Это исследование проводилось в соответствии с этическими принципами Хельсинкской декларации и институциональными нормативами, регулирующими исследования на людях. Исследование было проведено в соответствии с этическими принципами Хельсинкской декларации и одобрено Этическим комитетом Синтайской народной больницы, отделением дерматологии (ID одобрения: 2021[029]). Все участники предоставили письменное информированное согласие перед участием.
Отбор пациентов
Всего 232 пациента с клинически диагностированным витилиго были зарегистрированы в течение трёх лет с января 2021 по декабрь 2023 года. Всем участникам был поставлен диагноз несегментарный витилиго (генерализованный или локализованный тип) и классифицированы как стабильные или прогрессирующие на основе отсутствия или наличия новых поражений в течение 3 месяцев до зачисления. Продолжительность заболевания и распределение поражения фиксировались на исходном уровне. Критерии зачисления включали людей в возрасте от 18 до 65 лет со стабильным или прогрессующим витилиго, подтвержденным дерматологами с помощью клинического обследования, освещения лампой Вуда и дермоскопии. Критериями исключения были беременность, лактация, фотоаллергические расстройства, системные аутоиммунные заболевания, тяжёлая депрессия печени или почек, а также предварительное применение системных кортикостероидов, иммунодепрессантов или фототерапии в течение 3 месяцев. Все процедуры проводились под постоянным этическим контролем, обеспечивая комфорт и безопасность пациента на протяжении всего курса лечения.
Обзор исследования и рабочий процесс лечения
Общий рабочий процесс исследования, включая регистрацию пациентов, распределение групп, последующую оценку и анализ биомаркеров, иллюстрируется на рисунке 1. Подходящие участники были распределены в соотношении 1:1 к одной из двух параллельных групп исследования: монотерапии 308-нм эксимерным лазером (только эксимерным лазером; n = 116) и группе комбинированной терапии (308-нм эксимерный лазер плюс пероральная матрина; n = 116). Распределение групп проводилось с использованием компьютерно сгенерированной случайной последовательности, подготовленной независимым сотрудником исследователей, не участвовавшим в оценке результатов; Назначения размещались в последовательно, запечатанных конвертах и открывались после регистрации для определения распределения лечения. Терапевтический рабочий процесс состоял из трёх основных этапов: (1) базовая оценка и документация, (2) 12 недель активного лечения согласно назначенной схеме и (3) оценка после лечения, включая лабораторное тестирование иммуноглобулинов и воспалительных цитокинов в сыворотке. Каждому пациенту был разработан стандартизированный план лечения, одинаковые интервалы последующего наблюдения и единообразные процедуры лабораторного анализа. Клинические фотографии и VASI-оценка проводились дерматологами, не обращая внимания на распределение лечения. Все процедуры проводились в кабинете дерматологической фототерапии Народной больницы Синтайя при контролируемых условиях окружающей среды (температура в комнате 22–24 °C, относительная влажность 40%–60%).
Подготовка участка обработки
Перед каждой лазерной сессией целевые депигментированные участки аккуратно очищались стерильным физиологическим раствором и вытирались медицинской марлей без ворса. Была осмотрена кожа поражений для подтверждения отсутствия инфекции, экскориации или корки. Если за один визит лечили более одного поражения, каждое из них подготовлялось и лечилось последовательно. Поражения, превышающие одно поле облучения, делились на соседние поля облучения, а окружающая нормальная кожа была защищена непрозрачным УФ-блокирующим листом для каждого поля для минимизации ненужного воздействия. Пациентам рекомендовали избегать местных средств, фотосенсибилизирующей косметики или духов в течение 24 часов до процедуры. Защитные очки носили как пациент, так и оператор на протяжении всей процедуры.
Процедура облучения эксимерным лазером 308 нм
Использовалась монохроматическая 308-нм ксенон-хлоридная (XeCl) эксимерная лазерная система. Все лазерные сеансы проводились двумя обученными дерматологами по стандартизированному протоколу для обеспечения стабильного энергетического выхода, расстояния облучения и воспроизводимости. Выход прибора проверялся с помощью калиброванного УФ-измерителя мощности перед каждым днём обработки, а все системы проходили еженедельную калибровку сертифицированным техником для поддержания погрешности ниже ±5%. Перед первым облучением минимальная доза эритемы (MED) для каждого пациента определялась путём постепенного применения доз (100–400 мДж/см²) к небольшим участкам на внутренней стороне предплечья и оценки реакции эритемы через 24 часа; Результаты фотографировались и записывались в карты пациентов. В дополнительной таблице 1 приведена представительная документация MED и график корректировки дозы по сессиям. MED был определен как минимальная тестовая доза, вызывающая чётко различимую, однородную эритему через 24 часа. Начальная доза лечения была установлена на уровне 80%–90% от индивидуального MED, а последующие изменения дозы следовали заранее определённому алгоритму, основанному на 24-часовом ответе на эритему предыдущей сессии (увеличение на 10–20% при отсутствии или лёгкой эритеме, сохранение той же дозы при умеренной эритеме и снижение на 10–20% при образовании мозолей или значительной боли). Начальная терапевтическая доза была установлена на уровне 150–250 мДж/см² (примерно 80%–90% от индивидуального MED). Каждая сессия начиналась с удобного сидения пациента на регулируемом кресле. Лазерный прибор держался перпендикулярно (90°) коже на расстоянии 10–15 см, а круглые или прямоугольные поля облучения были выровнены так, чтобы полностью покрыть депигментированные участки с минимальным перекрытием. Облучение длилось 1–3 с на каждое поле экспозиции, в зависимости от флуэнса. Дозы впоследствии увеличивались на 10–20% за сеанс согласно предыдущему ответу на эритему; Если наблюдалась умеренная эритема, предыдущая доза сохранялась, тогда как волдыри или боль требовали снижения на 10–20%. Максимальная доза не превышала 2000 мДж/см². Каждая сессия охватывала все видимые поражения и длилась 10–20 минут, в зависимости от степени. Процедуры проводились два раза в неделю с интервалом не менее 72 часов между сессиями в течение общего периода 12 недель (24 сеанса). После облучения был нанесен тонкий слой стерильного геля на основе алоэ для снятия местной эритемы. Пациентам было рекомендовано избегать воздействия солнца в течение 48 часов и использовать солнцезащитный крем широкого спектра действия (SPF >30) на протяжении всего лечения. Поражения с репигментацией >50% сохранялись при тех же параметрах до достижения стабильной пигментации.
Оральное введение матрины
В комбинированной группе был подготовлен стерильный водный экстракт корней Sophora flavescens в соответствии с Китайской фармакопеей (издание 2020 года)30 и стандартизирован до концентрации 5 мг/мл с чистотой ≥98%, подтвержденной высокоэффективной жидкостной хроматографией (ВЭЖХ). Раствор хранился при 4 °C в янтарных стеклянных бутылках для предотвращения фотодеградации. Случайные партийные тесты подтвердили концентрацию алкалоидов (5 ± 0,3 мг/мл) и микробную стерильность. Каждый пациент получал матринный раствор перорально в дозе 0,3 г (60 мл) дважды в день в течение 12 недель, синхронизированно с графиком лазерного лечения. Дозировка была выбрана на основе предыдущих фармакологических данных, демонстрирующих эффективную иммуномодуляцию с благоприятным профилем безопасности при хронических воспалительныхдерматозах 31,32. Пациентам рекомендовали принимать раствор через 30 минут после еды, чтобы минимизировать дискомфорт в желудочно-кишечном тракте и избегать алкоголя, крепкого чая и острой пищи во время терапии, чтобы снизить печёночную нагрузку. Лёгкую тошноту или усталость контролировали за счёт небольшого количества тёплой воды. Соблюдение лечения оценивалось с помощью дневника приема лекарств и проверки возврата бутылок при каждом повторном приёме. Безопасность оценивалась на каждом визите с помощью структурированного изучения симптомов и документирования побочных эффектов, включая дискомфорт в желудочно-кишечном тракте, усталость и любые признаки, указывающие на печёночную непереносимость. В период наблюдения не разрешалось принимать дополнительные системные препараты, местные кортикостероиды или иммуносупрессанты для предотвращения сбивать с толку эффектов.
Оценка клинического ответа
Изменения пигментации оценивались на исходных этапах и на 4, 8 и 12 неделях двумя опытными дерматологами, не имевшими информации о лечении. Стандартизированные цифровые фотографии делались при одинаковых настройках освещения и камеры (расстояние 60 см, экспозиция 1/60 с, ISO 200). Степень репигментации была количественно измерена с помощью Индекса оценки области витилиго (VASI). Поражения дополнительно были распределены на четыре категории: отличные (≥75% репигментация), хорошие (50–74%), умеренные (25%–49%), плохие (<25%). Пациенты также проходили 10-балльную Визуальную аналоговую шкалу (VAS) для удовлетворения и облегчения симптомов. При каждом визите фиксировались побочные явления, такие как эритема, жжение, ворит, волдыри и гиперпигментация.
Сбор образцов сыворотки
Для анализа биомаркеров у каждого пациента на начальном этапе и в конце 12-й недели с помощью трубок для отделения сыворотки собирали кровь натощак (5 мл). Образцы свертывали в течение 30 минут при комнатной температуре и центрифугировали при 800 x g в течение 10 минут при 4 °C. Супернатантная сыворотка была аликотирована в криовиалы объемом 0,5 мл и хранилась при −80 °C до анализа. Все образцы были обработаны в течение 2 часов после сбора для минимизации деградации цитокинов.
Количественная оценка иммуноглобулинов в сыворотке
Концентрации сыворотки IgG, IgA и IgM были определены с помощью автоматизированной иммунофелометрии согласно инструкциям производителя. Калибровочные кривые были подготовлены с использованием последовательных разбавлений эталонных стандартов. Каждый анализ включал сыворотки контроля качества в высоких и низких концентрациях. Измерения экспрессировались в г/л и повторялись дважды для обеспечения вариации внутри анализа < 5%. Точность и калибровка прибора ежедневно проверялись с помощью отслеживаемых контрольных стандартов. Результаты записывались в электронном виде и просматривались двумя независимыми техниками, ослеплёнными к информации о пациентах.
Измерение воспалительных цитокинов
Профилирование цитокинов включало IFN-γ, TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-17 и IL-10, количественно оценённые с помощью платформы мультиплексного ферментно-связанного иммуносорбентного анализа (ELISA). Подготовка реагентов следовала стандартному протоколу производителя. Кратко, в каждую яму, покрытую антителами, добавляли 100 мкл разбавленной сыворотки и инкубировали в течение 2 часов при 37 °C. После промывки с фосфатно-буферным физиологическим раствором с содержанием 0,05% Tween-20 (PBST) было добавлено 100 мкл биотинилированного антитела для обнаружения и инкубировалось в течение 1 часа. Затем скважины инкубировали со стрептавидином-хреновой пероксидазой в течение 30 минут, после чего развивалась цветокраска с использованием субстрата тетраметилбензидина (TMB) в течение 10 минут в темноте. Реакция была остановлена с помощью 50 мкл серной кислоты 2 моль/л, а поглощение измерялось на 450 нм с помощью считывателя микропластин. Стандартные кривые были получены на основе последовательных разбавлений рекомбинантных цитокинов, а концентрации выражались в pg/mL. Все образцы измерялись в дубликатах. Для обеспечения воспроизводимости межанализовый коэффициент вариации (CV) поддерживался ниже 10%. Пустые скважины содержали буфер без сыворотки, а отрицательные контрольные — матрицу без цитокинов, обработанную идентично образцам и эквивалентную стандарту 0 пг/мл для подтверждения специфичности анализа. Любые гемолизованные или липемические образцы были исключены из итогового анализа.
Статистический анализ
Данные вводились в специализированную электронную базу данных и проверялись на точность двумя независимыми менеджерами данных. Размер выборки оценивался на основе ожидаемого размера эффекта (Коэнов d = 0,5) при α = 0,05 и степени (1–β) = 0,8, что дало минимум 100 участников на группу. Для контроля множественных сравнений между цитокиноми при необходимости применялась коррекция Бонферрони. При необходимости применялась многомерная линейная регрессия для корректировки потенциальных факторов, включая возраст, пол, продолжительность заболевания и исходную площадь поражения. Нормальное распределение непрерывных переменных было проверено с помощью теста Шапиро–Уилка. Описательная статистика была представлена как среднее ± стандартного отклонения (SD) для нормально распределенных данных или как медиана (межквартильный диапазон, IQR) для искаженных данных. Изменения до и после лечения анализировались с помощью парных t-тестов, тогда как сравнения между группами анализировались с независимыми t-тестами или тестами Mann–Whitney U по мере необходимости. Категориальные данные сравнивались с хи-квадратом или точным тестом Фишера. Корреляции между уровнем цитокинов, иммуноглобулинами и улучшением пигментации оценивались с помощью коэффициента корреляции Пирсона. Все анализы проводились с SPSS v26.0 (RRID: SCR_002865), и двухсторонний p < 0.05 считался статистически значимым.