April 17th, 2019
Мы представляем протоколы для изучения развития сердца мыши, с помощью микроскопии всю гору epifluorescent эмбрионов мыши, расчлененный от желудочков конкретных док 2v-tdTomato репортер забивные мышей. Этот метод позволяет нам непосредственно визуализировать каждый этап формирования желудочка во время разработки сердца мыши без трудоемкого гистохимические методы.
Используя этот метод, мы можем непосредственно изучат образование сердечной трубки, цикл и полное образование камер без дальнейших экспериментальных манипуляций эмбриона мыши. Хотя, мы используем MLC-2v-tdTomato мышей в качестве примера, этот простой метод может быть широко использован с другими флуоресцентными линиями мыши репортера. Основным преимуществом этого протокола является то, что он очень прост и не требует каких-либо сложных методов или оборудования.
Это может быть выполнено в обычной обстановке лаборатории. После спаривания самки с мышами мужского пола, как MLC-2v-tdTomato от 8 до 10 недель, проверить плотины для вагинальных пробки каждое утро. Положите беременных плотин, усыпляют в разные дни после coitum, в положении на спине и спрей живота с 70%этанола.
Используйте острые хирургические ножницы и миппы, чтобы открыть брюшную полость путем разреза кожи и брюшной стенки. После обнаружения двусторонних рогов матки в спинной части брюшной полости, отделить всю матку с помощью острых хирургических ножниц и типсов, чтобы тщательно сократить выше яйцеклетки с обеих сторон. Поместите всю вскрытую матку в 10-сантиметровую чашку Петри с ледяной PBS.
Используя острые хирургические ножницы и типсы, тщательно отделяйте каждый амниотический мешок вдоль рога матки. Используйте пинцет для переноса каждого эмбриона в 35-миллиметровую культурную пластину, наполненную ледяным PBS. Используя острые хирургические ножницы и типсы, откройте амниотический мешок и разоблачите каждый эмбрион, отрезав пуповину, а затем обрежьте дополнительные эмбриональные ткани как можно больше, не повреждая эмбрионы.
Под рассеченным микроскопом с помощью волоконно-оптического микроскопа иллюминатор отрежьте голову эмбриона и перенесите его в 1,5 миллилитровую трубку со 100 микролитров буфера А для более поздних генотипирования, чтобы соотнести с результатами эпифлуоресцентной визуализации. Используя тонкие миппы, откройте грудную клетку эмбриона. Острыми хирургическими ножницами и типсами удалите сердце из легких и сосудов.
Используйте пинцет для переноса расчлененного эмбрионального сердца в 35-миллиметровую культурную пластину с ПОМОЩЬю PBS. Поместите пластину с эмбриональными сердцами мыши под эпифлюоресцентным рассечением микроскопа. Используйте тонкие миппы, чтобы распоставить эмбриональные сердца таким образом, чтобы развивающие желудочков сталкиваются с экспертом.
Отрегулируйте фокус с помощью 0,63-х объектива в режиме яркого поля. Возьмите ярко-полевых экспозиций и захватить несколько изображений. Чтобы визуализировать экспрессию tdTomato, выключите микроскоп и установите фильтр для красной флуоресценции.
При необходимости отрегулируйте фокусировку изображения, отрегулируйте яркость и контрастность, сделайте краснофлуоресцентные экспозиции и захватите несколько изображений. Для генотипирования эмбрионов кипячение ранее изолированных образцов головы в буфере А при 100 градусах Цельсия в течение 30 минут. Центрифуга в течение двух минут в 11, 360 раз G.Transfer 20 микролитров супернатанта в новую 1,5 миллилитровую трубку с 20 микролитров буфера B и смеси.
Используйте 4,5 микролитера смешанного супернатанта в качестве шаблона ДНК и объедините его с 0,5 микролитров каждого из 10 микромолярно-специфических форвардов и реверсивных грунтовок, 10 микролитров полимеразы и буфера реакции 2x-premixed, а затем добавьте воду в общий объем 20 микролитров. Запустите ПЦР, как описано в рукописи. Загрузите завершенную реакцию в 100 базовой паре ДНК лестницы на 1%agarose гель и запустить на 140 вольт в 1x TAE буфера в течение 25 минут.
Поместите завершенный гель на УФ-трансиллюминатор и включите ультрафиолетовый свет для идентификации полос ДНК. MLC-2v считается самым ранним маркером для желудочковой камеры спецификации во время развития сердца. В MLC-2v-tdTomato репортер стук в мышей, относительно слабое выражение tdTomato в линейной трубке сердца на E8.0 становится сильнее на E8.5, как показано с помощью цельно-монтировать эпифлурелсцентные изображения эмбрионов.
Используя цельно-монтирующий эпифлурелсцентное изображение расчлененного сердца, образование желудочковой камеры во время развития сердца мыши можно легко определить. В расчлененном сердце от целого эмбриона мыши на E10.5, MLC-2v-tdTomato выражение репортера было показано в желудочковой части сердца, а не в тракте притока, отток тракта, или будущее atria. На E12.5 до E13.5, tdTomato репортер исключительно выражается в желудочках четырехколесного сердца.
Аналогичная модель экспрессии желудочков была показана в расчлененном эмбрионе мыши на E16.5. После целой визуализации генотип эмбрионов был определен с использованием двух наборов грунтовок для генотипирования ПЦР, подтверждающих гомозиготные эмбрионы, несущие аллель tdTomato knock-in, гетерозигот и эмбрионы дикого типа. Этот метод довольно прост и прост в работе.
Критическим шагом является вскрытие эмбриональных сердец. Понимание сердечной анатомии во время развития сердца необходимо для успешной изоляции сердца от всего эмбриона.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
В данной статье представлены протоколы для исследования развития сердца мыши с использованием полной монтажной эпифлуоресцентной микроскопии на мышачных линиях с генным отчётом MLC-2v-tdTomato. Метод позволяет непосредственно наблюдать стадии формирования желудочков без использования сложных гистохимических методов.