-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
ECM Белковые Нановолокон и наноструктуры Инженерная Использование Поверхность по инициативе Ассам...
ECM Белковые Нановолокон и наноструктуры Инженерная Использование Поверхность по инициативе Ассам...
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
ECM Protein Nanofibers and Nanostructures Engineered Using Surface-initiated Assembly

ECM Белковые Нановолокон и наноструктуры Инженерная Использование Поверхность по инициативе Ассамблеи

Full Text
12,941 Views
16:33 min
April 17, 2014

DOI: 10.3791/51176-v

John M. Szymanski1, Quentin Jallerat1, Adam W. Feinberg1,2

1Department of Biomedical Engineering,Carnegie Mellon University, 2Department of Materials Science and Engineering,Carnegie Mellon University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Метод получения нановолокон и сложных наноструктур из одной или нескольких белков внеклеточного матрикса описана. Этот метод использует белок-поверхностные взаимодействия для создания на основе белков материалы свободно стоящая с перестраиваемой состава и архитектуры для использования в различных тканевой инженерии и биотехнологии приложений.

Общая цель этой процедуры заключается в создании отдельно стоящих нановолокон, наноструктур и 2D-матриц из одного или нескольких белков внеклеточного матрикса с использованием поверхностной сборки. Это достигается путем предварительной подготовки поли-диметилсоана или штампов PDMS путем заливки предварительного полимера PDMS на мастер-форму с топографическим рисунком и предоставления ему возможности отверждения. Второй шаг заключается в вырезании отвержденных штампов PDMS и покрытии их раствором, содержащим нужные белки внеклеточного матрикса.

Затем штампы промываются, сушатся и печатаются на микроконтакте на полипропилакриламиде или на стеклянной крышке с покрытием PAM. Заключительным этапом является увлажнение покровного стекла теплой деионизированной водой с температурой 40 градусов Цельсия и постепенное охлаждение восстанавливающегося раствора. Температура ниже 32 градусов Цельсия вызывает растворение термочувствительного слоя трубки PAM и высвобождение собранных белковых нановолокон или наноструктур.

В конечном счете, собранные нановолокна и наноструктуры являются автономно стоящими в растворе, что подтверждено фазовым контрастом и/или флуоресцентной микроскопией, и могут быть использованы в других приложениях, таких как тканевая инженерия. Основным преимуществом этого метода по сравнению с существующими методами, такими как разделение лица или электроспиннинг, является возможность конструировать нановолокна белка ECM с использованием метода, который действительно имитирует способ, которым клетки обычно строят волокна ECM in vivo. Метод поверхностной сборки имеет ряд уникальных преимуществ, в том числе возможность контролировать состав белка, морфологию волокон и архитектуру каркаса.

Кроме того, мы можем сконструировать нановолокна белка ECM из белков внеклеточного матрикса, таких как ламинат волокна нин и коллаген четвертого типа, что оказалось сложным при использовании других методов. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области тканевой инженерии, позволяя исследователям разрабатывать конструкции со специфическими и четко определенными физическими и химическими сигналами для управления различными формами поведения клеток, такими как адгезия и дифференцировка. Если вы новичок в этой технике, вы должны не забывать постоянно проверять качество ваших стеблей, а также точность шаблонов с микроконтактной печатью.

Это необходимо для получения правильной сборки нановолокон и наноструктур ECM. Чтобы начать эту процедуру, приготовьте поли-диметилсоан или предварительный полимер PDMS, комбинируя эластомерную основу и отвердитель в соотношении 10 к одному весу к весу, обычно используют 80 граммов основания и восемь граммов отвердителя, чтобы обеспечить достаточное количество PDMS для покрытия мастер-формы смесью толщиной в один сантиметр и DGA PDMS с помощью центростремительного миксера, установленного на следующую смесь при 2000 об/мин в течение двух минут, DGA при 2000 об/мин в течение двух минут. Достаточно бедно.

PDMS предварительно полимером над мастер-формой для формирования слоя толщиной в один сантиметр здесь, PDMS путем запекания при температуре 65 градусов Цельсия в течение четырех часов. После отверждения с помощью скальпеля вырежьте область, содержащую узор, чтобы сформировать штамп PDMS. Чтобы отличить характерную сторону от оборотной стороны штампа PDMS.

Вырежьте выемку в одном из углов на обратной стороне штампа. Начните эту процедуру с очистки стеклянных покровных стекол диаметром 25 миллиметров, обработайте их ультразвуком в 95% этаноле в течение одного часа, а затем высушите их в духовке при температуре 65 градусов Цельсия. Далее приготовьте поли и изопропилакриламид или раствор пиама, растворите пиам в одном бутаноле в концентрации 10%Центрируйте чистое стекло, наденьте на вакуумный патрон спиновой коэр и пипеткой нанесите 200 микролитров трубки раствора Пам на стеклянную поверхность, чтобы покрыть поверхность целиком.

Отжимайте защитный лист при 6 000 об/мин в течение одной минуты. Очистите штампы PDMS с помощью ультразвука в 50% этаноле в течение 30 минут, а затем высушите под потоком азотной сушки, а все последующие шаги следует выполнять в шкафу биобезопасности для поддержания стерильности для применений, где внеклеточный матрикс или наноструктуры ECM будут использоваться с клетками. Этап микроконтактной печати является самым сложным аспектом этой процедуры.

Перед использованием важно проверить штампы PDMS на наличие видимых дефектов. Также не стоит использовать белковый раствор, который старше двух недель места. Крышка с покрытием PIAM помещается внутрь закрытой чашки Петри и стерилизуется под воздействием ультрафиолета.

Достаточно 45 минут под ультрафиолетовым светом в шкафу биобезопасности. Покройте поверхность рисунка каждого штампа PDMS 200 микролитрами белкового раствора. Здесь используется фибронектин или ФН в концентрации 50 микрограмм на миллилитр в стерильной дистиллированной воде.

Выдерживать в течение одного часа при комнатной температуре, через час промыть штампы PDMS и дистиллированную воду для удаления излишков белка и тщательно высушить под струей азота. Важно полностью удалить воду, чтобы избежать преждевременного растворения трубы. Налет Пам на покровном скольжении и неправильный перенос белка.

При необходимости выполните микроконтактную печать, поместив характерную сторону штампа PDMS в контакт с покровным листом трубы с покрытием PAM. С помощью щипцов слегка постучите по обратной стороне штампов, чтобы удалить пузырьки воздуха и обеспечить равномерный контакт через пять минут. Отклейте штамп PDMS от покровного листа.

На данном этапе. В зависимости от исследования, дополнительные белки ECM могут быть смоделированы для создания более сложных и многокомпонентных структур. После печати шаблона ECM поместите шаблон трубки с покрытием PAM в чашку Петри диаметром 35 мм и проверьте точность шаблона с помощью фазово-контрастной микроскопии.

В зависимости от рисунка может потребоваться ПЗС-камера для разрешения особенностей рисунка. Флуоресцентная микроскопия также может быть использована для изучения рисунка при условии, что белки ECM флуоресцентно помечены. После проверки правильности рисунка добавьте в чашку Петри три миллилитра дистиллированной воды с температурой 40 градусов Цельсия и дайте воде постепенно остыть растворение трубы.

Слой PAM и высвобождение белковых паттернов ECM можно контролировать с помощью фазово-контрастной микроскопии. Как правило, для того, чтобы обеспечить высвобождение белковых наноструктур ECM, воду охлаждают до комнатной температуры, значительно ниже нижней критической температуры раствора в трубе, pam, которая составляет 32 градуса Цельсия. Если применение не позволяет использовать оптические методы, высвобождение можно контролировать путем измерения температуры раствора.

Нановолокна и другие наноструктуры будут плавать в воде после высвобождения слоя PAM в трубе. Для дальнейших применений необходимо манипулировать нанотканями и другими наноструктурами, но точный подход будет зависеть от цели эксперимента. Здесь представлены репрезентативные результаты, демонстрирующие, что поверхностная инициируемая сборка или SIA способна создавать нановолокна белка ECM с точным контролем размеров волокон.

Массив прямоугольников фибронектина длиной 50 микрометров и шириной 20 микрометров был нанесен на покрытое покрытием покрытие пиамом с добавлением воды под 40 градусов Цельсия и последующим охлаждением ниже нижнего критического раствора. Температура пиама вызывала растворение пиама и высвобождение нановолокон фиброина при высвобождении. Волокна сжимались, потому что находились под внутренним предварительным напряжением.

При нанесении на поверхность пиама анализ размеров нановолокон фибронектина перед высвобождением показал, что они были монодисперсными со средней длиной 50,19 плюс-минус 0,49 микрометра и средней шириной 19,98 плюс-минус 0,17 микрометра. При высвобождении нановолокна заметно сокращались, но оставались монодисперсными со средней длиной 14,15 плюс-минус 0,92 мкм и средней шириной 2,65 плюс-минус 0,32 мкм. Атомно-силовая микроскопия обеспечила перспективу с более высоким разрешением для изменения размеров волокон, связанных с процессом высвобождения SIA.

Примечательно, что волокна до высвобождения имели равномерную толщину около пяти нанометров, в то время как волокна после высвобождения имели толщину порядка нескольких сотен нанометров, в то время как длина и ширина уменьшались. Используя процесс SIA, можно создавать различные белковые наноструктуры ECM с настраиваемым размером, формой и составом. Например, нановолокна фибронектина первоначально 20 микрометров в ширину и один сантиметр в длину были нанесены на трубку.

Крышка с покрытием PAM скользит при охлаждении и трубе. При растворении Пам нановолокна высвобождались, образуя длинные нити с уменьшенной шириной около трех микрометров. Кроме того, поскольку рисунок определяется топографией поверхности штампа PDMS, используемого для микроконтактной печати, можно спроектировать сложные белковые наноструктуры ECM в качестве доказательства концепции.

Были созданы многоплечие фиброиновые звезды. Тепловое выделение привело к сжатию рукавов, но не центральной области звезды, где рукава соединялись вместе. SIA также работает с другими белками ECM, такими как laminate или LN, и несколько белков ECM могут быть включены в одну структуру.

В этом примере ортогональные взаимосвязанные линии фибронектина шириной 20 микрометров, показанные красным цветом, и линии ламинина шириной 50 микрометров, показанные зеленым цветом, интегрированные в 2D-наноткань, были структурированы, а затем высвобождены после высвобождения, оба типа нановолокон сократились, но общая взаимосвязанность и квадратная структура решетки были сохранены. Эти результаты демонстрируют, что SIA может быть использован для разработки материалов ECM с различными составами и структурами. Наконец, показаны некоторые примеры неудачной SIA нановолокон ECM.

Одной из причин является неправильное высвобождение неполного рисунка из-за плохого переноса белка ECM на поверхность пиама. При микроконтактной печати наличие отверстий, неровных краев и других дефектов приведет к созданию нановолокон и наноструктур, которые будут неполными и склонными к разрыву и фрагментации при высвобождении. Быстрое растворение трубки PAM также может привести к низкой точности рисунка после освобождения.

Например, используя воду с температурой 20 градусов по Цельсию, температуру уже ниже нижнего критического раствора. Температура пиама приведет к тому, что пиам быстро набухнет и растворится. Это может привести к тому, что нановолокна будут отламываться и разрываться, как показано на 32-м изображении, и образовывать случайные неорганизованные конфигурации, как показано на 52-м изображении.

Перед началом этой процедуры проверьте состояние PDMS на наличие дефектов, а также убедитесь, что все поверхности очищены от пыли. В противном случае это будет препятствовать правильному переносу белка и приведет к плохой сборке структур А КМ. Таким образом, после этой процедуры, высвобождающие нановолокна или наноструктуры могут быть использованы для выполнения ряда задач, таких как анализ механических свойств белковых волокон, или использоваться в качестве каркасов для тканевой инженерии.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как проектировать нановолокна и наноструктуры белков ECM с настраиваемым составом, геометрией и архитектурой. В частности, вы должны понимать, как наносить микроконтактную печать белков ECM на стеклянные покровные стекла с покрытием из питона, а затем термически запускать растворение поверхности для сборки структур ECM.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биоинженерия выпуск 86 Нановолокон Nanofabrics белки внеклеточного матрикса Микроконтакта печать Фибронектин Ламинин тканевая инженерия поли (N-изопропилакриламида) Площадь по инициативе Ассамблеи

Related Videos

Процедура изготовления нановолокон Биофункциональные

09:39

Процедура изготовления нановолокон Биофункциональные

Related Videos

13K Views

Вдохновленные оригами самосборки Узорчатое и Reconfigurable Частицы

12:33

Вдохновленные оригами самосборки Узорчатое и Reconfigurable Частицы

Related Videos

22.2K Views

Приготовление Thermoresponsive наноструктурированных поверхностей для тканевой инженерии

12:22

Приготовление Thermoresponsive наноструктурированных поверхностей для тканевой инженерии

Related Videos

8.7K Views

Мультимасштабный структуры агрегирования тисненой нановолокна для функциональных поверхностей

06:14

Мультимасштабный структуры агрегирования тисненой нановолокна для функциональных поверхностей

Related Videos

7K Views

Направленная сборка эластиноподобных белков в определенные супрамолекулярные структуры и грузовую инкапсуляцию In Vitro

10:01

Направленная сборка эластиноподобных белков в определенные супрамолекулярные структуры и грузовую инкапсуляцию In Vitro

Related Videos

6.3K Views

Родная клеточная мембрана наночастицы системы membrane белка-белкового взаимодействия анализа

07:31

Родная клеточная мембрана наночастицы системы membrane белка-белкового взаимодействия анализа

Related Videos

6.5K Views

Изготовление биомиметического нано-матрицы с нанотрубок Janus Base и фибронектина для агезии стволовых клеток

07:14

Изготовление биомиметического нано-матрицы с нанотрубок Janus Base и фибронектина для агезии стволовых клеток

Related Videos

4.4K Views

Использование вертикально выровненных массивов углеродных нановолокон на жестких или гибких подложках для доставки биомолекул и красителей растениям

05:32

Использование вертикально выровненных массивов углеродных нановолокон на жестких или гибких подложках для доставки биомолекул и красителей растениям

Related Videos

2.2K Views

Получение и характеристика органоидов колоректального рака из клеточной линии SW1222 в ультракороткой самоорганизующейся пептидной матрице

10:23

Получение и характеристика органоидов колоректального рака из клеточной линии SW1222 в ультракороткой самоорганизующейся пептидной матрице

Related Videos

1.4K Views

Нанофибриллярная имитаторная базальная мембрана из рекомбинантного функционализированного паучьего шелка во вставках для тканевых культур по индивидуальному заказу

06:17

Нанофибриллярная имитаторная базальная мембрана из рекомбинантного функционализированного паучьего шелка во вставках для тканевых культур по индивидуальному заказу

Related Videos

1.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code