Vi har udviklet en cellefusion assay, der kvantificerer SNARE-medierede membranfusionsteknikker begivenheder ved aktiveret ekspression af β-galactosidase.
De interaktioner mellem SNARE (s oluble N-ethylmaleimid-følsom faktor en ttachment protein re ceptor) proteiner på vesikler (v-Snares) og på målgrupperne membraner (t-Snares) katalyserer intracellulære vesikelfusion 1-4. Rekonstitutionsanvisninger assays er afgørende for at dissekere mekanismen og reguleringen af SNARE-medieret membranfusion 5. I en cellefusion assay 6,7, er SNARE proteiner udtrykt ektopisk på celleoverfladen. Disse "vendt" SNARE proteiner drive celle-celle fusion, hvilket viser, at snarer er tilstrækkelige til at smelte cellemembraner. Fordi cellefusion assay er baseret på mikroskopisk undersøgelse, er mindre effektiv, når anvendt til at analysere multiple v-og t-SNARE interaktioner kvantitativt.
Her beskriver vi en ny assay 8, der kvantificerer SNARE-medierede celle fusionsbegivenheder med aktiveret ekspression af β-galactosidase. Tokomponenter i Tet-Off genekspressionssystem 9 anvendes som en tæller systemet: tetracyclin-reguleret transaktivator (tTA), og et reporterplasmid, der koder for LacZ-genet under kontrol af tetracyclin-responselement (TRE-LacZ). Vi transficere tTA i COS-7-celler, som udtrykker vippet v-SNARE proteiner på celleoverfladen (V-celler) og transficere TRE-LacZ i COS-7-celler, som udtrykker vippet t-SNARE proteiner på celleoverfladen (T-celler) . SNARE-afhængig fusion af V-og T-celler resulterer i binding af tTA til TRE, den transkriptionelle aktivering af LacZ og ekspression af β-galactosidase. Aktiviteten af β-galactosidase kvantificeres ved hjælp af en kolorimetrisk metode ved absorbans ved 420 nm.
De vesikel-associerede membranproteiner (overlæder) er V-Snares, der bor i forskellige post-Golgi vesikulær rum 10-15. Ved at udtrykke Vamps 1, 3, 4, 5, 7 og 8 på samme niveau, sammenligne vi deres membran fusion, som anvender den enzymatiske cellefusion assay. Ud fra spektrometrisk måling, giver dette assay en kvantitativ fremgangsmåde til analyse SNARE-medieret membranfusion og for højt gennemløb undersøgelser.
Den oprindelige cellefusion assay 6 bestemmer SNARE-medierede celle fusionsbegivenheder ved fluorescensmikroskopi. Her beskriver vi en innovativ assay, der kvantificerer SNARE-medierede celle fusionsbegivenheder med aktiveret ekspression af β-galactosidase og spektrometrisk måling. Anvendelse af dette assay, vi rutinemæssigt analyseres 15-20 v-og t-SNARE kombinationer i et enkelt eksperiment. Ved anvendelse af flowcytometri til måling SNARE ekspression på celleoverfladen, vi titreres ekspressionsniveauer…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde understøttes af startup midler fra University of Louisville og CA135123 fra National Institutes of Health (til CH).
Name of reagent and equipment | Company | Catalog number |
DMEM | Invitrogen | 12800-017 |
COS-7 cells | ATCC | CRL-1651 |
tunicamycin | Sigma-Aldrich | T7765-5MG |
pTet-Off | Clontech | K1620-A |
pBI-G | Clontech | 6150-1 |
lipofectamine | Invitrogen | 18324-012 |
Enzyme-free cell dissociation solution | Invitrogen | 13151-014 |
Rabbit anti-TET Repressor polyclonal antibody | Millipore | AB3541 |
FITC-conjugated donkey anti-mouse IgG (H+L) | Jackson ImmunoResearch | 715-095-150 |
Laser scanning confocal microscope | Olympus | FV1000 |
FACSCalibur flow cytometer | BD Biosciences | |
β-Galactosidase Enzyme Assay System with Reporter Lysis Buffer | Promega | E2000 |
Model 100-40 UV-VIS spectrophotometer | Hitachi | C740843 |