-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Manipulacja rytmicznym przyjmowaniem pokarmu u myszy za pomocą niestandardowego systemu żywienia
Manipulacja rytmicznym przyjmowaniem pokarmu u myszy za pomocą niestandardowego systemu żywienia
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Manipulation of Rhythmic Food Intake in Mice Using a Custom-Made Feeding System

Manipulacja rytmicznym przyjmowaniem pokarmu u myszy za pomocą niestandardowego systemu żywienia

Full Text
2,829 Views
07:34 min
December 16, 2022

DOI: 10.3791/64624-v

Aishwarya Sahasrabudhe1,2, Chanté R. Guy1,2, Ben J. Greenwell1,2,3, Jerome S. Menet1,2,3

1Department of Biology,Texas A&M University, 2Center for Biological Clocks Research,Texas A&M University, 3Interdisciplinary Program of Genetics,Texas A&M University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study explores the impact of timing food intake as a strategy to mitigate diet-induced metabolic diseases using an innovative food delivery system for mice. The system allows for controlled feeding schedules, enabling researchers to assess dietary effects on physiology with high precision.

Key Study Components

Research Area

  • Diet-induced metabolic diseases
  • Rhythmic food intake
  • Mice as model organisms

Background

  • Importance of feeding timing in metabolic health
  • Existing limitations of current feeding studies
  • Benefits of a customized feeding system

Methods Used

  • In-house constructed food delivery system
  • Mice as the biological model
  • Controlled feeding regimens (ad libitum, time-restricted, arrhythmic)

Main Results

  • Mice on a night-restricted diet adjusted their food consumption patterns significantly
  • Weight changes correlated with dietary conditions and feeding rhythms
  • The system proved effective in measuring and manipulating intake rhythms

Conclusions

  • This study demonstrates that controlled timing of food intake can influence metabolic outcomes in mice
  • The findings have implications for understanding dietary interventions in metabolic disease research

Frequently Asked Questions

What is the primary aim of this study?
To investigate how regulating food intake timing can mitigate metabolic diseases in mice.
What kind of feeding schedules were used?
The study utilized ad libitum, time-restricted, and arrhythmic feeding schedules.
How does the feeding system work?
The system controls food delivery to align with specific feeding regimens and tracks food consumption.
What were the main findings regarding weight changes?
Mice showed significant weight gain when transitioned to night-restricted and arrhythmic diets.
What materials were used to construct the feeding system?
The system was made from affordable materials, including PVC sheets and a timer.
Why is controlling food timing important?
Controlling food timing can provide insights into the relationship between diet patterns and metabolic health.
Is this system difficult to implement?
No, the system is designed to be low-cost and user-friendly for researchers.

Ograniczenie czasu przyjmowania pokarmu okazało się obiecującą interwencją mającą na celu złagodzenie chorób metabolicznych wywołanych przez dietę. Manuskrypt ten szczegółowo opisuje budowę i zastosowanie zbudowanego we własnym zakresie wydajnego systemu do pomiaru i manipulowania rytmicznym przyjmowaniem pokarmu przez myszy.

Ograniczenie czasu przyjmowania pokarmu okazało się obiecującą interwencją mającą na celu złagodzenie chorób metabolicznych wywołanych dietą. Protokół ten szczegółowo opisuje konstrukcję i wykorzystanie wydajnego systemu, zbudowanego we własnym zakresie, do pomiaru i manipulowania rytmicznym pobieraniem pokarmu przez myszy. Główną zaletą systemu jest to, że jest to tani i wydajny system, który można zbudować przy użyciu niedrogich materiałów, a jednocześnie jest przyjazny dla użytkownika.

System ten może być używany do karmienia myszy według różnych schematów żywienia, takich jak ad libitum, harmonogramy ograniczone czasowo lub arytmiczne, a także może obejmować dietę wysokotłuszczową w celu zbadania ich wpływu na fizjologię. Aby rozpocząć, zaopatrz się w cztery kawałki arkuszy PVC o grubości 0,25 cala. Wytnij i przyklej cztery kawałki PVC, aby uzyskać podstawę.

Następnie otwórz timer, aby wyjąć wtyczkę i nawiąż połączenie za pomocą standardowego przedłużacza lub przewodu elektrycznego. Umieść timer na podstawie z PVC, aby wyrównać go z wywierconymi w nim otworami i przymocuj za pomocą 1.5 cala. Wywierć cztery otwory na górze timera i przykręć 0.75 cala, aby przytrzymać ośmiokomorowy pojemnik na żywność.

Użyj klatki dla myszy o szerokości większej niż 4.5 cala i wytnij 4.5-calowy otwór na dnie klatki za pomocą otwornicy. Następnie zrób dozownik żywności za pomocą czterocalowego, ośmiokomorowego organizera na biżuterię. Przytnij krawędź pojemnika tak, aby ładnie pasowała do rury.

Użyj czterocalowej zaślepki rury PVC i wytnij otwór odpowiadający rozmiarowi pojedynczej komory dozownika, aby utworzyć otwór, który odsłania tylko jedną z ośmiu komór na raz. Po ustawieniu wszystkich klatek ostateczna konfiguracja jest gotowa. Aby ułatwić transport, weź trzy kawałki rury PVC o średnicy 0,25 cala, wywierć otwór o średnicy 0,625 cala pośrodku dwóch kawałków i sklej je ze sobą.

Następnie przeprowadź przez nie rurę PVC o średnicy 0,625 cala. Kubki na żywność można następnie układać w stosy na tym zestawie. Oceń timery przed wprowadzeniem myszy, podłączając zestaw do gniazdek elektrycznych.

Umieść kawałek gniazda w jednej komorze w zarejestrowanym czasie i monitoruj pozycję gniazda sześć godzin później, aby upewnić się, że zegar obraca się szybko. Przenieś mysz do pokoju eksperymentalnego i zaaklimatyzuj je do zestawu cykli światło-ciemność, jak opisano w manuskrypcie. Zapisz wagę myszy przed umieszczeniem jej indywidualnie w klatkach karmnika i upewnij się, że mysz ma ad libitum dostęp do wody, ściółki i gniazd.

Dodaj 1.5 grama jedzenia do wszystkich ośmiu przegródek kubka do karmienia i umieść kubek do karmienia na timerze. Następnie załóż pokrywkę na kubek karmnika tak, aby odsłonięta była tylko jedna komora. Cztery przedziały reprezentują punkty dzienne, a pozostałe cztery reprezentują punkty nocne.

Zmieniaj karmę codziennie o tej samej porze i policz liczbę granulek pozostałych w każdej komorze, aby obliczyć ilość spożytego pokarmu. Monitoruj profil żywieniowy przez tydzień, aby uzyskać wyjściowy profil żywieniowy myszy karmionych ad libitum i dla diety ograniczonej nocą. Po trzech do siedmiu dniach diety ad libitum umieść mysz na diecie przejściowej, stopniowo zmniejszając liczbę granulek w przedziałach dziennych.

Monitoruj spożycie pokarmu przez dwa tygodnie po tym, jak mysz przystosuje się do schematu ograniczonego nocą. W tym okresie dostosuj ilość jedzenia podawanego każdej myszy, aby lepiej odpowiadała jej całkowitemu spożyciu pokarmu. Zważ mysz pod koniec dwóch tygodni, aby monitorować wszelkie zmiany masy ciała spowodowane schematem karmienia.

Po tygodniu diety ad libitum oblicz średnie dzienne spożycie pokarmu i ilość pokarmu, która ma być dostarczana w każdym przedziale, zgodnie z opisem w manuskrypcie. Osiągnij arytmiczne karmienie, upewniając się, że myszy otrzymują równą ilość pokarmu we wszystkich ośmiu przedziałach w ciągu dnia. Następnie umieść myszy na diecie przejściowej, stopniowo zmniejszając ilość pokarmu podawanego na przedział, przez trzy do pięciu dni, aby znieść jakikolwiek rytm przyjmowania pokarmu.

Podczas diety arytmicznej codziennie dostosowuj pokarm, aby upewnić się, że myszy zostawiają tylko kilka granulek i otrzymują odpowiednią ilość pokarmu. Dokonaj poprawek zgodnie z opisem w manuskrypcie. Aby monitorować wszelkie zmiany masy ciała spowodowane schematem karmienia, zważ mysz pod koniec dwóch tygodni.

Profil żywieniowy wskazuje, że myszy typu dzikiego karmione normalną karmą ad libitum zjadają około 75% swojego pożywienia w nocy. Myszy karmione dietą wysokotłuszczową ad libitum jadły więcej pokarmu w ciągu pierwszych dwóch dni ekspozycji, prawdopodobnie z powodu nowości diety wysokotłuszczowej. Średnie dzienne spożycie pokarmu co trzy godziny.

Średnia i procent spożycia pokarmu w ciągu dnia i nocy dla myszy karmionych normalną karmą lub dietą wysokotłuszczową były porównywalne. Samce myszy wykazały znaczny przyrost masy ciała po tygodniu normalnej diety ad libitum i diety wysokotłuszczowej. Myszy, które przeszły na dietę ograniczoną nocą, spożywały całkowitą dzienną ilość kalorii tylko w nocy, bez znacznego zmniejszania spożycia kalorii przez pierwsze trzy do pięciu tygodni.

Myszy, które przeszły na dietę arytmiczną, spożywały całkowitą dzienną ilość kalorii w równych ilościach w ciągu dnia, dramatycznie tłumiąc ich dzienny rytm przyjmowania pokarmu. Myszy wykazywały przyrost masy ciała po nocnym i arytmicznym reżimie karmienia. Najważniejszą rzeczą, o której należy pamiętać podczas korzystania z tego systemu karmienia, jest upewnienie się, że timery działają prawidłowo przez cały czas trwania eksperymentu.

Korzystając z tego systemu żywienia, naukowcy mogą dostosować dostarczanie żywności do swoich wymagań, co może ostatecznie pomóc im odpowiedzieć na pytania dotyczące wpływu różnych pór posiłków na zdrowie i chorobę.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Rytmiczne przyjmowanie pokarmu Manipulacja dietą Choroby metaboliczne System karmienia Karmnik na zamówienie Karmienie na zamówienie Karmienie ograniczone czasowo Dieta wysokotłuszczowa Eksperyment na myszach Budowa PVC Dozownik żywności Konfiguracja eksperymentalna Aklimatyzacja myszy Dostęp ad libitum Monitorowanie zachowania

Related Videos

Progresywny stosunek reagowania na smaczne pokarmy o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru u myszy

11:16

Progresywny stosunek reagowania na smaczne pokarmy o wysokiej zawartości tłuszczu i cukru u myszy

Related Videos

22.7K Views

Zautomatyzowane, ilościowe badania poznawczo-behawioralne myszy: do genetyki, farmakologii, poznania zwierząt i nauczania na studiach licencjackich

16:23

Zautomatyzowane, ilościowe badania poznawczo-behawioralne myszy: do genetyki, farmakologii, poznania zwierząt i nauczania na studiach licencjackich

Related Videos

14.9K Views

W pełni zautomatyzowany protokół kondycjonowania gryzoni do eksperymentów z integracją sensomotoryczną i kontrolą poznawczą

09:43

W pełni zautomatyzowany protokół kondycjonowania gryzoni do eksperymentów z integracją sensomotoryczną i kontrolą poznawczą

Related Videos

11K Views

Zadanie zmiany zestawu uwagi: miara elastyczności poznawczej u myszy

09:15

Zadanie zmiany zestawu uwagi: miara elastyczności poznawczej u myszy

Related Videos

28.4K Views

Wykorzystanie modelu gryzoni anoreksji opartej na aktywności do badania neurobiologicznych podstaw jadłowstrętu psychicznego

07:46

Wykorzystanie modelu gryzoni anoreksji opartej na aktywności do badania neurobiologicznych podstaw jadłowstrętu psychicznego

Related Videos

15.1K Views

Feeding Experimentation Device (FED): Budowa i walidacja urządzenia typu open source do pomiaru spożycia pokarmu przez gryzonie

09:18

Feeding Experimentation Device (FED): Budowa i walidacja urządzenia typu open source do pomiaru spożycia pokarmu przez gryzonie

Related Videos

8.6K Views

Smaczna dieta stołówkowa w stylu zachodnim jako niezawodna metoda modelowania otyłości wywołanej dietą u gryzoni

09:10

Smaczna dieta stołówkowa w stylu zachodnim jako niezawodna metoda modelowania otyłości wywołanej dietą u gryzoni

Related Videos

11.5K Views

Testy preferencji sacharozy i hipofagii wywołanej nowością u szczurów przy użyciu zautomatyzowanego systemu monitorowania spożycia pokarmu

07:33

Testy preferencji sacharozy i hipofagii wywołanej nowością u szczurów przy użyciu zautomatyzowanego systemu monitorowania spożycia pokarmu

Related Videos

11.3K Views

Samodzielne podawanie leków w mysich modelach żywienia i otyłości

03:37

Samodzielne podawanie leków w mysich modelach żywienia i otyłości

Related Videos

5.1K Views

System "zrób to sam" do planowego karmienia gryzoni laboratoryjnych w ich domowej klatce

04:49

System "zrób to sam" do planowego karmienia gryzoni laboratoryjnych w ich domowej klatce

Related Videos

814 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code