Name: 接着および非接着性の哺乳動物細胞の in situ細胞下分画で (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-07-23T17:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 20 s
Description: 学ぶ in situ細胞下分画法で哺乳動物細胞のタンパク質局在を可視化する方法。免疫蛍光顕微鏡を用いて細胞質・核タンパク質・クロマチン画分を分離し、タンパク質の相互作用と機能を解析する技術です。

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Anyaporn SawasdichaiとNazefahアブドゥルハミドは、博士号のためにそれぞれタイ王国政府とマレーシア政府に感謝しています奨学金。この作品は、PSJとKGに授与ウェルカムトラストのプロジェクトの助成金によって賄われていた。我々はまた、ブリストルウォルフソンのバイオイメージング施設の大学に感謝しています。

分別のためのI.準備このセクションでは、ポリ- L -リジンコートした顕微鏡のカバーガラスと分画の前に細胞の添付ファイルの準備について説明します。必要に応じて細胞は一過性に付着前または後に、タンパク質の発現ベクターをトランスフェクトすることができます。 ポリ- L -リジンコートしたカバースリップのA.の準備<ol><li>蒸留水で1mg/mlポリ- L -リジンの溶液を調製します。 </li><li> 22にロッキングプラットフォーム上で少なくとも1時間溶液中でそれらをインキュベートすることによりポリ- L -リジンでコーティングクリーンカバースリップ℃に</li><li>二回滅菌蒸留水でコーティングされたカバーガラスを洗浄し、96％エタノールを持つ単一の洗浄に従ってください。 </li><li>空気はフィルター紙の上にコーティングされたカバーガラスを乾燥させ、将来の使用のためのドライコンテナ（一度乾燥、それらを積層することができます）に保管してください。 </li></ol>カバーガラスにB.添付細胞非接着細胞（ここでは、K562細胞を使用） <ol><li>上向きにコーティングされた表面を有する6ウェルプレートのウェル中のポリ- L -リジンコートしたカバースリップを配置。 </li><li> /よくダルベッコ変法イーグル10％ウシ胎児血清（FBS）を添加した培地（DMEM）、およびPS（ペニシリン100units/ml、ストレプトマイシン100mg/ml）の7 × 10 5細胞の密度でシードK562細胞。 K562細胞の場合には一過性トランスフェクションは、細胞を播種する前に、エレクトロポレーション（250V /975μFでのメディアの200μlの中の1 × 10 7細胞と0.4センチメートルエレクトロポレーションキュベット）を使用して実行することができます。 </li><li> 37℃、5％のC CO 2で24時間細胞をインキュベートする。 </li><li>培地を捨て、生理食塩水（PBS）バッファリングされた氷冷リン酸で細胞を2回洗浄する。 </li><li>細胞下分画プロトコルで従ってください。 </li></ol>接着細胞（ここでは、Cos - 7細胞を使用） <ol><li> 6ウェルプレートのウェルにコーティングされていないカバースリップを配置。 </li><li> PBSで2回洗浄は37℃で温した</li><li> 37℃でPBS中のトリプシン（0.03％EDTA、0.25％トリプシン）で消化して細胞を剥離℃で2〜5分間。細胞を過剰消化するために、主に個々の浮遊細胞が存在するとすぐに消化を停止しないことが重要です。 </li><li> /ウェル、10％FBSとPSG（ペニシリン100単位/ ml、ストレプトマイシン100ug/mlとL -グルタミン292ug/ml）を添加したDMEMで6穴プレートに3 × 10 5細胞の密度で細胞を播種による消化を停止する、通常のカバースリップ上で。接着細胞は、一般的に必要に応じしかし、ポリ- L -リジンコートしたカバースリップを使用することができる、通常の顕微鏡のカバースリップの上にも添付する。 </li><li> 37℃、5％CO 2で24時間細胞をインキュベートする。の場合Cos - 7細胞で一過性トランスフェクションは、トランスフェ6（Roche社）であれば、必要なと37℃でさらに24時間℃、5％のCO 2を回収するために左のセルを用いて行うことができる。 </li><li>培地を捨て、氷冷したPBSで細胞を2回洗浄する。 </li><li>細胞下分画プロトコルで従ってください。 </li></ol> II。細胞下分画 その場分数で回路図を図1に示すように、と変更以前に7と以下の詳細なプロトコールに記載してこれまで5に記載の方法に基づいているに応じて実行されます。それは、液体を除去する前にカバーを取り外し、各分画ステップの後、新鮮な6ウェルプレートにカバースリップを転送することをお勧めします。わずか4カバースリップが撮像が必要であるが、追加のカバースリップは、これは並列に実行する場合は、ウェスタンブロッティングのための全細胞抽出液と核マトリックスの分画を生成するために必要とされています。 <ol><li> 10mMのPIPES、300mmのスクロース、100mMの塩化ナトリウム、3mmののMgCl 2、1mMのEGTA：細胞骨格のバッファ（CSK）を準備し、フィルタ。 CSKバッファーは、新鮮な分別の日に準備する必要があります。 </li><li>必要な場合は、1つのカバースリップから細胞を穏やかに直接カバーガラスの上に200ulのTESバッファー（1％SDS、2mMのEDTA、20mMのトリス- HCl pH7.4）を配置し、1〜2分間インキュベートすることにより、ウェスタンブロッティングのために全細胞抽出液を調製するために使用することができます。 22℃全細胞抽出液を除去し、タンパク質は、1Mの250ul（NH 4）2 SO 4を添加すると、他の西部のサンプルが準備が整うまで氷上でインキュベートすることにより、沈殿させることができる。 </li><li> 22℃傾けて6ウェルプレートに2〜3回で二回1ミリリットルの氷冷PBSで残りのカバーグラスを洗ってください。 </li><li>細胞全体と新鮮な6 - ウェルプレートへの転送を表すカバーを取り外します。細胞の固定と免疫蛍光プロトコルに従ってください。 </li><li>静かに残りのウェルからPBSを取り除く。 </li><li> + 0.1％（V / V）トリトンX - 100は、それぞれの残りのカバーグラス上に直接静かに200ulのCSKのバッファを配置することにより、細胞質と緩く保有核タンパク質を抽出し、上でインキュベートする1分間氷。 </li><li>細胞質を削除し、緩く、ステップ2で説明した核抽出液と沈殿物を開催しました。 </li><li> 22で二回1ミリリットルの氷冷PBSでカバーグラスを洗う° Cを傾け6ウェルプレートで。 </li><li>しっかりと開催された核物質を表すカバーを取り外して、細胞の固定と免疫蛍光プロトコルに従ってください。 </li><li>優しく+ 0.5％（V / V）トリトンX - 100は、残りの各カバースリップ上に直接優しく200ul CSKのバッファを配置することによって、しっかりと保持しタンパク質を抽出し、20分間氷上でインキュベート後、残りのウェルからPBSを取り除く。 </li><li>しっかりと開催されたエキスを取り出して、ステップ2で説明したように沈殿する。 </li><li> 22で二回1ミリリットルの氷冷PBSでカバーグラスを洗う° Cを傾け6ウェルプレートで。 </li><li>クロマチン画分を表すカバーを取り外して、細胞の固定と免疫蛍光プロトコルに従ってください。 </li><li>そっとして場所200ul CSKバッファー+ 100ug/ml DNase Iの30分の残りのカバーガラスとインキュベート上で37℃、残りのウェルからPBSを削除する</li><li>クロマチンエキスを削除し、手順2で説明したように沈殿する。 </li><li> ° C傾け6ウェルプレート22に回氷冷PBSでカバーグラスを洗ってください。 </li><li>核マトリックス画分を表すカバーを取り外して、細胞の固定と免疫蛍光プロトコルに従ってください。 </li><li>必要に応じてマトリックスタンパク質は、ステップ2で説明したように200ulのTES緩衝液を用いてウェスタンブロットのための追加的な行列のカバースリップから削除することができます。 </li><li>ウェスタンブロット用サンプルは4℃ベンチトップ遠心機で13000rpmで遠心分離されるべき℃、40ul SDSローディングバッファー（62.5mMトリス- HCl、pH6.8、2％SDS（w / v）の、50mMのDTT、中に再懸濁したペレットSDS - PAGEによる分析の前に10％グリセロール、0.01％ブロモフェノールブルー（W / V））。 <img src="/files/ftp_upload/1958/1958fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。回路図上皮細胞下分画での表現。細胞骨格のバッファ（CSK）は、10mMのPIPES、300mmのスクロース、100mMの塩化ナトリウム、3mmのMgCl 2を 、1mMのEGTAで構成されています。 TESバッファーは、1％SDS、2mMのEDTA、20mMのトリス- HCl pH7.4の構成されています。 </li></ol> III。細胞の固定と免疫蛍光<ol><li>ゆっくりと30分間、4℃でそれぞれカバーしてインキュベート° Cに4％ホルムアルデヒド/ PBSを1mlを加える。 </li><li>各カバースリップ22のPBSを1mlと軽く2〜3回℃を洗う</li><li> 10分間22℃でそれぞれカバーしてインキュベートして、0.1％トリトンX-100/PBSの400ulを追加。 </li><li>各カバースリップ22のPBSを1mlと軽く2〜3回℃を洗う</li><li>潜在的なバックグラウンド染色を低減するために20分間22℃で3％ウシ血清アルブミン（BSA）/ PBSとインキュベートの400ulを追加。 </li><li>各カバースリップ22のPBSを1mlと軽く2〜3回℃を洗う</li><li>直接1時間22℃でカバースリップとインキュベート上にPBSで一次抗体の代わりに100ul。一次および二次抗体は、所望の濃度にPBSで希釈してください。これは、使用される各抗体のために最適化する必要があります。 </li><li>各カバースリップ22のPBSを1mlと軽く2〜3回℃を洗う</li><li> 22のPBSとインキュベートにおける二次抗体の代わりに200ul℃で1時間離れて軽いからC。 </li><li>各カバースリップ22のPBSを1mlと軽く2〜3回℃を洗う</li><li> DAPI（4',6 -ジアミジノ-2 - フェニル塩酸塩）を含むVectashieldマウンティング培地を用いてガラスの顕微鏡スライド上に各カバースリップを（細胞がダウンして）マウントする。 </li><li>ペーパータオルを使用してカバースリップの周りから余分な封入剤をふき取り、少なくとも30分の光を避け、22℃でスライドをインキュベートする。 </li><li>透明なアクリルのマニキュアを使ってガラススライドにカバースリップを修正。 </li><li>蛍光顕微鏡による可視化する前に離れて光からスライドしてください。 </li></ol> IV。代表的な結果<img src="/files/ftp_upload/1958/1958fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。非トランスフェクトしたCOS - 7細胞の細胞下分画。分別したCos - 7細胞をホルムアルデヒドで固定し、DAPIを含む封入剤で処理しTRITCに共役/ C抗体α-チューブリン、α-ヒストンH1またはα-ラミンを使用して免疫染色を行った。画像は、10倍接眼レンズとライカ共焦点顕微鏡を使用して63x対物レンズで取得した。細胞核は、マーカー抗体で染色した同じ分野の細胞中にDAPIフィルターセットを用いて可視化したTRITCフィルターセットを用いて可視化した。 <img src="/files/ftp_upload/1958/1958fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。 GFP - 6E2融合タンパク質は核マトリックスに関連付けられています。ヒトパピローマウイルス（HPV）タイプ6に融合された緑色蛍光タンパク質（GFP）で構成される融合タンパク質を発現しているCOS - 7細胞の細胞下分画E2タンパク質（GFP - 6E2）。トランスフェクトされた細胞におけるGFP - 6E2の局在は、GFP蛍光を経由して直接視覚化された一方細胞核はDAPI染色を介して可視化した。ラミンA / Cは、α-ラミンTRITCおよびTRITCフィルターセットに結合したA / C抗体を用いて可視化した。マージのイメージは、GFP - 6E2タンパク質の一部は核マトリックス（右下のパネル）に関連付けられていることを明らかにする。図2で説明したように画像が得られた。

<ol><li>Donaldson, M. M., Boner, W., Morgan, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TopBP1+regulates+human+papillomavirus+type+16+E2+interaction+with+chromatin%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">TopBP1 regulates human papillomavirus type 16 E2 interaction with chromatin.</a> J Virol. 81, 4338-4342 (2007).</li>
<li>Javed, A., Guo, B., Hiebert, S., Choi, J. Y., Green, J., Zhao, S. C., Osborne, M. A., Stifani, S., Stein, J. L., Lian, J. B., van Wijnen, A. J., Stein, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Groucho%2FTLE%2FR-esp+proteins+associate+with+the+nuclear+matrix+and+repress+RUNX+%28CBF%28alpha%29%2FAML%2FPEBP2%28alpha%29%29+dependent+activation+of+tissue-specific+gene+transcription%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Groucho/TLE/R-esp proteins associate with the nuclear matrix and repress RUNX (CBF(alpha)/AML/PEBP2(alpha)) dependent activation of tissue-specific gene transcription.</a> J Cell Sci. 113, 2221-2231 (2000).</li>
<li>Kowalczyk, A. M., Roeder, G. E., Green, K., Stephens, D. J., Gaston, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+the+induction+or+inhibition+of+apoptosis+by+HPV+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Measuring the induction or inhibition of apoptosis by HPV proteins.</a> Methods Mol. Med. 119, 419-432 (2005).</li>
<li>McLarren, K. W., Theriault, F. M., Stifani, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+with+the+nuclear+matrix+and+interaction+with+Groucho+and+RUNX+proteins+regulate+the+transcription+repression+activity+of+the+basic+helix+loop+helix+factor+Hes1%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Association with the nuclear matrix and interaction with Groucho and RUNX proteins regulate the transcription repression activity of the basic helix loop helix factor Hes1.</a> J Biol. Chem. 276, 1578-1584 (2001).</li>
<li>McNeil, S., Guo, B., Stein, J. L., Lian, J. B., Bushmeyer, S., Seto, E., Atchison, M. L., Penman, S., van Wijnen, A. J., Stein, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+of+the+YY1+transcription+factor+to+the+nucleolus+and+the+nuclear+matrix+in+situ%3A+the+C-terminus+is+a+principal+determinant+for+nuclear+trafficking%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">Targeting of the YY1 transcription factor to the nucleolus and the nuclear matrix in situ: the C-terminus is a principal determinant for nuclear trafficking.</a> J Cell Biochem. 68, 500-510 (1998).</li>
<li>Melan, M. A., Sluder, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redistribution+and+differential+extraction+of+soluble+proteins+in+permeabilized+cultured+cells.+Implications+for+immunofluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Redistribution and differential extraction of soluble proteins in permeabilized cultured cells. Implications for immunofluorescence microscopy.</a> J Cell Sci. 101, 731-743 (1992).</li>
<li>Zou, N., Lin, B. Y., Duan, F., Lee, K. Y., Jin, G., Guan, R., Yao, G., Lefkowitz, E. J., Broker, T. R., Chow, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hinge+of+the+human+papillomavirus+type+11+E2+protein+contains+major+determinants+for+nuclear+localization+and+nuclear+matrix+association%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">The hinge of the human papillomavirus type 11 E2 protein contains major determinants for nuclear localization and nuclear matrix association.</a> J. Virol. 74, 3761-3770 (2000).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

一般的な問題や提案： すべてまたは細胞のほとんどは、洗浄中に失われます。洗浄ステップ中に液体がカバースリップを避ける6ウェルプレートの側に徐々に追加する必要があります。同様に液体を慎重に傾けプレートによって除去されるべきであると徐々に余分な水分をオフにピペッティング。細胞接着は、ポリ- L -リジンコートしたカバースリップを使用して増やすことができます。 ゲノムDNAを完全に消化されていません。いくつかの細胞型のためにDNase Iによる消化工程では、ゲノムDNAの完全な除去を達成するために拡張され、/またはDNase Iの濃度が増加する必要があります。 固定と分別アーティファクト。いくつかのタンパク質が固定または分画6でrelocalizeできることに注意することは重要です。例えば、核膜の核は、次の崩壊から放出されたタンパク質は、そうでない場合は十分に分離区画に置かれるサイトにバインドできます。これらの効果は、ホルムアルデヒドの代わりにパラホルムアルデヒ...

<table><tbody><tr><td>BSA</td><td>化学薬品</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9647-100G</td><td></td></tr><tr><td>DNase I</td><td>化学薬品</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>DN25-1G</td><td></td></tr><tr><td>poly-L-Lysine</td><td>化学薬品</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-8920</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>化学薬品</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>化学薬品</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E4378-25G</td><td></td></tr><tr><td>Fomaldehyde</td><td>化学薬品</td><td>VWR</td><td>284216N</td><td></td></tr><tr><td>PIPES</td><td>化学薬品</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-6757</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>化学薬品</td><td>Fisher Scientific</td><td>S/8600/53</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>化学薬品</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T-6876</td><td></td></tr><tr><td>DAPI含有封入剤</td><td>化学薬品</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr><tr><td>Fugene 6 トランスフェクション試薬</td><td>化学薬品</td><td>Roche Group</td><td>11814443001</td><td></td></tr><tr><td>Histone H1</td><td>抗体</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>SC-8030</td><td></td></tr><tr><td>Lamin A/C</td><td>抗体</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>SC-20681</td><td></td></tr><tr><td>Tubulin-&amp;alpha;</td><td>抗体</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>SC-32293</td><td></td></tr></tbody></table>

接着および非接着性の哺乳動物細胞の in situ細胞下分画で

In situ Subcellular Fractionation of Adherent and Non-adherent Mammalian Cells

タンパク質の機能は、その局在と密接に関連しています。一部のタンパク質は特定の部位や細胞内コンパートメントに限定されていますが、多くのタンパク質は、特定の細胞内ドメインや構造に強固に結合したサブポピュレーションと自由に交換可能な、拡散性の集団として存在しています。In situ 細胞分画法を用いることで、タンパク質のコンパートメント化を可視化でき、また特定の構造に局在するタンパク質のサブポピュレーションを明らかにすることが可能です。例えば、可溶性の細胞質タンパク質および緩く結合した核タンパク質を除去することで、一部の転写因子とクロマチンとの安定した結合を明らかにできます。さらに、その後DNAを消化することで、核スキャフォールドまたは核マトリックスと総称されるタンパク質とRNAのネットワークとの結合が明らかになる場合があります。
ここでは、顕微鏡用カバーガラス上の接着性および非接着性哺乳類細胞におけるin situ分画に必要な手順について説明します。タンパク質の可視化は、特異的抗体または蛍光融合タンパク質および蛍光顕微鏡を用いて行うことができます。特定のコンパートメントまたは構造のマーカーとして機能する抗体および/または蛍光色素を用いることで、タンパク質の局在を詳細にマッピングすることが可能です。In situ分画はウェスタンブロッティングと組み合わせることで、各画分に存在するタンパク質の量を比較することもできます。この簡便な生化学的手法により、通常では検出できない関連性を明らかにできる可能性があります。

顕微鏡のカバーグラス上に、哺乳動物細胞の in situ細胞下分画ではタンパク質の局在を可視化できる。

タンパク質の機能は、その局在と密接に関連しています。一部のタンパク質は特定の部位や細胞内コンパートメントに限定されていますが、...

本手順の全体的な目的は、タンパク質の局在を調べるために、哺乳類細胞の核画分と非核画分をin situで分画することです。これは、まず細胞を顕微鏡用カバーガラスに接着させることで達成されます。手順の第2段階では、細胞質および核に緩く結合しているタンパク質を除去します。手順の第3ステップは、強固に結合している核タンパク質を除去することです。手順の最終ステップでは、クロマチン画分を除去し、カバースリップ上に核マトリックスと解離したタンパク質を残します。最終的に、免疫蛍光顕微鏡法を通じて、タンパク質の細胞内局在および共局在を示す結果を得ることができます。こんにちは。私はブリストル大学生化学部のKevin Gaston研究室のAnya Ho Haiです。本日は、細胞分画の手順について解説します。私たちは、転写因子の局在を研究するためにこの手順を用いています。それでは始めましょう。まず、非接着性および接着性の哺乳類細胞をそれぞれカバーガラスに付着させる手順について実演します。ここでは、非接着性細胞としてK 5 6 2細胞を、接着性細胞としてAcross 7細胞を使用します。非接着細胞を付着させるには、ポリリシンコートカバーガラスのコート面を上にして6ウェルプレートのウェルに配置し、K 5 62細胞を1ウェルあたり7×10⁵ cellsの密度で播種します。このとき、10%胎児牛血清およびペニシリン・ストレプトマイシンを添加したKO改変イーグル培地を使用します。非 adhere 細胞とは異なり、adherence 細胞は一般に通常の顕微鏡スライドガラスに良好に付着します。PBSで2回洗浄後、37 °CのPBS中でtrypsinを用いて2〜5分間消化することで、カバーガラスからcost seven細胞を剥離させます。細胞を過剰に消化しないことが重要であり、大部分の細胞が個別の浮遊細胞となった時点で速やかに消化を停止させてください。1ウェルあたり3×10⁵個の密度で細胞を播種し、消化を停止させます。10% FBSおよびPSGを添加したDMEMを用い、コート処理されていない通常のカバーガラス上に播種してください。6ウェルプレートを使用し、非接着細胞および接着細胞の両方を37°C、5% CO₂条件下で24時間インキュベートします。細胞分画を行う日に、新鮮な細胞骨格バッファーを調製し、ろ過します。昨日カバーガラス上に播種した細胞をインキュベーターから取り出します。本デモンストレーションでは、Cos-7細胞を用いて分画を行います。培地を捨て、氷冷したリン酸緩衝生理食塩水で細胞を2回洗浄します。ウェスタンブロッティング用の全細胞抽出液を調製するため、1枚のカバーガラス上の細胞を使用し、200 µLのTES緩衝液をカバーガラス上に直接ゆっくりと加え、1〜2分間インキュベートします。22 °

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JoVE Journal

Biology

生物学

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