Method Article

Gelişmiş 3D Floresan Mikroskobu kullanılarak Otofaji Kantitatif Analiz

DOI:

10.3791/50047

⸱

May 3rd, 2013

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biochemistry and Molecular Medicine, University of California, Davis , 2NSF Center for Biophotonics Science & Technology, University of California, Davis , 3University of Tromsø, 4Department of Surgery (Division of Surgical Oncology), University of California, Davis , 5UC Davis Comprehensive Cancer Center, University of California, Davis , 6Department of Biological Chemistry, University of California, Davis

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Otofaji hücreler protein ve organellerin aşağılamak ve geri dönüşüm sağlayan her yerde bulunan bir süreçtir. Biz görselleştirmek ve küçük ölçmek için gelişmiş floresan mikroskop geçerli, ama autolysosomes içine oluşumu ve autophagosomes ve lizozomlar dağılımı, ve füzyon da dahil olmak üzere otofaji indüksiyon ile ilgili temel, fiziksel değişiklikler,.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cerrahi iktidarsızlık ve inkontinans önemli bir risk taşır iken Prostat kanseri ABD'de erkekler arasında malignite önde gelen biçimidir, geleneksel kemoterapötik yaklaşımların büyük ölçüde başarısız olmuştur. Hormon tedavisi erken bir aşamada etkilidir, ancak genellikle hormon dirençli tümörlerin nihai gelişimi ile başarısız olur. Biz tümör hücrelerinin belirli metabolik eksikliği hedefleyen tedavi gelişmekte ilgi var. Yakın zamanda bu prostat tümör hücrelerinin, özellikle amino asit arginin 1 sentezinde yer alan bir enzim (argininosükinat sintaz veya ASS) eksikliği göstermiştir. Bu durum dışsal arjinin bağımlı hale için tümör hücrelerinin neden olur, ve ücretsiz arjinin arjinin deiminaz (ADI) 1,10 ile bittiği zaman metabolik stres tabi. Gerçekten de, insan prostat kanseri hücrelerinde CWR22 RV1 etkili kaspaz-bağımsız apoptoz ve agresif autopha ile ADI tarafından öldürüldü olduğunu göstermiştirgy (veya macroautophagy) 1,2,3. Otofaji hücreleri 4,5 beslenme açlık sırasında lizozomal arıza istenmeyen proteinleri metabolize sağlayan bir evrimsel-korunmuş bir süreçtir. Bu yolun temel bileşenleri 6,7,8,9 iyi karakterize olmasına rağmen, moleküler mekanizmasının birçok açıdan hala belirsiz - özellikle, ADI tedavi sonrası prostat kanseri hücrelerinin ölümüne-yanıt olarak otofaji rolü nedir ? Bu soruya cevap verebilmek için, biz hücrelerinde otofajik cevap düzeyi ve kapsamı ölçmek için deneysel bir yöntem gerekli - ve doğru bu süreci takip edebilirsiniz bilinen bir moleküler işaretleri olduğu için, biz kullanarak, bir görüntüleme-temelli bir yaklaşım geliştirmek için seçti nicel 3D floresan mikroskobu 11,12.

Autophagosomes ve lizozomlar için floresan problar ile özel etiketli CWR22Rv1 hücreleri kullanarak, 3D görüntü yığınlarının wi ya ile elde olduğunu göstermektedirdefield deconvolution mikroskobu (ve daha sonra, süper çözünürlük, yapılandırılmış-aydınlatma mikroskobu ile) açıkça otofaji indüksiyon erken aşamalarında yakalayabilir. Piyasada bulunan dijital görüntü analizi uygulamaları ile, kolayca autophagosome ve lizozom sayısı, boyutu, dağılımı ve herhangi bir görüntülü hücreden ko derecesi hakkında istatistiksel bilgi alabilirsiniz. Bu bilgiler tam olarak canlı hücrelerin içinde otofaji ilerleme izlemenize olanak sağlayan ve kanser kemoterapi otofaji rolüne devam eden soruşturma sağlar.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Bölüm 1: Hücre Kültürü ve Immuno-floresan Etiketleme

  1. % 10 fetal sığır serumu (FBS) ve% 1 penisilin / streptomisin / glutamin ihtiva eden RPMI (Mediatech, VA) ile 6-delikli plakalardaki yerleştirilen cam lamelleri (# 1.5 ve 170 mikron kalınlığında) ilgili RV1 CWR22 insan prostat tümörü hücrelerinin büyümesini.
  2. Fosfat tamponlu salin (PBS) arginin deiminaz (ADI, 0.3 ug / ml) ile muamele etmek suretiyle seçilmiş örnekler Otofaji neden olur.
  3. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca, lamel başına 100 ul; PBS ile seyreltilerek% 4 paraformaldehit (PFA, Fisher Scientific, NH) ile hücreleri saptamak.
  4. 1 mi HBS / BSA ile 3 kez hücreleri yıkayın.
  5. Oda sıcaklığında 15 dakika için HEPES (HBA) / BSA, lamel başına 100 ul,% 0.05 saponin (Sigma, MO) ile hücre geçirgenliği.
  6. Önceki immüno-etiketleme, sadece HBS / BSA, lamel başına 100 ul,% 2.5 kazein (Sigma, MO) ile, oda sıcaklığında 1 saat boyunca blok örnekler.
  7. % 2.5 kazein / HBS / BSA, coversl başına 100 ul seyreltilmiş primer antikorlar ile sabit hücreleri inkübe4 de ip, O / N ° C
  8. 1 mi HBS / BSA ile 3 kez hücreleri yıkayın.
  9. , Oda sıcaklığında, 1 saat boyunca,% 2.5 kazein / HBS / BSA, lamel başına 100 ul seyreltilmiş sekonder antikor ile sabit hücreler inkübe edin.
  10. 1 mi HBS / BSA ile 3 kez hücreleri yıkayın.
  11. Slowfade Altın düzenli cam mikroskop slaytlar hazırlanmış lamelleri monte veya 4 içeren Altın antifade reaktif (Invitrogen, CA) ',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) uzatır.
  12. Oje ile Seal lamel kenarları. En iyi görüntüleme sonuçlar için, anti-solmaya medya için zaman (ideal O / N) iyice hücreleri girmesine izin verir.
  13. Metanol ve / veya kloroform ile temiz lamel yüzey.
  14. Immersiyon (kırılma indeksi 1.520 görüntüleme 37 ° C veya 1.516 oda sıcaklığında görüntüleme) 60X 1.42 NA objektif lens (Olympus, Japonya) için. Ekle
  15. Pozisyon mikroskop sahnede slayt ve ilgi hücreleri ile odak kurmak.

2. Bölüm 2: Canlı Görüntüleme için hazırlanması Hücreleri

  1. CWR büyütün35 mm poli-D-lisin kaplamalı cam-alt kültür kaplarına (Mattek, MA) üzerinde,% 10 FBS ve% 1 antibiyotik içeren RPMI kültür ortamı yeşil floresan protein birleştirilmiş hafif zincir 3 (LC3-GFP) ifade 22 RV1 hücreleri. Hücreler hızla yayılması kolaylaştırmak için yeterli yoğunlukta kaplama, ama o kadar çok hücreler büyümüş ve görüntüleme zaman clumped olduğunu. Olmalıdır
  2. PBS ADI (0.3 mg / ml) ile seçilen hücre örnekleri davranın.
  3. Görüntüleme önce yaklaşık 1 saat, Lysotracker ile kırmızı DND-99 (Invitrogen, CA) 20 ml RPMI 1.5 ul sulandırmak. % 10 FBS ve% 1 antibiyotik içeren. Seçilen örnekler için ADI içeren çözümler kullanın. ° C önce kültür çanak içine ekleyerek 37 tüm medya sıcak.
  4. RPMI 37 ° C'de 15-45 dakika boyunca Lysotracker Kırmızı DND-99 içeren hücrelerin inkübe
  5. Görüntüleme önce yaklaşık 30 dakika, WeatherStation çevre muhafaza açmak ve 37 gelmesini sağlayınız ° C ve% 5 CO 2 (gösterilmeyen nem ileIED hava).
  6. PBS ile hücreleri yıkayın ve standart RPMI sadece% 10 FBS ve% 1 antibiyotik içeren medya değiştirin. Belirtilen örnekler ADI ekleyin.
  7. Montaj 35 mm coverglass-alt kültür özel adaptörü (Hassas, Inc, WA Uygulamalı) yemekleri, ve mikroskop sahnede konumu. 60X 1.42 NA objektif lens üzerine immersiyon (kırılma indeksi 1.520) kullanın ve sahnede monte kültür çanak yerleştirin.

3. Bölüm 3: Dekonvolüsyon Mikroskopi ve Analiz

Bu bölümdeki protokol DeltaVision Kişisel DV deconvolution mikroskop ve ilgili Softworx uygulama paketi (Uygulamalı Hassas, Inc, WA) kullanımını varsayar.

  1. Satın alma iş istasyonu ve cihaz kontrol dahil olmak üzere, mikroskop sistemi açın. Xenon ışık kaynağı mikroskop sahne ve dönüş başlatmak için Resolve3D uygulamasını açın. Isınmak ve istikrarlı koşullar ulaşmak için ışık kaynağı için 10 dakika izin verin.
  2. Bir eklemedaldırma petrol damla 60X 1.42 NA objektif lens ve objektif lens üzerinde merkezi slayt örneği (aşağı kapak kayma yüz) üzerinde (37 canlı örnekler için kırılma indeksi 1.520 ° C veya oda sıcaklığında sabit örnekler için 1.516).
  3. Daldırma yağ boncuk ters cam kapak ile temas edene kadar ya parlak alan veya Sokak aydınlatma ve kaba odağı ayarlamak düğmesini kullanarak, yavaşça objektif lens yükseltmek. (Bu noktadan sonra, hücre tabakası ince odak topuzu ayarlamak birkaç tur içinde odak noktası haline gelmelidir). Slaytlar üzerinde sabit örnekleri ile çalışırken, bu kabarcıkları ile herhangi alanlarda veya yakın hücreleri önlemek için tavsiye edilir. Cam alt çanak canlı örnekleri ile görüntülerken, cam lamel sınır dışında objektif lens hareket kaçının.
  4. Autophagosomes EGFP sinyali (yeşil) tarafından tespit edilebilir. Lizozomlar Lysotracker Kırmızı (canlı örnek) ya da anti-LAMP1 floresan antikor (sabit örnek) ile tanımlanır. Hücre çekirdekleri DAPI st ile tanımlanır(sabit örnek) Aining.
  5. Görüş istenen alanı seçin. İdeal olarak, hücreler tüm uygun kanalları iyi floresan sinyal göstermelidir, ve yeterince bağlı ve hücre içi içeriği görselleştirmek kolay böylece lamel yüzeyine yayılmış. Yan x, y ve z,-odak küçük ayarlamalar Acquire3D arabirimini kullanarak bilgisayar tarafından kontrol edilebilir. Görmek istenen alanı (daha fazla hücre binning 2x2 olarak ayarlanır alanında görülebilir) bağlı olarak, 1x1 veya 2x2 için binning ayarlayın.
  6. Bir hücrenin midsection ile belirli bir görüntü için, maksimum piksel yoğunluğu 3.000 sayıları aşmayacak şekilde maruz kalma parametreleri (örneğin% iletim gücü ve maruz kalma süresi) ayarlayın. Genel olarak,% iletim 1 sn üzerinde olan k pozlama süresi artırmadan, mümkün olduğu kadar düşük ayarlanmalıdır. En yüksek kaliteli görüntüler elde etmek için görüntülü her floresan renk ve görüş her bir ayrı alan için bu işlemi tekrarlayın.
  7. U ayarlayınsırasıyla, hücre numunesinin üst ve alt kısmına sadece biraz odaklama ile Z-yığının pper ve alt limitleri. Resimlerin sayısı Z-yığın verilen bu nedenle bu sınırları ile ve tabakalar (: 0.2 um bir varsayılan değer) arasındaki boşluğu ile belirlenecektir.
  8. Görüntü alımı sırasında hareket eserler en aza indirmek için, sabit örnekler için "sonra dalga boyu z-yığını" ve "z-yığını dalga boyu" canlı örnekleri için için görüntü elde etme modunu ayarlamanızı öneririz.
  9. Floresan görüntüleri Softworx (Uygulamalı Hassas, WA) kullanarak deconvolved ve daha sonra (Perkin Elmer, MA şimdi, Doğaçlama) Volocity kullanılarak analiz edilmektedir.

4. Bölüm 4: Süper çözünürlüklü, Yapısal-aydınlatma (OMX) Mikroskopi

Bu bölümdeki protokol OMX Yapılandırılmış Aydınlatma Mikroskop kullanımı (Uygulamalı Hassas, WA) için de geçerlidir.

  1. Ana güç ve istenilen lazerler (410 nm, 488 nm, ve / veya 532 nm) açın. 20 mi bekleyinn lazerler için termal stabilize edilecek.
  2. 60X 1.42 NA objektif lens üzerine daldırma yağ (oda sıcaklığında sabit numuneler için kırılma indeksi 1.516) ekleyin. Kabarcıklar yağ damlacığı görülür ise, amacı temiz ve tekrar yağ ekleyin.
  3. Sahnede ve gerekirse örnek slayt yerleştirin, hücreler için 10 dakika lamel yerleşmek için izin.
  4. Satın alma programı başlatılamıyor. Hücrenin keskin bir taslak görülebilir kadar Odağı ayarlamak için floresan aydınlatma kullanın. (Bakım gerçek görüntü elde etme kadar, floresan uyarma için hücrelerin maruziyeti en aza indirmek için her zaman alınmalıdır).
  5. Bir spiral mozaik tarama ilgi hücreleri veya bölgeleri seçmek için örnek geniş alanlar önizleme elde edilebilir. Bu örnek tarama veya hedefleri bulurken kısa pozlama süreleri (1-10 msn) ve düşük uyarma gücü (0.1-1% iletim) kullanılması tavsiye edilir.
  6. GFP-LC3 floresan tarafından autophagosomes belirleyin. Alexa Fluor 555 anti-LAMBASI tarafından lizozomlar tespit(Lizozom ilişkili membran proteini) ve DAPI (sabit örnekler) kullanarak hücre çekirdekleri.
  7. Dalgaboyu, görüntü alanı (örneğin 512x512), yığın kalınlığı, maruz kalma süresi ve lazer iletim oranı dahil olmak üzere deneysel koşullar seçin. Süper karar görüntüler için, yapısal aydınlatma seçeneği etkin olduğundan emin olun. OMX deconvolution mikroskopi için, geleneksel aydınlatma seçeneği seçin.
  8. En iyi sonucu elde etmek için yeniden, maksimum yoğunluğu sayısı satın alma sırasında 10,000 ila 15,000 olduğunu bu deneysel koşullar seçin. Photobleaching bir endişe ise, daha düşük bir pozlama (5.000 ve 10.000 arasında sayımı) de görüntüleme kullanılabilir. İdeal olarak, sayıları tüm toplama sırasında iki kat daha fazla azaltmak gerekir, ve dört kat daha fazla azalır kaçınılmalıdır. Eğer gerekli ise, sürekli yoğunluğu sayısı sağlamak için yığın kalınlığını azaltmak. Kamera çok fazla, 64.000 adet de doyururtensit Bu asla aşmamalıdır. Iyi örnekleri için,% 1 lazer şanzıman ile 10 olmak deneysel koşullar ~ 50 msn maruz kalma süresi bulundu. Tekrar tekrar görüntülenebilir parlak ve fotostabil örnekleri tercih edilir. İstikrarlı leke zaman atlamalı, süper çözülmesi görüntüler için gereklidir.
  9. Gürültü, bir 95MHz okuma hızı (Orta hız seçeneği) ve 2 milisaniye veya daha fazla satın alma süresini azaltmak için tavsiye edilir. Artan eserler örnek satın alma sırasında hareket yeniden görüntülü, elde edilir. Bu etkiler nedeniyle, kısa pozlama olmayan yapışık veya hızlı hareket eden hücreler için tavsiye edilir.
  10. Çok kanallı görüntüleme aynı anda veya sırayla yapılabilir. Sıralı modda verim daha az çapraz konuşma ve böylece tavsiye edilir.
  11. Photobleaching azaltmak için, genellikle ilk uzun uyarma dalga boyları (daha sonra 532 nm, 488 nm ve 410 nm) ile görüntü tavsiye edilir. Bununla birlikte, Şekil 3 'de gösterilen deney sonuçları için, bu sırasını tersine olduBu özel örnek fotostabilite nedeniyle d (yani 48 nm, 532 nm ve 410 nm).
  12. Hücrelerin üst / alt odak dışında biraz kadar mikroskop sahne hareket ettirerek Z-yığın üst / alt limit ayarlayın. Yeniden yazılım varsayılan olarak bu değeri almak gibi her resim arasında istenen mesafe, süper çözünürlük görüntüleme için 0.125 mikron sabit tutulmalıdır.
  13. Softworx (Uygulamalı Hassas, WA) kullanarak görüntü yığınlarının yeniden ve Volocity 6.0 (Perkin Elmer, MA) kullanılarak analiz.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Şekil 1 'de gösterilen görüntü dizisi Otofaji oluşumunun ilk 80 dakika boyunca CWR22 hücrelerinde meydana gelen fiziksel değişiklikleri gösterir. Bu ve diğer çalışmalar (gösterilmemiştir) sürekli olarak gözlenen: uzak hücre merkezine çekirdeğin (1) değiştirme; odak yapışma noktaları (2) azaltılması ve ortasına doğru autophagosomes ve lizozomlar (3) Genel translokasyon Celi. Buna ek olarak, biz de daha sonra noktalarında autophagosomes (yeşil) ve lizozomlar (kırmızı) arasında ko küçük bir artış (sarı bel...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

LC3 karşı floresan problar ile işaretli hücrelerin doğrudan gözlem yaygın otofajik yanıt 6, nicel 3D aynı sistem (yaptığımız gibi) görüntüleme hücresel otofaji karmaşık süreci hakkında benzeri görülmemiş bir bilgi ve ayrıntı sağlayan onaylamak için standart bir yöntem olarak kabul edilirken . Özellikle, canlı hücrelerde autophagosomes yüzlerce (yoksa bin) otofaji indüksiyon 80 dakika içinde oluşur görüyoruz. Benzer şekilde, otofaji indüksiyon sırasında lizozomal bölmeleri dağılımında çok ilginç morfolojik değ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hibe desteği: NIH CA165263, NIH CA150197, NIH CA150197S1 (HJ Kung), NIH CA150197S1 (CA Changou), Biophotonics Bilim ve Teknoloji (DL Wolfson, FYS Chuang), DOD PC073420 (RJ Kalın) için NSF FİZ-0.120.999 Merkezi, Araştırma Norveç Konseyi, Leiv Eiriksson Seyahat Bursu 209286/F11 (BS Ahluwalia). HJ Kung de Auburn Topluluk Kanser Vakfı Fonu'nun desteğiyle kabul eder. RJ Kalın da J. McDonald bağış desteği kabul eder.

Biz ADI cömert temini için Dr Jenny Wei-Jen Kung ve DesigneRx Dr Bor-wen Wu teşekkür ederim.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Arginin Deiminaz (ADI)DesigneRx
HEPESSigmaH4034
KazeinSigmaC5890
ParaformaldehitFisher4042
SaponinSigmaS4521
Alexa anti-fare 555InvitrogenA21422
Alexa anti-tavşan 647InvitrogenA21244
LysoTracker Kırmızı DND-99InvitrogenL7528
anti-Lamp1DSHBH4A3
anti-CadherinHücre Sinyali# 3195
SlowFade GoldInvitrogenS36936
35 mm poli-d-lizin kaplı cam alt plakaMatTekP35GC-1.5-1.4-C
No.1, 22 mm lamelCorning# 2865-22
Mikroskop slaytlarıGlobe Scientific1324G

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kim, R. H., Coates, J. M., Bowles, T. L., McNerney, G. P., Sutcliffe, J., Jung, J. U., Gandour-Edwards, R., Chuang, F. Y., Bold, R. J., Kung, H. J. Arginine deiminase as a novel therapy for prostate cancer induces autophagy and caspase-independent apoptosis. Cancer Res. 69 (2), 700-708 (2009).
  2. Miyazaki, K., Takaku, H., Umeda, M., et al. Potent growth inhibition of human tumor cells in culture by arginine deiminase purified from a culture medium of a Mycoplasma-infected cell line. Cancer Res. 50, 4522-4527 (1990).
  3. Takaku, H., Matsumoto, M., Misawa, S., Miyazaki, K. Anti-tumor activity of arginine deiminase from Mycoplasma argini and its growth-inhibitory mechanism. Jpn. J. Cancer Res. 86, 840-846 (1995).
  4. Levine, B., Klionsky, D. J. Development by self-digestion: molecular mechanisms and biological functions of autophagy. Dev. Cell. 6, 463-477 (2004).
  5. Mizushima, N., Levine, B., Cuervo, A. M., Klionsky, D. J. Autophagy fights disease through cellular self-digestion. Nature. 451, 1069-1075 (2008).
  6. Kabeya, Y., Mizushima, N., Ueno, T. LC3, a mammalian homologue of yeast Apg8p, is localized in autophagosome membranes after processing. EMBO J. 19, 5720-5728 (2000).
  7. Pattingre, S., Espert, L., Biard-Piechaczyk, M., Codogno, P. Regulation of macroautophagy by mTOR and Beclin 1 complexes. Biochimie. 90, 313-323 (2008).
  8. Maiuri, M. C., Criollo, A., Tasdemir, E., et al. BH3-only proteins and BH3mimetics induce autophagy by competitively disrupting the interaction between Beclin 1 and Bcl-2/Bcl-X(L). Autophagy. 3, 374-376 (2007).
  9. Crighton, D., Wilkinson, S., O'Prey, J., et al. DRAM, a p53-induced modulator of autophagy, is critical for apoptosis. Cell. 126, 121-134 (2008).
  10. Dillon, B. J., Prieto, V. G., Curley, S. A., et al. Incidence and distribution of argininosuccinate synthetase deficiency in human cancers: a method for identifying cancers sensitive to arginine deprivation. Cancer. 100, 826-833 (2004).
  11. Dale, B. M., McNerney, G. P., Thompson, D. L., et al. Cell-to-cell transfer of HIV-1 via virological synapses leads to endosomal virion maturation that activates viral membrane fusion. Cell Host & Microbe. 10 (6), 551-562 (2011).
  12. Cogger, V. C., McNerney, G. P., Nyunt, T., et al. Three-dimensional structured illumination microscopy of liver sinusoidal endothelial cell fenestrations. J. Struct. Biol. 171 (3), 382-388 (2010).
  13. York, A. G., Parekh, S. H., Nogare, D. D., et al. Resolution doubling in live, multicellular organisms via multifocal structured illumination microscopy. Nat. Methods. 9 (7), 749-754 (2012).
  14. Gustafsson, M. G. L. Surpassing the lateral resolution limit by factor of two using structured illumination microscopy. Journal of Microscopy. 198, 82-87 (2000).
  15. Shao, L., Kner, P., Rego, E. H., Gustaffson, M. G. Super-resolution 3D microscopy of live whole cells using structured illumination. Nat. Method. 8 (12), 1044-1046 (2011).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Autophagy Analysis3D Fluorescence MicroscopyProstate Cancer CellsFluorescence ImagingImage Analysis SoftwareWidefield DeconvolutionStructured IlluminationAutophagosome LysosomeQuantitative ImagingLive Cell Imaging

Related Articles