RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/55282-v
Yuno Natsume1, Hsin-i Wen2, Tong Zhu2, Kazumi Itoh1, Li Sheng2, Kensuke Kurihara2,3,4
1Department of Mathematical and Physical Sciences, Faculty of Science,Japan Women's University, 2Department of Bioorganization Research, Okazaki Institute for Integrative Bioscience,National Institutes of Natural Sciences, 3Department of Life and Coordination-Complex Molecular Science, Institute for Molecular Science,National Institutes of Natural Sciences, 4Research Center for Complex Systems Biology,The University of Tokyo
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Гигантские везикулы, содержащие сильно упакованные микрометровые компоненты, являются полезными моделями клеток. Метод центрифугирования на основе эмульсии «вода в масле» является простым и мощным инструментом для получения гигантских везикул с инкапсулированными материалами.
Общая цель этого метода центрифугирования на основе водно-масляной эмульсии заключается в том, чтобы легко получить гигантский пузырь тонкого слоя. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области синтетической биологии, такие как создание искусственной клетки на основе гигантского везикулы. Чтобы начать эту процедуру, приготовьте 25 миллимолярный стоковый раствор DOPC и нулевой двухмиллимолярный стоковый раствор Texas Red DHPE в хлороформе.
Затем сформируйте липидную пленку на внутренней поверхности стеклянного флакона объемом пять миллилитров, испарив смесь стоковых растворов DOPC и Texas Red DHPE под протекающим газообразным азотом. После инкубации пленки при пониженном давлении в течение ночи добавьте в флакон один миллилитр жидкого парафина. Заверните флакон в алюминиевую фольгу и выдержите смесь при температуре 80 градусов Цельсия в течение ночи.
В микропробирке с крышкой один пункт пять миллилитров смешайте 237 целых пять микролитров нефлуоресцентных микросфер размером один микрометр и 12 целых пять микролитров флуоресцентных микросфер размером один микрометр. Теперь добавьте в микротрубку 64 миллиграмма сахарозы, а затем 125 микролитров одного молярного буферного раствора Tris и 875 микролитров деионизированной воды. Вонзайте смесь в течение 30 секунд, затем обрабатывайте ультразвуком в течение 10 минут.
После приготовления 10 миллилитров буферизованного раствора Tris поместите один миллилитр в микропробирку объемом пять миллилитров с крышкой. После того, как раствор был обработан и обработан ультразвуком, смешайте один миллилитр масляного раствора с 300 микролитрами внутреннего водного раствора в одной пятимиллилитровой микропробирке. Эмульгируйте два компонента в микротрубке с помощью механического гомогинизатора, работающего при 10 000 об/мин в течение двух минут при комнатной температуре.
Затем аккуратно нанесите 300 микролитров водно-масляной эмульсии на верхнюю поверхность одного миллилитра наружного водного раствора при температуре четыре градуса Цельсия в микропробирку объемом один балл пять миллилитров с крышкой. Сразу после охлаждения микропробирки в течение 10 минут центрифугировать смесь при 18 000 G в течение 30 минут. Когда закончите, получите осажденные гигантские везикулы или GV, проколов дно микротрубки нажимным штифтом и собрав одну каплю в стерилизованную микротрубку объемом пять миллилитров.
Поместите адгезивную инкубационную камеру для НК-2-полимеразной цепной реакции и гибридизации на верхнюю часть покровного стекла микроскопа. С помощью микропипетки нанесите 25 микролитров разбавленных осажденных GV на область образца и немедленно поместите покровное стекло толщиной пять миллиметров с нулевой точностью одной десятой пять миллиметров на верхнюю часть инкубационной камеры. После записи микроскопических изображений везикул проводят флуоресцентную микроскопию путем введения в микроскоп флуоресцентных зеркальных единиц UFBNA и UFMCHE.
Затем установите блоки с фильтрами возбуждения и фильтрами излучения для анализа. Наиболее важным фактором, определяющим успех метода «вода в масле», является то, что удельный вес внутреннего водного раствора должен быть больше, чем удельный вес внешнего водного раствора, чтобы ГВ выпадали в осадок во время центрифугирования. Дифференциальная интерференционная микроскопия и флуоресцентная микроскопия ГВ без микросфер и с микросферами подтвердили образование ГВ с низкой пластинчатостью.
Из 160 полученных GV 55 инкапсулированных микросфер и 105 были пустыми, что дало коэффициент инкапсуляции 34%. Объемная доля микросфер в GV была оценена примерно в 11 плюс-минус три объемных процента, а точность рассчитанной объемной доли составила от 10 до 30%. После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как проточная цитометрия, чтобы ответить на дополнительные вопросы, такие как выяснение моделируемой клетки.
После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как подготовить гигантские пузырьки с помощью инкапсулированных материалов.
Related Videos
11:35
Related Videos
24.4K Views
11:10
Related Videos
11.5K Views
10:43
Related Videos
72.3K Views
08:15
Related Videos
8.2K Views
11:30
Related Videos
24.6K Views
09:29
Related Videos
8.8K Views
07:48
Related Videos
4.6K Views
10:19
Related Videos
3.9K Views
10:10
Related Videos
740 Views
08:53
Related Videos
694 Views