Name: マウスの脳室内（ICV）と静脈（IV）注入による治療薬のデリバリー (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-03T12:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 55 s
Description: 学ぶ脳室内注入と静脈注入の技術を用いて、新生マウスの中枢神経系へ治療薬を送達する方法。これらの手法は血脳関門の通過や全身投与を可能にし、神経疾患治療研究に有用です。

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著者は、このプロジェクトの初期段階での技術支援のため専門家畜産と博士マルコA. Passini用ジョンマーストンに感謝します。この作品は、CLLの国立衛生研究所（; R01HD054413 R01NS41584）からの助成金によって賄われていた。

1。脳室内注入<ol><li>最初のステップは、注入ストック溶液の調製であり、これらのソリューションは、ウイルスベクター、プラスミドDNA、薬物、そして無菌条件下で注入されるべきです。 </li><li>注射部位の可視化のためにPBSでw / vのトリパンブルー0.05％ウイルスベクター（5-7μL合計）の所望の力価を混ぜる。 </li><li>プラスミドDNA溶液（5リットルμL合計）は、D -（+） - グルコース20％（w / v）の（1μL）、トリパンブルー（0.05％）PBS（1μL）、プラスミドを（〜5〜G /〜Lが含まれています）（2〜L）、および2.5 kDaの線形PEIホモポリマー（150 mM）の（1〜L）。 </li><li> 1〜2分のための低温麻酔を介してPND 2新生児を固定化する。 </li><li>この注射用針は、長い管を通って3ミリリットル3mLのハミルトンシリンジに接続されているマイクロリットルのキャリブレーション滅菌ガラスのマイクロピペットです。 </li><li>頭蓋骨に2mmの浸透のために調整するために針の先端を（スパチュラ付）ブレイク。注入溶液の入ったマイクロ遠心チューブに斜めに針を置きます。慎重に注射器のプランジャーを引いて、針に注射のソリューションを読み込みます。 </li><li>ソリューションの取り込み後に、チューブからシリンジを切り離し、さらにプランジャーを引き上げてから、再度針を取り付けます。 </li><li>親指と人​​差し指の間に右手の針を持ち、右手の手のひらに触れるプランジャーと中指、薬指の間に注射器を置きます。 </li><li>ガイドとして使用することができる、関連する解剖学的構造を照らすために光ファイバの光で左手と場所を使って頭の後ろの皮膚がしっかりと固定されたマウスをつかみます。 </li><li>場所矢状縫合の外側約0.25 mmおよび新生児の冠状縫合（ 図1A）の吻側0.50〜0.75ミリメートルで、頭蓋骨の表面に垂直に、深く針2mmの挿入し、の手のひらを使用してプランジャーを押し右手非常にゆっくりと慎重に。破裂血管や顔の腫れのために監視する。 </li><li>逆流を防ぐために、プランジャーの動きの中止後に針15秒を削除します。 </li><li>運動と一般的な応答性が復元されるまで回復するには、温めておいた容器に5〜10分間マウスを保つ。 </li></ol> 2。時間/顔面静脈を経由して静脈注射<ol><li>注入される溶液を調製し、濾過緑色食品色素で補足1:100希釈で、無菌条件下で注入する必要があります。 </li><li> 100μLガラスハミルトンシリンジの最後にルアー小さなプラスチックを取り付けます。ルアーに、33ゲージ0.25インチ皮下注射針を取り付けます。すべての部品がしっかりと接続されていることを保証する。 </li><li>容器への空気の注入は致命的であるようにシリンジ内に空気がないことを確認し、注入する量で注射器をロードする。それは多くの場合、ピペットパラフィルムの一部わたし注入されるボリュームに便利です。これにより、シリンジへの液の取り込みを明確に可視化することができます。 </li><li>ウィー視力のトランスは、簡単に新生児における浅側頭静脈、または顔面静脈、（図2A）を可視化するために使用されます。注射の前に、サージカルテープを使用してトランスに新生児を確保する。ガーゼは、動物の皮膚を損傷からテープを防ぐために、新生児とテープの間に配置する必要があります。テープは、呼吸を妨げないようにすること、その側のトランスに動物を固定します。新生児の首をやさしく顔面静脈が簡単に表示されるようにする必要があり、鼻は頭部を安定させるためにテープで固定してください。 </li><li>簡単に可視化を可能にするために2.25Xヘッドバンドの拡大鏡を使用して、徐々に静脈に針を挿入する。針が皮膚の下に表示したままにするので、静脈は非常に表面的です。 </li><li>ゆっくり静脈内に溶液の体積を吹き込む。緑色の染料は、注入の容易な視覚化することができます。 </li><li>完全にシリンジと極めて狭い針の穴のために残りの溶液の追放のプランジャーを押す間にタイムラグがあるので針を外す前に15秒を待ちます。 </li><li>針を除去した後、出血が停止するまで注射部位に圧力を適用するためにガーゼを使用してください。 </li><li>苦痛の徴候のための新生児を監視します。適切な注入後は、明白な苦痛は認めてはならない。新生児は、それがケージに戻される前に回復するために約5分間を与えられるべきである。 </li><li>針で血液がすぐに小口径のためにそれを目詰まりするので注射の間にPBSで針/注射器ユニットをフラッシュします。 </li></ol> 3。代表的な結果： ICV注入：脳は様々な時点注射後に収穫し、成功した注入技術を実証するために視覚化することができます。染料を注射液に添加されていない場合、それはでの精度をチェックすることは困難ですjection。心室のいずれかの適切な注入は、脳の注入側にトリパンブルーの配布が可能になります約10-15分のポスト噴射（ 図1B）。右と左大脳半球および嗅球の両方でトリパンブルーの均一な分布は、約60分の注射後（ 図1C）表示されます。これは、隣接する心室に青色色素の普及を許可する脳室の接続によるものです。正確な注射はまた、約12時間注入後（ 図1D）内の吻側、中央脊柱管に青い色素の分散可視化することができる。不正確な注射は、大脳半球の青色の欠如によって区別す​​ることができます。このケースでは、針の深さは十分ではなかったとされた注射液は、おそらく皮膚の下で配布されている。別の可能性は針、それによって心室と解決策が脳室の下に空に越えて渡して、脳にあまりにも深く浸透していることです。 IV注入：正確で効率的な時間的/顔面静脈注射は、注射の直後に視覚化することができます。解決策が注入されるように、緑色の色素が入ると顔面静脈（ 図2A）を流れる液の可視化が可能になります。さらに、マウスの改変された肌の色は、注射後に観察されます。新生児の正常なピンクの色は、注射液（ 図2B）における緑色食品色素の存在のために緑、に変換されます。新生児において観察された緑色の色の変化の程度は、使用する色素の濃度に依存している。注射のと練習期間中の単純な可視化のため、50倍希釈を推奨します。しかし、劇的に変化した肌のトーンは多くの場合、母親によって拒否される、したがって、染料または大幅に減少濃度の除去は、実験手順中に考慮すべき子犬をもたらす。不正確な注射は、注射の部位の皮膚の下に緑色の色素の蓄積になります。針の開口部が完全に静脈内に挿入されていない場合に発生する不完全な注射は、、いくつかのソリューションは、静脈を流れるときに見られると、一部は皮膚の下に蓄積されています。これが認められる場合は、針が血管にさらに挿入される必要があります。 <img src="/files/ftp_upload/2968/2968fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図 PDN2マウスで成功したICV注射1。デモンストレーション。）心室にICV注射で利用される注射部位の模式図。ICVからの脳が左心室にPBSでトリパンブルーの仔注入B）、写真は15分にポスト噴射を撮影。C ICVから）脳は、左心室にPBSでトリパンブルーで子犬を注入、撮影した写真は、60分の注射後。D）吻側、中央脊柱管がICVに示されているが、左心室にPBSでトリパンブルーで子犬を注入、12時間注入後に撮影した写真。 <img src="/files/ftp_upload/2968/2968fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 子犬が非注入同腹と比較してPBSで緑の色素でIVを注入図 IV注射のために利用さ顔面静脈の2。PDN2マウスで成功したIV注射のデモンストレーション。）回路図は。B）、写真はすぐにポスト噴射を取ら。

<ol><li>Blanchette, M., Fortin, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood-brain+barrier+disruption+in+the+treatment+of+brain+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Blood-brain barrier disruption in the treatment of brain tumors.</a> Methods Mol. Biol. 686, 447-463 (2011).</li>
<li>Foust, K. D., Kaspar, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Over+the+barrier+and+through+the+blood%3A+to+CNS+delivery+we+go%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Over the barrier and through the blood: to CNS delivery we go.</a> Cell Cycle. 24, 4017-4018 (2009).</li>
<li>Snyder, E. Y., Taylor, R. M., Wolfe, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+progenitor+cell+engraftment+corrects+lysosomal+storage+throughout+the+MPS+VII+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neural progenitor cell engraftment corrects lysosomal storage throughout the MPS VII mouse brain.</a> Nature. 374, 367-370 (1995).</li>
<li>Passini, M. A., Wolfe, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Widespread+gene+delivery+and+structure-specific+patterns+of+expression+in+the+brain+after+intraventricular+injections+of+neonatal+mice+with+an+adeno-associated+virus+vector%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Widespread gene delivery and structure-specific patterns of expression in the brain after intraventricular injections of neonatal mice with an adeno-associated virus vector.</a> J. Virol. 24, 12382-12392 (2001).</li>
<li>Kienstra, K. A., Freysdottir, D., Gonzales, N. M., Hirschi, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+neonatal+intravascular+injections%3A+modeling+newborn+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Assoc.+Lab.+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Murine neonatal intravascular injections: modeling newborn disease.</a> J. Am. Assoc. Lab. Anim. Sci. 46, 50-54 (2007).</li>
<li>Sands, M. S., Barker, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+intravenous+injection+in+neonatal+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Percutaneous intravenous injection in neonatal mice.</a> Lab. Anim. Sci. 49, 328-330 (1999).</li>
<li>Foust, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rescue+of+the+spinal+muscular+atrophy+phenotype+in+a+mouse+model+by+early+postnatal+delivery+of+SMN%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Rescue of the spinal muscular atrophy phenotype in a mouse model by early postnatal delivery of SMN.</a> Nat. Biotechnol. 28, 271-274 (2010).</li>
<li>Foust, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravascular+AAV9+preferentially+targets+neonatal+neurons+and+adult+astrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Intravascular AAV9 preferentially targets neonatal neurons and adult astrocytes.</a> Nat. Biotechnol. 27, 59-65 (2009).</li>
<li>Passini, M. A., Watson, D. J., Wolfe, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+delivery+to+the+mouse+brain+with+adeno-associated+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Gene delivery to the mouse brain with adeno-associated virus.</a> Methods Mol. Biol. 246, 225-236 (2004).</li>
<li>Coady, T. H., Lorson, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trans-splicing-mediated+improvement+in+a+severe+mouse+model+of+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Trans-splicing-mediated improvement in a severe mouse model of spinal muscular atrophy.</a> J. Neurosci. 30, 126-130 (2010).</li>
<li>Baughan, T. D., Dickson, A., Osman, E. Y., Lorson, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delivery+of+bifunctional+RNAs+that+target+an+intronic+repressor+and+increase+SMN+levels+in+an+animal+model+of+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">Delivery of bifunctional RNAs that target an intronic repressor and increase SMN levels in an animal model of spinal muscular atrophy.</a> Hum. Mol. Genet. 18, 1600-1611 (2009).</li>
<li>Coady, T. H., Baughan, T. D., Shababi, M., Passini, M. A., Lorson, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+single+vector+system+that+enhances+trans-splicing+of+SMN2+transcripts%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Development of a single vector system that enhances trans-splicing of SMN2 transcripts.</a> PLoS One. 3, e3468-e3468 (2008).</li>
<li>Dickson, A., Osman, E., Lorson, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Negatively-Acting+Bifunctional+RNA+Increases+Survival+Motor+Neuron+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene.+Ther%22%5BJournal%5D)">Negatively-Acting Bifunctional RNA Increases Survival Motor Neuron in vitro and in vivo.</a> Hum. Gene. Ther. 19, 1307-1315 Forthcoming.</li>
<li>Mattis, V. B., Ebert, A. D., Fosso, M. Y., Chang, C. W., Lorson, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delivery+of+a+read-through+inducing+compound%2C+TC007%2C+lessens+the+severity+of+a+spinal+muscular+atrophy+animal+model%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Mol.+Genet%22%5BJournal%5D)">Delivery of a read-through inducing compound, TC007, lessens the severity of a spinal muscular atrophy animal model.</a> Hum. Mol. Genet. 18, 3906-3913 (2009).</li>
<li>Williams, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oligonucleotide-mediated+survival+of+motor+neuron+protein+expression+in+CNS+improves+phenotype+in+a+mouse+model+of+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Oligonucleotide-mediated survival of motor neuron protein expression in CNS improves phenotype in a mouse model of spinal muscular atrophy.</a> J. Neurosci. 29, 7633-7638 (2009).</li>
<li>Passini, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CNS-targeted+gene+therapy+improves+survival+and+motor+function+in+a+mouse+model+of+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">CNS-targeted gene therapy improves survival and motor function in a mouse model of spinal muscular atrophy.</a> J. Clin. Invest. 120, 1253-1264 (2010).</li>
<li>Shababi, M., Glascock, J., Lorson, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combination+of+SMN+Trans-Splicing+and+a+Neurotrophic+Factor+Increases+the+Life+Span+and+Body+Mass+in+a+Severe+Model+of+Spinal+Muscular+Atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene.+Ther%22%5BJournal%5D)">Combination of SMN Trans-Splicing and a Neurotrophic Factor Increases the Life Span and Body Mass in a Severe Model of Spinal Muscular Atrophy.</a> Hum. Gene. Ther. 22, 1-10 (2010).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

病気のマウスモデルを用いた研究は多くの場合、新生児に薬物または他の物質の投与を必要とします。このビデオでは、我々はステップバイCNSを標的とするために使用できる注射戦略の2つのタイプに関連するステップの手順を示す：脳室内（ICV）注射を利用したCNSに）直接注入を1;時間/をターゲット）、または2のIV注入顔面静脈。これらの注射のタイミングは非常に重要です。 ICV注射はフリーハンドなので、頭蓋骨は比較的可鍛性にする必要があります。注射のこのタイプは、人生の最初の週を介してのみ可能であり、そしてますます多くの挑戦や動物の年齢などの動物に有害となる。しかし、主な利点は、効果的に血液脳関門をバイパスし、中枢神経系への直接配信が達成されていることです。したがって、研究者は、CNS治療薬を開発している場合、それは完全にそのような血液脳関門透過性などの薬剤のような性質のために最適化されていない化合物を分析することが可能である、しかし、化合物の活性は、疾患関連の組織で測定することができます。これは一般的な静脈内投与のための比較的非侵襲的方法であるように人生の最初の数日間の間に時間的な静脈の使用は、貴重な証明されています。この発達段階では、追加の静脈...

<table border="1"><tbody><tr><th>試薬の名前</th><th>会社</th><th>カタログ番号</th><th>コメント（省略可能） </th></tr><tr><td>緑の食用色素</td><td>マコーミック</td><td> N / A </td><td>フィルタ処理する必要があります</td></tr><tr><td>ハミルトンガラスシリンジ（100μL） </td><td>シグマAldrick </td><td> 20702 </td><td></td></tr><tr><td> LuerMxFスレッドスタイルホワイトナイロン</td><td>小さなパーツ、（株） </td><td> VPLF - LC78 - 1 - 25 </td><td></td></tr><tr><td>ファインゲージの注射針</td><td>ポッパー</td><td> 7111 </td><td>サイズ：33（SWG）× ¼&quot;（6.35 MM） </td></tr><tr><td>ウィー視力のトランス</td><td>レスピロニクス</td><td> 1017920 </td><td></td></tr><tr><td> 2.25Xヘッドバンド拡大鏡</td><td> MagEyes </td><td>モデル第5号</td><td>個々の好みに合わせて倍率を選択します。 </td></tr></tbody></table>

マウスの脳室内（icv）と静脈（iv）注入による治療薬のデリバリー

Delivery of Therapeutic Agents Through Intracerebroventricular (ICV) and Intravenous (IV) Injection in Mice

血液脳関門は、脳をシールドで果たす保護的な役割にもかかわらず、それはどの神経変性疾患の1,2のために設計された潜在的な治療の失敗の最も頻繁にその結果中枢神経系（CNS）へのアクセスを制限します。このような脊髄性筋萎縮症（SMA）などの神経変性疾患は、下位運動ニューロンが影響される、CNSへの治療薬を導入するメリットは非常に大きくなります。このビデオの目的は、生後間もなく新生児マウスに治療材料を提供するために二つの異なる注入のパラダイムを示すことです。これらのいずれかの方法では、脳脊髄液3,4を介して中枢神経系への物質の配信で、その結果脳側脳室（脳室内）に直接注入される。第二の方法は、中枢神経系5を含む全身送達につながる、循環系にさまざまな治療法を導入することができる時間的な静脈注射（点滴）です。適切なウイルスベクターとウイルス血清型が利用される場合、CNSの広範な伝達が達成可能です。注射のための一時的な静脈の可視化と利用率は生後6日目まで可能です。納入材はCNSに到達することを意図されている場合、血液脳関門が原因で、その未熟な状況に、より透過性のある間しかし、これらの注射は、好ましくは、事前の生後2日目に、場所を取る必要があります。完全に開発された血液脳関門は、大幅に静脈内送達の有効性を制限する。手術の適性が達成されれば、両方の配信システムは、シンプルで効果的です。彼らはあらゆる広範な外科的装置を必要とせず、一人で行うことができます。しかし、これらの技術は課題がないわけではない。生後2日目子犬とそれに続く小さな対象地域の小さなサイズは、注射を行うことが困難と複製に最初に挑戦することができます。

新生児マウスの中枢神経系への治療薬を導入する脳（脳室）と（静脈内）2）全身に1）：この記事では、注入の2つの非常に異なる方法を示しています。

マウスの脳室内（ICV）と静脈（IV）注入による治療薬のデリバリー

血液脳関門は脳を保護するという役割を担っているが、一方で、ほとんどの...が中枢神経系（CNS）に到達することを制限している。

このビデオでは、新生マウスにおける脳室および静脈内への投与方法を実演します。脳室投与では、まず麻酔をかけたマウスを光ファイバー光源の上に配置し、矢状静脈洞および横静脈洞を透過して照らします。その後、矢状縫合線より外側、冠状縫合線より吻側の部位に、接種物を慎重に注入します。正しく実施されれば、接種物はまず注入された心室に分布し、最終的にもう一方の心室に到達して静脈注入されます。マウスを透過照明装置に固定し、顔面静脈を露出させます。その後、接種物を静脈に直接ゆっくりと注入し、全身に分布させます。これらの手法は治療薬を最適な場所に配置することを可能にするため、多くの疾患や障害の治療への応用が期待されます。ICV法は血液脳関門を通過させる手段を提供し、一方IV法は全身的な治療薬投与を可能にします。まず、マイクロ遠心チューブを用いて注入液を調製します。この例では、注入部位をより明確に可視化するため、接種液にtriam blueが含まれています。マウスへの注入には、プラスチックチューブを nối げ、先端に3 mLのプラスチック製シリンジを取り付けた、滅菌済みで校正済みのガラス製マイクロピペット針を使用します。フラットエンドピンセットを用いて、ガラス針の先端を3 mmの長さに折って調整します。これにより、脳内に少なくとも2 mmの穿刺が可能になります。ガラス製マイクロピペット針をマイクロ遠心チューブの中に斜めに配置し、シリンジのプランジャーを引いて、注入する溶液を慎重に吸い上げます。針への充填が完了したら、すぐにプランジャーを引くのを止めます。チューブの汚染を防ぐため、ガラスマイクロピペットに接続されたチューブシステムからシリンジを取り外します。プランジャーを完全に引き出し、ニードルをしっかりと再装着します。ガラスマイクロピペットのニードルを親指と人差し指で保持します。注射器を薬指と小指の間に保持し、プランジャーを注入側の手の掌に当てた状態で、生後2日のマウスを凍結麻酔します。次に、凍結麻酔したマウスの頭部基底部の皮膚をしっかりと掴み、光ファイバー光源の上に配置して、上矢状静脈洞および横静脈洞を照らします。注射部位は、これらの静脈洞の合流点から左右に約0.25 mmの外側に位置します。注射器を頭蓋骨表面に対して垂直に保持して注入します。針を2 mmの深さまで刺入します。注入側の手の掌を使い、プランジャーをゆっくりと押し下げて溶液を注入します。逆流を防ぐため、針を抜く前に15秒間待ち、マウスに頭蓋腫脹や血管破裂の兆候がないかを確認します。マウスに注射した後、回復させるために、あらかじめ温めておいた容器の中に5〜10分間入れます。注射したマウスと注射していないマウスを比較します。triam blueを含む接種物を脳室内投与してから10〜15分後です。脳室の連続性により、注入後60分で液体は脳の注入側から分散し、両側の大脳半球および嗅球にtriam blueが均一に分布していることが確認できるはずです。最終的に、12時間後には、接種液が吻側の中央脊髄管に見られます。注入液を調製し、緑色の食用色素を100倍希釈で添加してください。注入を可視化するために、100 µLのガラス製ハミルトンシリンジの端に小さなプラスチック製ルアーを取り付けます。シリンジに33ゲージ0.25インチの下皮注射針を装着し、すべての部品がしっかりと接続されていることを確認してください。注入する量の液体をシリンジに充填します。静脈内に空気を注入すると致命的であるため、接種液から気泡を完全に取り除いてください。サージカルテープとガーゼを使用して、新生仔をトランスルミネーターに固定します。まず前腕と体をトランスルミネーターに固定し、次に顔面静脈が見えるように頭部を固定します。動物が呼吸できるよう、テープを十分緩めて固定してください。2.25倍のヘッドマン拡大鏡を用いて視認性を高めながら、ゆっくりと静脈に針を挿入します。静脈は表在性であるため、針は皮膚の下で確認できる状態になります。接種物を静脈内へゆっくりと注入します。すべての液体が排出されるまで、針を抜く前に15秒間待ちます。針を抜いた後、出血が止まるまでガーゼで注入部位を圧迫してください。新生仔を温かい場所に戻し、5分間回復させます。苦痛の兆候がないか観察してください。正しく注射が行われていれば、動物に不快感の兆候は見られないはずです。マウスが回復したら、ケージに戻します。静脈内注射が正しく行われていれば、新生子マウスは緑色になります。このビデオを視聴することで、新生子マウスへのICV投与およびIV投与の方法について十分に理解できたはずです。これらの手法は、任意の治療剤を注入する手段として利用できます。

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新しい注射部位修復技術によるマウスモデルにおける反復頸動脈内注射の促進

腰椎髄腔内注射は、中枢神経系に遺伝子治療を実施するための翻訳的に関連する投与経路を表しています。新生児、若年、成体のマウスおよびラットにおける腰椎髄腔内注射のためのこの包括的な標準化されたプロトコルは、研究者がこの技術を前臨床遺伝子治療研究に採用する際の指針となることを目的としています。...

マウスおよびラットにおける中枢神経系を標的とした遺伝子治療ベクターの腰椎髄腔内注射

学ぶ脳室内注入と静脈注入の技術を用いて、新生マウスの中枢神経系へ治療薬を送達する方法。これらの手法は血脳関門の通過や全身投与を可能にし、神経疾患治療研究に有用です。

マウスの脳室内（ICV）と静脈（IV）注入による治療薬のデリバリー

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