Pertanto, gli elettrodi devono essere progettati in modo tale che il nucleo non è lesionato durante l&#39;inserimento e il targeting esigenze per essere precisi. Come la maggior parte degli studi condotti in roditori DBS hanno usato punto di riferimento basato inserimento stereotassica dell&#39;elettrodo alla struttura di destinazione, il tasso di errore può essere relativamente alto, anche quando si utilizza le coordinate secondo Paxinos e Watson 16. Ciò si traduce in un maggior numero di animali necessari per raggiungere un risultato statisticamente significativo. Nel presente studio una tecnica di impianto dell&#39;elettrodo viene introdotta, che rivolge la STN con elevata precisione utilizzando un sistema microrecording mentre avanza l&#39;elettrodo. Inoltre, un sistema di stimolazione viene presentato che non solo consente un elevato grado di mobilità per l&#39;animale stimolata ma garantisce anche stimulati continuain via fissaggio sicuro del filo stimolazione (che è protetto da una molla in acciaio inossidabile) sulla testa del ratto.

<table><tbody><tr><td>Elettrodo Pt/Ir</td><td>FHC Inc.</td><td>UE</td><td>Su misura: Specifica: Spine UEPSEGSECN1M</td></tr><tr><td></td><td>GT Labortechnik (Arnstein/Germania)</td><td></td><td>Connettore maschio su misura</td></tr><tr><td></td><td>DISTRELEC</td><td>143-95-324</td><td>fila singola, 90&deg; 1x3 datamate, Tipo M80-8420342</td></tr><tr><td>Presa</td><td>DISTRELEC</td><td>143-95-621</td><td>fila singola, dritta 2 mm polo n.1 x 3 datamate, Tipo M80-8400342</td></tr><tr><td>Molla in acciaio inox</td><td>Plastica ONE</td><td>SS0102</td><td>Parte-#: .120 X .156 ID molla (mm): 3.0&nbsp; Diametro esterno molla (mm): 4.0</td></tr><tr><td>Cemento dentale/Paladur</td><td>Heraeus Kulzer</td><td>64707938</td><td>Liquido, 500 ml</td></tr><tr><td>Cemento dentale/Paladur</td><td>Heraeus Kulzer</td><td>64707954</td><td>Polvere, rosa, 500 g</td></tr><tr><td>Vite a testa</td><td>Hummer & Reiss</td><td>V2ADIN84 M1.6x3</td><td></td></tr><tr><td>Jodosept PVP</td><td>Vetoquinol</td><td></td><td>435678/E04</td></tr><tr><td>Mepivacain 1%</td><td>AstraZeneca</td><td></td><td>PZN03338515</td></tr><tr><td>Epinefrina</td><td>Sanofi-Aventis</td><td></td><td>PZN00176118</td></tr><tr><td>Tramadolcloridrato</td><td>Rotexmedica</td><td></td><td>38449.00.00</td></tr></tbody></table>

microelettrodo guidata impianto di elettrodi nel subtalamico nucleo di ratti per lungo termine stimolazione cerebrale profonda

Microelectrode Guided Implantation of Electrodes into the Subthalamic Nucleus of Rats for Long-term Deep Brain Stimulation

La stimolazione cerebrale profonda (DBS) è una terapia ampiamente utilizzato ed efficace per diversi disturbi neurologici, come la malattia di Parkinson idiopatica, distonia o tremori. DBS si basa sulla fornitura di stimoli elettrici specifici profonde strutture anatomiche del sistema nervoso centrale. Tuttavia, i meccanismi alla base l&#39;effetto di DBS rimangono enigmatici. Ciò ha portato ad un interesse per investigare l&#39;impatto di DBS in modelli animali, specialmente nei ratti. Come DBS è una terapia a lungo termine, la ricerca deve essere incentrata sui cambiamenti molecolari, genetiche di circuiti neurali che si verificano diverse settimane dopo DBS. A lungo termine DBS nei ratti è impegnativo, perché i ratti muovono nella loro gabbia, che causa problemi a mantenere in posizione il filo conduttore dalla testa dell&#39;animale allo stimolatore. Inoltre, strutture bersaglio per stimolazione nel cervello di ratto sono piccole e quindi elettrodi non possono essere facilmente inseriti nella posizione desiderata. Così, un set-up di lunga durata stimolizione di ratti con elettrodi di platino / iridio con un&#39;impedenza di circa 1 MW è stato sviluppato per questo studio. Un elettrodo con queste specifiche permette non solo la stimolazione adeguata, ma anche la registrazione delle strutture cerebrali profonde per identificare l&#39;area di destinazione per DBS. Nel nostro set-up, un elettrodo con una presa per il cavo è stato incorporato in cemento dentale con quattro viti di ancoraggio fissati sul cranio. Il filo dalla spina allo stimolatore era protetta da una molla in acciaio inox. Un girevole è collegato al circuito di impedire il filo di aggrovigliarsi. In generale, questa stimolazione set-up offre un elevato grado di mobilità libera per ratto e permette la spina testa, così come il collegamento del filo tra la spina e lo stimolatore, di mantenere la forza di lunga durata.

Impiantare un elettrodo nel STN di un ratto utilizzando un sistema di registrazione - come presentato qui - è una procedura efficace e preciso per DBS che richiede circa 1 ora per animale. Questo modello è una procedura abbastanza minore: su 10 ratti sottoposti a intervento chirurgico, tutto sopravvissuti dell&#39;intervento. Ventiquattro ore dopo l&#39;intervento, lo stato di ciascun ratto è stato monitorato e nessun animale realizzato più di 1 di 3 punti in base al codice di gravità. Durante il periodo di continua sti...

Viene descritto un metodo per impiantare elettrodi nel nucleo subtalamico (STN) dei ratti. Una migliore localizzazione dell'STN è stata ottenuta utilizzando un sistema di microregistrazione. Inoltre, viene presentato un set-up di stimolazione caratterizzato da connessioni di lunga durata tra la testa dell'animale e lo stimolatore.

Microelettrodo guidata impianto di elettrodi nel subtalamico Nucleo di Ratti per lungo termine stimolazione cerebrale profonda

Deep brain stimulation (DBS) is a widely used and effective therapy for several neurologic disorders, such as idiopathic Parkinson&#8217;s disease, ...

L'obiettivo generale di questa procedura è eseguire un'impianto guidato da registrazione di microelettrodi nel nucleo sottotalamico di ratti, seguito da una stimolazione a lungo termine di questo nucleo. Questo viene realizzato innanzitutto praticando un foro per l'elettrodo attraverso il cranio esposto. Il secondo passaggio consiste nell'avanzare l'elettrodo attraverso il foro nel cranio fino al cervello, registrando contemporaneamente l'attività elettrica in diverse regioni cerebrali finché non viene rilevata l'attività specifica del STN.Successivamente, l'elettrodo viene fissato applicando del cemento dentale intorno al gambo dell'elettrodo, e il connettore cranico viene collegato al perno dell'elettrodo. L'ultimo passaggio consiste nel fissare il connettore con il cemento dentale e nel collegarlo al filo che conduce allo stimolatore. Infine, il cervello prelevato viene tagliato in sezioni spesse otto micron e colorato con ematossilina, eosina e eoin per dimostrare che la punta dell'elettrodo è posizionata nel nucleo sottotalamico.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come l'implantazione cieca dell'elettrodo, è che l'implantazione guidata dalla

microelectrode-guided-implantation-electrodes-into-subthalamic

Research

Ricerca

JoVE Journal

Neuroscience

Neuroscienze

Fonte: Batra, V., et al. Un metodo generale per valutare gli effetti della stimolazione cerebrale profonda sull'autosomministrazione di metanfetamina per via endovenosa. J. Vis. Exp. (2016).Questo video mostra un modello di tossicodipendenza nel ratto in cui l'animale si autosomministra metanfetamina per via endovenosa premendo una leva, portando a un comportamento compulsivo di ricerca di droghe guidato dal rilascio di dopamina nel nucleo accumbens. Per contrastare questo, il ratto viene...

Stimolazione cerebrale profonda come trattamento per la tossicodipendenza in un modello di ratto

Fonte: Selvakumar, T., et al., Analisi dei cambiamenti dell'espressione genica nell'ippocampo del ratto dopo la stimolazione cerebrale profonda del nucleo talamico anteriore. J. Vis. Exp. (2015)Questo video mostra la procedura per l'impianto di elettrodi nel cervello di ratto per applicare la stimolazione cerebrale profonda (DBS), che modula l'attività neuronale e migliora la comunicazione con l'ippocampo, supportando la sopravvivenza neuronale e la neurogenesi.

Effetti della stimolazione cerebrale profonda sull'attività neuronale dell'ippocampo in un modello di ratto

Il video mostra una procedura per impiantare un'unità di elettrodi multicanale bidirezionale wireless nel cervello di un ratto per registrare e stimolare reti neurali multicanale.

Impianto di un sistema di microelettrodi bidirezionali wireless in un cervello di ratto

Il video mostra una procedura per impiantare un elettrodo nel nucleo subtalamico di un ratto per fornire stimoli elettrici.

Impianto di un elettrodo nel nucleo subtalamico di un ratto

Questo protocollo descrive un metodo standard per la simultanea risonanza magnetica funzionale e la stimolazione cerebrale profonda nei roditori. L'uso combinato di questi strumenti sperimentali consente l'esplorazione di attività downstream globale in risposta alla stimolazione elettrica a qualsiasi bersaglio cervello.

La stimolazione cerebrale profonda con simultanea fMRI in Roditori

Il meccanismo alla base degli effetti terapeutici della chirurgia di Stimolazione Cerebrale Profonda (DBS) deve essere studiato. I metodi presentati in questo manoscritto descrivono un approccio sperimentale per esaminare gli eventi cellulari innescati dalla DBS analizzando il profilo di espressione genica di geni candidati che possono facilitare la neurogenesi dopo l'intervento chirurgico di DBS.

Analisi delle variazioni di espressione genica nel Rat Hippocampus Dopo stimolazione cerebrale profonda del nucleo anteriore talamiche

Questo articolo descrive l'erogazione di stimolazione elettrica intracranica che è temporalmente e spazialmente separata dall'ambiente di uso della droga per il trattamento della dipendenza da metanfetamina per via endovenosa.

Un metodo generale per la valutazione effetti di stimolazione cerebrale profonda per via endovenosa Methamphetamine Self-Amministrazione

Questo protocollo dettagliato descrive il posizionamento di elettrodo stimolazione transcranica su osso temporale al fine di studiare gli effetti a breve e a lungo termine della stimolazione elettrica transcranica in liberi di muoversi.

Stimolazione elettrica transcranica cronica e registrazione intracorticale in ratti

Questo protocollo viene illustrato come impostare un metodo affidabile di HFS in topi. Neuroni nel giro dentato dell'ippocampo sono stimolati elettricamente da HFS direttamente e indirettamente in vivo. Attività neuronale e induzione di segnali molecolari sono esaminate dal c-fos e macchiatura immunofluorescente Notch1, rispettivamente; neurogenesi è quantificata mediante analisi di etichettatura della bromodeossiuridina.

Un metodo invasivo per l'attivazione della circonvoluzione dentata del Mouse dalla stimolazione ad alta frequenza

Qui, presentiamo un metodo per la valutazione delle prestazioni e della sicurezza a lungo termine di array di elettrodi subdurali morbidi in un modello di minipig, descrivendo il metodo e gli strumenti chirurgici, la risonanza magnetica postoperatoria, l'elettrofisiologia della corteccia uditiva, le proprietà elettrochimiche dell'impianto e l'immunochimica post-mortem.

Impianto di array di elettrocorticografia morbida subdurale (ECoG) e registrazione corticale a lungo termine nei minipig

Qui descriviamo un protocollo per registrazioni ex vivo di array di microelettrodi ad alta densità da fette cerebrali cerebellari acute di un modello distonico di criceto ricevuto in vivo. Stimolazione cerebrale pallidale profonda continua per 11 giorni.

Indagine dei meccanismi a livello di rete della stimolazione pallidale profonda del cervello utilizzando array di microelettrodi ad alta densità

Scopri l'impianto guidato di microelettrodi nel nucleo subtalamico di ratti per stimolazione cerebrale profonda a lungo termine. Questa tecnica migliora la localizzazione precisa e consente studi neurofisiologici avanzati.

Microelettrodo guidata impianto di elettrodi nel subtalamico Nucleo di Ratti per lungo termine stimolazione cerebrale profonda

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