Name: 鳥胚胚心筋細胞の生体内注入にマイクロインジェクション ベース システム (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-02-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 52 s
Description: 学ぶマイクロインジェクション法による鳥胚心筋細胞の生体内注入技術。蛍光標識した細胞を宿主胚に移植し、局所バイオメカニクスや組織構造が細胞表現型に与える影響を可視化する。再生医療への応用も期待される。

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この作品は、国立衛生研究所、国立心臓、肺および血の協会 (NHLBI) から R00HL122360 の助成金によって支えられました。

記載されているすべてのメソッドは、動物のケアのガイドラインのノースカロライナ大学チャペルヒル校に従います。
1. マイクロ インジェクション ピペットの準備
<ol><li>マイクロ ピペットの引き手を使用してガラス管を引き出します。いくつかの注射のため不純物の構造に欠けている非常にシャープな表面を提供するので針に斜角はお勧めします。これを行うには、ポーランドの 15−20 分の 45 ° の角度で面取りホイールに引っ張られた針の終了を実行します。 注: を引っ張るための正確な設定が使用されている引き手に基づいて異なります。ベベルの最終の内径は、20−40 μ m の間でなければなりません。</li>
	<li>シリコーン ガラスキャピラリの内部および外部の表面をコートします。まず針し内面塗装、各ピペットに backload 反応のエージェント ソリューションの外部の表面をコートする反応剤で針を浸しなさい。 注: コーティング ガラス管の注入実験の前に 24 時間を行う必要があります。シリコーンとガラス管をコーティング ガラスに化学的に不活性な表面を提供します。毛細血管が残っている場合、未処理細胞懸濁液の後の手順で生成されたガラスに付着、針を差し込みます。したがって、コーティングは必要とメソッドの成功に不可欠です。 注意: 反応のエージェントは、ヘプタンと 1, 7-ジクロロ-1,1,3,3,5,5,7,7-octamethyltetrasiloxane (材料表) の既製市販の混合物です。非常に可燃性、急性毒性です。常に適切な PPE ヒューム フードの中で処理します。<ol>
<li>Backload 針、ロード ~ マイクロインジェクション ピペット チップ (材料表) に反応剤の 5−10 μ L。マイクロ射出成形の先端をキャピラリー引っ張られたガラスのワイド端で配置し、(ガラス針の先端) に近い可能な限りダウン限り先端の位置します。針で気泡を最小限に抑えるため読み込みピペットをゆっくりと除去しながら反応剤を取り出します。</li>
		<li>10 分間ガラス針で反応剤を残す新しい読み込みピペットで吸引によって削除し、針は発煙のフードで一晩乾燥を許可します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>実験の朝は 1.2 のステップの手順に従って脱イオン水でガラス管をすすいで 3−4 h 間乾かします。</li>
</ol>2. 溶液の調製
<ol><li>4.2 mL ダルベッコ変法イーグル培地とハムの栄養混合物 F12 (DMEM/F12) 750 μ L の胎仔ウシ血清 (FBS) とペニシリン/ストレプトマイシンの 50 μ L を補うことでソリューションを中和トリプシンの 5 mL を準備します。使用するまで 37 ° C で保存します。</li>
	<li>準備 5 μ M にハンクの 995 μ (ジメチルスルホキシド [DMSO]テーブルの材料) で色素をラベル付け 1 mM 在庫の 5 μ L 分注による色素溶液をラベリング平衡塩類溶液 (HBSS)。1 分と使用までの 37 ° C でストアの渦。</li>
	<li>62 ml 分子生物学グレード水・ ダルベッコ リン酸緩衝生理食塩水 (DPBS) x 10 の 8 mL 32 %pfa 原液 10 mL を組み合わせることにより新しいパラホルムアルデヒド (PFA) を準備します。最終濃度は 4% PFA 1 x DPBS で。</li>
</ol>3. 宿主胚の作製
<ol><li>38 ° C までハンバーガーとハミルトン (HH) ステージ 1910加湿のインキュベーターで水平方向に肥沃な鶏の卵を孵化させなさい。 注: 選択操作の段階は柔軟性があり、それぞれの個々 の実験の目的に全く依存しています。</li>
	<li>「フラット」鉗子を使用して小さなパンクにする卵の赤道に沿って卵の殻末のスコア > 直径 1 mm。穴を通して接続されている 10 mL 注射器、18 G 針を挿入し、アルブミンの ~ 5 mL を削除します。 注: この解剖学的位置は卵の中の「空気電池」の外部にある、アルブミンが漏れ一度穿刺が行われるを防ぎます。以降の手順で潜在的な損傷を防ぐため、卵の殻から胚を「ドロップ」とは、この手順をお勧めします。</li>
	<li>卵の殻の上に透明テープを適用します。鉗子とスコアし、湾曲した腱のはさみを使って ~2.5 cm ウィンドウをカットします。</li>
	<li>検査しハンバーガーとハミルトン10によって確立された基準に基づく胚のステージし、透明テープでステップ 3.2 から穿刺をシールします。 注: ここでは、HH 19 段階の胚は使用される尾芽に拡張する 37−40 の体節があります。卵 (ステップ 3.3) の上部にあるウィンドウを開いた後、まで穿刺を密封しないべきであります。</li>
	<li>添付 1 mL 注射器 32 G の針を用いて胚の下にインドのインク/HBSS 混合物 (1:5) の ~ 200 μ L を注入します。 注: インドのインクは、胚と下に卵黄と視覚的なコントラストを提供します。中立または市販の赤シアンの蛍光蛋白質 (CFP) など代替染料またはコントラストを改善するために青い蛍光タンパク質 (BFP) 蛍光フィルタ セットを使用ことができます。</li>
	<li>胚ディスク上に滴下 HBSS の 1 mL を追加し、ウィンドウ シェル パラフィン フィルムをシールします。注射の準備ができるまで、加湿のインキュベーターに卵を配置します。</li>
</ol>4. ドナー組織の分離
<ol><li>ステージ HH 19 (または必要な段階) までの 38 ° C で加湿のインキュベーターでドナー肥沃な鶏の卵を孵化させなさい。</li>
	<li>卵から胚を取り出し、室温 (RT) で滅菌 HBSS を含む 100 mm × 15 mm のペトリ皿に置きます。</li>
	<li>まず胚から胚心臓全体を分離し、心の底から心房を分離することによってステレオの解剖顕微鏡の下で microspatula、腱はさみ鉗子を使用してそれぞれの胚から、心房ドナー組織を外科的 microdissect。氷上 HBSS の 1 mL を含む滅菌 1.5 mL 遠心チューブにプール。</li>
	<li>すべてのドナー組織が収集されると、組織の固定角度遠心機で 4 ° C で 5 分間 1000 × gで遠心分離によってペレットします。</li>
</ol>5 ドナー組織のトリプシンの消化力
<ol><li>Prewarmed 0.05% トリプシン-EDTA の 1 mL の細胞ペレットを再懸濁します、300 rpm での振動熱ブロックで 15 分の 37 ° C で孵化させなさい。また、サンプルの定期的な撹拌で水浴を使用します。</li>
	<li>残りの任意の組織を分割し、ステップ 4.4 のようにペレットを上下に分解酵素液をピペットします。</li>
	<li>ソリューションとステップ 4.4 のように遠心分離機を中和トリプシンの 1 mL にペレットを再懸濁します。</li>
	<li>赤蛍光色素溶液を標識の 400 μ L で細胞を再懸濁します、ヒート ブロックの 20 分の 37 ° C で孵化させなさい。また、水浴を使用します。</li>
	<li>ラベリングの反応が完了すると、ステップ 4.4 のように細胞をペレットし、HBSS (手順 1 と 3 の間に変えることができる洗浄の数) 1 mL で洗います。</li>
	<li>~ 50,000 細胞/μ L、一般的に総細胞収量によって 5−10 μ L 作業量の結果の濃度のラベルが付いた、小球形にされた細胞を再懸濁します。 注: ~ 50,000 細胞/μ L 以下の細胞濃度は貧しい注入効率につながります。</li>
</ol>6. 体内注入
<ol><li>手順手順 1.2 にシリコーン扱われたガラス毛細管ピペットに細胞懸濁液を backload。圧マイクロインジェクター装置にピペットをマウントします。</li>
	<li>加湿インキュベーターから宿主胚を取り外し、解剖顕微鏡蛍光ステレオの下に卵ホルダーに入れます。<ol>
<li>滅菌微細鉗子による卵黄膜を開き、心膜に小切開 (長さ ~0.5−1.0 mm) を加えます。注入の対象地域によって追加操作/郭清は必要かもしれない。</li>
	</ol>
</li>
	<li>ガラスシリンジ マイクロインジェクション針の先端を貫通標的組織に移動します。<ol>
<li>圧力細胞を注入し、蛍光ラベルを使用し、移植細胞が必要な組織に存在します。典型的な注射用 0.5 未満の単一パルスを適用圧力の 100-400 ヘクト パスカルに至る期間で s。 注: パルス長および絶対圧注入する細胞の数によって異なりますが、個々 のニーズに合わせて変更することができます。</li>
		<li>マイクロインジェクター装置を撤回し、圧力を注射した後、ホルダーから卵を削除します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>胚に暖かい HBSS の 1 mL を滴下追加、透明梱包用テープを使用して卵をシール、24 h のポスト注入の 38 ° C で加湿のインキュベーターで孵化させなさい。</li>
</ol>7. 単離と解析
<ol><li>Microspatula 4.3, 手順と同様に、腱はさみ鉗子を使用して RT HBSS の宿主胚を特定し、4 %pfa は、穏やかな揺動 4 ° C で一晩で解決。</li>
	<li>穏やかなロッキング常温 HBSS で胚 3 x 5 分を洗って、HBSS でさらに下流解析 (顕微鏡観察、免疫組織化学の現場の交配等) のための 4 ° C に保存します。</li>
</ol>

<ol><li>Guo, Y. X., Pu, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+Mosaics+for+Greater+Precision+in+Cardiovascular+Research%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Genetic Mosaics for Greater Precision in Cardiovascular Research.</a> Circulation Research. 123, 27-29 (2018).</li>
<li>Guo, Y. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+Cardiac+Myocyte+Maturation+Using+CASAAV%2C+a+Platform+for+Rapid+Dissection+of+Cardiac+Myocyte+Gene+Function+In+Vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Analysis of Cardiac Myocyte Maturation Using CASAAV, a Platform for Rapid Dissection of Cardiac Myocyte Gene Function In Vivo.</a> Circulation Research. 120 (12), 1874-1888 (2017).</li>
<li>Rugh, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRugh%2C+R+%22Experimental+embryology%3B+techniques+and+procedures.+3rd+edition%22">Experimental embryology; techniques and procedures. 3rd edition</a>. , Burgess Pub. Co. (1962).</li>
<li>Slack, J. M. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSlack%2C+JMW+%22Essential+developmental+biology.+3rd+edition%22">Essential developmental biology. 3rd edition</a>. , Wiley. (2013).</li>
<li>Reinecke, H., Zhang, M., Bartosek, T., Murray, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival%2C+integration%2C+and+differentation+of+cardiomyocyte+grafts%3A+a+study+in+normal+and+injured+rat+hearts%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Survival, integration, and differentation of cardiomyocyte grafts: a study in normal and injured rat hearts.</a> Circulation. 100, 193-202 (1999).</li>
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<li>Zhang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiomyocyte+Grafting+for+Cardiac+Repair%3A+Graft+Cell+Death+and+Anti-Death+Strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+and+Cellular+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Cardiomyocyte Grafting for Cardiac Repair: Graft Cell Death and Anti-Death Strategies.</a> Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 33 (5), 907-921 (2001).</li>
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<li>Bressan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reciprocal+myocardial-endocardial+interactions+pattern+the+delay+in+atrioventricular+junction+conduction%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Reciprocal myocardial-endocardial interactions pattern the delay in atrioventricular junction conduction.</a> Development. 141 (21), 4149-4157 (2014).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Morphology%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo.</a> Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

どのようにアイソレータケージ条件影響心筋細胞運命仕様と系統安定化を定義する機能です基本を適切なのため効率的なプロトコルの開発と同様に先天性の心疾患の理解は圧縮を作成します。幹細胞や体細胞の reprograming ベースの心筋細胞の成熟。プロトコルは上記を与える直接の下で心筋細胞の開発を試金する能力変更セル自律成熟プロセス パラクリン/juxtacrine および/または血行力学的手がかりから分離することを可能にする生体内での条件の調査官。高分解能イメージング、遺伝学的解析および生理学的アッセイと組み合わせると、この手法は既存トランスジェニック モデルに強力な補完として使用できます。
技術的な観点は、ここで提示されたプロトコルは効率的な分離、ラベル付け、およびホスト萌芽期ティッシュへのドナー心臓の細胞の正確な注入に依存しています。マイクロインジェクション システムの使用は大きくエイズのドナー細胞のターゲット、ホスト組織で大規模な生着サイトを作成することがなくインプラントの成功できます。ただし、この手法を実行するいくつかの運用スキルが必要 (心臓やローカル血管の破裂を引き起こす) 標的臓器で注射針は慎重に配置されていない場合、削減可能性が発生します。ケアと思ったは、分離とラベリング手順を与えられる必要があります。ドナーの消化に組織貧しい注入効率をもたらし、一時的なラベリング技術を (細胞分裂は、ラベルを薄めることができる) をドナー細胞は追跡できる時間帯を制限できます。
この技術は、高度変更、さまざまな目的に適応することができます。たとえば、ドナー細胞組織とステージの広い範囲から分離できます (ただし、酵素の消化力の最適化が必要です) でき、同様には、開発のさまざまな段階で宿主組織の様々 なに注入されます。同様に、ラベルをつける方法はもはや一時的な分類のため蛍光灯の無機半導体ナノ結晶の使用とウズラ細胞またはグリーンからのセルの注入を含む別の時間ウィンドウにわたって細胞を追跡する変更できます。蛍光タンパク質遺伝子 (GFP) ドナー胚11側の透過物の分類のため。
我々 は現在鳥注入研究このテクニックを使用していることに使えるかもしれないキメラ研究の広い範囲のため、将来的に我々 は感じる。たとえば、遺伝子組み換え生物から遺伝子組み換えの心筋細胞を分離、非常に類似したプロトコルを使用して鳥の心に microinjected でした。心筋細胞に分化した細胞の細胞を生じるか、または細胞のアプローチを reprograming 経由では、胚の心臓組織や生体力学的体内で成熟への統合を評価するために microinjected 可能性がありますさらに、条件。

心の発達研究はそのパターンの異なる細胞系譜と心の機能ドメインを識別遺伝子調節ネットワークの多くが生殖トランスジェニック モデル システムの登場から非常に恩恵を受けています。ただし、識別するこれらの遺伝子ネットワークと対話内微小環境条件への対応どのようにパラクリン/juxtacrine 信号と生物物理入力 (ストレッチ、歪み、血行の流れ) を含むことです。それは常に心臓バイオメカニクスのより高い順序組織組成1,2 に変更する、細胞表現型発生遺伝的摂動の直接の結果として、または適応の二次の結果としてかどうかを調べるは簡単でないなど、.
接木実験は、古典的な運命仕様の概念をアドレスに使用されている、コミットメント、誘導と能力3,4を表すいくつかの固有の課題を回避するために理想的なアプローチ中心部に細胞自律的に環境影響とを定義します。残念ながら、心臓の収縮にすると標準的な移植方法は難しくなります。組織の急速な動きはしばしば中心部に付着するから移植細胞を防止し、大規模な組織は、(通常は接木に必要な) 刺し傷頻繁心不全および胚性致死5,6,7に 。したがって、圧力ベースを開発した、組織移植の技術的なハードルを回避成長のひよこの中心に精度細胞移植へのマイクロインジェクション システムは前述8,9。この手法を使用すると、ドナー胚心筋細胞の個々 か小さいグループは広範なホストの準備とを使用して発生する大規模な組織の侮辱のための必要性を排除するホスト胚中心の地域の多様性に microinjected することができます。術の基本手技。これらの注入用マイクロインジェクション針の外径を持ちます ~ 標的組織に直接針を配置できることを意味する 30−40 μ m (すなわち、胚心筋壁を貫通することができます)、細胞が塊状で配信できます周囲の組織に与えるダメージを最小限。プロトコルを使用して様々 な同位体、異所性、isochoric、開発途上で古典的な実験発生学的パラダイムを直接調べる迅速、柔軟かつ低コストのアプローチを提供する heterochronic 操作を実行できます。4 chambered 中心。
下記プロトコルを我々 はラベル ドナー、マイクロインジェクション実験の成功のためリアルタイムで監視することができます携帯側の透過物蛍光色素と細胞といずれかを必要とせず記載する明らかな移植細胞の場所追加染色。ただし、このアプローチが短期的実験 (約 48 時間) に最適蛍光色素は細胞分裂によって失われることができます。代替アプローチは、長い用語実験に使用できます。
心臓開発のコンテキストでは、この手法を紹介して中を使いましたそれ大きな効果を細胞移植実験の中胚葉、頭や手足、体節に。よう下記の基本的なアプローチが非常に扱いやすいと様々 な臓器システムで使用できます。

<table><tbody><tr><td>1 mL インスリン シリンジ</td><td>BD</td><td>329654</td><td></td></tr><tr><td>1.7 mL マイクロチューブ、クリア</td><td>ジェネシー サイエンティフィック</td><td>24-282</td><td></td></tr><tr><td>10 ml シリンジ</td><td>BD</td><td>305482</td><td></td></tr><tr><td>1000ul リーチ バリア チップ ラック付き、滅菌済み</td><td>ジェネシー サイエンティフィック</td><td>24-430</td><td></td></tr><tr><td>15 mL 遠心チューブ、ラック付き</td><td>ジェネシー サイエンティフィック</td><td>28-101</td><td></td></tr><tr><td>1588Genesis Hova-Bator インキュベーター</td><td>GQF</td><td>813927021221</td><td></td></tr><tr><td>18G x 1 1/2 ニードル</td><td>BD</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>200ul バリアチップ 低結合、ラック付き、滅菌</td><td>ジェネシー サイエンティフィック</td><td>24-412</td><td></td></tr><tr><td>32G x 1/2" ニードル</td><td>TSK Steriject エアタイト</td><td>TSK3213</td><td></td></tr><tr><td>アルホホール ワイプ 70%</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>19015744</td><td></td></tr><tr><td>角度付き鉗子</td><td>ファインサイエンティフィックツール</td><td>11260-20</td><td></td></tr><tr><td>バックローディングのヒント</td><td>エッペンドルフ</td><td>930001007</td><td></td></tr><tr><td>ブラック インディアインク</td><td>KOH-I-NOOR</td><td>3084-F</td><td></td></tr><tr><td>CellTracker グリーン CMF</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>C7025</td> 1 <td>mM in DMSO</td></tr><tr><td>CellTracker レッド CMTPX</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>C34552</td><td>1 mM DMSO</td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>Eppendorf</td><td>5424R</td><td></td></tr><tr><td>商用グレード パッキング テープ</td><td>ステープル</td><td>2619001</td><td></td></tr><tr><td>湾曲した腱切開術 はさみ</td><td>ファイン サイエンティフィック ツール</td><td>14067-11</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>サーモフィッシャー サイエンティフィック</td><td>11330-032</td><td></td></tr><tr><td>DMSO、無水</td><td>サーモフィッシャー サイエンティフィ</td>ック <td>D12345</td><td></td></tr><tr><td>DPBS (10X)、カルシウム、マグネシウム</td><td>サーモなしフィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>14025092</td><td></td></tr><tr><td>フェムトジェット 4i</td><td>エッペンドルフ</td><td>5252000021</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>10437-028</td><td></td></tr><tr><td>孵化卵</td><td>ピルグリムズハッチェリー</td><td>--</td><td></td></tr><tr><td>HBSS、カルシウム、マグネシウム、フェノールなし レッド</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>14025-092</td><td></td></tr><tr><td>インジェクションマン 4</td><td>エッペンドルフ</td><td>5192000027D</td><td></td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>ライカ マイクロシステムズ&nbsp;</td><td></td><td></td>●</tr><tr><td>パラフィルム</td><td>SIGMA</td><td>P6543-1EA</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド 32% 水溶液中、EMグレード</td><td>VWR</td><td>100496-496</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>15140-022</td><td></td></tr><tr><td>ペトリ皿</td><td>ジェネシーサイエンティフィック</td><td>32-107</td><td></td></tr><tr><td>ピペットグラインダー</td><td>成重</td><td>EG-44</td><td></td></tr><tr><td>ピペットプーラー</td><td>HEKA</td><td>PIP 6</td><td></td></tr><tr><td>スコッチ透明テープ</td><td>ステープル</td><td>487909</td><td></td></tr><tr><td>Sigmacote</td><td>SIGMA</td><td>SL2-25ML</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>ライカ</td><td>--</td><td></td></tr><tr><td>ThermoMixer C</td><td>Eppendorf</td><td>5382000023</td><td></td></tr><tr><td>薄肉ガラスキャピラリー</td><td>World Precision Instruments</td><td>TW100F-4&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>トランスファーピペット</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>273</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0.05%), フェノールレッド</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>25300-054</td><td></td></tr></tbody></table>

鳥胚胚心筋細胞の生体内注入にマイクロインジェクション ベース システム

Microinjection-based System for In Vivo Implantation of Embryonic Cardiomyocytes in the Avian Embryo

発生生物学研究では一般的な挑戦を表す細胞系列決定影響の外因性アイソレータケージ対セル自律形成の相対的な影響の解釈。萌芽期の心これパラクリン/juxtacrine シグナリング キュー、転写制御因子の発現の地域差として特に難しいことし、血行力学的力のすべての心筋細胞の成熟に影響を与える知られています。発展途上の心筋細胞の分子および生体力学的微小環境を変更する簡易メソッドは、したがって、ローカル条件の影響細胞運命と機能を検討する強力な手法として機能します。これに対処するため、我々 は物理的に心臓や胚の周囲の組織に異所性の場所に若年性心筋細胞を移植する方法を最適化してきました。そのまま胚内の単一セルの解像度でどのようにアイソレータケージ条件影響心筋細胞運命遷移を調べることができます。ここでは、胚細胞様々 な心臓のサブドメインから分離された、解離、蛍光に分類でき高精度な宿主胚に microinjected プロトコルについて述べる。細胞を直接分析できますさまざまなイメージングおよび組織学的手法を使ってその場で。このプロトコルは、心など移動組織で極めて困難にすることができます従来の移植実験に強力な代替手段です。このメソッドの一般的なアウトラインは、ドナー組織およびホスト環境の多様性とその低コスト、使いやすさに合わせることができるもと速度は、発達的研究のさまざまな潜在的に有用なアプリケーション。

ホストの 24 h のインキュベーション、心臓とサラウンドの組織後胚は分離した、撮影 (図 1A)、および免疫蛍光分析の処理します。この例ではドナー心房筋細胞は同じような段階的なホストの proepicardium に microinjected された胚。宿主胚は、筋マーカー (MF20 緑) と 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI; 青)、染まりました。挿入されたセル (赤) がはっきりと見える (図 1B) です。セルが表示されていないかどうかを考慮する調整があります: ドナー組織は消化された以上 (細胞ことはできませんを付ける)、色素溶液をラベル付けがあまりにも希薄、細胞が過剰に洗浄またはラベルの損失をもたらした複数の細胞分裂。
この例では注入された細胞が心筋を確認するには、光共焦点顕微鏡 (図 1C E) を使用してこの胚を断面しました。Proepicardium (PE) 内で唯一 MF20 陽性細胞が蛍光の赤陽性細胞移植された塊状です。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59267/59267fig1.jpg"> 図 1: 胚の代表画像分離 24 時間ポスト噴射。(A) 低倍率明視野画像 E3.5 (HH ステージ 19) ニワトリのトランク部。(B) 注入マージされた画像表示セル (赤)、心筋 (緑)、および DAPI。セルは心房から隔離され、proepicardium に microinjected。(C) 高倍率顕微鏡を用いたイメージングを示す標識、proepicardium のコアの細胞です。(D) 高倍率顕微鏡を用いたイメージング心筋細胞が CT の赤いラベルのセルを確認します。(E) パネルDとEから注入された細胞の三次元 (3 D) 再建。で、アトリア。OFT、流出路;PE、proepicardium;Vt、心室;MF20 は、ミオシン 4。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59267/59267fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

この方法では胚の心臓組織は外科的 microdissected、解離、蛍光標識、そして宿主胚性組織に注入です。これは個人または組織レベル発達組織下異所性血行力学的条件、および/またはパラクリン/juxtacrine 環境の変化を研究するためのプラットフォームを提供します。

Interpreting the relative impact of cell autonomous patterning versus extrinsic microenvironmental influence on cell lineage determination represents a ...

このプロトコルは、局所バイオメカニクス、組織アーキテクチャ、パラクリン環境およびジュスタクリン相互作用における変化が細胞表現型に及ぼす影響を判断するのに役立ちます。この技術は、従来のグラフ実験で通常生じる大規模な組織侮辱を引き起こすことなく、古典的なパラダイムと実験的発生学を探求することを可能にする。注入のための右の圧力を見つけるために,より低い注入圧力から始めて細胞の安定した流れが達成されるまで徐々に増加させることが役に立ちます。この技術を視覚化することは、標的組織に対してどのように射出装置を配置する必要があるかを直接理解するのに役立ちます。この手順をデモンストレーションすることは、私の研究室の2人のメンバー、トレバー・ヘンリーとカンダス・トーマスです。移植の24時間前に、標準的なプロトコルに従ってマイクロピペットプーラーにガラス毛細血管を引っ張り、毛細血管をシリダイジング剤に浸して針の外面をコーティングする。次に、5~10マイクロリットルのシリコーン化剤をマイクロインジェクションピペットチップに積み込み、外部でコーティングされた引っ張られたガラスキャピラリーの広端にチップを置きます。ピペットチップをガラス針先端にできるだけ近づけ、針内の気泡を最小限に抑えるためにローディングピペットをゆっくりと引き込みながらシリコーン化剤を排出します。シリコン化剤をガラス針に10分間放置してから、新しいローディングピペットを使用して溶液を吸引します。その後、一晩煙のフードで針を乾燥させます。宿主胚の調製のために、摂氏38度の加湿インキュベーターで水平に肥沃な鶏卵をインキュベートし、卵赤道に沿って各卵の平らな端部の1ミリメートル以上の直径の穿刺をするために斜め鉗子を使用する。10ミリリットルの注射器に取り付けられた18ゲージの針を穿刺に挿入し、約5ミリリットルのアルブミンを取り除きます。そして、卵殻の上部に透明なテープを適用します。卵の上部に沿ってテーピングされた領域を斜め鉗子でスコアし、湾曲したテノトミーはさみを使用して、卵のテーピングされたセクションで約2.5センチメートルの窓をカットします。ハンブルガーとハミルトンによって確立された基準に基づいて胚を検査し、ステージングし、32ゲージ針を装備した1ミリメートルの注射器を使用して、胚の下のHBSSにインドインクの約200マイクロリットルを注入する。その後、透明なテープで穿刺を密封し、卵を加湿されたインキュベーターに戻すためにパラフィンフィルムで窓付きシェルを密封する前に、HBSSの1ミリリットルを胚ディスクに滴下して追加します。胚がハンバーガーとハミルトンのステージ19に達したら、シリコーンコーティングされたガラス毛細血管を脱イオン水で洗い流し、毛細血管を室温で3〜4時間乾燥させます。その間に、1つの卵から無菌室温HBSSを含む100 x 15ミリメートルのペトリ皿に胚を移し、その皿をステレオ顕微鏡の下に置きます。鉗子、胸腺切り耳切りおよびマイクロへらを用いて、胚の心臓全体を胚から分離し、心房を心臓から隔離する。1ミリリットルのHBSSを含む無菌1.5ミリリットルマイクロ遠心分離チューブに心房組織を氷の上に置きます。ドナー組織の全てが採取されると、固定角度マイクロ遠心分離法で遠心分離により組織をペレット化する。ドナー組織消化の場合、ペレットを1ミリリットルのプリ温め05%トリプシンEDTAで15分間、1分間に300回転で揺れるヒートブロックで15分間インキュベーションします。インキュベーションの終了時に、消化液を数回ピペットして、残りの組織を分解し、遠心分離によって心臓溶解物をペレットにする。別の遠心分離のためにトリプシン中和溶液の1ミリリットルでペレットを再懸濁し、その後400マイクロリットルの赤色蛍光色素溶液で再懸濁します。摂氏37度で20分後、1回の洗浄で1~3回の洗浄で遠心分離して細胞をペレット化する。次に、フレッシュHBSSでマイクロリットル濃度あたり10〜4番目の細胞の5倍の10倍の標識細胞を再中断する。ドナー細胞のインビボ注入のために、細胞懸濁液を乾燥したシリコーン処理ガラスキャピラリーピペットにバックロードし、ピペットを圧力マイクロインジェクター装置に取り付ける。加湿インキュベーターから注入される各宿主胚を蛍光ステレオ解剖顕微鏡下で卵ホルダーに移す。そして、ビテリン膜を開くために無菌の細かい鉗子を使用してください。心膜に5〜1ミリメートルの切開を行い、マイクロインジェクションニードルの先端が標的組織に浸透するようにマイクロインジェクターを配置します。マイクロインジェクターは、5秒間の単一パルスを加え、圧力で100~400ヘクトパスカルの範囲を設定します。そして、細胞を圧力注入する。卵を再密封する前に蛍光シグナルを画像化して、細胞移植が成功したことを確認することが重要です。胚はまた、この手順を文書化するために撮影することができます。すべての細胞が注入されたら、マイクロインジェクター装置を引き込み、卵をホルダーから取り出します。その後、胚に1ミリリットルの暖かいHBSSを滴下して加えます。透明なパッキングテープで卵を密封し、卵を移植後24時間湿気のある保育器に戻します。ここで、ドナー心房筋細胞移植後の宿主胚性心臓の心臓および周囲組織が示されている。本代表的実験では、ドナー細胞を同様の段階の宿主胚のプロエピカルジウムにマイクロインジェクションした。共焦点顕微鏡を用いた光学断面化は、プロエキカルジウム内の唯一の心筋マーカー陽性細胞が、焦点的に埋め込まれた蛍光赤陽性細胞であることを明らかにした。心臓の破裂や注射針によって引き起こされる局所血管構造が生存率の低下をもたらす可能性があるとして、レシピエント胚を過剰に操作しないように注意してください。この手順に従って、免疫染色化学を含む様々な下流アッセイを、その場面でのハイブリダイゼーションおよび細胞分類で行うことができる。シリコーン化剤は非常に可燃性で、急性毒性です。それは常に注意と煙のフードの中に適切な個人的な保護具で処理する必要があります。

microinjection-based-system-for-vivo-implantation-embryonic

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

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学ぶマイクロインジェクション法による鳥胚心筋細胞の生体内注入技術。蛍光標識した細胞を宿主胚に移植し、局所バイオメカニクスや組織構造が細胞表現型に与える影響を可視化する。再生医療への応用も期待される。

鳥胚胚心筋細胞の生体内注入にマイクロインジェクションベースシステム

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鳥胚胚心筋細胞の生体内注入にマイクロインジェクション ベース システム

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