Name: 마이크로 유체 문화 플랫폼에 Glia 상호 작용 (MCP) 기반 Neuronal 축삭과 Glia 공동 문화 시스템에 신경의 영상 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: 배우세요 마이크로유체 문화 플랫폼을 이용한 뉴런 축삭과 성상교세포 공동 배양 시스템 구축 방법을. 공초점 형광 현미경을 활용한 고해상도 영상 분석으로 신경-교세포 상호작용 메커니즘을 연구할 수 있습니다.

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우리는 BAC GLT1 eGFP 마우스와 GLT1 항체를 제공하기 위해 박사 제프리 Rothstein 감사드립니다, 가치의 핵심 시설을 제공하는, 신경 과학 연구 Tufts 센터 (PI, 롭 잭슨 NIH P30 NS047243), 새로운 교수 채용 기금 (NIH P30 5P30NS069254-02 , Tufts 신경 과학학과 PI, 필 Hay​​don).

1. 마이크로 유체 문화 회의소의 조립 (MCP) <ol><li> MCP (그림 1)은 세포 4 종류 compartmented 문화 용으로 설계된 개방형 챔버 있습니다. 그것은 일반적으로 중앙 채널 (직경 3 μm)를 통해 연결된 2 개의 구획이 있습니다. 바닥이 유리로 요리 MCP 조립 문화와 이후의 이미징 분석을 준비하기위한 필요합니다. </li><li> 첫째, Polyornithine (시그마 - 알드리치, 1 MG / ML)와 코트 멸균 유리 바닥 요리 나트륨 테트라 보레이트 (시그마 - 알드리치, 10 밀리미터 산도 8.5)에 용해하고 37 ° C.에서 하룻밤 incubated되었습니다 </li><li> 다음 날, 코팅 유리 바닥 요리는 ddH 2 O로 세 번 씻어되었으며, 멸균 배기함에 넣고 건조. 유리 바닥 요리는 더 laminin (시그마 - 알드리치, 1 MG / ML)로 코팅 1 시간 동안 UV 빛 아래에서 건조했다. 코팅 요리 사용할 수 있습니다 또는 사용 할 때까지 -20 ° C에 저장할 수 있습니다. 이러한 코팅공동 문화에 도금 뉴런과 astrocytes에 필요한 재. </li><li> 문화 플랫폼을 조립하기 위해 마이크로 유체 문화 플랫폼은 방수 밀봉을 형성하기 위해 아래 쪽 중앙 연결 채널을 시청할 수있는 코팅 유리 바닥 요리의 상단에 배치했다. 일반 신경이나 astrocyte 문화 매체는 조립 MCP로 양쪽 (그림 1)에 (셀 도금 지역에서) 추가하고 37 ° C에서 2~4시간에 대한 incubated, MCP와 유리 사이에 누수가 없는지 확인하기 위해 한 바닥 요리. 우리는 누수가없는 보장하기 위해 도금 세포하기 전에 중간에서 테스트했습니다. 유리 바닥 요리에 MCP의 어셈블리가 신선하게 사용하기 전에 준비해야합니다. </li></ol> 2. 조립 MCP에 Neuronal Axons의 Neuronal 문화 유도의 작성 <ol><li> 대뇌 피질의 neuronal 세포 문화는 신선한 배아 14-16일 된 마우스 뇌에서 준비되었다. 뉴런 문화 매체는 neurobasal 매체 2% B27 neurobasa으로 구성되어 있습니다난 보충, 100x GlutaMAX의 1 %, 그리고 1퍼센트 페니실린 - streptomysin를 추가하여 글루타민이 음. 마우스 뇌의 해부 후, meninges는 해부 현미경으로 피질에서 제거되었습니다. 조직은 다음 트립신에 노출 면적을 증가시키기 위해 작은 조직 블록을 만들기 위해 면도날과 다진했다. 조직 블록은 37 ° C의 물을 욕조에 10 분 동안 (시그마 - 알드리치, 0.05 % 트립신) trypsinized, 그리고 불타는 광택 파스퇴르 피펫으로 분쇄하여 부드럽게 한 다음 dissociated했다. Dissociated 세포는 일반 neuronal 세포 현탁액를 수집하기 위해 70 μm의 스트레이너를 통해 필터링되었습니다. </li><li> 뉴런이 세포 보존 지역 (그림 1)에 첨부 할 수 있도록 뉴런은 (2-3 × 10 6 / ML, 150 μl) 조립 MCP의 오른쪽 (그림 1)에서 셀 도금 부분에 도금되었습니다. 신선하게 조리 된 뉴런은 regula에 5% 태아 소 혈청 (Hyclone)로 보완되어 신경 도금 매체를 도금했다R 뉴런 문화 매체입니다. 세포 보존 영역에 첨부 만 뉴런이 중앙 채널을 통해 조립 MCP의 다른 측면에 axons 성장을 할 수 있기 때문에 충분한 뉴런이 연결된 수 있도록하기 위해 셀 도금 지역의 뉴런의 판 고밀도 중요합니다 세포 보존 지역. neuronal axons의 높은 밀도의 대표 이미지가 그림 2A에 표시됩니다. </li><li> 다음 날에서 신경 도금 매체는 일반 뉴런 문화 매체로 대체되었습니다. 변경 매체는 조심스럽게 챔버의 세포 도금 지역에서 매체를 aspirating하여 수행하지만, 조립 MCP의 세포 보존 지역에서, 셀 보존 지역과 중앙 연결 채널에 기포를 방지하기 위해 인치되었습니다 기포가 심각한 MCP의 중심 채널로 축삭의 가지와 이후의 항목을 억제합니다. Glial 세포 파생 neurotrophic 요인 (GDNF, 10-20 NG / ML)도 다른 (왼쪽) 측면에 추가되었습니다조립 MCP (그림 2A)의 중앙 채널을 통해 neuronal 측면과 십자가에서 축삭의 가지 (5)의 유도를 촉진하기 위해 같은 날 챔버의. GDNF없이 자연 neurite의 파생물의 공정한 금액도 조립 MCP의 중심 채널을 통해 neuronal 측면과 십자가에서 관찰된다. 중앙 채널에 입력 Axons은 종종 2-3일 도금 후 관찰됩니다. axons는 중앙 채널에 입력되면, 그들은 보통 하루 내에 다른 쪽을 입력합니다. Axons은 다른 쪽을 입력 한 후 최소 1 주일 동안 정상적으로 그대로입니다. </li></ol> 3. Compartmentalized 공동 문화 시스템을 구축하기 위해 MCP에 대한 양식 Astrocytes의 추가 기본 astrocyte 문화는 P1-3 마우스 새끼 뇌에서 준비되었다. 뇌 분리 절차는 위에서 설명한 neuronal 세포 분리 절차와 비슷합니다. Astrocytes 먼저 사전에 한 10cm 요리로 도금 된Polyornithine (시그마 - 알드리치, 1 MG / ML)로 코팅. astrocyte 문화 매체는 (DMEM, 10 % 태아 소 혈청, 1 % 페니실린 - streptomysin) 파편을 제거하려면 다음 두 일 동안 매일 변경되었습니다. 그 후, 매체는 매 3 일마다 교체되었습니다. <ol><li> Astrocytes는 90 %의 합류가 7 일 후에 monolayer를 형성하고 있습니다. 합류 astrocytes는 trypsinized되었으며 axons가에 대한 입력하려고합니다 또는 왼쪽의 체결했을 때 다시 중지 astrocytes (1x10 6 / ML) 150 μl은 조립 MCP의 왼쪽의 셀 도금 지역으로 다시 도금했다 MCP 조립. 뉴런이 도금 한 이후 Astrocytes는 일반적으로 4-5일 도금했다. GDNF 먼저 MCP의 왼쪽에 astrocytes의 재 도금하기 전에 삭제되었습니다. 재 도금 astrocytes는 같은 GFAP의 immunostaining (그림 1)에 의해 도시 된 바와 같이, 셀 고정 영역에 첨부되었습니다. 챔버의 양쪽 사이에 매체의 최소한의 흐름 (형광 D에 의해 결정이전에 4,6를 그림과 같이 예)는 MCP에서 발견되었다. </li><li> Astrocytes는 90 %의 합류가 7 일 후에 monolayer를 형성하고 있습니다. 합류 astrocytes는 axons가에 대한 입력 또는 왼쪽에 입력 한 경우 조립 MCP의 왼쪽의 셀 도금 지역으로 다시 도금 된 trypsinized하고 다시 중지 astrocytes (1 × 10 6 / ML) 150 μl되었습니다 조립 MCP의 측면. 뉴런이 도금 한 이후 Astrocytes는 일반적으로 4-5일 도금했다. GDNF 먼저 MCP의 왼쪽에 astrocytes의 재 도금하기 전에 삭제되었습니다. 재 도금 astrocytes는 같은 GFAP의 immunostaining (그림 1)에 의해 도시 된 바와 같이, 셀 고정 영역에 첨부되었습니다. 이전에 4,6를 그림과 같이 챔버의 양쪽 사이에 매체의 최소한의 흐름 (형광 염료에 의해 ​​결정), MCP에서 발견되었다. </li><li> astrocytes의 재 도금 후, 조립 MCP의 왼쪽을 입력 axons 직접 astr과 상호 작용직접 axonal 연락처 또는 수용성 요소의 릴리스에 의해 ocytes. astroglial 플라즈마 막 glutamate의 전송 GLT1와 neuronal βIII-tubulin의 Immunostaining은 그림 2D-F에 도시 된 바와 같이, axons과 astrocytes 사이의 상호 작용을 시각화하기 위해 수행되었다. </li></ol>

<ol><li>Stevens, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuron-astrocyte+signaling+in+the+development+and+plasticity+of+neural+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuro-Signals%22%5BJournal%5D)">Neuron-astrocyte signaling in the development and plasticity of neural circuits.</a> Neuro-Signals. 16, 278-288 (2008).</li>
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</ol>

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MCP 기반의 뉴런과 astrocytes 공동 문화 시스템은 axons는 중앙 채널을 통과 허용하고 astroglial 세포와 상호 작용에 의해 astroglia 신호 경로에 대한 자세한 뉴런의 절개를 할 수 있습니다. 이 공동 문화 시스템은 편리하게 기존의 신경 세포와 astrocyte 문화 절차를 설정할 수 있습니다. 우리는 또한 astrocytes의 축삭에 의존 GLT1 프로모터 활성화를 입증 eGFP 기반 기자를 고용하여 공동 문화 시스템의 실제 응용 프로그램을 설명했다. 잘 1) 고해상도 현미경이 아래에 실시간으로 하나의 axons과 astrocytes의 명시 적 형태학의 상호 작용을 시각화하고 식별 할 수있는 능력) :이 MCP 기반의 뉴런과 astroglia 공동 문화 시스템은 기존의 공동 문화 방식에 비해 몇 가지 장점을 제공합니다 발기인 활성화의 세포 별 효과 3 약리 조작을 적용 할 제어 독립적 인 microenvironment) 분석및 단백질 표현이 독점적...

<table border="1"><tbody><tr><td> 태아 소 혈청 </td><td> Hyclone </td><td> SH30070.03 </td><td> 뉴런의 cutlure 매체에 신경을 도금 용 </td></tr><tr><td> 태아 소 혈청 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> F4135 </td><td> astrocyte 문화 매체에 대한 </td></tr><tr><td> Glial 파생 된 신경 요소 </td><td> R &amp; D 시스템 </td><td> 212-GD </td><td> 챔버의 신경 세포 측에 10-20 NG / ML을 적용 </td></tr><tr><td> Dulbecco 수정 독수리 중간 높은 포도당 </td><td> 시그마 - 알드리치 </td><td> 11,995 </td><td></td></tr><tr><td> 70mm 셀 스트레이너 </td><td> BD 팔콘 </td><td> 352350 </td><td></td></tr><tr><td> 멸균 유리 바닥 요리 </td><td> MatTek 공사 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 마이크로 유체 문화 플랫폼 </td><td> Xona Microfluidics LLC </td><td> SND150 </td><td></td></tr><tr><td> 문화 판 6 우물 </TD&gt; <td> Cellstar </td><td> 657 160 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 뉴런 문화 매체 <ul><li> Neurobasal 매체 </li><li> 2퍼센트 B27 Neurobasal 보충 </li><li> 1퍼센트 100x GlutaMAX을 추가로 약 2 밀리미터 glutamate </li><li> 1퍼센트 페니실린 - streptomysin </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 도금 세포에 대한 신경 세포의 배양액 <ul><li> Neurobasal 매체 </li><li> 2퍼센트 B27 Neurobasal 보충 </li><li> 1퍼센트 100x GlutaMAX을 추가로 약 2 밀리미터 glutamate </li><li> 1퍼센트 페니실린 - streptomysin </li><li> 5% 태아 소 혈청 SH30070.03 </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Astrocyte 문화 매체 <ul><li> Dulbecco 수정 EAgle은 중간 높은 포도당 </li><li> 10% 태아 소 혈청 F4135 </li><li> 1퍼센트 페니실린 - streptomysin </li></ul></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 마이크로 유체 문화 플랫폼 기반의 neuronal 축삭과 glia 공동 문화 시스템에서 사용되는 표 1. 자료. </td></tr></tbody></table>

마이크로 유체 문화 플랫폼에 glia 상호 작용 (mcp) 기반 neuronal 축삭과 glia 공동 문화 시스템에 신경의 영상 분석

Imaging Analysis of Neuron to Glia Interaction in Microfluidic Culture Platform (MCP)-based Neuronal Axon and Glia Co-culture System

glia 상호 작용에 적절한 신경 세포는 중추 신경계 (CNS)의 생리적 기능에 중요합니다. 이 양방향 통신이 sophisticatedly 뉴런과 glia 1,2 사이에 특정 신호 경로에 의해 중재됩니다. 이러한 신호 경로의 식별 및 특성은 glia 상호 작용 형태의 CNS의 생리에 얼마나 신경 세포의 이해에 필수적입니다. 이전 뉴런과 glia 혼합 문화가 널리 뉴런과 glia 사이의 신호 경로를 테스트 및 특성화에 활용되었습니다. 우리가 생체 도구에서 이러한 준비 및 기타에서 배운 것을 그러나, 뉴런과 glia 사이의 상호 신호가 자주 뉴런 (즉, 축삭, dendrite, 또는 소마) 3 내의 특정 구획에서 오류가 발생 것을 제안했습니다. 이것은 중요한 neuronal 구획의 분리 할 수​​있는 새로운 문화 시스템을 개발 할 수 있으며 특별히 glia과 신경 사이의 상호 작용을 검사NAL axons / 수석. 또한, 기존의 혼합 문화 시스템은 가용성 요인과 뉴런과 glia 사이에 직접 멤브레인 연락처 신호를 구별 할 수 없습니다. 또한, 종래의 공동 문화 시스템의 뉴런과 glial 세포의 큰 수량은 하나의 축삭과 glial 세포 사이의 상호 작용을 관찰하는 데 필요한 해상도를 부족합니다. 본 연구에서는, 우리는 마이크로 유체 문화 플랫폼 (MCP)의 사용과 소설 축삭과 glia 공동 문화 시스템을 설명합니다. 이 공동 문화 시스템에서 뉴런과 glial 세포는 여러 중앙 채널을 통해 연결된 2 개의 별도의 방에서 배양되어 있습니다. 이 마이크로 유체 문화 플랫폼에서 만 neuronal 프로세스 (특히 axons) 중앙 채널을 통해 glial 측면을 입력 할 수 있습니다. 강력한 형광 단백질 라벨과 함께,이 시스템은, / axonal 수지상와 glial 상호 작용 사이의 경로를 신호를 직접 검사 할 수 있습니다neuronal 터미널에서 glia, glia로 인한 수용체 인신 매매 및 glia로 인한 축삭의 성장에의 축삭로 인한 전사 조절. 챔버의 좁은 직경은 크게 axons / 수석과 glial 표면 사이의 직접 막 단백질 상호 작용의 프로빙 촉진, glial 챔버에 신경 강화 매체의 흐름을 금지합니다.

astrocytes의 축삭 유도 GLT1 프로모터 활성화의 시간 경과 영상 분석 compartmented 신경 세포와 astrocyte 공동 문화 시스템은 neuronal 프로세스, 특히 axons은 선택적으로 astrocytes와 상호 작용 할 수 있습니다. 조립 MCP의 축삭과 astrocyte (또는 다른 glial 세포) 공동 문화의 성공적인 설립 후, 축삭-glia 상호 작용의 다른 유형은 다음과 같은 연구 될 수있다; astroglial 유전자 프로모터 활성화, astrocyte - 유도 축삭 가이드 축삭 유발 활성화를 , 축삭 유도 astroglial 칼슘이 oligodendrocytes의 + 응답하고, 축삭 유도 myelin 합성. 이 응용 프로그램의 모든 glial 세포하거나 셀에로드 염료에 사용할 강력한 형광 기자의 가용성을 활용합니다. 여기 박테리아 인공 chromo를 사...

이 연구는 소설 neuronal 축삭과 (천체) glia 공동 문화 플랫폼을 설정하는 절차를 설명합니다. 이 공동 문화 시스템에서 하나의 축삭 (및 단일 glial 세포) 사이의 직접 상호 작용 조작은 glial 신호에 대한 상호 신경 세포의 기계론의 분석을 수 있도록 가능한된다.

마이크로 유체 문화 플랫폼에 Glia 상호 작용 (MCP) 기반 Neuronal 축삭과 Glia 공동 문화 시스템에 신경의 영상 분석

적절한 뉴런-글리아 상호작용은 중추신경계(CNS)의 생리적 기능에 매우 중요합니다. 이러한 양방향 통신은...

본 프로토콜은 고해상도 이미징을 통해 뉴런과 글리아 세포 간의 상호작용을 분석하기 위한 새로운 신경세포 축삭 및 성상교세포 공동 배양 플랫폼을 구축합니다. 먼저, 미세유체 배양 챔버를 조립하고 신경세포 배양물을 준비한 후, 신경세포 축삭이 MCP의 반대편으로 진입하도록 유도합니다. 그다음, 배양된 성상교세포를 추가하여 구획화된 공동 배양 시스템을 구축하며, 공초점 면역형광 현미경을 이용한 타임랩스 이미징 등의 결과를 통해 축삭, 성상교세포 및 신경세포 축삭 사이의 상호작용을 이해할 수 있습니다.우리는 처음 이 방법의 아이디어를 GT one 조절에 대한 뉴런 돌기(neuronal process)의 영향과 뉴런 분비(neuronal secretion)의 영향을 분리하여 확인하려 할 때 얻었습니다. 일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 연구자들은 Axon을 세포 구획의 다른 부분으로 유도하는 데 어려움을 겪습니다. 이를 위해서는 뉴런 측에 건강한 뉴런이 고밀도로 도말되어야 하며, 특히 중앙 채널 근처에 뉴런이 배치되어야 합니다.MCP 오픈 챔버는 서로 다른 유형의 세포를 구획화하여 배양하도록 설계되었으며, 공배양 시 뉴런과 성상교세포를 플레이팅하기 위해서는 폴리우레탄 및 라미닌 코팅이 필요합니다. 먼저, 멸균된 유리 바닥 디쉬에 1 mg/mL 폴리우레탄 용액을 도포하고 37 °C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 코팅된 유리 바닥 디쉬를 2중 증류수로 3회 세척한 후, 멸균 흄 후드 내에서 건조시킵니다.다음으로, 1 mg/mL 농도의 laminin으로 디쉬를 코팅하고 UV 램프 아래에서 1시간 동안 건조합니다. 유리 바닥 디쉬 위의 MCP 조립체는 사용 직전에 준비해야 합니다. 중앙 연결 채널이 아래쪽으로 향하도록 미세유체 배양 플랫폼을 배치하고, 코팅된 유리와 밀착시켜 밀봉합니다.바닥 디쉬. 조립된 MCP의 양쪽에 일반 뉴런 또는 성상교세포 배양액을 첨가합니다. 챔버를 37 °C에서 2~4시간 동안 배양하고, MCP와 유리 사이에 누수가 없는지 확인합니다.하단 접시. 피질 신경세포 배양물은 배아 14~16일 된 마우스 뇌에서 새로 준비합니다. 마우스 뇌를 박리한 후, 해부 현미경 하에서 피질의 뇌막을 제거합니다.면도날을 사용하여 조직을 작은 블록 형태로 잘게 다진 후, 원심 분리한 다음 튜브에 넣습니다. 펠릿 위의 배지를 제거하고 0.05% Trypsin을 첨가하여 37 °C 항온수조에서 10분 동안 반응시킵니다. 화염 연마된 파스퇴르 피펫으로 부드럽게 피펫팅하여 세포를 분리합니다.70 micron 스트레이너에 샘플을 통과시켜 맑은 신경 세포 현탁액을 수집한 후, 5% FBS가 보충된 뉴런 플레이팅 배지를 사용하여 접종합니다. 조립된 MCP 플레이트의 우측에 150 microliters의 뉴런을 분주합니다.세포 유지 영역에 부착된 뉴런만이 조립된 MCP의 중앙 채널을 통해 반대편으로 축삭을 성장시킬 수 있으므로, 뉴런을 고밀도로 배치합니다. 다음 날, 챔버의 세포 도말 영역에서 배지를 조심스럽게 흡입하여 제거하고, 뉴런 도말 배지를 일반 뉴런 배양 배지로 교체합니다.배지에 20 ng/mL의 glial derived neurotrophic factor 또는 GDNF를 챔버의 성상교세포 쪽에 첨가합니다. 이렇게 하면 화학적 구배가 형성되어 조립된 MCP의 중앙 채널을 가로질러 신경세포 쪽에서 축삭이 성장하도록 유도하는 데 도움이 됩니다. 이틀 후, 중앙 채널로 진입하는 축삭이 있는지 관찰합니다.축삭이 중앙 채널로 진입하면, 보통 하루 이내에 반대편으로 진입합니다. 축삭은 반대편에 진입한 후 최소 일주일 동안은 정상적으로 유지됩니다. P1~3 마우스의 뇌를 해리한 후, 폴리우레탄이 코팅된 10 cm 디쉬에 성상교세포를 분주합니다.세포를 하룻밤 동안 배양하고, 이후 이틀 동안은 매일 성상교세포 배양액을 보충하며, 7일 후 성상교세포가 90% 융합 단층(confluent monolayer)을 형성하면 3일에 한 번씩 보충합니다. 그 후 trypsin을 사용하여 세포를 회수합니다. 뉴런을 도말한 지 약 5일 후에 GDNF를 흡입하여 제거합니다. 그런 다음 재부유시킨 성상교세포 150 µL를 조립된 MCP의 왼쪽에 파종합니다. 성상교세포를 재파종한 후, 축삭이 막 진입하려고 하거나 막 진입했을 때, 조립된 MCP의 왼쪽으로 진입한 축삭은 직접적인 축삭 접촉 또는 수용성 인자의 방출을 통해 성상교세포와 직접 상호작용합니다.성상교세포가 세포 유지 영역에 부착되었는지 모니터링합니다. 구획화된 공동 배양 시스템 내의 세포를 면역 염색하여 축삭과 성상교세포 간의 상호작용에 관여하는 단백질과 같은 특정 단백질을 시각화합니다. 구획화된 뉴런 및 성상교세포 공동 배양 시스템을 통해 뉴런의 돌기, 특히 축삭만이 선택적으로 성상교세포와 상호작용할 수 있습니다.본 논문에서는 축삭에 의해 유도된 성상교세포 글루타메이트 운반체의 전사 활성화에 대해 설명합니다. 본 연구에는 GT1 게놈 프로모터의 제어 하에 EGF 형광 리포터가 발현되는 형질전환 마우스가 사용되었습니다. 조립된 MCPA의 세포 유지 영역에 고밀도의 뉴런을 배양하였으며, 확대된 모습은 축삭이 중앙 채널을 가로질러 반대편으로 진입하는 것을 보여줍니다. beta 3 tubulin 염색을 통해 축삭 성장 원추를 확인할 수 있습니다.MCP 시스템을 통해 축삭 다발이 중앙 채널을 통해 성장하여 반대편으로 진입하는 과정을 모니터링할 수 있습니다. GLT-1 면역 염색을 통해 MCP 시스템의 글리아 층에서 성상교세포를 식별하였습니다. 이미지는 여기서 축삭과 GLT-1 양성 성상교세포 사이의 접촉을 보여줍니다.EGFP 리포터의 발현은 내인성 GT one 프로모터의 활성화, 단백질 발현 및 기능적 활성과 상관관계가 있습니다. C two의 단일 성상교세포에서 GT one 프로모터 활성을 평가한 결과, 구획화된 공동 배양 시스템에서 GLT one 면역반응성이 유의하게 증가한 것으로 나타났습니다. 중요한 점은, MCP 시스템을 통해 타임랩스 이미지를 촬영함으로써 역동적인 변화를 모니터링할 수 있다는 것입니다.예를 들어, 이 데이터는 성상교세포를 도말한 지 하루 후, GT1 EGFP 성상교세포와 야생형 뉴런을 함께 배양했을 때 축삭에 의해 GT1 프로모터가 활성화되었음을 보여줍니다. EGFP 형광은 매우 최소한으로 관찰됩니다. 공동 배양 48시간 후, 축삭이 성상교세포 쪽으로 충분히 뻗어 나가 이곳에서 성상교세포와 직접 접촉하여 상호작용하게 되면 EGFP 강도가 유의미하게 증가합니다.조립된 MCP의 뉴런 측에 Kinine 처리를 하면 뉴런 세포 사멸이 유도되었습니다. 흥미롭게도, 이는 축삭의 퇴행 및 퇴화뿐만 아니라 축삭의 EGFP 형광 감소 또한 자극했습니다. 축삭에 반응하여 나타난 이러한 EGFP 형광 강도의 역동적인 변화는 Astroglia GT one 프로모터 활성이 축삭 상호작용에 의해 조절된다는 것을 명확히 보여주었습니다.이 영상을 시청하고 나면 미세유체 배양 플랫폼을 사용하여 코어 배양 시스템을 구축하는 방법을 충분히 이해하게 될 것이며, 이 기술을 숙달하면 며칠 내에 적절히 수행할 수 있습니다.

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마이크로 유체 문화 플랫폼에 Glia 상호 작용 (MCP) 기반 Neuronal 축삭과 Glia 공동 문화 시스템에 신경의 영상 분석

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