Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

İnsan Fetal Beyin gelen Progenitör-türetilmiş Oligodendrosit Kültür Sistemi

14.3K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/4274

⸱

20 Aralık 2012

 ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Molecular Medicine and Neuroscience, National Institute of Neurological Disorders and Stroke, National Institutes of Health, 2Laboratory of Neurophysiology, National Institute of Neurological Disorders and Stroke, National Institutes of Health

Bu makalede

Özet

İlköğretim, insan fetal beyin-türevli, multipotential progenitör hücreler çoğalmaya In vitro Nöron ve astrosit içine ayırt etmek için kapasitesini koruyarak. Bu çalışma nöral ataları select büyüme faktörleri ile klima tarafından oligodendrocytic soy aşamalarında farklılaştırmak için ikna edilebilmesi gösterir.

Özet

Nöronal ve glial hücre tipleri içine insan nöral ataları Farklılaşma nöral hücre soyu gelişmenin moleküler düzenlenmesi incelemek ve karşılaştırmak için bir model sunuyor. Fetal MSS dokusu nöral progenitörlerinin vitro genişlemesi de karakterize edilmiştir. In vitro deneyler için yeterli insan oligodendrosit edinme miyelin üreten oligodentrositlere fetal nöral ataları, doğrudan farklılaşma çeşitli kültür şartlarının yetişkin insan subkortikal beyaz cevher ve geliştirme glial progenitörlerin tespiti ve izolasyonu rağmen zor kalır. Galactocerebroside + (GalC) ve O4 Farklılaşma + oligodendrosit habercisi veya nöral prekürsör hücrelerden progenitör hücrelerin (OPC) ikinci trimesterde fetal beyin kullanarak rapor edilmiştir. Ancak, bu hücreler astrositler ve nöronlar da dahil olmak üzere destek hücrelerin yokluğunda çoğalırlar yok, ve kültür zaman içinde hızla kaybolur. Gerek in vitro deneyler için uygun soy oligodendrosit hücreleri üretmek için bir kültür sistemi için devam etmektedir.

Primer oligodendrosit insan kültürü, örneğin, in vivo olarak bu hücreleri enfekte eden insan polyomavirus, JCV gibi nörotropik bulaşıcı ajanların patogenezine incelemek için yararlı bir model olabilir. Bu kültür hücreleri aynı zamanda merkezi sinir sistemi (MSS) diğer demiyelinizan hastalıkların modelleri sağlayabilir. Nöronlar (progenitör türetilmiş nöronlar, PDN) ve astrositler (progenitör türetilmiş astrositler, PDA) Bu çalışmada nöral ataları ikna edilebilmesi göstermektedir içine ayırt etmek için kapasitesini koruyarak İlköğretim, insan fetal beyin-türevli, multipotential nöral progenitör hücrelerin in vitro prolifere oligodendrocytic soy geliştirme aşamaları (progenitör türetilmiş oligodendrosit, PDO) birçok yoluyla ayırt etmek. DMEM-F12 serum serbest medya Biz kültür nöral progenitör hücrelerin suptemel fibroblast büyüme faktörü (bFGF), trombosit kaynaklı büyüme faktörü (PDGF-AA), Sonic kirpi (Sus), nörotrofik faktör 3 (NT-3), N-2 ve triiyodotironin (T3) ile yürütülecek. Kültürlü hücreler yaklaşık her yedi günde 75cm matara başına 2.5e6 hücrelerini pasajlanmağa edilmektedir. Bu koşullar kullanılarak, kültürdeki hücrelerin çoğunluğunun az süreçleri ve bu gibi A2B5 ve O-4 gibi ön-oligodendrosit hücreleri, açık belirteçleri ile karakterize edilen bir morfoloji korumak. Biz dört büyüme faktörleri (GF) (bFGF, PDGF-AA, Şşş, NT-3) çıkarın ve PDN şartlandırılmış ortam eklerken, hücreler gibi GalC ve myelin oligodendrosit farklılaşma belirli daha süreçleri ve ekspres belirteçler, elde başlar bazik protein (MBP). Biz oligodendrosit eşsiz belirteçler tanımlamak amacıyla renkli akım sitometri kullanılarak fenotipik karakterizasyonu gerçekleştirilmiştir.

Protokol

Not: öncül ve nöral oligodendrocytic soy hücreleri rutin kültürü için inkübasyon 37 ° C'de nemlendirilmiş bir% 5 CO2 atmosfer içinde gerçekleştirilir. Her 2 gün, kültür ortamı% 40-70 oranında konfluent ise taze aracı madde içinde 50 ila% 100 kullanılarak değiştirilir. Yakınlarındaki confluency sırasında, kültürler genellikle bir haftalık çalışma programı üzerinde 2-2.5e6/T75 şişeyi de geçişli edilmektedir.

1. Kaplı Flask hazırlanması

  1. Kaplanmış şişeler daha sonra deiyonize su (DI-su) ile ceket T75 şişeleri, 100 ml poli-D-lizin (PDL) ve 5 mg seyreltik hazırlamak için, 50 mg / karanlık içinde oda sıcaklığında (RT) PDL ml. 1 ½ saat sonra, PDL aspire ve DI-su ile bir kez durulama şişeler. Hücrelerine bağlanır (Tablo 1) tohumlu önce kuru şişeler izin verin.

2. Progenitör türetilmiş Oligodentrositler (PDO) içine Sinir progenitör hücreleri farklanma Başlangıç

Için protokolİnsan MSS progenitör hücrelerin Olate önceki bir yayında açıklanan ve bu protokolün 1 parçası değildir. İnsan MSS progenitör hücrelerin NIH kurallara uygun olarak elde edilen bir 8 haftalık gebe fetal beynin telencephalon izole edilmiştir.

  1. 25 ng / ml bFGF ve 20 ng / ml, epidermal büyüme faktörü (EGF) (Şekil 1A) ile takviye neurobasal ortamda PDL kaplanmış şişeler üzerinde sinir projenitör hücrelerin multipotential nüfus büyütün. Geçişi 11 (p11) daha yüksek ise bunları kullanmayın.
  2. Kültür yaklaşık% 70 birleşik olduğunda nöral progenitör hücrelerin ayırt başlayın.
  3. Sığır serum albumin, L-glutamin, gentamisin, N2 bileşenleri, T3, Şşş, NT-3, bFGF ve PDGF-AA (Tablo 1) ile desteklenmiş serumsuz DMEM / HAMS F12 01:01 orta kullanarak tam farklılaşma oligodendrosit orta Yap . Bu ortam, büyüme faktörleri (oligo orta + GF) ile oligo ortamı olarak tanımlanır.
  4. Progen kaldırşişelerinden alınmış itor ortamı ile bir kez durulama hücreler fosfat-tamponlu salin (PBS) ile, daha sonra oligo orta eklemek + GF oligodendrosit farklılaşma başlatmak için (2.3 anlatılan ayrıntılar). Oligodendrocytic soy taahhüt Sadece hücrelerinin (Şekil 1B) artacak. 3 hafta için bu ortam içinde kültür hücreleri.
  5. Her hafta, hücreler% 90-95 izdiham, geçit onları tripsin (% 0.05)-EDTA (% 0.1) (a T75 şişesi için 4 ml) kullanarak olduğunda. 50 ml'lik bir konik tüpe pasajlanmağa devam edilmesi için hücrelerin tüm orta aktarma; bu şartlı ortam tripsin gidermek için kullanılır. Hücrelerin kurumasına değil emin olun. Sonra tripsin ekleyin.
  6. Nazikçe hücre ayırma yardımcı olmak için şişeye birkaç kez dokunarak, oda sıcaklığında 5 dakika için hücreler tripsin ile inkübe edin.
  7. Müstakil hücreleri ile şişeye şartlı ortam 4-5 ml ilave edilerek tripsin dindir.
  8. Aynı 50 ml konik bir tüp için orta ve hücre transfer edin. 1.200 rpm (~ azından orta ve hücreler santrifüje300 xg) RT az 5 dakika.
  9. Süpernatan aspire tüpü yavaşça devrilmesi, hücre pelet tekrar süspansiyon ve daha sonra taze ortam oligo + GF ekleyin. Yavaşça pipet orta ve hücreler yukarı ve aşağı bir üniforma hücre süspansiyonu yapmak.
  10. Her bir yeni PDL-kaplı T75 şişeye hücreleri, ve transfer 2.5e6 sayın.

3. Oligodentrositler Arasındaki Farklılığın Nihai Adım

  1. Oligo orta + GF, hücrelerin% 70-80 izdiham olan kültür 3 hafta sonra, farklılaşma son işlem (Şekil 1C) başlatın.
  2. Oligo orta + GF olduğu gibi aynı şekilde, ama dört GF ilave edilmeden orta hazırlayın: Shh, NT-3, bFGF ve PDGF-AA. GF - dört GF olmadan Bu orta oligo ortamı olarak tanımlanır.
  3. Şişesi oligo orta + GF aspire, bir kez PBS ile yıkayın ve daha sonra ortam 16 ml toplam hacim eklemek, oligo aracı olan ¾ (12 ml) - GF ve ¼ (4 ml) bir PDN şartlı ortam olduğu için, 6-10 Gün). PDN şartlandırılmış ortam kullanılması da farklılaşma için ya da hücrelerin hayatta kalması için kritik değildir. Biz aslında ko-kültür deneyleri PDN hücreleri ile PDO yalnızca doğrudan temas PDO hayatta kalma süresine bir etkisinin olmadığı görülmüştür. Oligo orta sağkalım süresi - PDO hücreleri PDN hücreleri ile birlikte kültüre eğer GF iki veya üç hafta uzatılabilir olabilir. PDN içine insan nöral progenitör hücrelerin ayırt etmek için protokolü önceki bir yayında açıklanan ve bu protokolün 1 parçası değildir. Çoklu süreçleri (Şekil 1D) ile hücrelerin giderek farklılaşmış kültür kültür ortamı sonuçları Büyüme faktörü çekilmesi.

4. Akış Sitometri Assay

Flow sitometri testi kendi ebeveyn nüfusun olanlarla ilişki içinde farklılaşma sürecinde oligodendrosit belirteçlerin edinimi karşılaştırır.

  1. Nöral pro kullanınkontrol olarak genitörleridir. Oligo orta + GF poli-D-lizin ile kaplı iki T75 şişeler 2.5x10 6 hücrelerini Tohum PDO hücreleri.
  2. GF - Diğer matara oligo orta varken Bir hafta sonra, hücre canlılığı için bir kontrol kültürü olarak matara taze oligo orta + GF ile orta değiştirin.
  3. Hem medya PDO hücreleri ayırmak için 20 U / papain ml tripsin kullanılması uygun değildir. Papain hücre morfolojisini koruyan ayrışma sırasında hücreler üzerinde yumuşak bir etkiye sahip olmasıdır.
  4. Papain bir şişeye Earle Dengeli Tuz Çözeltisi (EBSS) 5 ml ilave edilir. 10 dakika için ya da papain tamamen çözündürüldü ve çözelti berrak görünene kadar, 37 ° C 'de şişe yerleştirin. Bu hücreler ayrıştırmak için kullanılan papain çözümdür.
  5. Bir deoksiribonükleaz I (Dnase) şişenin (Tablo 1) ile EBSS 0.5 ml ilave edilir. Yavaşça karıştırın. Çözünmüş papain şişeye bu çözeltinin 0.25 ml ilave edilir. Bu karışım yaklaşık olarak 20 U / ml, papain ve 0 olan bir nihai konsantrasyonda içerir.005% DNaz.
  6. 15-30 dakika için 37 ° C sıcaklıkta inkübe hücreleri ve üzerinde yer papain çözelti (yukarıda açıklandığı gibi), bir mikroskop kullanılarak hücrelerin ayrılması izler. Ile ya da 7 dakika boyunca 1,200 rpm'de santrifüj ile GF olmadan ortam 5 ml reaksiyon durdurun.
  7. İki farklı 5 ml polipropilen tüplere içine de şişelerinden alınmış hücre peletleri aktarın ve normal fizyolojik ortam (UÖM: 145 mM NaCl, 5 mM KCl, 1,8 mM CaCl2, 10 mM HEPES ve 10 mM glukoz) ile yıkayınız 1 mg / ml ile takviye sığır serum albümin (YKY + BSA).
  8. Yüzey 4'te immün gerçekleştirme ° GalC (Tablo 2), A2B5, O4 için spesifik ve uygun bir şekilde titre birincil antikor kullanılarak 20 dakika için C'dir.
  9. 5 dk için 4 ° C sıcaklıkta NPM + BSA ile yıkayın hücrelerini ve 20 dakika (tablo 2) için 4 ° C sıcaklıkta belirli sekonder antikor ile inkübe edilir.
  10. Nestin, glial fibriler asidik protein (GFAP), sınıf III ve olmaya da dahil intraselüler antijenlere leke içinta,-tubulin, ve miyelin bazik protein (MBP) (Tablo 2), oda sıcaklığında 20 dakika boyunca% 2 paraformaldehid (PFA) hücreleri düzeltmek ve -20 ° C 'de 15 dakika süreyle soğuk% 70 etanol ile geçirgen
  11. 1x PBS ile hücreleri yıkayın ve spesifik sekonder antikor (Tablo 2) ile inkübe edin.
  12. Flow sitometri analizi sırasında sağlam hücre ve hücre içi moloz arasında ayrımcılık için, 4,6-diamidino-2-phenyllindole, dihidroklorür (DAPI) (Life Technologies, Grand Island, NY) ile hücreler leke.
  13. Yukarıdaki protokol optimize, biz her immunoreagent özgünlüğünü doğrulamak için tüm uygun kontrol deneyleri yapılmaktadır. Kısaca, direkt olarak etiketlenen antikorlar için, uygun negatif kontrol birincil antikor (örneğin, izotip kontrol) ile aynı izotip immünoglobulin sınıfı (ya da alt sınıfı) ile florokrom konjugat bir direkt olarak konjuge antikor idi. Primer antikor indirekt immün, uygun negatif kontrol w içinözellikle birincil antikor oluşturulduğu ana immünoglobulin sınıfı (ya da alt sınıfı) hedeflenen ki ilgi florokrom ile konjuge sekonder antikor olarak. Birden çok konaklardan (fare, tavşan, tavuk) primer antikorları birlikte kullanıldığı zaman, genellikle en aza indirmek için çapraz diğer bilgisayarlardan gelen immünoglobulinler karşı çapraz adsorblanmıştır kullanılan her ana ve her sekonder antikor primer antikor hedefleyen ikincil antikor kullanılır immunreaktivitesi barındırabilir. Pozitif kontroller bu antijenlere spesifik primer antikorlar ile doğrudan veya dolaylı immunoreactions kullanarak ilgi antijenleri ifade bilinen hücre hazırlıkları doğrudan veya dolaylı immün dahildir. Yukarıdaki optimizasyon yöntemleri immüno-deney her türü için bir kez yapılmıştır. Kontrol immunoreactions birincil ve ikincil antikorlar arasında anlamlı çapraz epitopu immünreaktivitesi saptandı. Flow sitometri düzgün yapıldı488 nm, 647 nm ayarlı uyarma dalgaboyu sağlayan üç lazer ile donatılmış bir FACVantage SE hücre sıralayıcı (BD Biosciences, San Jose, CA), ve geniş bir UV (351-364 nm) (Şekil 2) kullanılarak askıya floresan etiketli hücreleri .

5. İmmünofloresan Assay

Not: immünofloresan denemeleri için PDO oligo orta + GF veya oligo orta kaplanıyor - PDL ile kaplı 6 kuyucuğu içinde 2.5e5 de GF. Hücre büyüme faktörlerinin çekilmesinden sonra çeşitli zaman noktalarında% 2 PFA ile tespit edilir. Leke antikor Plastik 6 kuyucuğu yerine cam lameller üzerine yapılır.

  1. Ortamı çıkarın ve% 2 PFA ekleyin. Oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edilir. PFA atın. PBS, 5 dakika süre ile her hücreler 3 kez yıka. Hücrelerin kurumasına için dikkatli olun.
  2. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca PBS içinde% 0.25 triton çözeltisi kullanılarak hücre içi belirteçler için hücreler geçirgenliği.
  3. Spesifik olmayan bağlanma, blok hücreleri önlemek için, fya da HHG (1 mM, HEPES tamponu,% 2 at serumu, ve Hanks 'dengelenmiş tuz çözeltisi içinde% 10 keçi serumu) ile 10 dak. HHG içinde önceden belirlenmiş bir yoğunlaşma ile spesifik primer antikorlar (Tablo 2) seyreltilir. Hücreleri üzerine sulandırılmış antikor yerleştirin. Karıştırma cihazı üzerinde, ya da 4 ° C'da gece boyunca oda sıcaklığında 1 saat inkübe edin.
  4. 5 dk her zaman için, hücreler PBS ile 3 kez yıka. HHG içinde önceden belirlenmiş bir konsantrasyon ile bir florokrom ile birlikte uygun bir ikincil antikor (Tablo 2) seyreltilir. Hücreler üzerine seyreltilmiş sekonder antikor karışımı yerleştirin. Karanlıkta bir çalkalayıcı üzerinde RT inkübe 1 saat.
  5. 5 dk her zaman için, hücreler PBS ile 3 kez yıka.
  6. Photobleaching önlemek için hücrelere DAPI ile Altın Prolong ve bunların üstüne bir cam lamel yerleştirin 10 ul ekleyin. Bir Axiovert 200M floresans mikroskobu (Zeiss, Thornwood, NY) (Şekil 3) kullanılarak etiketli hücreler gözünüzde canlandırın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu 70% -80% konfluent nöral progenitör hücre kültürü (Şekil 1A) gelen farklılaşma sürecini başlatmak için çok önemlidir. Birçok hücreler spesifik büyüme faktörleri içeren yana progenitör gelen oligo orta kültür ortamı değiştirdikten sonra ölecek. Bu oligodendrocytic fenotipi vermeyenleri nöral progenitör hücrelerin büyüme yeni orta (Şekil 1B) tarafından desteklenen olmayacağını belirtir. Bir hafta boyunca oligo orta + GF Kuluçka dar bir, iki kutuplu morfoloji (Şekil 1B)...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu protokol, birincil insan nöral progenitör hücrelerin fetal oligodendrosit türetmek ve flow sitometri ve immünfloresan boyama kullanarak hem kendi fenotip karakterize açıklamaktadır. Fetal CNS sinir progenitörlerinin genişleme ve büyüme çok iyi 1-4 tarif edilmiştir. Erişkin insan beyaz madde 5-13 glial öncüleri tanımlamak ve ayırmak mümkün olsa bile Ancak, in vitro deneyler için yeterli insan oligodendrosit elde, zor kalır. Oligodendrosit 14-21 üreten miyelin içine fetal nöral...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Bu araştırma, Ulusal Sağlık Enstitüleri, NINDS de İntramural Araştırma Programı tarafından desteklenmiştir. Yazarlar düzenleme ile yardım için mikroskop ve Pamela C. Eleme ile yardım için Moleküler Tıp ve Nörobilim, Rick Dreyfuss ve Laboratuvar tüm üyelerine teşekkür etmek istiyorum.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Reaktif Adı Şirket Katalog numarası Nihai konsantrasyon
DME / HAMS F12 01:01 Omega Scientist DM-251 1X
Albumin Sığır Sigma A9418 % 1
Gentamisin Kalite Biyolojik 120-098-031 50 mg / ml
L-Glutamine Kalite Biyolojik 118-084-061 2 mM
T3 Sigma T2877 3 nM
N2 Bileşenleri Gibco BRL 17502 1:100
NT-3, PeproTech A.Ş. 450-03 2 ng / ml
Şşş Ar-Ge Sistemi 1314-SH/CF 2 ng / ml
bFGF PeproTech A.Ş. 100-18B 20 ng / ml
PDGF-AA PeproTech A.Ş. 100-13A 10 ng / ml '
PDL Sigma P6407 50 mg / m
PFA Elektron Mikroskopi Bilimleri 15712 % 2
Tripsin Kalite Biyolojik 118-087-721
Papain Worthington LK003178 20 U / ml
DNaz şişeleri Worthington LK003172 0.005%
EBSS Worthington LK003188
Altın uzatmak
ileDAPI 		Invitrogen P36931

Tablo 1. Reaktifler.

Birincil Abs (tüm 1 mg / ml) Türler İzotip Kaynak İkincil Abs
Akış Sitometri
A2B5-Biotin Fare IgM Hediye J. Nielson Streptavidin PETR, Invitrogen, CA
O4FITC Fare IgM J. Nielson dan Hediye
A2B5 Fare IgM Millipore, MA gαm IgM-FITC, Invitrogen, CA
O4 Fare IgM Millipore, MA gαm IgM-FITC, Invitrogen, CA
GalC Fare IgG 3 Millipore, MA gαm IgG 3-PE, Güney Biotech, AL
MBP Tavuk IGY Millipore, MA dαck IGY-AMCA, Jackson İmmünoreaktif., PA
Nestin Fare IgG 1 Messam ve ark. 2000 28 gαm IgG 1-PECy5, Invitrogen, CA
GFAP Tavşan IgG Millipore, MA gαrb IgG-PE, Jackson İmmünoreaktif, PA
βIII tubulin Fare IgG 2 Covance, CA gαm IgG 2-PETR, Invitrogen, CA
İmmünositokimya
βIII tubulin
(1:1,500) 		Fare IgG 2a Covance, CA gαm IgG 2a-FITC, Invitrogen, CA
(1:1,000)
GFAP
(1:1,000) 		Tavşan IgG Millipore, MA gαrb IgG-FITC, Jackson İmmünoreaktif, PA
(1:500)
MBP
(1:50) 		Tavuk IGY Millipore, MA dαck IGY-FITC, Jackson İmmünoreaktif, PA
(1:100)
O4
(1:100) 		Fare IgM Millipore, MA gαm IgM-AF546, Invitrogen, CA
(1: 100)
GalC
(1:10) 		Tavşan IgG Millipore, MA gαm IgM-AF750, Invitrogen, CA
(1:100)

. Flow sitometri ve immünsitokimya deneyleri için kullanılan Tablo 2 Antikorlar (Abs) Antikor konjugatları: PE, fikoeritrin; PETR, fikoeritrin Texas Red, AMCA, amino-metil-kumarin asetat; Cy, cyanine; FITC, floresein izotiyosiyanat Ig:. Immünoglobulin. . AF: Alexa Fluor; gαm: keçi anti-fare; gαrb: keçi anti-tavşan; dαck: eşek anti-tavuk.

Kaynaklar

  1. Messam, C. A., Hou, J., Gronostajski, R. M., Major, E. O. Lineage pathway of human brain progenitor cells identified by JC virus susceptibility. Ann. Neurol. 53, 636-646 (2003).
  2. Vescovi, A. L., Reynolds, B. A., Fraser, D. D., Weiss, S. bFGF regulates the proliferative fate of unipotent (neuronal) and bipotent (neuronal/astroglial) EGF-generated CNS progenitor cells. Neuron. 11, 951-966 (1993).
  3. Johe, K. K., Hazel, T. G., Muller, T., Dugich-Djordjevic, M. M., McKay, R. D. Single factors direct the differentiation of stem cells from the fetal and adult central nervous system. Genes Dev. 10, 3129-3140 (1996).
  4. McKay, R. Stem cells in the central nervous system. Science. 276, 66-71 (1997).
  5. Belachew, S., et al. Postnatal NG2 proteoglycan-expressing progenitor cells are intrinsically multipotent and generate functional neurons. J. Cell Biol. 161, 169-186 (2003).
  6. Almazan, G., McKay, R. An oligodendrocyte precursor cell line from rat optic nerve. Brain Res. 579, 234-245 (1992).
  7. Filipovic, R., Zecevic, N. Neuroprotective role of minocycline in co-cultures of human fetal neurons and microglia. Exp. Neurol. 211, 41-51 (2008).
  8. Goldman, S. A., Natesan, S. A niche-defying feat: induced oligoneogenesis in the adult dentate gyrus. Cell Stem Cell. 3, 125-126 (2008).
  9. Nunes, M. C., et al. Identification and isolation of multipotential neural progenitor cells from the subcortical white matter of the adult human brain. Nat. Med. 9, 439-447 (2003).
  10. Lyssiotis, C. A., et al. Inhibition of histone deacetylase activity induces developmental plasticity in oligodendrocyte precursor cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 14982-14987 (2007).
  11. Sim, F. J., Goldman, S. A. White matter progenitor cells reside in an oligodendrogenic niche. Ernst Schering Res. Found Workshop. , 61-81 (2005).
  12. Raff, M. C., Miller, R. H., Noble, M. A glial progenitor cell that develops in vitro into an astrocyte or an oligodendrocyte depending on culture medium. Nature. 303, 390-396 (1983).
  13. Windrem, M. S., et al. Progenitor cells derived from the adult human subcortical white matter disperse and differentiate as oligodendrocytes within demyelinated lesions of the rat brain. J. Neurosci. Res. 69, 966-975 (2002).
  14. Chen, Y., et al. Isolation and culture of rat and mouse oligodendrocyte precursor cells. Nat. Protoc. 2, 1044-1051 (2007).
  15. Armstrong, R. C. Isolation and characterization of immature oligodendrocyte lineage cells. Methods. 16, 282-292 (1998).
  16. Hu, B. Y., Du, Z. W., Li, X. J., Ayala, M., Zhang, S. C. Human oligodendrocytes from embryonic stem cells: conserved SHH signaling networks and divergent FGF effects. Development. 136, 1443-1452 (2009).
  17. Gard, A. L., Williams, W. C. 2nd, Burrell, M. R. Oligodendroblasts distinguished from O-2A glial progenitors by surface phenotype (O4+GalC-) and response to cytokines using signal transducer LIFR beta. Dev. Biol. 167, 596-608 (1995).
  18. Hu, B. Y., Du, Z. W., Zhang, S. C. Differentiation of human oligodendrocytes from pluripotent stem cells. Nat. Protoc. 4, 1614-1622 (2009).
  19. Reubinoff, B. E., et al. Neural progenitors from human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 19, 1134-1140 (2001).
  20. Pfeiffer, S. E., Warrington, A. E., Bansal, R. The oligodendrocyte and its many cellular processes. Trends Cell Biol. 3, 191-197 (1993).
  21. Zhang, S. C., Ge, B., Duncan, I. D. Tracing human oligodendroglial development in vitro. J. Neurosci. Res. 59, 421-429 (2000).
  22. Bradl, M., Lassmann, H. Oligodendrocytes: biology and pathology. Acta Neuropathol. 119, 37-53 (2010).
  23. Chong, S. Y., Chan, J. R. Tapping into the glial reservoir: cells committed to remaining uncommitted. J. Cell Biol. 188, 305-312 (2010).
  24. Jakovcevski, I., Filipovic, R., Mo, Z., Rakic, S., Zecevic, N. Oligodendrocyte development and the onset of myelination in the human fetal brain. Front Neuroanat. 3, 5(2009).
  25. Rao, R. C., Boyd, J., Padmanabhan, R., Chenoweth, J. G., McKay, R. D. Efficient serum-free derivation of oligodendrocyte precursors from neural stem cell-enriched cultures. Stem Cells. 27, 116-125 (2009).
  26. D'Intino, G., et al. Triiodothyronine administration ameliorates the demyelination/remyelination ratio in a non-human primate model of multiple sclerosis by correcting tissue hypothyroidism. J. Neuroendocrinol. 23, 778-790 (2011).
  27. Cui, Q. L., et al. Human fetal oligodendrocyte progenitor cells from different gestational stages exhibit substantially different potential to myelinate. Stem Cells Dev. , (2012).
  28. Messam, C. A., Hou, J., Major, E. O. Coexpression of nestin in neural and glial cells in the developing human CNS defined by a human-specific anti-nestin antibody. Exp. Neurol. 161, 585-596 (2000).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

N ral Projenit r H crelerOligodendrosit DiferansiyasyonuAk Sitometrisimm nofloresan MikroskopiB y me Fakt r Geri ekimiOligodendrosit Mark rleriGlial Projenit rlerMiyelin Temel Proteini
İnsan Fetal Beyin gelen Progenitör-türetilmiş Oligodendrosit Kültür Sistemi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.