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Artigo de método

Protocolo melhorado para microdissecção a laser de ilhotas pancreáticas humanas a partir de espécimes cirúrgicos

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DOI:

10.3791/50231

6 de janeiro de 2013

Neste artigo

Resumo

Microdissecção a laser é uma técnica que permite a recuperação de células selecionadas a partir de pequenas quantidades de parênquima. Aqui descrevemos um protocolo de aquisição ilhotas pancreáticas humanas a partir de espécimes cirúrgicos para serem utilizados para estudos de transcriptomic. Nosso protocolo melhora a autofluorescência intrínseca das células beta humanas, facilitando assim a sua coleção.

Resumo

Microdissecção a laser (LMD) é uma técnica que permite a recuperação de células e tecidos seleccionados a partir de quantidades diminutas de parênquima 1,2. As células dissecadas pode ser usado para uma variedade de investigações, como estudos transcriptomic ou proteômica, avaliação ou análise de ADN cromossómico 2,3. Uma aplicação especialmente difícil de LMD é a análise de transcriptoma, o qual, devido à instabilidade do ARN 4, pode ser particularmente importante quando as células são dissecados a partir de tecidos que são ricos de RNases, tais como o pâncreas. Um protocolo de microdissecção que permite a identificação rápida e recolha de células-alvo é essencial nesta configuração, a fim de encurtar o tempo de tratamento do tecido e, consequentemente, para assegurar a preservação do RNA.

Aqui descrevemos um protocolo para a obtenção de células beta pancreáticas humanas a partir de espécimes cirúrgicos para serem utilizados para estudos de transcriptomic 5. Pequenos pedaços de pâncreas de cerca de 0,5-1 cm 3 foram cortados a partir das margens saudáveis ​​constantes de espécimes pâncreas extirpado, embebidos em composto Tissue-Tek OCT, imediatamente congelados em 2-metilbutano, refrigerada e armazenado a -80 ° C até que o corte. Quarenta secções seriadas de 10 um de espessura foram cortadas num criostato com uma configuração de -20 ° C, transferidas individualmente para lâminas de vidro, secou-se no interior do criostato durante 1-2 min e armazenado a -80 ° C.

Imediatamente antes do procedimento de microdissecção a laser, as secções foram fixadas em frio de gelo, preparada de fresco de etanol a 70% durante 30 segundos, lavou-se por 5-6 depressões em gelo água tratada com DEPC a frio, e desidratado por duas incubações de um minuto em gelo 100% frio etanol seguido de xileno (que é utilizado para a desidratação do tecido) durante 4 min; secções de tecido foram então secos ao ar depois de 3-5 min. Mais importante ainda, todos os passos, excepto a incubação em xileno, foram realizadas utilizando geladas reagentes - uma modificação ao longo de um protocolo previamente descrito 6. Utilization de reagentes geladas resultou num aumento acentuado da autofluorescência intrínseca das células beta, e facilitado o seu reconhecimento. Por microdissecção, quatro secções foram desidratadas de cada vez: dois foram colocados em um tubo de ml embrulhado em papel alumínio 50, para proteger o tecido da humidade e de branqueamento, os dois restantes foram imediatamente microdissecados. Este procedimento foi realizado utilizando um instrumento PALM MicroBeam (Zeiss) empregando a pressão Laser Auto Catapulting (AutoLPC) de modo. A conclusão da célula beta / dissecção ilhota a partir de quatro criocortes necessários não mais do que 40-60 min. As células foram recolhidas para um AdhesiveCap e lisadas com 10 ul de tampão de lise. Cada amostra de RNA simples para análise transcriptomic foi obtida através da combinação de 10 amostras de células microdissecadas, seguido por extracção de ARN usando o Pico Pure RNA Isolation Kit (Arcturus). Este protocolo melhora a autofluorescência intrínseca das células beta humanas, facilitando assim o seu reconhecimento rápido e preciso e collection. Melhorar ainda mais este procedimento poderia permitir que a dissecção das células beta fenotipicamente diferentes, com possíveis implicações para uma melhor compreensão das mudanças associadas com o diabetes tipo 2.

Protocolo

1. Congelamento de tecido pancreático humano

  1. Remover o tecido adiposo, vasos sanguíneos, nervos e não-parenquimatosa tecido com um bisturi e pinças, e cortar o tecido pancreático em pedaços (cubos de ~ 0,5-1 cm).
  2. Coloque um pedaço de tecido pancreático, no centro de uma Cryomold e cobri-lo completamente com frio Composto outubro Tissue-Tek. Coloque a Cryomold em um frasco cujo fundo está coberto com pré-arrefecida 2-metilbutano e de encaixe por congelação em azoto líquido. Armazenar a amostra congelada a -80 ° C.

2. Preparação de cortes congelados

  1. Usar luvas durante todo todas as medidas para evitar a....

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Resultados

Como mostrado na Figura 1, o protocolo modificado de desidratação levou a uma melhoria da autofluorescência células beta em relação ao protocolo anterior, publicado 6. Aplicando o protocolo descrito, cada um dos 39 espécimes cirúrgicos pancreáticos foi usado para gerar 40 criocortes de série para uma média de 3 uM 31'544'704 espécime de tecido / pancreático (intervalo: 8'742'390 - 81'522'153 uM 3) como mostrado na Tabela 1. Isto r.......

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Discussão

Nós descrevemos uma abordagem confiável para a microdissecção a laser (LMD) de ilhotas de pâncreas humanos de uma amostra cirúrgica. Desde que um microscópio LMD está disponível, este procedimento poderia ser implementado em qualquer instituição de pesquisa realizando pancreatectomies parciais, aumentando assim o acesso ao material ilhota humana de ambos os não-diabéticos e diabéticos tipo 2. Isto é especialmente relevante dada a escassez de pâncreas oferecido para isolamento de ilhotas. Aspectos favoráveis ​​de LMD com.......

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Agradecimentos

Queremos agradecer a todos os nossos colegas que prestaram ajuda, conselhos e críticas de entrada em várias etapas deste projeto. Produção de vídeo deste artigo foi apoiado com recursos do IMIDIA ( http://www.imidia.org ), o Ministério alemão da Educação e Pesquisa (BMBF) para o Centro Alemão de Pesquisa do Diabetes (DZD, http://www.dzd -ev.de ) e do Hospital Universitário Carl Gustav Carus, da Universidade de Tecnologia de Dresden. Os trabalhos que conduziram a esta publicação recebeu o apoio da empresa Iniciativa sobre Medicamentos Inovadores comum ao abrigo do ac....

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Materiais

Nome do reagente Companhia Número de catálogo Comentários
2-metilbutano (isopentano) ROTH 3927,1
AdhesiveCap (opaco, 500 ul) ZEISS 415190-9201-000
Cellstar Tubes (50 ml) Greiner Bio-One 210 261 com saia apoio
Cellstar Tubes (50 ml) Greiner Bio-One 227,261
Pirocarbonato de dietilo (DEPC) SIGMA D 5758
Gelo seco
Etanol absoluto VWR 20821.310
Nitrogênio líquido
Pincel
PALM MicroBeam ZEISS
Descasque-a-Way incorporação moldes (truncada), 12 x 12 mm ProSciTech RR12 Milímetro superior interno 22x22, 21 mm de profundidade
Arcturus PicoPure RNA Isolation Kit congelada Applied Biosystems KIT 0204
Braçadeira de plástico
Navalha
RNase-Free DNase Set Qiagen 79254
RNaseZAP SIGMA 2020 R
Bisturi /lâmina cirúrgica Techno Corte 2800111
SuperFrost microscópio Plus, lâminas de adesão Thermo Scientific J1800AMNZ 25x75x1.0 milímetro
Tissue-Tek Composto outubro Sakura 4583 ou 0807000022
Pinça BRAUN BD168R
Xileno VWR 28975.291

Referências

  1. Bonner, R. F., Emmert-Buck, M., et al. Laser capture microdissection: molecular analysis of tissue. Science. 278, 1481-1483 (1997).
  2. Suarez-Quian, C. A., Goldstein, S. R., et al. Laser capture microdissection of single cells from complex tissues. Biotechniques.

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Reimpressões e permissões

Etiquetas

Tecido HumanoPreparação de TecidosCrioseccionamentoDetecção de AutofluorescênciaPreservação de RNAAnálise ômicaPALM MicroBeamColeta com AdhesiveCap