November 28th, 2018
Здесь мы представляем протокол, оптимизированный для обработки кодирования (мРНК), и -кодирования (ncRNA) Глобин снижена РНК seq библиотек из одного состава крови.
Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в изучении взаимодействия хозяина-патогена, позволяя изучить кодирование, некодирование и вирусное выражение РНК, участвующих в ответе на аминокислоты хозяина, а также как патоген может повлиять на биологические функции хозяина. Основным преимуществом этого метода является то, что он представляет протокол, оптимизированный для обработки мРНК и некодирующей РНК из библиотек RNAseq с пониженным глобином из одного образца крови. Демонстрация техники будет Сара Андерсон, техник из моей лаборатории.
Начните с центрифугирования труб крови при температуре 50 20 Г в течение 10 минут при комнатной температуре. Работая в кабинете биологической безопасности, после удаления супернатанта, добавьте в гранулы восемь миллилитров воды без RNase. Закройте трубки и вихрь гранулы, пока он явно растворяется, а затем центрифуги труб при 50 20 раз G в течение 10 минут при комнатной температуре, чтобы восстановить гранулы.
Работая в кабинете биологической безопасности, отбросьте супернатант и сохраните гранулы. Чтобы изолировать общую РНК, начните с трубопроводов 300 микролитров лиза, связывающих буфер с гранулами. После вихря перенесите смесь из каждой трубки в новую помеченную 1,5 миллилитровую центрифугу.
Добавьте 30 микролитров гомогенатной добавки из изоляционные комплекты miRNA. Вихрь труб и место на льду в течение 10 минут. Работая в дымовом капоте, снимите трубки со льда и добавьте 300 микролитров кислотного фенола хлороформного реагента из комплекта и вихрь снова перемешать.
После центрифугирования в 10 000 раз G в течение пяти минут при комнатной температуре, тщательно удалите aqueous фазы в новую трубку. Основываясь на количестве aqueous восстановления от предыдущего шага, добавить 1,25 раза объем 100% этанола в aqueous фага в каждой трубке и пипетки для смешивания. Подготовь свежие трубки для сбора, содержащие фильтр картридж для каждого образца.
Pipette приблизительно 675 микролитров смеси лизате-этанола на картридж фильтра. Центрифуга кратко в 10 000 раз G, чтобы пройти жидкость через фильтр. Отбросьте поток через.
Повторите лисатно-этаноловую смесь, добавляя к фильтру и центрифугации, пока она не будет полностью использована. Добавьте 700 микролитров раствора для мытья один из комплекта в картридж фильтра. Центрифуга кратко вытащить раствор через фильтры.
Откажитесь от протекаемого потока и храните те же фильтры картриджей и трубки для сбора. Добавьте 500 микролитров раствора для мытья по два-три к каждому фильтру картриджу. После центрифугирования снова, отбросить поток через и повторить шаг мытья.
Чтобы удалить остаточную жидкость из картриджей фильтра, закрутите их еще 60 секунд. Перенесите картриджи в свежие трубки сбора. Добавьте 100 микролитров 95 градусов по Цельсию, разогретых без ядра воды в центр каждого картриджа фильтра.
Центрифуга картриджей в течение примерно 20 до 30 секунд на столешнице центрифуги на максимальной скорости. Для преформизации гибридизации с глобин сокращения олиго, сначала денатурации РНК, добавив каждый извлеченный образец в 0,2 миллилитров тонкостенных нуклеазы свободной реакции трубки. Поместите трубки в тепловой циклер при 70 градусах по Цельсию в течение двух минут.
После этого немедленно поместите трубки на лед, чтобы получить оптимальное качество РНК. В то время как трубы охлаждения, подготовить 400 микролитров 10X глобина сокращения олиго смеси и 10X олиго гибридизации буфера в двух миллилитровой трубки. Чтобы сделать смесь гибридизации, добавьте шесть микрограммов образца РНК, два микролитера 10X глобина сокращения олиго смеси, один микролитр 10X олиго гибридизации буфера, и nuclease свободной воды до конечного объема 10 микролитров на каждые 0,2 миллилитров тонкостенной, нуклеазы свободной реакции трубки.
Поместите трубки в тепловой циклер при 70 градусах по Цельсию в течение двух минут. После этого сразу же поместите трубки на лед. Для выполнения RNase H пищеварения, сначала разбавить 10X RNase H до одного X RNase H с одним X RNase H буфера.
Подготовьте смесь реакции RNase H, объединив два микролитера буфера 10X RNase, один микролитер ингибитора RNase и два микролитера одного X RNase H и пять микролитров нуклеазной воды общим объемом 10 микролитров. Добавьте 10 микролитров смеси реакции RNase H в образцы гибридизации сокращения глобина и тщательно перемешайте. Переварить эту реакцию при 37 градусах по Цельсию в течение 10 минут, а затем остыть до четырех градусов по Цельсию.
Остановите пищеварение, добавив один микролитр 0,5 молярной ЭДТА в трубку, и перенесите все содержимое трубки в свежую 1,5 миллилитровую трубку. Сразу после этого добавьте 80 микролитров воды без RNase, 350 микролитров буфера лиза, затем 250 микролитров 100% этанола в каждую трубку и хорошо перемешайте с помощью трубок. Перенесите каждый образец микролитра на отдельный картридж фильтра elution, помещенный в две миллилитровые трубки для сбора протека.
Центрифуга в течение 15 секунд при 8000 раз G или больше, а затем отбросить поток через. Поместите те же картриджи фильтра elution в новые две трубки коллекции миллилитров. Чтобы промыть мембраны картриджа фильтра, добавьте 500 микролитров мягкого буфера для мытья фильтра к картриджам и центрифуге в течение 15 секунд при 8000 раз G или больше.
Отбросьте поток через. Затем, используя те же трубки сбора, добавьте 500 микролитров 80% этанола к картриджам фильтра. Центрифуга в течение двух минут при 8000 раз G и больше.
Отбросьте как протекаемые, так и коллекционые трубки, а также сохраните столбцы elution spin. Поместите каждую колонку elution spin в новую двухми миллилитровую трубку для сбора. Центрифуга на полной скорости в течение пяти минут с открытой крышкой на картриджах фильтра, чтобы высушить мембраны спиновой колонки и предотвратить перенос этанола.
После отбрасывания трубки сбора, поместите каждый высушенный картридж фильтра в свежую трубку сбора 1,5 миллилитров. Добавьте 14 микролитров воды без RNase непосредственно к центру мембраны картриджа фильтра. Чтобы утаить РНК, центрифуга труб в течение 60 секунд на полной скорости, а затем продолжить дальнейшую оценку РНК и подготовки.
Образец, исчерпанный глобином, теперь можно разделить и использовать для подготовки небольших, некодирующих РНК-библиотек, а также риборазрушаемой мРНК и длинных, некодирующих РНК библиотек. После подготовки библиотек выражения глобина истощенных и рибо истощенных целых образцов крови с помощью этого протокола, электрофорез файл запустить резюме показал глобин истощенный образец библиотеки с РНК целостности номера, которые варьировались от 6,3 до 9,2. Это оказалось улучшение по сравнению с другими исследованиями, которые использовали методы истощения глобина и были только в состоянии достичь RIN номера на уровне или около шести.
Предварительное снижение глобина и постглобин-сокращение одного свиного образца всей крови показали, что соотношение концентрации 260-280 нанометров находится на уровне или выше двух. С помощью этого протокола были получены чип-электроферограммы глобина и рибо-истощенных образцов библиотеки всей крови мРНК до объединения и секвенирования. Для библиотек мРНК репрезентативная электроферограмма имеет пик примерно в 280 базовых парах.
Для небольших ncRNAs репрезентативные чип-электроферограммы содержат диапазон пиков от примерно 100 до 400 базовых пар. Пики примерно на 143 базовых парах соответствуют миРНК, а пики примерно в 153 базовых парах соответствуют пиРНК. При попытке этой процедуры, важно помнить, чтобы ледяные трубы сразу же, где отметил.
После этой процедуры следует использовать другие методы, такие как секвенирование следующего поколения, с тем чтобы ответить на дополнительные вопросы, такие как дифференциальное выражение, эпигенетические изменения и их влияние на биологические пути и процессы. Не забывайте, что работа с фенол-хлороформ реагент является чрезвычайно опасным и меры предосторожности, такие как работа в дымовой капот должны быть приняты. Кроме того, при обработке всей крови или инфекционных организмов, работа должна быть выполнена в кабинете биологической безопасности до активации инфекционного организма.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Эта статья представляет протокол, оптимизированный для обработки кодирующих (мРНК) и некодирующих (нкРНК) глобиновых сокращенных библиотек РНК-секвенирования из одного образца цельной крови. Этот метод особенно полезен для исследования взаимодействий хозяин-патоген.
This protocol enables simultaneous analysis of coding and non-coding RNA from a single whole blood sample, reducing sample requirements and improving data consistency for host-pathogen interaction studies. By capturing mRNA, ncRNA, and viral RNA expression in parallel, it supports more efficient target validation and mechanistic de-risking in early discovery. The approach addresses a key bottleneck in transcriptomic workflows where separate sample preparations limit multi-omic insights and increase resource use.
The method fits within the discovery continuum from hypothesis generation through lead optimization, particularly in immunology and infectious disease programs where host response profiling informs target selection.