October 24th, 2019
Мы сообщаем об эффективном методе радиомаркировки углерода-11 для производства клинически значимых трассаторов для позитронно-эмиссионной томографии (ПЭТ) с использованием твердой фазовой картриджи. 11 Год C-метилалинг агент проходит через картридж, предварительно загруженный с предшественником и последовательной elution с aqueous этанол обеспечивает химически и радиохимически чистых ПЭТ трассаторов в высоких радиохимических урожаев.
Углерод-11 является одним из наиболее широко используемых радиоизотопов в позитронно-эмиссионной томографии из-за его изобилия в органических молекулах и короткого периода полуиссяка в 20 минут. В этом видео мы показываем эффективную технику радиозабелки углерода-11 с использованием картриджей для извлечения твердой фазы. По сравнению с обычными методами, методы на основе картриджа устраняет использование HPLC, сокращает время радиосинтеза, повышает надежность синтеза, упрощает процесс автоматизации и облегчает соблюдение хороших производственных практик, GMP.
Техника на основе картриджа продемонстрирована здесь, на радиосинтезе C11 PiB, ПЭТ-трассировщика, используемого для виво-изображения амилоидных бляшек в мозге пациентов, страдающих болезнью Альцгеймера. Недавно мы применили технику «три в одном» к радиосинтезу C11 ABP688, ПЭТ-трассировщику для визуализации метаботропных глутаматных рецепторов типа 5, а также других трассировщиков с маркировкой углерода-11. Смешайте 450 миллилитров 0,2-молярного раствора уксусной кислоты с 50 миллилитров 0,2-молярного раствора ацетата натрия для подготовки ацетатного буфера при рН 3,7 в качестве буферного.
Проверить рН буфера с рН полосы или рН метр. Затем смешайте 12,5 миллилитров абсолютного этанола с 87,5 миллилитров ацетатного буфера в 100-миллилитровой бутылке, чтобы сделать 12,5% раствор этанола в качестве мытья. Комбинат 15 миллилитров абсолютного этанола с 85 миллилитров ацетата буфера в 100-миллилитровую бутылку, чтобы сделать 15%aqueous этанола раствор, как мыть два.
Объедините пять миллилитров абсолютного этанола с пятью миллилитров буфера ацетата, чтобы сделать 50%aqueous этанола раствор в качестве окончательного элюента, и привлечь 2,5 миллилитров этого решения в 10-миллилитровый шприц. Для предварительного предварительного tC18 картридж, от женского конца, использовать шприц, чтобы пройти 10 миллилитров воды следуют пять миллилитров ацетона через картридж. Высушите картридж потоком азота по 50 миллилитров в минуту в течение одной минуты.
В трубке Эппендорфа растворяют два миллиграмма предшественника 6-OH-BTA-0 в одном миллилитров ацетона ангидроуса. Держа Люэр-наконечник, 250-микролитер, точный стеклянный шприц вниз, снять 100 микролитров раствора прекурсора, а затем 50 микролитров воздушной подушки. Снимите иглу и коснитесь шприца, чтобы убедиться, что воздушная подушка выше раствора в шприце.
Нанесите раствор-прекурсор на картридж tC18 из женского конца, медленно толкая поршень всю дорогу вниз. Не толкай воздух дальше. Защитите и соберите стандартный пяти порт одноразовый многообразие на модуле синтеза.
Порт один имеет две позиции. Подключите горизонтальный вход к автоматизированному дозатору, оснащенному 20-миллилитровый шприц. Подключите вертикальный вход к бутылке с мытьем.
Соедините выход модуля, который производит метиловый трифлат C11, чтобы портировать два из многообразия. Установите картридж tC18, загруженный предшественником 6-OH-BTA-0 между портами три и четыре. Порт пять имеет две позиции.
Подключите горизонтальную розетку к бутылке отходов и вертикальной розетке к стерильному флакону для сбора трассировщиков через стерильный фильтр. В горячей ячейке, защищенной свинцом, используйте тефлоновую линию для доставки метилового трифлата C11 в многообразный через порт два, и передать его через загруженный картридж tC18 на 20 миллилитров в минуту выходной поток. Модуль метилового трифлата C11 регулирует поток через порты три и четыре и в бутылку с отходами.
После того, как вся радиоактивность была передана и в ловушке в картридже tC18, как контролируется детектором радиоактивности, остановить поток газа, закрыв порт два. Пусть картридж сидеть в течение двух минут, чтобы завершить реакцию. Затем, через порт один, снять 19 миллилитров мыть один раствор из 100-миллилитровой бутылки в распределительный шприц на 100 миллилитров в минуту.
Разпредельте 18,5 миллилитров мытья один раствор из дозатора через картридж tC18 через порты три и четыре и в бутылку отходов на 50 миллилитров в минуту. Обеспечь отсутствие пузырьков воздуха в многообразии, так как они могут снизить эффективность разделения. Повторите снятие и распределение четыре раза с 18,5 миллилитров мытья один раствор каждый раз и общий объем 92,5 миллилитров, проходящих через tC18.
Переключите входную линию на порт один от мытья один мыть два. Повторите снятие и дозирование три раза с 18,5 миллилитров мыть два раствора каждый раз и общий объем 55,5 миллилитров, проходящих через tC18. Переключить клапан пять к окончательному флакону.
Отсоедините линию от дозатора и соедините ее с 10-миллилитровым шприцем, содержащим 2,5 миллилитров окончательного элюентного раствора и 7,5 миллилитров воздуха. Держа шприц вниз, вручную нажмите окончательный раствор элуента, а затем воздух через картридж tC18 через порты три и четыре и в стерильный флакон для сбора трассировщика через стерильный фильтр. Переключите шприц на тот, который содержит 10 миллилитров стерильного фосфатного буфера, и протолкнуть весь объем через картридж tC18 в стерильный флакон.
Отключите шприц и смойте линию 10 миллилитров воздуха с помощью того же шприца. Используя одноми миллилитровый шприц, изымайте образцы для процедур контроля качества пререлеазы, теста на бактериальный эндотоксин и теста на бесплодие. Для выполнения процедур предрелизного контроля качества сначала определите радиохимическую идентичность, радиохимическую чистоту, химическую чистоту и молярную активность трассировщика с помощью аналитической системы HPLC, оснащенной уф-детекторами радиоактивности и колонкой обратной фазы.
Определите время хранения 6-OH-BTA-0 и 6-OH-BTA-1 и откалибровайте прибор для количественной оценки содержания каждого соединения. Определить содержание остаточного растворителя с помощью аналитической газохроматографической системы, оснащенной капиллярной колонкой. Определите время хранения ацетона и этанола и откалибровайте прибор для количественной оценки содержания каждого растворителя.
Это исследование выполнило радиосинтез C11 PiB C11-метилированием 6-OH-BTA-0 прекурсора с метиловым трифлатом C11. Контроль качества аналитических HPLC C11 PiB показывает, радиохимической чистоты было 98%Время удержания 6-OH-BTA-0 предшественника и 6-OH-BTA-1 трассировщик пик на УФ хроматограммы были 3,6 и 5,9 минут, соответственно. Анализ УФ-следа показывает остаточную концентрацию прекурсоров ниже допустимого предела в 1,3 микрограмма при отсутствии других нерадиоактивных примесей.
Это указывает на то, что радиохимическая и химическая чистота трассировщика приемлема для клинических ПЭТ-исследований. Увеличение количества прекурсоров 6-OH-BTA-0 с 0,1 миллиграмма до 0,3 миллиграмма улучшило радиохимическую урожайность с 18,1% до 32,1% за счет чуть более высокого количества прекурсора в конечном продукте. Этот метод должен быть применим ко многим различным системам с подходящей разницей в полярности между прекурсором и радиозабрюшьемый продукт.
Все манипуляции с радиоактивными изотопами должны выполняться в горячей камере с свинцовой защитой персоналом, который имеет надлежащую подготовку для обработки радиоактивных материалов.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
В данной статье представлена эффективная техника радиометки углерода-11 для производства ПЭТ-трассирующих веществ с использованием картриджей для твердофазной экстракции. Метод повышает надежность синтеза и соответствует нормам GMP.
The solid-phase cartridge-based 11C-methylation technique addresses critical bottlenecks in PET tracer production by eliminating preparative HPLC, reducing synthesis time, and improving radiochemical yield. This approach enhances synthesis reliability and simplifies automation, directly supporting GMP-compliant manufacturing of short-lived radiopharmaceuticals. By enabling efficient, reproducible synthesis of tracers like [11C]PiB, the method strengthens translational continuity from discovery to clinical imaging in neurodegenerative disease research.
The technique integrates into the radiotracer development continuum by streamlining synthesis, purification, and formulation—key steps between lead identification and preclinical validation.