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Neuroscience
마 취 유도 Neurotoxicity 그대로 돼지 뇌에서의 연구에 대 한 Microelectrode 배열 기술의 적응
마 취 유도 Neurotoxicity 그대로 돼지 뇌에서의 연구에 대 한 Microelectrode 배열 기술의 적응
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Neuroscience
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JoVE Journal Neuroscience
Adaptation of Microelectrode Array Technology for the Study of Anesthesia-induced Neurotoxicity in the Intact Piglet Brain

마 취 유도 Neurotoxicity 그대로 돼지 뇌에서의 연구에 대 한 Microelectrode 배열 기술의 적응

Full Text
9,867 Views
08:23 min
May 12, 2018

DOI: 10.3791/57391-v

Emily D. Geyer*1, Prithvi A. Shetty*1, Christopher J. Suozzi*1, David Z. Allen*1,2, Pamela P. Benavidez*1,2, Joseph Liu*1,3, Charles N. Hollis1, Greg A. Gerhardt4, Jorge E. Quintero4, Jason J. Burmeister4, Emmett E. Whitaker1,3

1Department of Anesthesiology,Ohio State University College of Medicine, 2Medical Student Research Program,Ohio State University College of Medicine, 3Department of Anesthesiology and Pain Medicine,Nationwide Children's Hospital, 4Department of Neuroscience,University of Kentucky Medical Center

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study explores the application of enzyme-based microelectrode array (MEA) technology to monitor in vivo neurotransmitter activity in neonatal piglets, specifically focusing on glutamate dysregulation as a contributor to anesthetic neurotoxicity. It aims to elucidate the mechanism behind anesthesia-induced neurotoxicity using a clinically-relevant animal model.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Anesthesiology

Background

  • Examine glutamate activity's role in anesthesia-induced neurotoxicity.
  • Utilize piglets as a model due to their developmental relevance.
  • Need for improved techniques for measuring neurotransmitter dynamics in vivo.

Purpose of Study

  • To develop a method for monitoring glutamate levels during anesthesia.
  • To provide insights into the mechanisms of neurotoxicity in the context of anesthesia.
  • Facilitate understanding of neurotransmitter dynamics in related pathologies.

Methods Used

  • Employ enzyme-based microelectrode arrays for real-time monitoring.
  • Utilize neonatal piglets aged three to five days under sevoflurane anesthesia.
  • Critical surgical steps include craniotomy and microelectrode implantation.
  • Measurements taken for three hours post-operation.

Main Results

  • Measured basal glutamate concentration was approximately 4.6 micromoles.
  • 116 transient glutamate peaks identified during the experiments.
  • Transient peaks had an amplitude generally within the 1 micromole range.

Conclusions

  • The study demonstrates the utility of MEA technology for in vivo neurotransmitter measurement.
  • Findings enhance understanding of anesthesia-induced neurotoxicity.
  • Implications for research on other conditions such as pediatric brain trauma and epilepsy.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using enzyme-based microelectrode arrays?
They provide exceptional spatial and temporal resolution for monitoring neurotransmitter activity in vivo.
How is the piglet model implemented in this study?
Neonatal piglets aged three to five days are acclimated and monitored under anesthesia for data collection.
What type of data is obtained using this method?
Data includes real-time measurements of glutamate activity and transient peaks in neurotransmitter levels.
How can this method be applied to other conditions?
It can be adapted to study various neurodegenerative conditions such as epilepsy and brain trauma.
What are key limitations to consider when using this approach?
The technique requires specialized skills for microelectrode placement and the piglet model has specific care needs.
What are the critical steps during the surgical procedure?
Key steps include craniotomy, microelectrode insertion, and careful monitoring of the piglet's vital signs.

이 연구에서는 piglets. 에서 신경 전달 물질 활동 vivo에서 효소 기반 microelectrode 배열 (MEA) 기술의 새로운 사용 가설 그 조미료 dysregulation 마 취 neurotoxicity의 메커니즘에 기여 했다. 여기, 우리 마 취 유도 neurotoxicity의 메커니즘 연구 나 기술에 맞게 프로토콜을 제시.

이 실험 절차의 전반적인 목표는 효소 기반 미세 전극 어레이 기술의 새로운 응용 프로그램을 활용하여 신생아 새끼 돼지의 신경 전달 물질을 측정하는 것입니다. 이 예에서는 마취로 인한 신경독성을 연구하기 위해 생체 내 글루타메이트 활성을 검사합니다. 이 기술의 주요 장점은 마취 유도 신경독성의 임상적으로 관련된 동물 모델에서 탁월한 공간 및 시간 해상도로 생체 내 신경전달물질 활성을 측정할 수 있다는 것입니다.

이 방법은 마취로 인한 신경독성의 메커니즘에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 소아 뇌 외상, 간질 및 뇌졸중과 같은 다른 병리학적 상태에도 적용할 수 있습니다. 일반적으로 이 방법을 처음 접하는 개인은 새끼 돼지 모델을 사용하려면 구현에 대한 경험과 연습이 필요하기 때문에 어려움을 겪을 것입니다. 또한 미세 전극 어레이를 사용하려면 전문 기술이 필요합니다.

이 방법의 시각적 시연은 수술 및 미세 전극 배치 단계가 섬세한 특성으로 인해 배우기 어렵기 때문에 매우 중요합니다. 이 실험에서는 생후 3일에서 5일 사이의 뇌 성장이 가장 활발한 시기에 새끼 돼지를 사용합니다. 실험 전 최소 24시간 동안 적응할 수 있도록 합니다.

훈련된 직원이 새끼 돼지를 돌봐야 합니다. 그들은 영양분, 담요 및 자극을 위한 장난감에 대한 접근을 즉석에서 제공해야 합니다. 마취 최소 3시간 전에 케이지에서 우유 대체제를 제거하여 새끼 돼지의 위가 비어 있는지 확인합니다.

잠재적인 성 기반 교란 요인을 제거하기 위해 ARRIVE 지침을 따르십시오. 그 후, 소아용 인공호흡기와 적절한 모니터링 장치가 설치된 마취 워크스테이션에서 새끼 돼지를 삽관하고 기계적으로 인공호흡을 합니다. 그런 다음 1 MAC에서 3.5시간 동안 세보플루란 마취를 투여합니다.

이제 발가락 꼬집기를 사용하여 적절한 마취 깊이를 확인한 다음 적절한 패딩이 있는 새끼 돼지 전용 정위 프레임에 새끼 돼지를 고정합니다. 상악골의 치아를 치아 막대 위에 놓습니다. 다음으로, 새끼 돼지가 정중선 중앙에 오도록 두 개의 관통하는 이어바를 고정하고 조입니다.

고막이 터지는 소리가 들릴 만큼 이어바를 단단히 삽입하십시오. 로쿠로늄 로딩 투여를 시작하고 새끼 돼지가 프레임에 고정되어 있는 동안 움직임을 방지하기 위해 주입을 시작합니다. 새끼 돼지를 따뜻하게 유지하고 활력 징후를 모니터링하는 것이 중요합니다.

열 사용 lamp, 및/또는 담요, 정상적인 체온을 유지하기 위해. 열 램프가 너무 가까워서 타지 않는지 확인하십시오. 새끼 돼지의 생존을 원하는 경우, 수술 부위를 무균 상태로 유지하기 위해 추가 제제를 복용하십시오.

이제 미세 전극 어레이의 이식을 진행하십시오. 먼저 두개골을 따라 4-6cm의 정중선 절개를 만들고 메스로 두개골에 자국을 남기지 않도록 주의합니다. 절개가 이루어지면 부드럽게 수축시키고 둔기로 절개하여 두개골에서 두피를 들어 올립니다.

그런 다음 거즈 패드로 두개골을 부드럽게 문질러 결합 조직을 제거하고 봉합선을 노출시킵니다. 그런 다음 개두술의 의도된 위치를 결정합니다. 관심 영역이 계속 가려져 있으면 두피를 더 반사합니다.

이제 수술용 드릴을 사용하여 관심 구조 위에 약 0.25제곱센티미터의 개두창을 만듭니다. 경막이나 기저에 있는 뇌를 다치지 않도록 주의한다. 필요에 따라 미세한 수술 도구를 사용하여 뇌 조직 위에 있는 경막을 절제합니다.

뇌가 손상되지 않도록 각별히 주의하십시오. 이 실험은 이전에 설명한 글루타메이트 산화효소로 사전 코팅되고 mPD로 전기도금된 효소 기반 미세 전극 어레이를 사용합니다. 미세 전극 어레이에는 새끼 돼지와 함께 사용하도록 맞춤화된 40mm 강성 샤프트가 있습니다.

금속 암을 마이크로 매니퓰레이터에 고정한 다음 미세 전극 어레이를 브레그마 위에 가능한 한 수직으로 배치합니다. 그런 다음 두개골 표면을 건드리지 않고 배열을 가능한 한 낮게 조심스럽게 낮추고 브레그마의 좌표를 확인합니다. 이제 새끼 돼지 뇌 아틀라스를 사용하여 관심 구조의 정확한 입체 좌표를 결정한 다음 그에 따라 미세 전극을 재배치합니다.

다음으로, 의사 참조 전극을 두피 아래에 놓고 동물과 접촉하도록 합니다. 이제 미세 전극 배열을 뇌 속으로 거의 적절한 깊이까지 천천히 내립니다. 마지막 2mm의 이동을 위해 유압식 마이크로 드라이브를 사용하여 조직 외상을 최소화하면서 어레이를 관심 구조로 부드럽게 내립니다.

미세 전극 어레이를 배치한 후 전극이 기준선에 도달할 때까지 30분 동안 기다립니다. 그런 다음 약 3시간 동안 측정합니다. 새끼 돼지가 실험에서 살아남으려면 데이터를 수집한 후 절개 부위를 봉합합니다.

설명된 바와 같이 세보플루란 마취 하에 3-4일 된 새끼 돼지의 해마에서 실시간 생체 내 글루타메이트 측정을 수행했습니다. 녹음 세션은 3시간이 넘었습니다. 전류 측정 값은 4 헤르츠에서 기록되었으며 보정 매개 변수를 기반으로 한 선형 회귀를 사용하여 농도로 변환되었습니다.

각 시점에 대해, 두 글루타메이트 민감 부위의 신호는 보정된 글루타메이트 신호를 산출하기 위해 평균화된 센티넬 신호를 빼기 전에 평균화되었습니다. 평균 기초 글루타메이트 농도는 약 4.6마이크로몰이었고, 마취제에 노출되는 동안 비교적 안정적으로 유지되었습니다. 일시적인 글루타메이터 활성은 센티넬 신호와 상관관계가 없는 신호의 피크를 분석하여 확인되었으며, 신호 대 잡음비가 3보다 큰 것을 가졌습니다.

실험 기간 동안 총 116개의 과도 피크가 검출되었습니다. 생성된 과도 피크의 진폭은 일반적으로 1마이크로몰 범위 내에서 관찰되었습니다. 각 과도 현상의 지속 시간을 정량화하기 위해 각 최대 피크 값이 80% 감소하는 데 필요한 시간을 얻었으며 약 4 - 5.5초인 것으로 나타났습니다.

일단 숙달되면, 이 기술은 체계적이고 신중하게 수행된다면 4시간 안에 끝낼 수 있다. 이 절차를 시도하는 동안 실험 데이터를 혼란스럽게 할 수 있는 의도하지 않은 조직 손상을 최소화하는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 이 절차에 따라 추가 질문에 답하기 위해 다른 전기화학 분석물 측정과 같은 다른 방법을 수행할 수 있습니다.

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