Name: 단일 가닥 DNA 타일에서 단지 두 차원 모양의 자기 조립 (self-assembly) (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 23 s
Description: 배우세요 단일 가닥 DNA 타일을 이용한 복잡한 나노구조체 자기 조립 방법을. 아가로스 겔 전기영동과 원자력 현미경으로 검증하며, 정밀한 샘플 준비가 핵심입니다.

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이 작품은 해군 연구소 젊은 탐정 프로그램 상 N000141110914, 해군 연구비 N000141010827의 사무실, NSF 경력 상 CCF1054898, NIH 감독의 새로운 혁신 상 1DP2OD007292의 오피스와 (PY에) 생물학적 영감 공학 학부 시작 기금 위스 연구소에 의해 투자되었다 칭화 - 베이징 (BW에) 생명 과학의 시작 기금 센터.

1. DNA 시퀀스 디자인 <ol><li> 28T 캔버스 × 24H를 만들 이중 나선, 각각의 이중 나선을위한 상하 나선의 길이의 수, 교차 패턴을 지정하여 SST-한정된 구조를 설계 UNIQUIMER 소프트웨어 (27)를 사용한다. 이러한 매개 변수를 정의한 후, 전체 구조 (스트랜드 조성물 및 상보성 배열)은 그래픽 프로그램에서 도시된다. </li><li> 보완 장치 및 추가 요구 사항 (있는 경우)를 충족시킬 수있는 특정 구조의 가닥을위한 시퀀스를 생성합니다. (구조체의 대부분) 서열 28 대칭성을 최소화하여 DNA 서열을 디자인. <ol><li> 뉴클레오티드 (A, C, G 및 T)에 의해 하나 하나를 랜덤하게 생성한다. </li><li> T와 반대로; 것과 상보 일치 뉴클레오티드 염기쌍 규칙 다음 생성 C G와 그 반대의 경우도 마찬가지입니다. </li><li> 8-9 뉴클레오티드 이상 반복 세그먼트를 사용하지 마십시오. 때와 같은 대표반복 세그먼트 요건이 만족 될 때까지 세그먼트를 설계 중에 등장 먹고, 가장 최근에 생성 된 뉴클레오티드 돌연변이. </li><li> 4 개의 연속적인 A, C, G, 또는 T 염기를 사용하지 마십시오. </li><li> 두 경우에, 즉 (결합 지점 주위 염기 슬라이딩 피하기 위해 (가닥의 대부분을, 각각 제 21 및 스물두번째 뉴클레오티드 예 T 및 G에 대한) 단일 가닥 결합 지점에서 미리 - 특정 뉴클레오티드를 사용 스물한번째 및 스물두번째 뉴클레오티드는 제 22 뉴클레오티드가)에 결합하도록되어 있음 21 뉴클레오티드는 염기에 결합하는 것이 가능했다, T이었다. </li></ol></li><li> 스트렙 라벨, 튜브에 사각형 변형, 다른 직사각형 및 다른 비늘에 걸쳐 튜브의 형성을 위해 수동 DNA 서열을 수정 SST에 노출 된 영역에 의한 응집을 방지 할 수있다. <ol><li> 폴리-T의 TRA와 분자 캔버스의 경계에 노출 된 도메인을 교체CTS. </li><li> 스트렙 라벨링, 그들은 3 &#39;비오틴이 수정 된 안티 핸들 스트랜드를 수용 할 수 있도록 손잡이 부분 (예컨대 안티 핸들 가닥으로 상보 상대방에 결합 할 수있는 성분 가닥 추가 엑스트라 세그먼트) 설계. </li><li> 튜브에 사각형의 변환의 경우, 사각형에서 상단과 하단 행을 제거하고 누구의 해수면 온도 맨 윗줄에 두 번째와 맨 아래 행에 두 번째에 해당 타일에 특정 보완이 새 행을 삽입합니다. </li><li> 다른 모양의 노출 된 단일 가닥 도메인의 경우, 10 ~ 11 뉴클레오티드 길이의 폴리-T 세그먼트로 교체, 또는 노출 된 도메인을 보완하고 10 ~ 11 뉴클레오티드 긴 폴리-T 세그먼트와 종료 가장자리 보호 장치에 의해 커버한다. </li></ol></li></ol> 분자 캔버스 2. 준비 <ol><li> oligonucleoti로부터의 RNase가없는 물에 용해 지정된 서열의 DNA 가닥 성분을 구하는표준 탈염와 10 nmol의 규모에 합성 올리고 뉴클레오티드와 V 바닥 96 웰 플레이트에 드 제조 업체. 원심 분리기 600 × g에서 약 10 초 동안 DNA 가닥과 함께 96 웰 플레이트. <ol><li> 피펫 2ml를 시험관에 가닥 당 100 μM (제조업체 사양)에서 28T 사각형 (그림 3A) × 24H에 대한 DNA 가닥과 362 우물에서 각각 1 μL. 가닥 당 200nm의 농도 가닥 혼합물의 스톡 용액을 만들기 위해 2 mL를 시험관에 증류수 탈 H 2 O의 138 μl를 추가. </li></ol></li><li> 스트랜드 혼합물, 10X 어닐링 버퍼 (50 mM 트리스, 산도 7.9, 10 mM의 EDTA, 250 mM의의 MgCl 2), 및 증류수 탈 H의 40 μL 2 O 0.2에 10 μL의 200 nm의 주식 솔루션의 50 μl를 추가 ㎖의 PCR 튜브. 이것은 1X 어닐링 버퍼 내의 분자 캔버스 100 μL 샘플을 만든다 (5 mM 트리스, pH가 7.9, 1 mM의 EDTA, 25 mM의의 MgCl 2). </li><li> SAMPL을 어닐링25 ° C ~ 90 ° C에서 냉각 열 자전거 타는 17 시간 동안 전자. 다음 프로그램 서열 증폭기는 : C ° 당 5 분의 일정 속도로 61 ° C로 90 ° C에서 램프 다운; C °마다 20 분의 일정 속도로 25 ° C로 60 ° C에서 램프 다운; 샘플을 열 순환기 취출 될 수있을 때까지 4 ℃에서 배양한다. </li><li> 기본 2 % 아가 로스 젤을 준비합니다. <ol><li> 600 ml의 비이커에 아가로 오스의 2.4 G를 측정한다. 비커 0.5X TBE 완충액 (44.5 mM 트리스 - 보레이트, pH가 8.3, 1 mM의 EDTA) 및 증류수, 탈 이온수 30㎖를 120 ml에 추가. </li><li> 3 분 (- 끓는 후 60 초 이상 또는 40)에 대한 마이크로 웨이브. 2 %의 아가 로스 겔에서의 농도를 유지하는 데 도움이 물 30 mL를 첨가하여 증발 중에 손실을 보충 물. </li><li> 냉수 조에서 1 분 동안 비커의 내용물을 소용돌이. 1.2 M의 MgCl 2의 1 ml의 (겔 10 mM의의 MgCl 2 농도를 만들기 위해) 추가 겔 재치를 미리 얼룩SYBR 안전 염료 H 6 μL (1 : 20,000). </li><li> 건조 겔 상자에 겔 용액을 붓고 1.5 mm의 두께를 12도 겔 전기 빗를 삽입합니다. 심지어 플랫폼에서 30 분 - 솔루션은 15 공고히하자. </li><li> 젤 실행 버퍼 (44.5 mM 트리스 - 보레이트, pH가 8.3, 1 mM의 EDTA, 10 mM의의 MgCl 2) 겔 상자에 부어. 로드 2 - 아가 로스 겔의 웰에 1킬로바이트의 DNA 사다리 3 μL. (파란색 0.25 % 브로 모 페놀, 5 mM 트리스, 1 mM의 EDTA, 10 mM의의 MgCl 2, 30 % 글리세롤) 6X 브로 모 페놀 블루 염료의 4 μL 분자 캔버스의 샘플 20 μL와 혼합하고, 또 다른 우물에 솔루션을로드 아가 로스 젤. </li></ol></li><li> 빙수 조에서 100 V로 2 시간 동안 기본 2 % 아가로 오스를 실행 (이것은 지표로서 역할을 할 수 있도록 청색에 도시 브로 모 페놀 블루, 빠른 성분 가닥보다 실행되도록 2 시간 실행 시간은 적절한 경우). </li><li> 이미지 SYBR 안전한 염색을위한 적절한 필터 (도 2B와 겔 스캐너를 사용하여 젤 </strong&gt;). </li><li> 청색광 transilluminator가에서 날카로운 깨끗한 면도날을 사용 1킬로바이트의 DNA 래더 1,500 염기쌍 밴드 유사한 이동성 지배적 대역을 절제. 스핀 열에서 원하는 젤 조각 (들)을 배치 한 후 마이크로 튜브 유봉을 사용하여 미세 조각으로 젤을 분쇄. 4 ℃에서 3 분 동안 438 XG에 원심 분리기. </li><li> 260 nm에서 자외선 분광 광도계를 이용하여 DNA 농도를 측정한다. <ol><li> 기계를 교정하기 위해 빈으로 고순도의 DNase /의 RNase-무료 증류수 2 μL를 사용합니다. </li><li> DNA 농도의 추정치를 얻기 위해 스핀 열에서 수집 된 샘플의 동등한 볼륨을 사용합니다. 260 nm의 UV 흡수로 얻어진 측정 농도 값 ( &quot;&quot;= NG / μL)는 AFM 및 TEM 이미징 희석 팩터를 결정하는데 도움이 될 것이다. </li><li> &quot;&quot;(NG / μL)에 &quot;B&quot;(㎚) 다음 B = × 106 / (330에서 측정 된 농도 변환# 215; 뉴클레오티드의 수). 참고 : 염기의 분자량은 330g / 몰이다. 계산 된 몰 농도 값 및 AFM TEM 이미징 희석 계수를 결정한다. 60 NG / μL - 28T 구형 × 24H의 케이스에 관해서는, 정제 된 샘플에 대한 일반적인 측정은 약 10이다. 12 nM의 - 같은 구조의 뉴클레오티드 번호 14616 다이기 때문에, 몰 농도는 약 2이다. 최종 농도가 수집 수율에 의해 결정된다 -에서 원심 분리 (20 ~ 50 %) 및 ​​겔 밴드의 체적은 (높은 용적은 더 정제 된 시료를 희석) 밖으로 절제. </li></ol></li></ol> 3. 원자 힘 현미경 영상 <ol><li> 평탄면을 얻을 촬상 스테이지 상 시험편 디스크를 배치 스카치 테이프를 이용하여 시편의 금속 디스크에 부착 된 운모를 벗겨. </li><li> 28T × 24H의 정제 된 샘플 - (5 nM 내지 2) 5 μL이어서 1X 어닐링 완충액 40 μl를 추가갓 절단 운모 표면에 사각형입니다. 혼합물을 약 2 분 동안 정착하도록 허용합니다. </li><li> 캔틸레버 홀더에 AFM 질화 실리콘 캔틸레버 칩을 설치합니다. 이미징을위한 - (상수 봄, K = 0.24 Nm의 -1 75 kHz에서 0 = 40 F 공진 주파수) C 삼각형의 팁을 사용합니다. </li><li> 이미지 유체 태핑 모드에서 샘플. 검색을 위해 다음과 같은 이미지 파라미터를 사용하여 2 μm의 크기, 해상도 1024 라인, 0.5의 스캔 속도 스캔 - 1 Hz에서 (그림 2C)를. </li><li> 필요한 경우, 29-DNA 결합 운모의 강도를 증가시키기 위해 10 μL 이상의 NiCl 2 10mM의 용액을 첨가. </li></ol> 스트렙 타비 딘 라벨 4. 샘플 준비 <ol><li> 수동으로 특정 위치에서 핸들 가닥이 차례로 streptavid에 결합 할 수있는 비오틴 변형 방지 핸들 가닥, 보완으로 통합되도록 28T 사각형 × 24H를 디자인특히있다. <ol><li> 하단 윗줄 14 타일 14 타일 스페이서로서 두​​ 뉴클레오티드 서열 (TT)로 구성되어 3 &#39;17 뉴클레오티드 세그먼트와 15 뉴클레오티드 핸들 (GGAAGGGATGGAGGA)를 부착함으로써 분자 캔버스 수정 사각형 (그림 3A)의 행은 경계 레이블을. 이 시퀀스는 3 &#39;비오틴 변성 방지 손잡이 스트랜드 (TCCTCCATCCCTTCC 비오틴)에 상보 적이다. </li></ol></li><li> 내부 라벨의 경우, 8 내부 타일과 사각형 (그림 4A)의 6 경계 타일 3 &#39;17 뉴클레오티드 세그먼트를 연결합니다. <ol><li> 200 nm의 주식 솔루션을 만드는 28T 사각형 (334 가닥) × 24H의 구성 요소 가닥의 나머지 부분과 핸들 (경계 라벨링)와 28 가닥을 섞는다. 200 nm의 주식 솔루션을 얻기 28T 사각형 (348 가닥) × 24H의 구성 요소 가닥의 나머지 부분과 핸들 14 가닥 (내부 라벨)을 섞는다. </li></ol></li><li> 보의 경우0.2 - undary 라벨링, 100 μM 바이오틴 변형 방지 손잡이 가닥 6 μL, 10X 어닐링 완충액 10 μL와 증류수, 탈 이온수 34 ㎕를 0.1 가닥이 200nm 스톡 용액 50 μL를 추가 PCR 용액 시험관. 성분 가닥의 최종 농도는 100 ㎚이다과 안티 비오틴 변성 핸들 가닥의 최종 농도는 6000 ㎚이다. 방지 처리 비오틴 수정 가닥 바인딩 유리하게 100 %를 초과하므로 28 분자 28T 사각형 × 24H에 비오틴 수정 가닥 바인드를 안티 - 처리합니다. </li><li> 내부 표지 용, 0.1 가닥이 200nm 스톡 용액 50 μL, 100 μM에서 내부 방지 처리 바이오틴 변형 된 가닥의 3 μL, 10X 어닐링 완충액 10 μL, 증류수, 탈 이온수의 37 μL를 추가 - 0.2 ㎖의 PCR 테스트 튜브. 성분 가닥의 최종 농도는 100 nM 내지 안티 핸들 비오틴 후 변형의 최종 농도<html> ED 스트랜드는 3000 ㎚이다. 28T 사각형 너무 방지 처리 비오틴 수정 가닥 × 24H에 방지 핸들 비오틴 수정 가닥 바인드 14 분자가 결합이 유리하게 100 %를 초과합니다. </li><li> 2.3에 기재된 절차를 이용하여 17 시간 동안 열 사이 클러에 두 샘플을 어닐링. </li><li> 단계 2.4에 설명 된대로 기본 2 % 아가 로스 젤을 준비합니다. </li><li> 단계 2.5에 기재된 바와 같이 두 샘플을 정제. </li><li> 단계 2.6에 기재된 바와 같이 원하는 DNA 구조물의 농도를 측정한다. </li></ol> 스트렙 타비 딘 라벨 5. 원자 힘 현미경 <ol><li> 이미지 3 단계 (도 3b 및도 4b)에 기술 된 바와 같이 AFM을 이용하여 각각의 샘플. </li><li> 촬상의 첫 번째 라운드 후에, 시료 용액에 10 mg의 스트렙 타비 딘의 1 μL /이어서 1X 어닐링 완충액의 40 μL를 추가한다. 혼합물 (도 3C와 4C)를 재 이미징하기 전에 약 2 분 동안 정착하도록 허용합니다. </li></ol>_title &quot;&gt; 6. 튜브에 사각형을 변환 <ol><li> 직사각형에 기초 튜브를 설계하기 위해, 상단과 하단의 행을 제외 대신 성분 해수면 온도를 모두 유지한다. 누구의 해수면 온도 튜브 형태 (그림 5A)로 원래의 사각형을 고리 화하기 위해 각각의 컬럼의 상단과 하단 타일을 연결하여 설계에 새 행을 소개합니다. </li><li> 상부 및 하부의 행 (336 가닥)이 200nm 스톡 용액을 얻었다 제외 28T 사각형 × 24H의 성분 가닥 가닥의 새로운 행 (14 가닥) 섞는다. </li><li> 2.7 (그림 5B) - 겔 정제 2.2 단계를 따르십시오. </li></ol> 7. 투과 전자 현미경 영상 <ol><li> 2 % 수성 포름산 우라 닐 염색 용액을 조제 증류수 3 ㎖에 우라 닐 포르 메이트 0.06 g을 단다. 주사기에 부착 된 0.2 μm의 필터를 사용하여 2 % 수성 포름산 우라 닐 염색 용액 필터. <ol><li> 5 μl를 추가5 N NaOH를 필터링 얼룩 용액 1ml를합니다. 간단히 20,000 X g에서 솔루션과 원심 분리기를 소용돌이. </li></ol></li><li> 25mA, 45 초, 0.1 밀리바, 음의 높은 인장 극성 : 글로우는 다음과 같은 설정으로 탄소 코팅 그리드 (코팅면이 위를 향하게) 방전. </li><li> 가장자리에서 빛 배출기 처리 그리드를 잡기 위해 자동 폐쇄 집게를 사용합니다. </li><li> 4 분의 그리드에 샘플의 3.5 μl를 피펫. 측면에서 그리드와 접촉 여과지를 가져옴으로써 샘플을 윅 여과지를 사용한다. </li><li> 즉시 1 분 동안 그리드에 얼룩 솔루션의 3.5 μl를 추가합니다. </li><li> 7.4과 같이 얼룩을 윅과 1 그리드에 대해 필터 종이를 보유 - 2 분. </li><li> 10 K에서 80 K (그림 5C)에 이르기까지 다양한 배율 80 kV의에서 작동 JEOL JEM-1400을 사용하여 TEM 시편 홀더와 이미지에 격자를 전송합니다. </li></ol> 8. Molecul를 사용하여 임의의 모양을 구성AR 캔버스 <ol><li> 모양을 확인하고 분자 캔버스에 모양에 해당하는 가닥을 선택합니다. 예를 들어 삼각형 모양의 경우, 분자 캔버스 (206) (362) 밖으로 가닥을 선택합니다. </li><li> 10 폴리-T 세그먼트에 (즉 삼각형의 빗변을 따라 인) 노출 영역을 교체 - 11 개의 뉴클레오티드 (도 6a에 디자인 1), 또는 노출 된 영역에 상보 에지 보호대를 추가로 종료 10-11 염기 긴 폴리-T 세그먼트 (그림 6A 디자인 2) 응집을 방지합니다. 참고 : 간단하게 (보호자 가닥을 사용하지 않고) 삼각형의 픽셀에 해당하는 해수면 온도를 어닐링 집계 및 젤에 전혀 별개의 제품 밴드의 형성으로 이어질 것입니다. 더 자원을 효율적으로 다양한 형태의 가장자리 보호 설계를 사용; 그것은 (Figur를 대체 설계 (14)의 추가 세트에 비해 가닥 (도 6C)의 네 개의 세트를 추가로 필요전자 6B). </li><li> 코어 세트 (362 SST 캔버스), 설정 (1) * (SST의 도메인 1에 결합 모서리 보호대) 도메인 2에 결합, 세트 2 * (에지 보호를 포함하는 310 픽셀 분자 캔버스에 대한 가닥 라이브러리 만들기 SST)의, SST의 도메인 3에 결합 3 * (모서리 보호대)를 설정하고, 설정은 4 * (SST의 도메인 4)에 결합 에지 프로텍터 1344 에지 보호의 총을주고. </li><li> 약 10 초 동안 다른 세트의 96 웰 플레이트를 원심 분리기. 피펫 아웃 특정 모양 스톡 용액을하기 위해 플레이트로부터 원하는 가닥. <ol><li> 모서리 보호대, 피펫 2 ㎖의 원심 분리기에 1 코어 세트에서 206 가닥의 μL, 0 세트 1 *에서, 0 세트 2 *에서, 세트 3 * 0과 세트 4 * 24 가닥 삼각형의 모양 튜브. DNA 가닥의 400 nm의 주식 솔루션을 만들기 위해 튜브에 증류수 탈 이온수 20 μl를 추가합니다. </li></ol></li><li> DNA의 STRA의 400 nm의 주식 솔루션의 50 μl를 추가<html> NDS, 10X 어닐링 완충액 B 0.2 ㎖의 PCR 용 튜브 (50 mM 트리스, pH가 7.9, 10 mM의 EDTA, 125 mM의의 MgCl 2) 스톡 용액 및 40 ㎕의 증류수, 탈 H 2 O 10 μL. 이것은 1X 어닐링 완충액 B의 삼각형의 100 μL 샘플을 만든다 (5 mM 트리스, pH가 7.9, 1 mM의 EDTA, 12.5 mM의의 MgCl 2) 가닥 당 약 200 nm의 농도 가닥. </li><li> 단계 2.3에 기재된 바와 같이 17 시간 동안 열 순환기 혼합물을 어닐링. </li><li> 단계 2.4에 설명 된대로 기본 2 % 아가 로스 젤을 준비합니다. </li><li> 단계 2.5에 기재된 바와 같이 샘플을 정제. </li><li> 단계 2.6에 기재된 DNA의 농도를 측정한다. </li><li> 이미지 3 단계 (그림 7C 및 7D)에 설명 된대로 AFM에서 샘플. </li><li> 선택과 같은 가닥 라이브러리를 사용하여 다른 모양에 대한 가닥을 섞는다. 다른 솔루션을 어닐링 및 AFM 이미징 동안 시간을​​ 절약하기 위해 다른 모양의 정제 된 샘플을 결합한다. </li></ol>&gt; 9 jove_title &quot;옵션 :. 모양 디자인 및 액체 혼합 로봇 자동화 <ol><li> 복잡한 형태의 디자인을 지원하기 위해 사용자 지정 MATLAB 프로그램을 사용하십시오. </li><li> 로봇 액체 핸들러 피펫 시퀀스의 형태로 명령어를 제공하도록 소프트웨어를 사용한다. 선택 대상 형상을 구성하는 스트랜드를 혼합하는 로봇 액체 핸들러를 사용. 주 : 형상 설계와 스트랜드 혼합은 인간의 오류를 줄이고 건설 덜 노동 집약적하게 자동화되었다. </li></ol> 10. 사각형 및 다른 저울에 걸쳐 튜브 <ol><li> 단순히 병렬 나선 (H) 및 나선 회전 (T)의 숫자의 개수를 변화시킴으로써 다른 크기의 사각형 (도 10)을 구축. </li><li> 특정 크기의 사각형을위한 3 단계를 따릅니다. </li><li> 특정 크기의 튜브에 대한 6 단계를 따릅니다. </li></ol>

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<li>Yin, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programming+DNA+tube+circumferences%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Programming DNA tube circumferences.</a> Science. 321 (5890), 824-826 (2008).</li>
<li>Sharma, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+self-assembly+of+DNA+tubules+through+integration+of+gold+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Control of self-assembly of DNA tubules through integration of gold nanoparticles.</a> Science. 323 (5910), 112-116 (2009).</li>
<li>Douglas, S. M., Dietz, H., Liedl, T., Högberg, B., Graf, F., Shih, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-assembly+of+DNA+into+nanoscale+three-dimensional+shapes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Self-assembly of DNA into nanoscale three-dimensional shapes.</a> Nature. 459 (7245), 414-418 (2009).</li>
<li>Andersen, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-assembly+of+a+nanoscale+DNA+box+with+a+controllable+lid%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Self-assembly of a nanoscale DNA box with a controllable lid.</a> Nature. 459 (7243), 73-76 (2009).</li>
<li>Dietz, H., Douglas, S. M., Shih, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Folding+DNA+into+twisted+and+curved+nanoscale+shapes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Folding DNA into twisted and curved nanoscale shapes.</a> Science. 325 (5941), 725-730 (2009).</li>
<li>Zheng, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+molecular+to+macroscopic+via+the+rational+design+of+self-assembled+3D%5BTitle%5D)+AND+%22DNA+crystal.+Nature%22%5BJournal%5D)">From molecular to macroscopic via the rational design of self-assembled 3D.</a> DNA crystal. Nature. 461 (7260), 74-77 (2009).</li>
<li>Han, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+origami+with+complex+curvatures+in+three-dimensional+space%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">DNA origami with complex curvatures in three-dimensional space.</a> Science. 332 (6024), 342-346 (2011).</li>
<li>Liu, W., Zhong, H., Wang, R., Seeman, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystalline+two-dimensional+DNA+origami+arrays%5BTitle%5D)+AND+%22Angew.+Chem.+Int.+Ed%22%5BJournal%5D)">Crystalline two-dimensional DNA origami arrays.</a> Angew. Chem. Int. Ed. 50 (1), 264-267 (2011).</li>
<li>Zhao, Z., Liu, Y., Yan, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organizing+DNA+origami+tiles+into+larger+structures+using+preformed+scaffold+frames%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">Organizing DNA origami tiles into larger structures using preformed scaffold frames.</a> Nano Lett. 11 (7), 2997-3002 (2011).</li>
<li>Woo, S., Rothemund, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programmable+molecular+recognition+based+on+the+geometry+of+DNA+nanostructures%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem%22%5BJournal%5D)">Programmable molecular recognition based on the geometry of DNA nanostructures.</a> Nat. Chem. 3 (8), 620-627 (2011).</li>
<li>Delebecque, C. J., Lindner, A. B., Silver, P. A., Aldaye, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organization+of+intracellular+reactions+with+rationally+designed+RNA+assemblies%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Organization of intracellular reactions with rationally designed RNA assemblies.</a> Science. 333 (6041), 470-474 (2011).</li>
<li>Lin, C., Liu, Y., Rinker, S., Yan, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+tile+based+self-assembly%3A+building+complex+nanoarchitectures%5BTitle%5D)+AND+%22ChemPhysChem%22%5BJournal%5D)">DNA tile based self-assembly: building complex nanoarchitectures.</a> ChemPhysChem. 7 (8), 1641-1647 (2006).</li>
<li>Seeman, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomaterials+based+on+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Nanomaterials based on DNA.</a> Annu. Rev. Biochem. 79 (1), 65-87 (2010).</li>
<li>Voigt, N. V., Nangreave, J., Yan, H., Gothelf, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+origami%3A+a+quantum+leap+for+self-assembly+of+complex+structures%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Soc.+Rev%22%5BJournal%5D)">DNA origami: a quantum leap for self-assembly of complex structures.</a> Chem. Soc. Rev. 40 (12), 5636-5646 (2011).</li>
<li>Wei, B., Dai, M., Yin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complex+Shapes+self-assembled+from+single+stranded+DNA+tiles%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Complex Shapes self-assembled from single stranded DNA tiles.</a> Nature. 485 (7400), 623-626 (2012).</li>
<li>Wei, B., Wang, Z., Mi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uniquimer%3A+software+of+de+novo+DNA+sequence+generation+for+DNA+self-assembly%3A+an+introduction+and+the+related+applications+in+DNA+self-assembly%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comput.+Theor.+Nanosci%22%5BJournal%5D)">Uniquimer: software of de novo DNA sequence generation for DNA self-assembly: an introduction and the related applications in DNA self-assembly.</a> J. Comput. Theor. Nanosci. 4 (1), 133-141 (2007).</li>
<li>Seeman, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((De+novo+design+of+sequences+for+nucleic+acid+structural+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Struct.+Dyn%22%5BJournal%5D)">De novo design of sequences for nucleic acid structural engineering.</a> J. Biomol. Struct. Dyn. 8 (3), 573-581 (1990).</li>
<li>Hansma, H. G., Laney, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+binding+to+mica+correlates+with+cationic+radius%3A+assay+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">DNA binding to mica correlates with cationic radius: assay by atomic force microscopy.</a> Biophys. J. 70 (4), 1933-1939 (1996).</li>
<li>Seelig, G., Soloveichik, D., Zhang, D. Y., Winfree, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzyme-free+nucleic+acid+logic+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Enzyme-free nucleic acid logic circuits.</a> Science. 314 (5805), 1585-1588 (2006).</li>
<li>Yin, P., Choi, H. M. T., Calvert, C. R., Pierce, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Programming+biomolecular+self-assembly+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Programming biomolecular self-assembly pathways.</a> Nature. 451 (7176), 318-322 (2008).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 재정적 이해관계를 선언합니다.

구조 형성 공정에서, 자기 조립 DNA 나노 구조에 DNA 가닥 혼합물 (예., 15 mM)을 마그네슘 양이온의 적절한 농도를 유지하는 것이 중요하다. 유사하게, 아가로 오스 겔 특성화 / 정제 단계에서, 그것은 적절한 마그네슘 양이온 농도를 유지하는 것이 중요하다 (예., 10 mM)을 겔 전기 영동시 DNA 나노 구조를 유지하기 위해 겔 주행 버퍼. 28T 사각형 구조 × 24H를 들어, 우리는 다른 마그네슘 + + 농도 어닐링을 시험하고 구조가 일반적으로 10의 범위에서 형성되는 것을 발견 - (20 mM의 마그네슘 + +와 함께 최고의 형성 수율) 30 mM의 마그네슘 + +. 스캐 폴딩 종이 접기 구조와는 달리, SST 구조는 모듈 형 아키텍처를 가지고있다. 다른 모양은 SST 타일의 적절한 서브 세트를 선택함으로써 동일한 캔버스에서 설계 될 수있다. 또한 SST 구조 아프로 ...

5,8,10 - - 이전 핵산 자기 조립 작업 1-25는 DNA의 2를 포함하여 복잡한 구조의 다양한의 성공적인 건설을 주도하고있다 13,17,23 또는 RNA 7,22주기 3,4,7, (22)와 알고리즘 5 개의 차원 격자, 리본 (10, 12) 및 튜브 4,12,13, 3D 크리스탈 (17), 다면체 (11)과 유한은, 2D는 7,8 모양. 16, 18 - - 21, 25 하나의 발판 가닥이 복잡한 형상 9,14를 형성하기 위해 많은 짧은 보조 스테이플 가닥으로 접어된다 특히 효과적인 방법은 DNA 종이 접기를 스캐 폴딩된다. 최근 우리는 단일 가닥 타일 (SST)를 사용하여 소정 형상으로 2D 이산 나노 구조체를 구성하기위한 방법을보고하고, DNA 접기 (26)에 필적하는 복잡성과 구조를 보여 주었다. 이 articl전자는 우리의 초기 작업 (26)의 적응하고 정확하게 규정 된 크기 (폭과 길이) 및 형태학 정교한 유한 2D 형태로 개별적으로 어드레스 해수면 온도를 배치하기위한 프로토콜을 자세히 설명합니다. SST 방법의 하나의 중요한 장점은 모듈 방식입니다. 구조물의 각 성분은 SST 어셈블리 모듈 공법 유닛으로서 기능하고,이 해수면 온도의 상이한 서브 세트들은 별개의 형상을 생성한다. 따라서, 우리는 짧은, 합성 DNA 가닥에서 규정 된 크기와 모양을 가진 나노 구조를 구성하는 일반적인 플랫폼을 설립했다. 해수면 온도는 네 가지 영역, 각 10 또는 11 뉴클레오티드 (그림 1A)를 포함한다. 해수면 온도는 병렬 나선이 교차 결합에 의해 함께 개최하는 DNA 격자를 생성하도록 결합한다. 각각의 크로스 오버 영역 (2) 및 (3) 인산 시각적 명확성을 위해 도면에 인위적으로 연신 사이 포스페이트이다. 크로스 오버는 &lt;(떨어져 두 개의 나선형 회전 (21 기지)를 이격되어있다강한&gt; 그림 1b). 복합 직사각형은 나선 및 코일 권수 그들의 치수로 지칭된다. 예를 들어, 직사각형 여섯 나선 넓고 여덟 헬리컬는 8T 구형 × 6H로서 참조되는 긴 변있다. 해수면 온도가 탈락 추가하거나 임의의 형상 및 크기 (도 1C)의 구조를 만들 재 배열 될 수있다. 예를 들면, 직사각형의 설계는 원하는 길이 및 반경 (도 1D)와 튜브로 압연 될 수있다. 또한, 직사각형 SST 격자는 SST 픽셀로 구성된 분자 캔버스, 7 내지하여 각 3 나노 미터로 볼 수 있습니다. 본 연구에서 우리는 (310)는 전체 길이 내부 해수면 온도의 분자 캔버스를 사용하여, 좌우의 경계를 구성하는 24 전장 해수면 온도, 및 상부 및 하부 경계를 형성하는 28 반장 해수면 온도. 캔버스 크로스 오버로 연결된 24 번 나선을 가지고 있으며, 각각의 나선 (28) 나선형 회전 (294 기지)를 포함하므로이라고28T 직사각형 캔버스 × 24H. 28T 캔버스 × 24H는 M13 파지 지지체에서 만든 DNA 접기 구조와 유사한 분자량을 갖는다.

<table><tbody><tr><td>DNA 가닥&nbsp;</td><td>통합 DNA 기술</td><td></td><td>섹션 3.1</td></tr><tr><td>SYBR 안전한 DNA 겔 염색</td><td>Invitrogen</td><td>S33102</td><td>섹션 3.4.2</td></tr><tr><td>Freeze'N Squeeze DNA 겔 추출 스핀 컬럼</td><td>BIO-RAD</td><td>731-6166</td><td>섹션 3.6</td></tr><tr><td>Bruker의 날카로운 질화물 레버 프로브</td><td>Bruker AFM 프로브</td><td>SNL10</td><td>섹션 4.3</td></tr><tr><td>Safe Imager 2.0 블루 라이트 Transilluminator</td><td>Invitrogen</td><td>G6600</td><td>Section 3.6</td></tr><tr><td>Centrifuge 5430R</td><td>Eppendorf</td><td>5428 000.414</td><td>Section 3.6</td></tr><tr><td>Transmission Electron Microscope&nbsp;</td><td>Jeol</td><td>Jem 1400</td><td>Section 7.4</td></tr><tr><td>Multimode 8</td><td>Veeco</td><td></td><td>Section 4</td></tr><tr><td>Typhoon FLA 9000 Laser Scanner</td><td>GE Heathcare Life Sciences</td><td>28-9558-08</td><td>Section 3.5</td></tr><tr><td>Ultrapure Distilled water</td><td>Invitrogen</td><td>10977-023</td><td>Section 3.7.1</td></tr><tr><td>Mica disk</td><td>SPI Supplies</td><td>12001-26-2</td><td>Section 4.1</td></tr><tr><td>Steel mounting disk</td><td>테드 펠라, Inc.</td><td>16218</td><td>TEM</td></tr><tr><td>전자 현미경 과학</td>용 섹션 4.1<td>탄소 코팅 구리 그리드</td><td>FCF400-Cu</td><td>섹션 7.2</td></tr><tr><td>핀셋</td><td>Dumont</td><td>0203-N5AC-PO</td><td>섹션 7.31</td></tr><tr><td>글로우 방전 시스템</td><td>Quorum Technologies</td><td>K100X</td><td>섹션 7.2</td></tr><tr><td>DNA 엔진 Tetrad 2 Peltier 열 순환기</td><td>BIO-RAD</td><td>PTC&ndash; 0240G</td><td>섹션 3.3</td></tr><tr><td>Owl Easycast B2 미니 겔 전기 영동 시스템</td><td>ThermoScientific</td><td>B2</td><td>섹션 3.4.3</td></tr><tr><td>Seekam LE Agarose 500G</td><td>Lonza</td><td>50004</td><td>섹션 3.4.1</td></tr><tr><td>GeneRuler 1kb Plus DNA 사다리, 즉시 사용 가능 75-20000bp</td><td>ThermoScientific</td><td>SM1333</td><td>섹션 3.4.4</td></tr><tr><td>Nanodrop 2000c UV-vis 분광 광도계</td><td>ThermoScientific</td><td></td><td>섹션 3.7</td></tr><tr><td>0.2 um 필터</td><td>코닝 Inc.</td><td>431219</td><td>섹션 7.1.2</td></tr></tbody></table>

단일 가닥 dna 타일에서 단지 두 차원 모양의 자기 조립 (self-assembly)

Self-assembly of Complex Two-dimensional Shapes from Single-stranded DNA Tiles

현재 DNA 나노 아키텍처의 방법은 자체 조립의 원리를 사용하여 다양한 2D 및 3D 구조를 성공적으로 엔지니어링했습니다. 이 기사에서는 분자 캔버스에서 분자 픽셀로 작용하는 고유한 주소 지정 가능한 단일 가닥 DNA 타일의 자체 조립을 통해 정교한 2D 모양을 제작하는 방법에 대한 자세한 프로토콜에 대해 설명합니다. 각 SST(single-stranded tile)는 4개의 연결된 모듈식 도메인으로 구성된 42개의 뉴클레오티드 DNA 가닥으로, 자가 조립 중에 4개의 이웃에 결합합니다. 분자 캔버스는 SST에서 자체 조립된 직사각형 구조입니다. 310픽셀 분자 캔버스에서 구성 분자 픽셀(SST)을 선택한 다음 해당 가닥에 원팟 어닐링을 적용하여 규정된 복잡한 2D 모양을 형성합니다. SST 접근 방식의 모듈식 특성으로 인해 이 방법의 확장성, 다양성 및 견고성을 보여줍니다. 다른 방법과 비교했을 때, SST 방법은 de novo 설계 및 합성된 짧은 DNA 가닥을 사용하여 정보 폴리머 및 염기서열을 더 폭넓게 선택할 수 있습니다.

해수면 온도 (도 1)의 자기 조립은도 2에 도시 된 바와 같이 다른 해수면 온도에 대한 DNA 서열은 스트렙 라벨링 있도록 최적화 / 변형 될 수있다., 28T 구형 × 24H을 얻었다 (도 3 및 4)의 변형 것 직사각형 튜브 (도 5), 튜브 및 다양한 크기의 사각형 (도 10)을 형성 해수면 온도의 프로그래머블 자기 조립 및 분자 캔버스 (도 8)를 이용하여, 임의의 2 차원 형상의 구조. 솔루션은 임의의 모양 (그림 7)의 노출 영역을 따라 응집으로 두 디자인 (도메인 대체 설계 및 에지 보호 설계) 시험 하였다. 두 가지 설계는 유사한 겔 수율 및 구조적 일체 성을 가지고 있지만, 더 적은 보조 종 (도 6)을 필요로하기 때문에 에지 보호 설계는 ...

DNA 타일링은 프로그래밍 가능한 나노 구조를 만드는 효과적인 접근 방식입니다. 우리는 단일 가닥 DNA 타일의 자체 조립에 의해 복잡한 2차원 모양을 구성하는 프로토콜을 설명합니다.

단일 가닥 DNA 타일에서 단지 두 차원 모양의 자기 조립 (self-assembly)

Current methods in DNA nano-architecture have successfully engineered a variety of 2D and 3D structures using principles of self-assembly. In this ...

다음 실험의 전반적인 목표는 단일 가닥 타일을 사용하여 복잡한 DNA 나노구조체를 형성하는 것입니다. 이는 정밀하게 설계된 합성 DNA 가닥들을 원하는 완충 용액에 혼합하여, 두 번째 단계에서 원하는 DNA 나노구조체를 형성함으로써 달성됩니다. 샘플은 구조적 자가 조립이 일어나는 동안 어닐링 과정을 거칩니다.다음으로, 나노구조체가 성공적으로 형성되었는지 확인하기 위해 native agros 겔 전기영동 및 원자 힘 현미경(AFM) 이미징을 수행합니다. 결과는 native agros, 겔 전기영동 및 원자 힘 현미경 이미징을 통해 DNA 나노구조체가 자가 조립되었음을 보여줍니다. 일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 연구자들은 이러한 자가 조립의 시료 준비 과정이 복잡해 보이기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다. 이 절차를 시작하기 전에, 올리고뉴클레오타이드 제조사로부터 Vbo 96웰 플레이트에 담긴 지정된 서열의 DNA 구성 가닥들을 RNase-free water에 용해된 상태로 준비하십시오. 24개 헬릭스와 28개 턴을 위해 362개 웰 각각에서 1 µL씩 피펫으로 취합니다.가닥당 100 µM의 Rectangle을 2 mL 시험관에 넣습니다. 그다음 시험관에 3차 증류수를 138 µL 첨가하여 가닥당 200 nM 농도의 스톡 용액을 제조합니다.200 nM 스톡 솔루션 50 µL, 10x 어닐링 버퍼 A 10 µL, 그리고 증류 탈이온수 40 µL를 0.2 mL PCR 튜브에 넣습니다. 그 후 서멀 사이클러를 사용하여 90°C에서 25°C까지 냉각시키며 17시간 동안 샘플을 어닐링합니다.SYBR safe로 사전 염색된 native 2% agarose gel을 준비한 후, 얼음물 배스(ice water bath)에서 100 V로 2시간 동안 전기영동을 수행합니다. 종료 후, 청색광 Transluminator 상에서 SYBR safe 염색에 적합한 필터가 장착된 gel scanner를 사용하여 gel 이미지를 획득합니다. 1 kb DNA ladder의 1,500 bp 밴드와 이동 속도가 유사한 주 밴드를 깨끗하고 날카로운 면도날로 절취합니다. 절취한 gel 조각들을 spin column에 넣고 microtube pestle을 사용하여 gel을 미세하게 분쇄한 다음, 4 °C에서 438 G로 3분 동안 원심분리합니다.원심분리 후, 자외선 분광광도계를 사용하여 260 nanometers에서 DNA 농도를 측정합니다. 이 단계에서, 스카치테이프를 이용해 시료 금속 디스크에 부착된 MICA를 제거하여 평평한 표면을 만든 다음, 시료 디스크를 현미경의 이미징 스테이지 위에 놓습니다.갓 절단된 Mica 표면에 1x annealing buffer A 40 µL를 첨가한 후, 28 turns rectangle 방식으로 정제된 24 HELOCs 샘플 5 µL를 추가합니다. 혼합물이 안착될 때까지 약 2분 동안 기다립니다. cantilever 홀더에 AFM silicon nitride cantilever 칩을 장착하고, 스캔 크기 2 µm, 해상도 1024 lines의 fluid tapping 모드를 사용하여 샘플의 이미지를 얻습니다.내부 표지를 위해 0.5에서 1 Hz의 스캔 속도를 사용하며, 3' 말단의 17 뉴클레오타이드 세그먼트가 8개의 내부 타일과 직사각형의 6개 경계 타일에 부착되도록 합니다. 경계 표지를 위한 200 nM 스톡 용액을 만들기 위해, 핸들이 포함된 28개의 가닥을 24 HELOCs by 28 turns 직사각형의 나머지 구성 가닥들과 혼합합니다. 내부 표지를 위한 200 nM 스톡 용액을 얻기 위해, 핸들이 포함된 14개의 가닥을 24 HELOCs by 28 turns 직사각형의 나머지 구성 가닥들과 혼합합니다.경계 라벨링을 위해, 200 Nanomolar 스톡 용액 50 microliters, 100 micromolar 비오틴 변형 항-핸들 가닥 60 microliters, 10 x 어닐링 버퍼 A 10 microliters 및 증류 탈이온수 34 microliters를 PCR 테스트 튜브에 추가하십시오.내부 표지를 위해 200 nanomolar 스톡 용액 50 microliters, 100 micromolar 농도의 내부 anti handle biotin 변형 가닥 3 microliters, 10 x 어닐링 버퍼 A 10 microliters 및 증류 탈이온수 37 microliters를 PCR 시험관에 첨가합니다.다음으로, 증류수 3 mL에 urinal formate 0.06 g을 정량합니다. 2% 수성 urinal formate 염색액을 조제하기 위해, 시린지에 장착된 0.2 µm 필터를 사용하여 염색액을 여과합니다. 여과된 염색액 1 mL에 5 N 수산화나트륨 5 µL를 첨가합니다.용액을 짧게 볼텍싱한 후 20,000 G에서 원심분리합니다. 다음 설정을 사용하여 탄소 코팅된 그리드의 코팅면이 위를 향하도록 글로우 방전시킵니다. 작업이 완료되면, 글로우 방전 처리된 그리드 위에 샘플 3.5 µL를 피펫으로 분주합니다. 4분 후, 여과지 조각을 그리드 측면에 접촉시켜 샘플을 흡수하여 제거합니다.직후에 염색액 3.5 µL를 그리드 위에 추가합니다. 1분 후, 염색액을 흡수시켜 제거하고 거름종이를 그리드에 1~2분 동안 대고 있습니다. 그리드를 TEM 시료 홀더로 옮깁니다.80 kilovolts에서 작동하며 10 K에서 80 K 범위의 배율을 사용하는 A-J-E-O-L GM 1400으로 촬영한 이미지입니다. 모양이 식별되면, 분자 캔버스에서 해당 모양에 해당하는 가닥들을 선택하십시오. 노출된 도메인을 10 내지 11 nucleotide 길이의 poly T 세그먼트로 교체하거나, 노출된 도메인에 상보적인 엣지 보호기를 추가하고 이를 10 내지 11 nucleotide 길이의 poly T 세그먼트로 종료하십시오. 응집을 방지하기 위해, 코르셋을 포함하는 310 pixel 분자 캔버스용 가닥 라이브러리를 생성하십시오.총 1,344개의 엣지 보호제(edge protectors)를 생성하기 위해 set one star, set two star, set three star 및 set four star를 설정합니다. 각 세트에 해당하는 96웰 플레이트를 원심분리한 후, 코어 세트에서 206 가닥, set one star에서 0 가닥, set two star에서 0 가닥, set three star에서 0 가닥, 그리고 set four star에서 24 가닥의 DNA를 파이펫으로 취해 2 mL 원심분리 튜브에 넣습니다. 튜브에 20 µL의 초순수(distilled deionized water)를 첨가하여 400 nM 농도의 DNA 가닥 스톡 용액을 제조합니다.다음으로, 400 nanomolar 스톡 용액 50 µL, 10 x annealing buffer B 10 µL, 그리고 증류 탈이온수 40 µL를 0.2 mL PCR 튜브에 추가하고, 앞서 설명한 대로 써멀 사이클러에서 17시간 동안 혼합물을 어닐링합니다. 샘플을 정제하고 DNA 농도를 측정한 후, 이전과 동일한 방식으로 FM을 사용하여 샘플의 이미지를 얻으며, 최종적으로 평행 헬릭스(heoc)의 수와 헬릭스 회전 수를 변경하여 다양한 크기의 직사각형을 구축합니다.단일 가닥 타일의 자기 조립을 통해 24 HELOCs x 28 turns 크기의 직사각형이 생성됩니다. 서로 다른 단일 가닥 타일의 DNA 서열을 수정하고 최적화하여 스트렙 분할 및 표식을 가능하게 함으로써 직사각형을 튜브 형태로 변환할 수 있습니다. 다양한 크기의 튜브와 직사각형을 형성하는 단일 가닥 타일의 프로그래밍 가능한 자기 조립과, 분자 캔버스 도메인 치환 설계 및 엣지 보호기 설계를 사용하여 2차원 임의 형상을 구축하는 방법이 임의 형상의 노출된 도메인을 따라 발생하는 응집 현상의 해결책으로 테스트되었습니다. 두 설계 모두 젤 수율과 구조적 무결성 면에서 유사한 결과를 보였으나, 엣지 보호기 설계가 보조 종의 필요량이 적어 더 비용 효율적입니다.이 영상을 시청하고 나면, 단일 가닥 타일을 기반으로 복잡한 DNA 나노구조체를 제작하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

self-assembly-complex-two-dimensional-shapes-from-single-stranded-dna

Research

연구

JoVE Journal

Chemistry

화학

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종이 접기 고취 패턴 및 재구성 입자의 자기 조립

DNA 종이 접기 DNA 분자의 자기 조립을 프로그래밍하여 정확한 나노 물체를 제조하기위한 강력한 방법입니다. 여기, 우리는 DNA 종이 접기는 생물학적 신호를 감지하고 모양이 연속적으로 원하는 효과를 전달, 이동하여 응답 할 수있는 로봇 로봇을 설계에 활용 될 수있는 방법에 대해 설명합니다.

DNA 종이 접기에서 바이오 반응 로봇을 설계

DNA 종이접기는 DNA 분자의 자기 조립을 프로그래밍하여 정밀한 나노 크기의 물체를 제작하는 강력한 방법입니다. 여기에서는 DNA 종이접기에서 생체 반응성 로봇을 접는 프로토콜, 투과 전자 현미경 이미징(TEM)을 위한 정제 및 음성 염색에 대해 설명합니다.

DNA 접기에서 바이오 응답 로봇의 폴딩 및 특성화

여기, 모듈형 DNA "장치" 어셈블리 액체 처리 로봇에 모듈형 복제 DNA 어셈블리 메서드를 사용 하 여 수행 하는 자동화 된 워크플로 제공 됩니다. 프로토콜 조합 DNA 장치 라이브러리 생성, 우리는 두 액체 처리 플랫폼을 사용 하 여 설명 하는 액체 처리기 선택 목록 생성 하기 위한 소프트웨어 도구를 사용 합니다.

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우리는 디자인, 시뮬레이션, 젖은 실험실 실험 및 아코디언 랙 6으로 6 메시의 DNA의 재구성에 대 한 분석에 대 한 상세한 프로토콜을 설명합니다.

재구성 가능한 DNA 아코디언 랙의 설계 및 합성

이 문서 T4 결 찰 및 어 닐 링 작은 원형 DNA 분자의 변성 페이지 정화에 대 한 상세한 프로토콜을 제시 하 고 원형 타일, 조립 및 1d 및 2D DNA nanostructures agarose의 AFM 이미지의 기본 페이지 분석 젤 유한 DNA nanostructures의 전기 및 원심 분리 정화입니다.

안정적인 DNA 모티프, 1d와 2D Nanostructures 작은 원형 DNA 분자에서 건설

여기서, 우리는 DNA 종이 접기 모양을 안내 템플릿으로 사용하여 기판에 이산적이고 정확한 무기 나노 구조를 만드는 프로토콜을 설명합니다. 이 방법은 투명 기판 (사파이어)에 플라스모닉 골드 나비 넥타이 모양의 안테나를 만들어 입증된다.

감지 응용 을 위한 무기 구조물의 DNA 종이접기 중재기 나노patterning

정보 부호화 된 펩토이드 올리고머의 합성과 동적 공유 반응체 쌍 및 루이스 산성 희토류로 아민과 알데히드를 사용하여 분자 사다리로 이러한 펩토이드의 시퀀스 지시자가 조립하기 위한 프로토콜이 제시됩니다. 다중 역할 시약으로 금속 triflates.

정보 베어링 펩토이드의 합성과 시퀀스 지향 동적 공유자 자체 조립

이 문서는 유기 용매 혼합물에서 감마 변형 펩타이드 핵산 올리고머로부터 나노 구조의 설계 및 자체 조립을 위한 프로토콜을 제공합니다.

감마 변형 펩타이드 핵산의 자가 조립을 유기 용매 혼합물의 복잡한 나노 구조로

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DNA를 사용하여 세포의 간단하고, 적당한, 모듈식 패터닝

DNAzyme 기반 나노머신은 핵산의 매우 선택적이고 민감한 검출에 사용할 수 있습니다. 이 기사에서는 무료 소프트웨어를 사용하여 10-23 코어를 가진 DNAzyme 기반 나노머신을 설계하기 위한 자세한 프로토콜과 Epstein-Barr 바이러스 단편 검출에 대한 응용 프로그램에 대해 설명합니다.

DNAzyme 10-23 - 핵산 인식을 위한 기반 나노머신

배우세요 단일 가닥 DNA 타일을 이용한 복잡한 나노구조체 자기 조립 방법을. 아가로스 겔 전기영동과 원자력 현미경으로 검증하며, 정밀한 샘플 준비가 핵심입니다.

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