Name: Fracionamento em Subcelulares situ de aderentes e não aderentes células de mamíferos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-07-23T17:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 20 s
Description: Aprenda o fracionamento subcelular in situ de células de mamíferos aderentes e não aderentes para estudar a localização de proteínas por imunofluorescência. Este método permite visualizar a distribuição proteica em compartimentos celulares.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Anyaporn Sawasdichai e Nazefah Abdul Hamid são gratos ao Governo Real da Tailândia e do Governo da Malásia, respectivamente, para doutorado Bolsas de estudo. Este trabalho foi financiado pelo Wellcome Trust um projeto de subvenção concedida ao PSJ e KG. Agradecemos também à Universidade de Bristol Facility BioImaging Wolfson.

I. Preparação para o fracionamento Esta seção descreve a preparação de poli-L-Lisina lamínulas de microscópio revestidas eo anexo de células antes do fracionamento. Se necessário as células podem ser transitoriamente transfectadas com vetores de expressão de proteínas antes ou depois de apego. A. Preparação de poli-L-Lisina lamínulas revestido <ol><li> Prepare uma solução de 1mg/ml poli-L-Lisina em água destilada. </li><li> Lamínulas revestimento limpo com poli-L-Lisina, incubando-as na solução por pelo menos uma hora em uma plataforma de balanço a 22 ° C. </li><li> Lavar as lamelas revestido com água destilada estéril por duas vezes e seguir com uma única lavagem com etanol 96%. </li><li> Ar seco as lamelas revestido em um pedaço de papel de filtro e mantê-los em um recipiente seco para uso futuro (uma vez seca, eles podem ser empilhados). </li></ol> Células B. Colocar em lamínulas Células não aderentes (aqui usamos células K562) <ol><li> Coloque uma lamela poli-L-Lisina revestido em um poço em um prato 6-bem com a superfície revestida voltada para cima. </li><li> Semente K562 células a uma densidade de 7x10 5 células / poço em Modified Dulbecco Eagles Medium (DMEM) suplementado com 10% soro fetal bovino (FBS) e PS (penicilina 100units/ml, estreptomicina 100mg/ml). No caso de células K562 transfecção transiente pode ser realizada utilizando eletroporação (0,4 centímetros cubetas de eletroporação com 1x10 7 células em 200μl dos meios de comunicação em 250V / 975μF) antes da semeadura das células. </li><li> Incubar as células por 24 horas a 37 ° C em 5% CO 2. </li><li> Deitar fora o meio e lave as células duas vezes com fosfato gelada solução salina tamponada (PBS). </li><li> Seguir com o protocolo de fracionamento subcelular. </li></ol> Células aderentes (aqui usamos Cos-7 células) <ol><li> Coloque uma lamela sem revestimento em um poço em uma placa de 6 poços. </li><li> Lavar duas vezes em PBS pré-aquecido a 37 ° C. </li><li> Separar as células por digestão com tripsina (0,03% EDTA, 0,25% de tripsina) em PBS a 37 ° C por 2-5 minutos. É importante não para mais de digerir as células e para parar a digestão, assim como predominantemente as células individuais flutuante estão presentes. </li><li> Parar a digestão semeando as células a uma densidade de 3x10 5 células / poço em uma placa de 6 poços em DMEM suplementado com 10% FBS e PSG (penicilina 100 unidades / ml, estreptomicina 100ug/ml e L-glutamina 292ug/ml) , em lamínulas normal. Células aderentes geralmente atribuem bem em lamínulas de microscópio normal, no entanto, poli-L-Lisina lamínulas revestido pode ser usado se for necessário. </li><li> Incubar as células por 24 horas a 37 ° C e 5% CO 2. No caso da Cos-7 células transfecção transiente pode ser realizada utilizando Fugene 6 (Roche) se necessário, e as células da esquerda para a recuperação por mais 24 horas a 37 ° C e 5% de CO 2. </li><li> Deitar fora o meio e lave as células duas vezes com PBS gelado. </li><li> Seguir com o protocolo de fracionamento subcelular. </li></ol> II. Fracionamento subcelular Na fração situ é realizada de acordo com o esquema mostrado na Figura 1 e é baseado em um método descrito anteriormente 5, com modificações descritas anteriormente 7 e no protocolo detalhado abaixo. É recomendado para transferir as lamelas de um prato 6-bem fresco após cada etapa de fracionamento de remover a lamínula antes de retirar o líquido. Embora apenas quatro lamelas são necessários para imagem, lamínulas adicionais são necessários para produzir extrato celular total e frações matriz nuclear para western blotting se isso é para ser realizado em paralelo. <ol><li> Preparar e filtro citoesqueleto buffer (CSK): TUBOS 10mM, sacarose 300mM, NaCl 100mM, MgCl 3mM 2, 1 mM EGTA. CSK tampão deve ser preparada no dia do fracionamento. </li><li> Se necessário, a células de uma lamela pode ser usado para preparar um extracto de células inteiras de western blotting colocando delicadamente tampão 200ul TES (1% SDS, 2mM EDTA, 20mM Tris-HCl pH 7,4) diretamente sobre a lamela e incubar durante 1 ou 2 minutos a 22 ° C. O extrato de células inteiras podem então ser removidos e as proteínas precipitadas por adição de 250ul de 1M (NH 4) 2 SO 4 e incubar no gelo até a outras amostras ocidentais estão prontos. </li><li> Lavar as lamelas restantes com 1 ml gelada PBS duas vezes a 22 ° C pela inclinação do 6 bem-placa duas ou três vezes. </li><li> Retirar as lamelas representando células inteiras e transfira para um prato 6-bem fresco. Siga com a fixação das células e imuno-fluorescência protocolo. </li><li> Remova cuidadosamente a PBS dos poços restantes. </li><li> Extrair as proteínas citoplasmáticas e vagamente realizada nuclear colocando delicadamente tampão 200ul CSK + 0,1% (V / V) Triton X-100 diretamente em cada lamela restantes e incubação emgelo por 1 minuto. </li><li> Retirada do extrato citoplasmático e vagamente realizada nuclear e precipitar como descrito na etapa 2. </li><li> Lavar as lamelas com gelo 1ml frio PBS duas vezes a 22 ° C pela inclinação do 6 bem-placa. </li><li> Retirar as lamelas representando bem realizada material nuclear e siga com a fixação das células e imuno-fluorescência protocolo. </li><li> Remova cuidadosamente a PBS dos poços restantes em seguida, extrair as proteínas são mantidas em segredo colocando delicadamente tampão 200ul CSK + 0,5% (V / V) Triton X-100 diretamente em cada lamela restantes e incubar no gelo por 20 minutos. </li><li> Retirada do extrato são mantidas em segredo e precipitar como descrito na etapa 2. </li><li> Lavar as lamelas com gelo 1ml frio PBS duas vezes a 22 ° C pela inclinação do 6 bem-placa. </li><li> Retirar as lamelas representando fração cromatina e siga com a fixação das células e imuno-fluorescência protocolo. </li><li> Remova cuidadosamente a PBS dos poços restantes em seguida, coloque 200ul CSK tampão + 100ug/ml de DNase I para as lamelas restantes e incubar por 30 minutos a 37 ° C. </li><li> Retirada do extrato da cromatina e precipitar como descrito na etapa 2. </li><li> Lavar as lamelas com gelo frio PBS duas vezes a 22 ° C pela inclinação do 6 bem-placa. </li><li> Retirar as lamelas que representa a fração da matriz nuclear e siga com a fixação das células e imuno-fluorescência protocolo. </li><li> Se necessário, a proteínas da matriz pode ser removido de uma lamela matriz adicionais para western blotting utilizando tampão TES 200ul como descrito na etapa 2. </li><li> Amostras para western blot deve ser centrifugado a 13.000 rpm em microcentrífuga de bancada a 4 ° C e os sedimentos ressuspensos em 40ul SDS loading buffer (62,5 mm Tris-HCl pH 6,8, SDS 2% (w / v), 50 mM DTT, glicerol 10%, 0,01% de azul de bromofenol (w / v)) antes da análise por SDS-PAGE. <img src="/files/ftp_upload/1958/1958fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. A representação esquemática de no fracionamento subcelular situ. Citoesqueleto buffer (CSK) consiste em PIPES 10mM, sacarose 300mM, NaCl 100mM, MgCl 3mM 2, 1 mM EGTA. TES buffer consiste de 1% SDS, 2mM EDTA, 20mM Tris-HCl pH 7.4. </li></ol> III. Fixação das células e imuno-fluorescência <ol><li> Delicadamente adicionar 1 ml de formaldeído a 4% / PBS a cada lamela e incubar a 4 ° C por 30 minutos. </li><li> Lave cada lamela suavemente 2-3 vezes com 1ml de PBS a 22 ° C. </li><li> Adicionar 400ul de X-100/PBS Triton 0,1% a cada lamela e incubar a 22 ° C por 10 minutos. </li><li> Lave cada lamela suavemente 2-3 vezes com 1ml de PBS a 22 ° C. </li><li> Adicionar 400ul de 3% albumina sérica bovina (BSA) / PBS e incubar a 22 ° C por 20 minutos para reduzir a coloração de fundo em potencial. </li><li> Lave cada lamela suavemente 2-3 vezes com 1ml de PBS a 22 ° C. </li><li> 100ul lugar do anticorpo primário em PBS diretamente sobre a lamela e incubar a 22 ° C por 1 hora. Anticorpos primário e secundário deve ser diluído em PBS a concentração necessária. Este pode ter de ser otimizado para cada anticorpo utilizado. </li><li> Lave cada lamela suavemente 2-3 vezes com 1ml de PBS a 22 ° C. </li><li> 200ul local de anticorpo secundário em PBS e incubar a 22 ° C ao abrigo da luz por 1 hora. </li><li> Lave cada lamela suavemente 2-3 vezes com 1ml de PBS a 22 ° C. </li><li> Monte cada lamela (células para baixo) sobre uma lâmina de vidro usando Vectashield meio de montagem contendo DAPI (4 ',6-diamidino-2-phenylindole de cloridrato). </li><li> Limpe o excesso de meio de montagem de todo o lamela usando uma toalha de papel e incubar a lâmina a 22 ° C por pelo menos 30 minutos de distância da luz. </li><li> Fixar a lamínula para a lâmina de vidro utilizando unha polonês acrílico transparente. </li><li> Manter os slides longe da luz antes de visualização por microscopia de fluorescência. </li></ol> IV. Resultados representativos <img src="/files/ftp_upload/1958/1958fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Fracionamento subcelular de não-transfectadas COS-7 células. Fracionado Cos-7 células foram fixadas com formaldeído e imunocoradas usando α-tubulina, α-histona H1 ou α-Lamin A anticorpos / C conjugada com TRITC seguido de tratamento com meio de montagem contendo DAPI . Imagens foram adquiridas com lente ocular de 10x e lente objetiva 63x usando um microscópio confocal Leica. Núcleos celulares foram visualizadas através de um conjunto de filtros DAPI, enquanto no mesmo campo células coradas com anticorpos marcador foram visualizadas através de um conjunto TRITC filtro. <img src="/files/ftp_upload/1958/1958fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. A proteína de fusão GFP-6E2 é associado com a matriz nuclear. Fracionamento subcelular de Cos-7 células que expressam uma proteína de fusão composta de proteína verde fluorescente (GFP) fundida ao papilomavírus humano (HPV) do tipo 6E2 proteína (GFP-6E2). Núcleos celulares foram visualizadas através de coloração DAPI, enquanto localização de GFP-6E2 nas células transfectadas foi diretamente visualizadas através GFP fluorescência. Lamin A / C foi visualizado utilizando α-Lamin A anticorpos / C conjugada com TRITC e um conjunto TRITC filtro. As imagens revelam que alguns fusão da proteína GFP-6E2 é associado com a matriz nuclear (painel inferior direito). As imagens foram obtidas como descrito na Figura 2.

<ol><li>Donaldson, M. M., Boner, W., Morgan, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TopBP1+regulates+human+papillomavirus+type+16+E2+interaction+with+chromatin%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">TopBP1 regulates human papillomavirus type 16 E2 interaction with chromatin.</a> J Virol. 81, 4338-4342 (2007).</li>
<li>Javed, A., Guo, B., Hiebert, S., Choi, J. Y., Green, J., Zhao, S. C., Osborne, M. A., Stifani, S., Stein, J. L., Lian, J. B., van Wijnen, A. J., Stein, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Groucho%2FTLE%2FR-esp+proteins+associate+with+the+nuclear+matrix+and+repress+RUNX+%28CBF%28alpha%29%2FAML%2FPEBP2%28alpha%29%29+dependent+activation+of+tissue-specific+gene+transcription%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Groucho/TLE/R-esp proteins associate with the nuclear matrix and repress RUNX (CBF(alpha)/AML/PEBP2(alpha)) dependent activation of tissue-specific gene transcription.</a> J Cell Sci. 113, 2221-2231 (2000).</li>
<li>Kowalczyk, A. M., Roeder, G. E., Green, K., Stephens, D. J., Gaston, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+the+induction+or+inhibition+of+apoptosis+by+HPV+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Measuring the induction or inhibition of apoptosis by HPV proteins.</a> Methods Mol. Med. 119, 419-432 (2005).</li>
<li>McLarren, K. W., Theriault, F. M., Stifani, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+with+the+nuclear+matrix+and+interaction+with+Groucho+and+RUNX+proteins+regulate+the+transcription+repression+activity+of+the+basic+helix+loop+helix+factor+Hes1%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Association with the nuclear matrix and interaction with Groucho and RUNX proteins regulate the transcription repression activity of the basic helix loop helix factor Hes1.</a> J Biol. Chem. 276, 1578-1584 (2001).</li>
<li>McNeil, S., Guo, B., Stein, J. L., Lian, J. B., Bushmeyer, S., Seto, E., Atchison, M. L., Penman, S., van Wijnen, A. J., Stein, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+of+the+YY1+transcription+factor+to+the+nucleolus+and+the+nuclear+matrix+in+situ%3A+the+C-terminus+is+a+principal+determinant+for+nuclear+trafficking%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">Targeting of the YY1 transcription factor to the nucleolus and the nuclear matrix in situ: the C-terminus is a principal determinant for nuclear trafficking.</a> J Cell Biochem. 68, 500-510 (1998).</li>
<li>Melan, M. A., Sluder, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redistribution+and+differential+extraction+of+soluble+proteins+in+permeabilized+cultured+cells.+Implications+for+immunofluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Redistribution and differential extraction of soluble proteins in permeabilized cultured cells. Implications for immunofluorescence microscopy.</a> J Cell Sci. 101, 731-743 (1992).</li>
<li>Zou, N., Lin, B. Y., Duan, F., Lee, K. Y., Jin, G., Guan, R., Yao, G., Lefkowitz, E. J., Broker, T. R., Chow, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hinge+of+the+human+papillomavirus+type+11+E2+protein+contains+major+determinants+for+nuclear+localization+and+nuclear+matrix+association%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">The hinge of the human papillomavirus type 11 E2 protein contains major determinants for nuclear localization and nuclear matrix association.</a> J. Virol. 74, 3761-3770 (2000).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Problemas comuns e sugestões: Todos ou a maioria das células são perdidas durante a lavagem. Durante as etapas de líquidos de lavagem deve ser adicionado lentamente para o lado do prato 6-bem evitando a lamela. Da mesma forma os líquidos devem ser retirados com cuidado a placa de inclinação e, lentamente, pipetagem off excesso de líquido. Adesão celular pode ser aumentada usando poli-L-Lisina lamínulas revestido. DNA genômico não é completamente digerida. Para algun...

<table><tbody><tr><td>BSA</td><td>Produto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9647-100G</td><td></td></tr><tr><td>DNase I</td><td>Produto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>DN25-1G</td><td></td></tr><tr><td>poli-L-lisina</td><td>Produto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-8920</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Produto químico</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Produto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E4378-25G</td><td></td></tr><tr><td>Formaldeído</td><td>Produto químico</td><td>VWR</td><td>284216N</td><td></td></tr><tr><td>PIPES</td><td>Produto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-6757</td><td></td></tr><tr><td>Sacarose</td><td>Produto químico</td><td>Fisher Scientific</td><td>S/8600/53</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Produto químico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T-6876</td><td></td></tr><tr><td>Meio de Montagem com DAPI</td><td>Produto químico</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr><tr><td>Reagente de Transfecção Fugene 6</td><td>Produto químico</td><td>Roche Group</td><td>11814443001</td><td></td></tr><tr><td>Histona H1</td><td>Anticorpos</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>SC-8030</td><td></td></tr><tr><td>Lamina A/C</td><td>Anticorpos</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>SC-20681</td><td></td></tr><tr><td>Tubulina-&amp;alpha;</td><td>Anticorpos</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td><td>SC-32293</td><td></td></tr></tbody></table>

fracionamento em subcelulares situ de aderentes e não aderentes células de mamíferos

In situ Subcellular Fractionation of Adherent and Non-adherent Mammalian Cells

Função da proteína está intimamente acoplado a localização de proteínas. Apesar de algumas proteínas são restritos a um local específico ou compartimento subcelular, muitas proteínas estão presentes como uma população livre difusão de livre troca com uma sub-população que está fortemente associado a um domínio particular subcelular ou estrutura. Fracionamento subcelular Em situ permite a visualização de compartimentalização de proteína e pode também revelar proteína sub-populações que localizar a estruturas específicas. Por exemplo, a remoção de proteínas solúveis citoplasmáticas e vagamente realizada proteínas nucleares pode revelar a associação estável de alguns fatores de transcrição com cromatina. Digestão subseqüente de DNA pode, em alguns casos revelar associação com a rede de proteínas e RNAs que é coletivamente chamado de andaime nuclear ou matriz nuclear. Aqui nós descrevemos os passos necessários durante o fracionamento em situ de aderentes e não aderentes células de mamíferos em lamínulas de microscópio. Visualização de proteínas pode ser conseguido usando anticorpos específicos ou proteínas de fusão fluorescentes e microscopia de fluorescência. Anticorpos e / ou corantes fluorescentes que funcionam como marcadores para compartimentos específicos ou estruturas permitem localização de proteínas a ser mapeada em detalhes. No fracionamento situ também pode ser combinado com western blotting para comparar as quantidades de proteínas presentes em cada fração. Esta abordagem simples bioquímicos podem revelar associações que poderiam passar despercebido.

No fracionamento subcelular situ de células de mamíferos em lamínulas de microscópio permite a visualização de localização de proteínas.

Fracionamento em Subcelulares situ de aderentes e não aderentes células de mamíferos

A função proteica está intimamente ligada à localização da proteína. Embora algumas proteínas estejam restritas a um local ou compartimento subcellular específico, ...

O objetivo geral deste procedimento é fracionar células de mamíferos durantes e não durantes in situ U, a fim de examinar a localização de proteínas. Isso é realizado primeiramente fixando as células em lamínulas de microscópio. O segundo passo do procedimento consiste em remover as proteínas citoplasmáticas e as proteínas nucleares fracamente ligadas.O terceiro passo do procedimento é remover as proteínas nucleares fortemente ligadas. O passo final do procedimento é remover a fração de cromatina, deixando a matriz nuclear e as proteínas dissociadas sobre a lamínula. Em última análise, podem ser obtidos resultados que mostram a localização e colocalização subcelular de proteínas por meio de microscopia de imunofluorescência.Olá, sou Anya Ho Hai do laboratório de Kevin Gaston na Escola de Bioquímica da Universidade de Bristol. Hoje vamos mostrar um procedimento para realizar a fracionamento subcelular. Utilizamos este procedimento para estudar as localizações dos fatores de transcrição.Então vamos começar. Iniciaremos demonstrando os procedimentos para aderir células não aderentes e células aderentes de mamíferos a lamínulas. Aqui, as células não aderentes são células K 5 6 2 e as c

in-situ-subcellular-fractionation-adherent-non-adherent-mammalian

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Este vídeo descreve a preparação de frações subcelulares de células leucêmicas, que é um método para gerar frações celulares e nucleares de células leucêmicas. As frações nuclear e citoplasmática podem ser usadas para análises posteriores a jusante.

Preparação de Frações Subcelulares de Células Leucêmicas: Um Método para Gerar Frações Celulares e Nucleares de Células Leucêmicas

Aqui, apresentamos um protocolo de fracionamento de membrana cerebral que representa um procedimento robusto para isolar proteínas pertencentes a diferentes compartimentos sinápticos.

Fracionamento de Membranas Cerebrais: Um<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Abordagem para Avaliar a Localização de Proteínas Subinápticas

Aqui, apresentamos um protocolo para executar um fracionamento celular simples para a separação subcelular de proteínas citoplasmáticas e nucleares em humanas frescas e congeladas de biópsias intestinais.

Fraccionamento subcelular de espécimes Gastrointestinal frescos e congelados

Aqui, apresentamos um protocolo para isolar a membrana plasmática, citoplasma e mitocôndrias de células U937 sem o uso de centrifugação de alta velocidade. Esta técnica pode ser usada para purificar as fracções subcelulares para posterior exame de localização de proteínas através de immunoblotting.

Fracionamento celular de células U937, na ausência de centrifugação de alta velocidade

Este protocolo permite a otimização e a geração eficiente subseqüente de frações nucleares e cytoplasmic das pilhas crônicas primárias da leucemia lymphocytic. Estas amostras são usadas para determinar a localização da proteína assim como mudanças no tráfico da proteína que acontecem entre os compartimentos nucleares e cytoplasmic em cima da estimulação da pilha e do tratamento da droga.

Fraccionamento subcelular de células crônicas primárias de leucemia linfocítica para monitorar o tráfico de proteínas nucleares/citoplasmáticas

Este protocolo de fracionamento permitirá que os pesquisadores isolem proteínas citoplasmáticas, nucleares, mitocondriais e de membrana de células de mamíferos. As duas últimas frações subcelulares são ainda purificadas através do gradiente de densidade isopícnico.

Fracionamento Celular de Células U937 por Purificação de Gradiente de Densidade Ipopínica

Este protocolo apresenta um método robusto e detalhado para obter sinaptossomos, vesículas sinápticas e outras frações sinápticas altamente puras do cérebro de camundongos. Este método permite a avaliação de processos sinápticos, incluindo a análise bioquímica da localização e função de proteínas com resolução compartimental.

Fracionamento subcelular para o isolamento de componentes sinápticos do cérebro murino

Este método fornece um protocolo acessível e flexível para a preparação de grades de microscopia eletrônica (ME) para criotomografia celular in situ e microscopia correlativa de luz e eletrônica (CLEM).

Preparo de Amostras para Criotomografia In Situ de Células de Mamíferos

Aqui, descrevemos um método de homogeneização de alta velocidade assistido por separação magnética para produção em larga escala de nanovesículas derivadas do endossomo como um novo tipo de imitação de exossomos (MEs) que compartilham a mesma origem biológica e estrutura, morfologia e composição proteica semelhantes de vesículas extracelulares nativas (EVs).

Um Método de Homogeneização de Alta Velocidade Assistida por Separação Magnética para Produção em Larga Escala de Vesículas Derivadas do Endossomo

A Biotinilação Iluminada Restrita por Localização específica (ALIBi) é um método optogeneticamente ativado inovador desenvolvido para marcar e purificar populações subcelulares de ribossomos para sequenciamento a jusante e análise proteômica.

Isolamento de Subpopulações Subcelulares de Ribossomo Baseado em Biotinilação Iluminada Aprimorada por Localização Específica de Etiquetas Peptídicas Recombinantes

Aprenda o fracionamento subcelular in situ de células de mamíferos aderentes e não aderentes para estudar a localização de proteínas por imunofluorescência. Este método permite visualizar a distribuição proteica em compartimentos celulares.

Fracionamento em Subcelulares situ de aderentes e não aderentes células de mamíferos

Explorar mais vídeos