-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Субдуральная мягкая электрокортикография (ЭКоГ) Имплантация решетки и долговременная кортикальная...
Субдуральная мягкая электрокортикография (ЭКоГ) Имплантация решетки и долговременная кортикальная...
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Subdural Soft Electrocorticography (ECoG) Array Implantation and Long-Term Cortical Recording in Minipigs

Субдуральная мягкая электрокортикография (ЭКоГ) Имплантация решетки и долговременная кортикальная регистрация у минипигов

Full Text
3,996 Views
08:30 min
March 31, 2023

DOI: 10.3791/64997-v

Florian Fallegger*1, Alix Trouillet*1, Stéphanie P. Lacour1

1Laboratory for Soft Bioelectronic Interfaces, Neuro-X Institute,Ecole Polytechnique Fédérale de Lausanne

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a method for assessing the long-term performance and safety of soft subdural electrode arrays in a minipig model. It details the surgical approach, postoperative imaging, and the electrophysiological and electrochemical evaluation of the implant.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Biomedical Engineering
  • Electrophysiology

Background

  • The need for chronic cortical devices in neuroscience research.
  • Importance of biocompatibility and signal quality in implants.
  • Challenges in long-term monitoring of neural devices.
  • Use of large animal models for device testing.

Purpose of Study

  • To establish a reproducible method for long-term safety and efficacy assessment of cortical devices.
  • To facilitate neural monitoring and imaging over time.
  • To contribute to the development of neuroprosthetics for sensory and motor functions.

Methods Used

  • Surgical implantation of soft subdural electrode arrays in minipigs.
  • Postoperative magnetic resonance imaging (MRI) for implant assessment.
  • Electrophysiological recordings of auditory cortex activity.
  • Electrochemical characterization of the implants over time.

Main Results

  • Successful implantation and monitoring of brain signals over time.
  • In vivo imaging confirmed proper implant placement and brain integrity.
  • Electrochemical properties of the devices were stable over six months.
  • Clear identification of neuronal layers and inflammatory markers via imaging.

Conclusions

  • This method provides a robust framework for evaluating chronic cortical devices.
  • It enhances understanding of large-scale cortical network activity.
  • The approach can be adapted for other large animal models.

Frequently Asked Questions

What is the significance of using a minipig model?
Minipigs provide a suitable large animal model for studying chronic cortical devices due to their anatomical and physiological similarities to humans.
How does the surgical method ensure device stability?
The surgical method includes securing the implant with titanium bridges and screws, ensuring it remains stable during long-term monitoring.
What imaging techniques were used in this study?
Postoperative MRI and intraoperative X-ray imaging were utilized to assess implant positioning and brain integrity.
What were the main findings regarding electrochemical properties?
The electrochemical characterization showed stable impedance and phase measurements over the six-month implantation period.
Can this method be applied to other types of implants?
Yes, the methodology can be adapted for various types of chronic cortical devices and other large animal models.
What are the implications for neuroprosthetic development?
This study provides insights into the long-term performance of implants, aiding in the design of more effective neuroprosthetics for sensory and motor functions.

В данной работе мы представляем метод долгосрочной оценки работоспособности и безопасности мягких субдуральных электродных решеток в модели минипига, описывающий хирургический метод и инструменты, послеоперационную магнитно-резонансную томографию, электрофизиологию слуховой коры, электрохимические свойства имплантата и посмертную иммунохимию.

Эта модель может стать стандартом для проверки безопасности и эффективности хронических корковых устройств с точки зрения биосовместимости, разрешения и качества сигнала. Наша процедура описывает воспроизводимый и масштабируемый метод долгосрочного наблюдения за безопасностью и эффективностью устройства. Это включает в себя нейронный мониторинг с течением времени, а также визуализацию in vivo и ex vivo.

Наш метод поможет в разработке сенсомоторного и моторного кортикального нейропротеза. Это инструмент для понимания крупномасштабной активности корковых сетей. Этот метод может быть использован в фундаментальной нейробиологии для исследования функциональных связей в различных областях коры головного мозга.

Также может применяться к другим моделям крупных животных. Хирургический подход требует некоторой практики, которую можно приобрести сначала на трупах или в экспериментах. В этом случае измерения должны быть довольно простыми.

Для начала надрежьте кожу животного, находящегося под наркозом, ножом скальпеля по средней линии. Отделите мышцу и надкостницу от кости с помощью рашпиля и установите разбрасыватели для оптимального доступа. Чтобы выполнить трепанацию черепа, просверлите контур с помощью костного сверла с круглым режущим сверлом, принимая во внимание толщину черепа, измеренную на рентгеновском снимке.

Орошайте место сверления солевым раствором, чтобы избежать перегрева кости. Осторожно просверлите контур равномерно, пока не дойдете до твердой мозговой оболочки. При первом прорыве закончите сверлить контур до тех пор, пока он не станет достаточно тонким, чтобы почти прорваться.

Затем плоским шпателем отломите костный лоскут целиком, используя краниотомический край в качестве рычага. Для выполнения дуротомии с помощью иглы из набора для наложения швов осторожно прокалывают и приподнимают твердую мозговую оболочку на переднем или заднем конце краниотомии, на полпути между медиальной и латеральной сторонами, и делают начало разреза ножом. Затем с помощью небольшого плоского шпателя вставляют в субдуральное пространство, действуя как режущая основа для защиты коры.

Создайте переднезадний разрез в твердой мозговой оболочке, продвигаясь одновременно обоими инструментами. Убедитесь, что щель немного больше, чем ширина имплантата. Поместите имплантат над щелью твердой мозговой оболочки и с помощью небольших щипцов субдурально введите устройство, последовательно сдвинув его по каждому краю.

Осторожно возьмитесь за пьедестал и продвигайтесь вместе с имплантатом, чтобы не создавать натяжения, препятствующего введению. Остановите вставку, когда край соединителя окажется в верхней части прорези. Чтобы закрепить имплантат на месте, поместите титановый мост на трос после края трепанации черепа или в анкерные крылья и закрепите его одним или двумя титановыми винтами с помощью соответствующей отвертки.

Затем тщательно зашите твердую мозговую оболочку вокруг троса имплантата. Используя рассасывающийся шовный материал и небольшой иглодержатель, максимально сблизите два края твердой мозговой оболочки, не разрывая тонкую мембрану шовной проволокой. Чтобы выполнить установку костного лоскута, зафиксируйте титановый мост на передней и задней части каждого костного лоскута с помощью титанового винта.

Прикрутите конец титановых мостиков к черепу. Затем спланируйте ориентацию подножки, чтобы все ноги можно было ввинчивать в череп. Затем закрепите подножку, вкрутив титановые винты подножки, пока она не встанет на место.

Затем прикрутите пьедестал к подножке. Наложите подкожные швы с помощью нерассасывающейся шовной проволоки с наложением швов на расстоянии трех миллиметров друг от друга. Начните с постамента, двигаясь к нему по обе стороны от разреза.

Затем закройте дермальный слой, сшировав кожу с помощью нерассасывающейся шовной проволоки. Со швами на расстоянии пяти миллиметров друг от друга. Начните с постамента, двигаясь к нему по обе стороны от разреза.

Позаботьтесь о том, чтобы обеспечить хорошее расположение тканей между двумя кожными лоскутами и возле края пьедестала, чтобы избежать пустоты. После подключения беспроводного головного столика к животному, что достигается путем удержания животного или отвлечения его кормлением лакомствами, запишите сигналы бодрствующего мозга. Убедитесь, что антенна усилителя и внешние динамики расположены близко к клетке свиньи во время записи сигналов.

Базовая активность без звуковых стимулов и вызванных слуховых потенциалов в ответ на стимуляцию тоновым всплеском 800 герц может быть отображена на электродной решетке. Слуховой вызванный потенциал в одном электродном канале показывается с течением времени стрелками, отмечающими реакцию включения, а базовая активность показана в качестве сравнения. Визуализация in vivo проводилась интраоперационно и послеоперационно для оценки состояния мозга и позиционирования имплантата.

Интраоперационная плоскость, подтвержденная рентгеном, установка имплантата и отсутствие складок, наблюдаемых при размещении рентгеноконтрастного маркера. Поверхность головного мозга не повреждена, что можно наблюдать при послеоперационной МРТ. В целом, с помощью этой системы имплантатов и пьедесталов можно получить визуализацию всего мозга в течение периода имплантации, чтобы увидеть анатомические структуры или наличие жидкости и крови вокруг имплантата.

Кроме того, клинические электроды используются в качестве компараторов в этом исследовании, но не могут быть визуализированы на МРТ из-за проблем с нагревом и безопасностью и требуют компьютерной томографии. Представленный конвейер позволяет извлекать и разделять весь мозг для получения изображений целых полушарий. Визуализация всего среза ткани показала прозрачный нейронный слой.

Клетки четко очерчены на конфокальной визуализации с 20-кратным увеличением и позволяют точно исследовать маркеры воспаления. Электрохимическая характеристика устройств была использована для извлечения модуля импеданса и фазы in vitro, которые отслеживались с течением времени с частотой в один килогерц в течение шести месяцев после имплантации. Очень важно тщательно подбирать возраст и размер животного, чтобы избежать открытия носовых пазух во время операции.

Это поставило бы под угрозу хронический эксперимент. Важно избегать кровотечения при доступе к твердой мозговой оболочке или установке имплантатов. Это позволит избежать дальнейших осложнений и воспалительной реакции.

Как только эта модель будет создана, ее можно будет использовать для выполнения электрофизиологии свободного поведения у мини-пигов и записи активности из интересующих областей коры головного мозга. Этот метод может быть применен при сборе данных о биобезопасности для подачи клинического исследования при разработке новых нейропротезов, которые будут транслироваться на человека.

Explore More Videos

Биоинженерия Выпуск 193 Неврологические нарушения Болезни Электрокортикография (ЭКоГ) Лекарственно-устойчивая эпилепсия Эпилептическая область Резекция Интерфейсы мозг-компьютер Эпикортикальные электроды Намерение движения Роботизированные конечности Парализованные пациенты Жесткие электродные сетки Записи мозга высокого разрешения Долгосрочная биоинтеграция Конформные электродные решетки Доклинические исследования Технологии имплантатов Функциональность Профиль безопасности Перевод на людей Модели свиней Медицина Устройства размеры органов простота обращения с животными хирургические ограничения

Related Videos

Хирургическая имплантация хронических Нейронные электроды для записи один вид деятельности группы и Electrocorticographic сигналы

08:26

Хирургическая имплантация хронических Нейронные электроды для записи один вид деятельности группы и Electrocorticographic сигналы

Related Videos

48.4K Views

Имплантация электродов в кору головного мозга мыши для электрокортикографических записей

03:59

Имплантация электродов в кору головного мозга мыши для электрокортикографических записей

Related Videos

1.2K Views

Субдуральная имплантация мягкой электрокортикографической матрицы для регистрации электрофизиологии коры головного мозга у минипигов

04:00

Субдуральная имплантация мягкой электрокортикографической матрицы для регистрации электрофизиологии коры головного мозга у минипигов

Related Videos

640 Views

Одновременная электроэнцефалографическая регистрация и регистрация потенциала локального поля у крысы под наркозом

04:17

Одновременная электроэнцефалографическая регистрация и регистрация потенциала локального поля у крысы под наркозом

Related Videos

789 Views

Манипуляция Epileptiform Electrocorticograms (ECoGs) и сна у крыс и мышей иглоукалывание

09:06

Манипуляция Epileptiform Electrocorticograms (ECoGs) и сна у крыс и мышей иглоукалывание

Related Videos

10.1K Views

Хронический транскраниальной электростимуляции и Intracortical запись в крыс

10:51

Хронический транскраниальной электростимуляции и Intracortical запись в крыс

Related Videos

9.3K Views

Адаптация микроэлектродные массив технологий для изучения анестезии индуцированной нейротоксичности в мозге нетронутыми Пятачок

08:23

Адаптация микроэлектродные массив технологий для изучения анестезии индуцированной нейротоксичности в мозге нетронутыми Пятачок

Related Videos

9.9K Views

Неинвазивный ЭЭГ записи от свободно перемещающихся поросят

04:05

Неинвазивный ЭЭГ записи от свободно перемещающихся поросят

Related Videos

7.8K Views

Хронический имплантации целом корковых Electrocorticographic массива в общей игрунка

04:43

Хронический имплантации целом корковых Electrocorticographic массива в общей игрунка

Related Videos

10.3K Views

Техника хронического краниального окна для повторных записей коры головного мозга во время анестезии у свиней

07:19

Техника хронического краниального окна для повторных записей коры головного мозга во время анестезии у свиней

Related Videos

582 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code