Waiting
Processando Login

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Biochemistry
Click here for the English version

Biochemistry

פיצול תאים של תאי U937 על ידי טיהור הדרגתי בצפיפות איזופיקנית

Published: August 12, 2021 doi: 10.3791/62119
Automatic Translation
1, 1, 1, 1, 1
1Department of Basic and Clinical Sciences, Albany College of Pharmacy and Health Sciences

ERRATUM NOTICE

Summary

פרוטוקול פיצול זה יאפשר לחוקרים לבודד חלבונים ציטופלסמיים, גרעיניים, מיטוכונדריאליים וממברנות מתאי יונקים. שני השברים התת-תאיים האחרונים מטוהרים עוד יותר באמצעות שיפוע צפיפות איזופיקני.

Abstract

פרוטוקול זה מתאר שיטה להשגת שברי חלבון תת-תאיים מתאי יונקים באמצעות שילוב של דטרגנטים, תזה מכנית וצנטריפוגה הדרגתית בצפיפות איזופיקנית. היתרון העיקרי של הליך זה הוא שהוא אינו מסתמך על השימוש הבלעדי בדטרגנטים מפריכים כדי להשיג שברים תת-תאיים. זה מאפשר להפריד את קרום הפלזמה מאברונים אחרים הקשורים לממברנה של התא. הליך זה יקל על קביעת לוקליזציה של חלבונים בתאים בשיטה ניתנת לשחזור, מדרגית וסלקטיבית. שיטה זו שימשה בהצלחה לבידוד חלבונים ציטוזוליים, גרעיניים, מיטוכונדריאליים וממברנות פלזמה מקו תאי המונוציטים האנושיים, U937. למרות שהוא ממוטב עבור קו תאים זה, הליך זה עשוי לשמש כנקודת התחלה מתאימה לפיצול תת-תאי של קווי תאים אחרים. מכשולים פוטנציאליים של ההליך וכיצד להימנע מהם נדונים כמו גם שינויים שאולי צריך לקחת בחשבון עבור קווי תאים אחרים.

Introduction

פיצול תת-תאי הוא הליך שבו תאים שוכבים ומופרדים למרכיביהם המרכיבים אותם באמצעות מספר שיטות. טכניקה זו יכולה לשמש חוקרים כדי לקבוע לוקליזציה של חלבונים בתאי יונקים או להעשרה של חלבונים בעלי שפע נמוך שאחרת לא היו ניתנים לגילוי. אמנם קיימות כיום שיטות לפיצול תת-תאי, וכך גם ערכות מסחריות שניתן לרכוש, אך הן סובלות מכמה מגבלות שהליך זה מנסה להתגבר עליהן. רוב שיטות חלוקת התאים מבוססות אך ורק על 1,2 על דטרגנטים, תוך הסתמכותעל שימוש במאגרים המכילים כמויות הולכות וגדלות של חומרי ניקוי כדי לבודד רכיבים תאיים שונים. בעוד ששיטה זו מהירה ונוחה, היא גורמת לשברים לא טהורים. אלה נועדו לאפשר לחוקרים לבודד בקלות מרכיב אחד או שניים של התא, אך אינם מורכבים מספיק כדי לבודד שברים תת-תאיים מרובים מדגימה בו זמנית. הסתמכות על דטרגנטים בלבד גורמת בדרך כלל לכך שאברונים סגורים בממברנה וממברנת הפלזמה מסולפת ללא הבחנה, מה שמקשה על הפרדת רכיבים אלה. סיבוך נוסף מהשימוש בערכות אלה הוא חוסר היכולת של החוקרים לשנות/לייעל אותן עבור יישומים ספציפיים, שכן רוב הרכיבים הם פורמולציות קנייניות. לבסוף, ערכות אלה יכולות להיות יקרות להחריד, עם מגבלות במספר השימושים שהופכות אותן לפחות אידיאליות עבור דגימות גדולות יותר.

למרות הזמינות של ערכות לבידוד מיטוכונדריה שאינן מסתמכות על חומרי ניקוי, הן אינן מיועדות לבודד את קרום הפלזמה ולהניב כמויות דגימה נמוכות משמעותית מפרוטוקולי בידודסטנדרטיים 3,4. בעוד ששיטות צנטריפוגה דיפרנציאליות גוזלות זמן רב יותר, לעתים קרובות הן יוצרות שברים נפרדים שלא ניתן להשיג באמצעות ערכות מבוססות דטרגנטיםבלבד 1. הפרדה ללא שימוש בלעדי בדטרגנטים מסיסים מאפשרת גם טיהור נוסף באמצעות שיפועים אולטרה-צנטריפוגציה וצפיפות איזופיקנית, וכתוצאה מכך פחות זיהום צולב. פרוטוקול פיצול זה מדגים את הבידוד של שברים תת-תאיים ממונוציטים U937 באמצעות שילוב של גישות מבוססות דטרגנטים וצנטריפוגות במהירות גבוהה. שיטה זו תאפשר בידוד של מרכיבי הממברנה הגרעינית, הציטופלסמית, המיטוכונדרית והפלזמה של תא יונק עם זיהום מינימלי בין השברים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. הכינו מאגרים וריאגנטים

  1. הכינו פתרונות טריים של מעכבי פוספטאז ופרוטאז.
    1. הוסיפו 17.4 מ"ג של פנילמתנסולפוניל פלואוריד (PMSF) ל-1 מ"ל של 100% אתנול כדי להכין ציר של 100 mM.
      הערה: יש ללבוש ציוד מגן בעת טיפול בתסמונת קדם-וסתית, שכן הוא מסוכן בבליעה או בשאיפה ובמגע עם העור או העיניים. זה קורוזיבי לעיניים ולעור.
    2. על פי הוראות היצרן, הכינו קוקטייל מעכב פרוטאז זמין מסחרית (פי 100).
    3. הוסיפו 91.9 מ"ג של נתרן אורתובנאדט (SOV) ל-1 מ"ל מים שעברו דה-יוניזציה כדי להכין ציר של 500 מ"מ.
      הערה: יש ללבוש ציוד מגן בעת טיפול ב-SOV מכיוון שהוא מסוכן במקרה של בליעה, שאיפה או מגע עם העיניים. חשיפת יתר חמורה עלולה לגרום למוות.
  2. הכן מאגר תזה A, מאגר בידוד ציטופלסמי (CI), חיץ מסיסות תאים (CS), חיץ תזה גרעינית (NL), חיץ ליזה B , חיץ הומוגניזציה של תאים (CH), מדולל יודיקסנול ודטרגנטים.
    1. הוסיפו 8.7 גרם נתרן כלורי (NaCl) ו-50 מ"ל של חומצה 4-(2-הידרוקסיאתיל)-1-piperazineethanesulfonic (HEPES, 1 M, pH 7.4) ל-950 מ"ל של מים שעברו דה-יוניזציה כדי להכין חיץ ליזה A (ריכוזים סופיים של 150 mM NaCl ו-50 mM HEPES).
    2. הכן פתרונות מלאי של דטרגנטים באופן הבא: הוסף 0.1 גרם של נתרן דודציל סולפט (SDS) ל -10 מ"ל של חיץ ליזה A (ריכוז סופי של 1% SDS), הוסף 0.1 גרם של נתרן דאוקסיכולאט ל -10 מ"ל של חיץ ליזה A (ריכוז סופי של 1%), הוסף 2.5 מ"ג של digitonin ל -10 מ"ל של חיץ ליזה A (ריכוז סופי של 250 מיקרוגרם / מ"ל), ולהוסיף 1 מ"ל של חומר ניקוי לא יוני, שאינו דנטורינג (ראו טבלת חומרים) ל-9 מ"ל של חיץ ליזה A (ריכוז סופי של 10% (v/v)).
    3. הכן את מאגר CI על ידי הוספת 10 μL של מלאי PMSF (100 mM), 10 μL של מעכב פרוטאז (100x), 2 μL של מלאי SOV (500 mM), ו- 100 μL של digitonin מלאי (250 מיקרוגרם / מ"ל) ל 878 μL של חיץ ליזה A (ריכוזים סופיים של 1 mM PMSF, 1x מעכב פרוטאז, 1 mM SOV, ו 25 מיקרוגרם / מ"ל digitonin). שמור את התמיסה על קרח עד לתוספת לכדור התא.
    4. הכן את מאגר CS על-ידי הוספת 10 μL של מלאי PMSF (100 mM), 10 μL של מעכב פרוטאז (100x), 2 μL של מלאי SOV (500 mM), 100 μL של מלאי דטרגנטים לא יוניים ולא דנטורטיביים (ראה טבלת החומרים) (10%), ו-118 μL של מלאי הקסילן גליקול (8.44 M) ל-760 μL של חיץ ליזיס A (ריכוזים סופיים של 1 mM PMSF, 1x מעכב פרוטאז, 1 mM SOV, 1% לא יוני, דטרגנט לא דנטורינג, ו-1 M הקסילן גליקול). שמור את התמיסה על קרח עד לתוספת לכדור התא.
    5. הכן את מאגר NL על ידי הוספת 10 μL של מלאי PMSF (100 mM), 10 μL של מעכב פרוטאז (100x), 2 μL של מלאי SOV (500 mM), 50 μL של מלאי נתרן deoxycholate (10%), 100 μL של מלאי SDS (1%), ו 118 μL של מלאי הקסילן גליקול (8.44 M) ל 710 μL של חיץ ליזה A (ריכוזים סופיים של 1 mM PMSF, מעכב פרוטאז אחד, 1 mM SOV, 0.5% נתרן דאוקסיכולאט (v/v), 0.1% SDS (w/v) ו-1 M הקסילן גליקול). שמור את התמיסה על הקרח עד לתוספת לכדור גרעיני.
    6. הוסף 20 מ"ל של HEPES (1 M, pH 7.4), 0.74 גרם של אשלגן כלורי (KCl), 0.19 גרם של מגנזיום כלוריד (MgCl 2), 2 מ"ל של חומצה אתילנדיאמינטטראאצטית (0.5 M EDTA),2 מ"ל של אתילן גליקול-ביס(β-אמינואתיל אתר)-N,N,N',N'-חומצה טטראצטית (0.5 M EGTA), 38.3 גרם של מניטול, ו 23.9 גרם של סוכרוז ל 980 מ"ל של מים deionized להכנת חיץ ליזה B (ריכוזים סופיים של 20 mM HEPES, 10 mM KCl, 2 mM MgCl2, 1 mM EDTA, 1 mM EGTA, 210 mM מניטול ו-70 mM סוכרוז).
    7. הכן את מאגר CH על-ידי הוספת 10 μL של מלאי PMSF (100 mM) ו- 2 μL של מלאי SOV (500 mM) ל- 988 μL של חיץ ליזה B (ריכוזים סופיים של 1 mM PMSF ו- 1 mM SOV; התאם את הנפח הסופי כך שיתאים למספר התאים הממוקמים). שמור את התמיסה על קרח עד לתוספת לכדור התא.
    8. הכינו יודיקסנול מדולל על ידי תוספת של 12 מ"ל של HEPES (1 M, pH 7.4), 447 מ"ג של KCl, 114 גרם של MgCl 2,1.2 מ"ל של 0.5 מ"ל של 0.5 מ"ל של 0.5 M EGTA, 21.3 גרם של מניטול, ו 14.4 גרם של סוכרוז ל 88 מ"ל של מים deionized (ריכוזים סופיים של 120 mM HEPES, 60 mM KCl, 12 mM MgCl2, 6 mM EDTA, 6 mM EGTA, 1200 mM מניטול ו-420 mM סוכרוז).
    9. אחסן מאגרים ב- 4 °C ו- digitonin ב- -20 °C.

2. בידוד חלבון ציטוזולי

הערה: השלבים הבאים יאפשרו צמיחה והרחבה של תאי U937 ולאחר מכן מיצוי של חלבונים ציטוזוליים. בריכוז המשמש, הדיגטונין יחלחל לקרום הפלזמה מבלי להפריע לו, ויאפשר שחרור של חלבונים ציטוזוליים ושמירה על חלבונים תאיים אחרים.

  1. תרבית את התאים ב- RPMI 1640 עם 10% סרום בקר עוברי ב 37 מעלות צלזיוס ו 5% CO2. ודא שהתאים גדלים לסך סופי של 6 x 108 תאים .
    הערה: בפרוטוקול זה, התאים נספרו באמצעות המוציטומטר ומיקרוסקופ סטנדרטיים.
  2. צנטריפוגה של תאים בתרבית ב 400 × גרם במשך 10 דקות. לאחר השלכת הסופרנטנט, יש לתלות מחדש את כדור התא בתמיסת מלח אפופית בטמפרטורת החדר (PBS) בריכוז סופי של 4 × 106 תאים למ"ל, ופיפטה בעדינות לפירוק גושים.
  3. צנטריפוגה של מתלה התא ב 400 × גרם במשך 10 דקות כדי לזרוק את התאים. יש להשליך את הסופר-נטנט, ולהשהות את כדור התא במאגר A של ליזיס קר כקרח (מוכן בשלב 1.2.1) בריכוז סופי של 2 × 107 תאים/מ"ל.
  4. יש להסיר 7.5 מ"ל מהתאים המרחפים במאגר ליזיס A (3 × 107 תאים ), ולשמור על קרח לצורך מיצוי חלבון גרעיני (סעיף 6). צנטריפוגה של תרחיף התא ב 4 מעלות צלזיוס, 400 × גרם במשך 10 דקות כדי לזרוק את התאים.
    הערה: בצעו את כל השלבים הבאים בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס או על קרח, והניחו מראש את כל המאגרים.
  5. יש להשליך את הסופר-נטנט, לתלות את כדור התא במאגר CI בריכוז סופי של 2 × 107 תאים /מ"ל, ולפרק בעדינות גושים. סובב את מתלה התא מקצה לקצה ב-4°C למשך 20 דקות.
  6. צנטריפוגה מתלה התא ב 4 מעלות צלזיוס, 400 × גרם במשך 10 דקות, ולהעביר את supernatant לצינור צנטריפוגה נקי. שמור את כדור התא, ואחסן על קרח. צנטריפוגה של הסופר-נאטנט שנאסף בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, 18,000 × גרם למשך 20 דקות כדי לזרוק פסולת תאית.
    הערה: שלב צנטריפוגה מהיר זה הוא קריטי למניעת זיהום של החלק הציטוזולי עם חלבונים הקשורים לאברון ולממברנה.
  7. השליכו את הכדור לאחר העברת הסופרנטנט לצינור צנטריפוגה נקי. חזור על שני שלבי הצנטריפוגה בשלב 2.6 עד שלא יתקבל כדור לאחר הצנטריפוגה.
  8. לאסוף את supernatant, שהוא חלק cytosolic. לאחסון לטווח קצר (חודש אחד), ודא שהסופרנטנט מאוחסן בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. לאחסון לטווח ארוך (>1 חודש), שלבו את הסופר-נטנט עם מאגר Laemmli אחד המכיל חומר מחזר אחד, מחממים ב-95°C למשך 7 דקות ומאחסנים בטמפרטורה של -20 או -80°C.
  9. להשעות את גלולת התא (משלב 2.6) במאגר תזה A בריכוז סופי של 4 × 106 תאים למ"ל; פיפטה בעדינות לפירוק גושים.

3. הומוגניזציה של תאים

הערה: השלבים הבאים יאפשרו הומוגניזציה מכנית של תאים המטופלים בדיטונין (משלב 2.9), הנחוצה לבידוד שברי החלבון המיטוכונדריאלי והממברנה.

  1. צנטריפוגה של תרחיף התא בחיץ ליזה A (מוכן בשלב 2.9), להציל את הכדור, ולהשליך את supernatant כדי להסיר עודפי digitonin ומזהמים ציטוזוליים מן הכדור התא.
    הערה: ניתן לבצע שטיפות חוזרות ונשנות בחיץ ליזה A כדי להסיר מזהמים ציטוזוליים עודפים.
  2. השהה את כדור התא במאגר CH קר כקרח (מוכן בשלב 1.2.7) בריכוז סופי של 4 × 106 תאים למ"ל. לדגור את תרחיף התא על קרח במשך 30 דקות.
  3. אם אתם משתמשים בשיטה מבוססת חרוזים לתזה מכנית, הכניסו 30 גרם של חרוזי נירוסטה 3.2 מ"מ שטופים מראש לתוך צינור חצאית של 50 מ"ל, מלאו ב-15 מ"ל של חיץ ליזה B והניחו על קרח לצינון. אם משתמשים בהומוגנייזר Dounce (עם מזיק B מתאים), ממלאים בנפח מתאים של חיץ תזה B, מכניסים את המזיק ומניחים על קרח לצינון.
  4. לאחר הדגירה (שלב 3.2), יש להשליך את חיץ הליזיס B מצינורות החרוזים (או Dounce homogenizer), ולהעביר 15 מ"ל מתרחיף התא לצינור החרוזים (או נפח מתאים להומוגנייזר).
  5. אם אתה משתמש בשיטה מבוססת חרוזים, הנח את צינורות החרוזים החצאית המכילים את מתלה התא במכשיר הבלנדר, והגדר לפעול במשך 5 דקות במהירות 8. אם משתמשים בהומוגנייזר של Dounce, שמרו אותו על קרח, ובצעו 40 מעברים עם המזיק באמצעות משיכות איטיות ואחידות (או השתמשו בשיטה חלופית של תזה מכנית של תאים כמפורט בפרק הדיון).
    הערה: אם אתה משתמש במכשיר בלנדר שונה מזה המשמש כאן, ייתכן שיהיה צורך לקבוע את המהירות והזמן באופן אמפירי.
  6. מעבירים את ההומוגנט לצינור צנטריפוגה נקי, ועושים צנטריפוגה ב-400 × גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. להעביר את supernatant לצינור צנטריפוגה נקי ולשמור; להשליך את הכדור.
    הערה: הפרוטוקול עשוי להיות מושהה כאן ואת homogenate מאוחסן ב 4 °C לטווח קצר (24 שעות).

4. פינוי פסולת ובידוד של שברים מיטוכונדריאליים וממברנות גולמיים

הערה: הצעדים הבאים יאפשרו הסרה של פסולת תאית על ידי צנטריפוגה של ההומוגנט במהירויות הולכות וגדלות. זה ואחריו צנטריפוגה דיפרנציאלית לבידוד של שברים מיטוכונדריאליים וממברנה גולמיים.

  1. צנטריפוגה הומוגנית (משלב 3.6) ב 500 × גרם במשך 10 דקות ב 4 מעלות צלזיוס. מעבירים את הסופר-נטנט לצינור צנטריפוגה נקי, ומשליכים כל כדור.
  2. צנטריפוגה של הסופר-נטנט (משלב 4.1) ב-1,000 × גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. מעבירים את הסופר-נטנט לצינור צנטריפוגה נקי, ומשליכים כל כדור.
  3. צנטריפוגה של הסופר-נטנט (משלב 4.2) ב-2,000 × גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. מעבירים את הסופר-נטנט לצינור צנטריפוגה נקי, ומשליכים כל כדור.
  4. צנטריפוגה של הסופר-נטנט (משלב 4.3) ב-4,000 × גרם למשך 20 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. מעבירים את הסופרנטנט לצינור צנטריפוגה נקי, ושומרים את הכדור, שהוא החלק המיטוכונדריאלי הגולמי.
  5. צנטריפוגה של הסופר-נטנט (משלב 4.4) ב-18,000 × גרם למשך שעה אחת ב-4 מעלות צלזיוס. להשליך את supernatant, ולשמור את גלולה, שהוא חלק קרום גס.
    הערה: ניתן להשהות את הפרוטוקול כאן, ואת דגימות הכדורים מאוחסנים ב 4 מעלות צלזיוס לטווח קצר (24 שעות).

5. טיהור הדרגתי של צפיפות איזופיקנית

הערה: השלבים הבאים משתמשים בצנטריפוגה הדרגתית בצפיפות איזופיקנית כדי לטהר את שברי המיטוכונדריה והממברנה הגולמיים.

  1. הכן תמיסת עבודה של 50% (v/v) של יודיקסנול על ידי ערבוב חלק אחד מדולל (מוכן בשלב 1.1.3) ל-5 חלקים יודיקסנול (60% תמיסת מלאי (w/v)). הכן 10%, 15%, 20%, 25%, 30% ותמיסות יודיקסנול (v/v) של 35% על-ידי ערבוב תמיסת עבודה של 50% (v/v) עם מאגר ליזה B בכמויות המתאימות.
  2. יש להשעות את הכדוריות הגולמיות במיטוכונדריה ובממברנה (משלבים 4.4 ו-4.5) כל אחת ב-200 μL של חיץ ליזה B. התאם ל-45% יודיקסנול (v/v) על-ידי הוספת 1800 μL של תמיסת יודיקסנול עובדת (50% (v/v)) ל-200 μL של גלולת ההחייאה.
  3. צור שיפוע רציף של יודיקסנול באופן הבא (התאם את הנפחים בהתאם לקיבולת של צינור האולטרה-צנטריפוגה): הוסף 1 מ"ל של 15% יודיקסנול (v/v) לתחתית צינור אולטרה-צנטריפוגה של 8 מ"ל, עליון פתוח, בעל דופן דקה, הנח 1 מ"ל של 20% יודיקסנול (v/v) מתחת לשכבה הראשונה (בטכניקת השכבה התחתונה), ולאחר מכן שכבה תחתונה של 1 מ"ל של 25%, 1 מ"ל של 30%, ו-1 מ"ל של 35% יודיקסנול (v/v).
    הערה: בשלב זה צריכים להיווצר 2 מעברי צבע, 1 עבור השבר המיטוכונדריאלי ו-1 עבור שבר הממברנה.
  4. בשיפוע אחד, הוסיפו את 2 המ"ל של גלולת המיטוכונדריה הגולמית (תלויה ב-45% יודיקסנול (v/v)) בטכניקת השכבה התחתונה לתחתית הצינור מתחת ל-35% יודיקסנול (v/v). בשיפוע השני, הוסיפו את 2 המ"ל של גלולת הממברנה הגולמית (תלויה ב-45% יודיקסנול (v/v)) בטכניקת השכבה התחתונה לתחתית הצינור מתחת ל-35% יודיקסנול (v/v).
  5. הוסף 1 מ"ל של 10% יודיקסנול (v/v) לחלק העליון של כל צינור שיפוע על ידי כיסויו על גבי שכבת 15%. אזנו את הצינורות בטווח של 0.1 גרם זה מזה על ידי תוספת של 10% יודיקסנול (v/v).
  6. סובב את צינורות גרדיאנט הצפיפות ב-4 מעלות צלזיוס למשך 18 שעות ב-100,000 × גרם. הקפד להגדיר האצה והאטה לערכי המינימום עבור האולטרה-צנטריפוגה שבשימוש.
    הערה: בשיפוע המיטוכונדריאלי, יהיה פס גלוי בממשק בין 25% ל-30% יודיקסנול (v/v). זהו החלק המיטוכונדריאלי הטהור. בשיפוע הממברנה, יהיה פס נראה לעין בחלק של 15% יודיקסנול (v/v). זהו חלק הממברנה הטהור. ייתכנו פסים נוספים בשברים של 25% ו-30% יודיקסנול (v/v) בשיפוע הממברנה. זהו זיהום מיטוכונדריאלי.
  7. לאסוף שברים מהחלק העליון של הצינור ב 1 מ"ל aliquots, להיות זהיר כדי למזער את נפח השבר המכיל את הפסים גלויים ולשנות את קצה פיפטה לאחר כל שכבה נאסף. לחלופין, נקבו את דופן הצינור בעל הדופן הדקה עם מחט, ואספו את הרצועות הנראות לעין.
  8. אחסן את הדגימות כמתואר בשלב 2.8 עד לאימות על ידי בדיקת חלבון וכתם מערבי.

6. בידוד חלבון גרעיני

הערה: באמצעות דטרגנטים יוניים ולא יוניים, כמו גם טכניקות כגון סוניקציה וצנטריפוגה, השלבים הבאים יסיסו את כל קרומי התאים ויאפשרו בידוד של חלבונים גרעיניים.

  1. צנטריפוגה של 7.5 מ"ל aliquot של תאים התלויים במאגר ליזה A (משלב 2.4), ולהשליך את supernatant. הוסף 800 μL של חיץ CS קר כקרח (מוכן בשלב 1.2.4), והשהה את הכדור על ידי פיפטינג ומערבולות. דגירה של הדגימות על קרח (או ב-4 מעלות צלזיוס) למשך 30 דקות כדי לשבש את קרומי הפלזמה והאברונים תוך הגנה על החלבונים הגרעיניים.
  2. צנטריפוגה מתלה התא ב 7,000 × גרם במשך 10 דקות ב 4 מעלות צלזיוס, ולהשליך את supernatant. הוסף 800 μL של חיץ NL קר כקרח (מוכן בשלב 1.2.5) לכדור הגרעיני לאחר הכללת 1U/μL benzonase. יש לתלות את הכדור על ידי פיפטציה עדינה. דגירה על סיבוב מקצה לקצה במשך 30 דקות ב-4 מעלות צלזיוס כדי לשבש את קרום הגרעין.
  3. סוניקט במשך 5 שניות בעוצמה של 20% עם צינורות דגימה מקוררים באמבט קרח (3x, עם 5 שניות הפסקות בין פולסים), אשר יחד עם בנזונאז (נוסף בשלב 6.2), יגזור את חומצות הגרעין.
  4. צנטריפוגה סוניקט ב 7,800 × גרם במשך 10 דקות ב 4 מעלות צלזיוס. לאסוף ולשמור את supernatant, שהוא החלק הגרעיני. הקפידו לא להפריע לכדור הבלתי מסיס בזמן איסוף הסופרנטנט. לאחסון, ניתן להכין דגימות כמתואר בשלב 2.8.

7. כימות חלבונים וניתוח כתמים מערביים

הערה: השלבים הבאים יכמתו את סך החלבון בכל שבר ויאשרו את טוהר השברים התת-תאיים.

  1. בצע בדיקת ברדפורד סטנדרטית כדי לכמת את סך החלבון בכל שבר. עיין בטבלה 1 לקבלת תפוקות החלבון הצפויות.
    הערה: מבחני חלבון אחרים כגון בדיקת חומצה ביסינצ'ונית (BCA) או ספיגה ב-280 ננומטר עשויים לשמש למדידת סך החלבון במקום מבחן ברדפורד.
  2. ערבבו שברים עם מאגר Laemmli אחד המכיל חומר מחזר אחד, וחממו ב-95°C למשך 7 דקות. טען 10 מיקרוגרם מכל שבר לתוך ג'ל אלקטרופורזה סטנדרטי של ג'ל SDS-פוליאקרילאמיד (PAGE), והפעל את הג'ל במהירות של 20 mA למשך שעה אחת.
  3. העבירו את החלבונים שנפתרו לממברנה פוליווינילדידיפלואוריד (PVDF) על ידי ביצוע העברה אימונובלוטית סטנדרטית ב-100 וולט למשך 30 דקות. יש לחסום את קרום ה-PVDF עם 5% חלב ב-1x תמיסת מלח (TBS) המכילה 0.1% של חומר ניקוי לא יוני (v/v) למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר.
  4. הוסיפו את הנוגדנים הראשוניים המתאימים כדי לזהות חלבוני משק בית ספציפיים לכל חלק תת-תאי, ודגרו במשך הלילה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. שטפו את הממברנה עם 5% חלב ב-1x TBS המכיל 0.1% מחומר הניקוי הלא יוני (v/v) למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר.
    הערה: עבור פרוטוקול זה, נוגדנים נגד גליצרלדהיד-3-פוספט דהידרוגנאז (GAPDH, 1:10000), היסטון H3 (1:2000), תעלת אניון תלוית מתח (VDAC, 1:1000) ו- Na,K+-ATPase שימשו לשברים ציטוזוליים, גרעיניים, מיטוכונדריאליים וממברנות, בהתאמה.
  5. מוסיפים את הנוגדנים המשניים המצומדים של חזרת פרוקסידאז (HRP) לממברנה (מדללים בהתאם להוראות היצרן), ודוגרים בטמפרטורת החדר למשך שעה. שטפו את הממברנה עם 5% חלב ב-1x TBS המכיל 0.1% מחומר הניקוי הלא יוני (v/v) למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר. לפתח את הכתם באמצעות chemiluminescence סטנדרטי.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

תרשים זרימה סכמטי של הליך זה (איור 1) מסכם באופן חזותי את הצעדים שננקטו כדי לפרק בהצלחה U9375 תאים שגודלו בתרחיף. שברים שנאספו מראש שיפוע הצפיפות האיזופיקנית בנפחים שווים (1 מ"ל) מראים את הטיהור של שברי המיטוכונדריה והממברנה (איור 2). שימוש בנוגדן נגד VDAC, חלבון הממוקם בקרום המיטוכונדריאלי החיצוני6, מראה שהשבר המיטוכונדריאלי נדד לשברים של 25% ו-30% יודיקסנול (v/v) (איור 2A). שימוש בנוגדן כנגד תת-היחידה Na,K+-ATPase α1, חלק מהטרודימר אינטגרלי של ממברנה שנמצא בעיקר בקרום הפלזמה7, מראה את ההפרדה בין זיהום הממברנה לבין החלק המיטוכונדריאלי הטהור (איור 2A). שבר הממברנה הטהור נדד לשברים הכי פחות צפופים, 10% ו-15% יודיקסנול (v/v) (איור 2B). זיהום מיטוכונדריאלי של חלק הממברנה הופרד על ידי השיפוע.

כתםמערבי 8 שבוצע עם סמני הלוקליזציה הנוספים (המוזכרים בשלב 7.4) מראה את טוהר השברים הציטוסוליים והגרעיניים, תוך אימות נוסף לכך שדגימות המיטוכונדריה והממברנה נקיות מזיהום על-ידי חלבונים מחלקים אחרים של התא (איור 3). שימוש בנוגדן נגד GAPDH, שבדרך כלל ממוקם בציטופלסמה של התא9, מראה שהחלבון הזה נמצא רק בחלק הציטוזולי (איור 3A, נתיב 1, פאנל ראשון), ושלא נצפה זיהום בחלבונים הגרעיניים שחולצו, במיטוכונדריה המטוהרת בצפיפות או בשברים של הממברנה (איור 3A; נתיבים 2, 3 ו-4; פאנל ראשון). בדיקה של היסטון H3, חלבון שנמצא בגרעין ומעורב במבנה הכרומטין10, מראה מיצוי גרעיני מוצלח (איור 3A, נתיב 2, פאנל שני), עם זיהוי מינימלי בשבר הציטופלסמי וללא זיהום צולב בשברים המיטוכונדריאליים או הממברנה.

בדיקה של VDAC בכל השברים מראה את נוכחותו של החלבון הזה בשבר המיטוכונדריאלי הטהור (איור 3A, נתיב 3, פאנל שלישי), ושלא קיים זיהום צולב בשברים האחרים (איור 3A; נתיבים 1, 2 ו-4; פאנל שלישי). בדיקה של תת-היחידה Na/K-ATPase α1 מראה באופן דומה שהחלבון הזה ממוקם רק בחלק הממברנה הטהור (איור 3A, נתיב 4, פאנל רביעי). שברים אלה נותחו על-ידי צפיפות כדי לאשר את יכולת השחזור והמובהקות הסטטיסטית (איור 3B-E). בניגוד לתוצאות הפיצול המוצלח (איור 3), ביצוע לא תקין של שיטה זו (או אי עמידה בכל השלבים המומלצים) עלול לגרום לזיהום צולב של רכיבים תאיים (איור 4). ריכוז גבוה של היסטון H3 בשבר הציטוזולי (איור 4, נתיב 1, פאנל שני) יכול לנבוע מאי-בהירות נכונה של השבר הציטוזולי (מוזכר בשלב 2.6). זה יכול להתרחש אם לא מספיק ספין צנטריפוגה הבהרה מבוצעים, או אם החלק הציטוזולי אינו מובהר במהירות. אם השבר הציטוזולי אינו מובהר במהירות מספקת, הוא עלול לגרום לתזה של שברי תאים, מה שיוביל לזיהום של השבר הציטוזולי.

אי ביצוע שלב טיהור הצפיפות האיזופיקנית יגרום לזיהום של שבר הממברנה (איור 4, נתיב 4, כל הפאנלים), תלוי עד כמה הדגימה הטרוגנית לפני טיהור הצפיפות. הקפדה נכונה על כל שלבי הפרוטוקול היא קריטית להשגת ההפרדה הרצויה של השברים התת-תאיים. כאשר מכמתים באמצעות מבחן ברדפורד, ניתן לקבוע את תפוקת החלבון עבור כל שבר. תפוקת החלבון הצפויה לשבר מדווחת בטבלה 1. כדאי לבצע בדיקת כימות חלבונים לפני ביצוע כתמים מערביים מכמה סיבות. ראשית, הוא מאשר כי שברים אכן מכילים חלבון; שנית, הוא מאפשר טעינה של ג'לים SDS-PAGE המבוססים על כמות חלבון; ולבסוף, בהנחה שתשואות החלבון דומות לאלה הצפויות (טבלה 1), היא מאשרת ביצוע תקין של ההליך.

Figure 1
איור 1: דיאגרמה של הליך פיצול התאים. מבט כולל על פרוטוקול פיצול התאים המיוצג כתרשים זרימה. קיצורים: PBS = מלח עם מאגר פוספטים; CS = מסיסות תאים; NL = תזה גרעינית. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 2
איור 2: טיהור צפיפות איזופיקנית של שברים מיטוכונדריאליים וממברנות גולמיים . (A) כתם מערבי מייצג של כל השברים שנאספו לאחר טיהור הדרגתי בצפיפות של השבר המיטוכונדריאלי הגולמי. (B) כתם מערבי מייצג של כל השברים שנאספו לאחר טיהור גרדיאנט צפיפות של שבר הממברנה הגולמית. שני הטיהורים ההדרגתיים של צפיפות מראים נדידה של הסמן המיטוכונדריאלי, VDAC, עבור שברים של 25% ו-30% יודיקסנול (v/v) ונדידה של סמן הממברנה, Na,K+ ATPase, עבור שברים של 10% ו-15% יודיקסנול (v/v). קיצור: VDAC = ערוץ אניון תלוי מתח. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 3
איור 3: בידוד מוצלח של שברים ציטוזוליים, גרעיניים, מיטוכונדריאליים וממברנות של U937. (A) כתמים מערביים מייצגים של שברי תאים שבודדו מתרבית תאים U937 בטכניקה זו וחיפשו סמנים של ציטופלסמה (GAPDH, פאנל ראשון), גרעין (היסטון H3, פאנל שני), מיטוכונדריה (VDAC, פאנל שלישי) וממברנה (Na,K+ ATPase α1, פאנל רביעי). (ב-ה) צפיפות של כתמים מערביים של שברי תאים שבודדו מתרביות תאים U937 בטכניקה זו. התוצאות הן מ-3 ניסויים בלתי תלויים. קווי שגיאה מייצגים סטיית תקן. ANOVA חד כיוונית. עמ<0.001. קיצורים: GAPDH = גליצרלדהיד-3-פוספט דהידרוגנאז; VDAC = ערוץ אניון תלוי מתח; cyto = ציטוסולי; nuc = גרעיני; מיטו = מיטוכונדריה; מם = ממברנה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 4
איור 4: פיצול לא שלם של רכיבי התא U937. כתמים מערביים מייצגים של שברי תאים שבודדו מתרבית תאים U937 מראים זיהום של השבר הציטוזולי עם היסטון H3 (נתיב 1, פאנל שני) עקב הבהרה לא נכונה של שבר זה ושבר קרום גולמי שלא היה נתון לטיהור הדרגתי של צפיפות איזופיקנית (נתיב 4, כל הפאנלים). קיצורים: cyto = cytosolic; nuc = גרעיני; מיטו = מיטוכונדריה; מם = ממברנה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.

שבר תפוקה (מיקרוגרם/מ"ל) סטיית תקן נפח משוער
ציטופלסמה 1500 146 5 מ"ל
גרעין 1200 172 500 מיקרון
המיטוכונדריה 400 66 500 מיקרון
קרום 200 23 500 מיקרון

טבלה 1: תפוקת חלבון עבור כל חלק תת-תאי.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

שיטה זו היא גרסה שונה של גישה שפורסמה בעבר לפיצול תת-תאי ללא שימוש בצנטריפוגהבמהירות גבוהה 11. שיטה שונה זו דורשת ציוד מיוחד יותר כדי להשיג את התוצאות הטובות ביותר, אך היא מקיפה יותר וניתנת לשחזור באופן עקבי.

פיתוח הפרוטוקול הראשוני היה הכרחי בשל חוסר יכולת להפריד בין דגימות מיטוכונדריאליות וממברנות לניתוח לוקליזציה של חלבונים במהלך נקרופטוזיס12. ניסיונות להשתמש בשיטות המבוססות אך ורק על דטרגנטים שנמצאו ברוב הערכות הזמינות מסחרית הביאו לתערובת הומוגנית המכילה את קרום הפלזמה ואת כל האברונים הסגורים בממברנה בתא. מגבלות אחרות של ערכות אלה כוללות חוסר יכולת לבצע שינויים בנוהל, עלות לדגימה, הגבלות נפח ומספר הדגימות שניתן לעבד. ההליך המוצג כאן עשוי להשתנות לכל קנה מידה, לשנות כדי לבודד פחות שברים, והוא יכול להתבצע ללא שימוש ריאגנטים יקרים. ניתן להגדיל את תפוקת השברים על ידי ניצול תאים רבים יותר; ניתן להתאים את הצעדים למחקר המבוצע; וביצוע השיטה גמיש. לדוגמה, אם חוקרים אינם בוחנים שבר תת-תאי מסוים, הם אינם צריכים לבודד את הדגימה במהלך ההליך. כמו כן, תוספת של מעכבים מסוימים או ריאגנטים ניתן להשמיט אם החוקר אינו מתכנן לחקור את מצב הזרחון של חלבונים (נתרן אורתובנאדט) או אינו מודאג לגבי חלבונים דנטורינג (הקסילן גליקול).

השימוש ביודיקסנול כתמיסת שיפוע הצפיפות הוא אופציונלי; עם זאת, מגיב זה אינו מפריע לבדיקה הבאה של דגימות באמצעות כתם מערבי. ניתן גם להסיר את יודקסנול מדגימות על ידי דילול וצנטריפוגה כדי לשחזר את המיטוכונדריה או הממברנה, אם כי זה ישפיע על התשואה הסופית. ניתן להשתמש בתמיסות מעבר צבע חלופיות אחרות, כולל סוכרוז. כדי להשיג תוצאות אופטימליות ושברים טהורים, ישנם מספר גורמים שיש לקחת בחשבון, וצעדים קריטיים מסוימים בפרוטוקול הדורשים תשומת לב זהירה. פרוטוקול זה ממוטב לפיצול תאי U937, וריכוז התאים המומלץ בנקודות מסוימות בפרוטוקול הוא ספציפי לקו תאים זה. ערכים אלה נקבעו באופן אמפירי וככל הנראה יהיה צורך להתאים אותם לסוגים שונים של תאים, במיוחד אם יתקבלו תוצאות לא אופטימליות בעת ביצוע הפרוטוקול.

הבהרת הדגימה הציטופלסמית צריכה להתרחש בהקדם האפשרי כדי להסיר תאים רציפים ופסולת שעלולים לגרום לזיהום צולב על-ידי חלבונים משברים תת-תאיים אחרים (איור 4, נתיב 1, פאנל שני). הומוגניזציה יכולה להתבצע עם כל צורה של תזה מכנית, אם כי התוצאות המוצגות כאן הושגו באמצעות שיטה מבוססת חרוזים ומכשיר בלנדר. ניתן להשתמש גם בצורות ידניות חלופיות של הומוגניזציה (הומוגנייזר של Dounce או מעבר דרך מחט מד קטנה), אך הן עלולות לגרום לבעיות שכפול עקב השתנות הטכניקה על ידי האדם המבצע את ההליך. העניין של קבוצה זו הוא בעיקר במחזור לויקוציטים, ולכן תאי U937 משמשים בהליך זה. עם זאת, הליך זה עשוי להיות מיושם על קווי תאי תרחיף אחרים עם צורך קטן ככל הנראה בשינוי. חלקים שייתכן שיהיה צורך להתאים אותם כדי להתאים לקו תאי תרחיף אחר כוללים את ריכוזי התאים המשמשים לאורך כל ההליך, כמו גם את ריכוז הספרותין המשמש לחילוץ השבר הציטוזולי.

למרות שאינו ממוטב עבור קווי תאים דבקים, הליך זה עשוי לשמש כנקודת מוצא שבה ניתן לבצע התאמות כדי להתאים לתאים דבקים. התאמות אלה כוללות את ריכוז התאים, ריכוז הדיגטונין וזמן ההומוגניזציה. בנוסף, תאים דבקים מוגבלים על ידי שטח פנים בעוד תאי תרחיף מוגבלים על ידי נפח; זה הופך את קנה המידה של תאי ההשעיה לפשוט יותר. כדי להגדיל את התאים הדביקים, יש להשתמש בלוחות תרבית רקמה עם שטח פנים גדול (>500 ס"מ2). הליך זה הוא פיצול תת-תאי חסכוני וניתן לשחזור עם היכולת להפריד שברים ציטוזוליים, גרעיניים, מיטוכונדריאליים וממברנות בטוהר רב. אחד היתרונות הגדולים ביותר של הליך זה הוא הפרדת המיטוכונדריה מחלק הממברנה. זה לא אפשרי בהליכים מבוססי דטרגנטים בלבד. למרות דטרגנטים משמשים בהליך זה, הם משמשים כדי לחדור, אבל לא לשבש את קרום פלזמה (digitonin) כדי לקבל את החלק הגרעיני לאחר בידוד של שברים המיטוכונדריה הממברנה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים מצהירים על היעדר ניגוד עניינים.

Acknowledgments

עבודה זו נתמכה על ידי NIH R15-HL135675-01 ו- NIH 2 R15-HL135675-02 ל- T.J.L.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Benzonase Nuclease Sigma-Aldrich E1014
Bullet Blender Tissue Homogenizer Next Advance 61-BB50-DX
digitonin Sigma D141
end-over-end rotator ThermoFisher
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma E9884
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) Sigma E3889
GAPDH (14C10)  Cell Signalling Technologies 2118
HEPES VWR 97064-360
Hexylene glycol Sigma 68340
Igepal Sigma I7771 Non-ionic, non-denaturing detergent
KCl Sigma P9333
Mannitol Sigma M9647
MgCl2 Sigma M8266
NaCl Sigma S9888
Na, K-ATPase a1 (D4Y7E) Cell Signalling Technologies 23565
Open-Top Polyclear Tubes, 16 x 52 mm Seton Scientific 7048
OptiPrep (Iodixanol) Density Gradient Medium Sigma D1556-250ML
phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) Sigma P7626
Protease Inhibitor Cocktail, General Use VWR M221-1ML
refrigerated centrifuge ThermoFisher
S50-ST Swinging Bucket Rotor Eppendorf
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Sigma 436143
Sodium deoxycholate Sigma D6750
sodium orthovanadate (SOV) Sigma 567540
sonicator ThermoFisher
Sorvall MX120 Plus Micro-Ultracentrifuge ThermoFisher
Stainless Steel Beads 3.2 mm Next Advance SSB32
Sucrose Sigma S0389
Tris-buffered Saline (TBS) VWR 97062-370
Tween 20 non-ionic detergent in western blotting buffers
VDAC (D73D12) Cell Signalling Technologies 4661

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Baghirova, S., Hughes, B. G., Hendzel, M. J., Schulz, R. Sequential fractionation and isolation of subcellular proteins from tissue or cultured cells. MethodsX. 2, 440-445 (2015).
  2. Il Hwang, S., Han, D. K. Subcellular fractionation for identification of biomarkers: Serial detergent extraction by subcellular accessibility and solubility. Methods in Molecular Biology. 1002, 25-35 (2013).
  3. Clayton, D. A., Shadel, G. S. Isolation of mitochondria from cells and tissues. Cold Spring Harbor Protocols. 2014 (10), 1040-1041 (2014).
  4. Stimpson, S. E., Coorssen, J. R., Myers, S. J. Optimal isolation of mitochondria for proteomic analyses. Analytical Biochemistry. 475, 1-3 (2015).
  5. Sundström, C., Nilsson, K. Establishment and characterization of a human histiocytic lymphoma cell line (U-937). International Journal of Cancer. 17 (5), 565-577 (1976).
  6. Hodge, T., Colombini, M. Regulation of metabolite flux through voltage-gating of VDAC channels. Journal of Membrane Biology. 157 (3), 271-279 (1997).
  7. Therien, A. G., Blostein, R. Mechanisms of sodium pump regulation. American journal of physiology. Cell physiology. 279 (3), 541-566 (2000).
  8. Towbin, H., Staehelin, T., Gordon, J. Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of the America. 76 (9), 4350-4354 (1979).
  9. Barber, R. D., Harmer, D. W., Coleman, R. A., Clark, B. J. GAPDH as a housekeeping gene: analysis of GAPDH mRNA expression in a panel of 72 human tissues. Physiological Genomics. 21 (3), 389-395 (2005).
  10. Bradbury, E. M., Cary, P. D., Crane-Robinson, C., Rattle, H. W. E. Conformations and interactions of histones and their role in chromosome structure. Annals of the New York Academy of Sciences. 222, 266-289 (1973).
  11. McCaig, W. D., Deragon, M. A., Haluska, R. J., Hodges, A. L., Patel, P. S., LaRocca, T. J. Cell fractionation of U937 cells in the absence of high-speed centrifugation. Journal of Visualized Experiments. (143), e59022 (2019).
  12. McCaig, W. D., et al. Hyperglycemia potentiates a shift from apoptosis to RIP1-dependent necroptosis. Cell Death Discovery. 4, 55 (2018).

Tags

ביוכימיה גיליון 174 פיצול תאים גרעיני מיטוכונדריה ממברנה ציטופלסמה אברונים אולטרה-צנטריפוגציה שיפוע צפיפות U937

Erratum

Formal Correction: Erratum: Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification
Posted by JoVE Editors on 05/31/2022. Citeable Link.

An erratum was issued for: Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification. The Authors section was updated.

The Authors section was updated from:

William McCaig1
Timothy LaRocca1
1Department of Basic and Clinical Sciences, Albany College of Pharmacy and Health Sciences

to:

William D. McCaig1
Matthew A. Deragon1
Phillip V. Truong1
Angeleigh R. Knapp1
Keven J. Hughes1
Timothy J. LaRocca1
1Department of Basic and Clinical Sciences, Albany College of Pharmacy and Health Sciences

Formal Correction: Erratum: Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification
Posted by JoVE Editors on 07/22/2022. Citeable Link.

An erratum was issued for: Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification. The Authors section was updated.

The Authors section was updated from:

William D. McCaig1
Matthew A. Deragon1
Phillip V. Truong1
Angeleigh R. Knapp1
Keven J. Hughes1
Timothy J. LaRocca1
1Department of Basic and Clinical Sciences, Albany College of Pharmacy and Health Sciences

to:

William D. McCaig1
Matthew A. Deragon1
Phillip V. Truong1
Angeleigh R. Knapp1
Timothy J. LaRocca1
1Department of Basic and Clinical Sciences, Albany College of Pharmacy and Health Sciences

פיצול תאים של תאי U937 על ידי טיהור הדרגתי בצפיפות איזופיקנית
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

McCaig, W. D., Deragon, M. A.,… More

McCaig, W. D., Deragon, M. A., Truong, P. V., Knapp, A. R., LaRocca, T. J. Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification. J. Vis. Exp. (174), e62119, doi:10.3791/62119 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter