Name: Hücresel Daralma miktarının Şikayet Matrisler hazırlanması (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-14T17:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 38 s
Description: Öğrenin, hücresel daralma miktarını ölçmek için uyumlu ekstraselüler matris kaplı substratların nasıl hazırlandığını. Bu yöntem, hücre davranışları üzerindeki etkileri incelemek için çekme kuvveti mikroskobisi kullanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ulrich Schwarz laboratuar hücresel çekiş güçleri ölçümü (Sabass ve ark, 2008) kullanılan hesaplama izleme yazılımı için teşekkür ederiz. Bu çalışma, bir Burroughs Wellcome Kariyer Ödülü ve ML Gardel ve Tıp Scientist Ulusal Araştırma Hizmet Ödülü (5 T32 GM07281) SP Kış NIH Müdürü Pioneer Ödülü (DP10D00354) tarafından desteklenmiştir.

1. Lamel yüzey etkinleştirilmesi <ol><li> Lamelleri (# 1.5, 22x40 mm), temiz ve toz kaldırmak için, daha önce açıklanan bir protokol (Waterman-Storer, 1998) ve etanol sabunla yıkar bir dizi kullanılarak temizlenebilir. </li><li> Paslanmaz çelik tutucu raf yerleştirin lamelleri, öyle ki lamelleri arayla ve değmiyor. </li><li> Kimyasal davlumbaz (nitril eldiven ve gözlük önerilir), kare bir cam tabak (~ 350ml hacmi) doldurmak için nihai bir konsantrasyon için% 2 (2ml silan / 100 ml izopropanol) 3-isopropanol aminopropyltrimethoxysilane tam güç sulandırmak. Plastik ile reaktivite nedeniyle, izopropanol 3-aminopropyltrimethoxysilane uygulamak için bir cam Pasteur pipet kullanın. </li><li> 1.2 'den tam 10 dakika için bu çözüm içine batırmayın lamelleri, davlumbaz bir heyecan plaka üzerinde yavaşça karıştırarak ederken. </li><li> GKD 2 O (4 borsaları su) daldırma lamelleri yıkayın. 10 dakika karıştırma, son alışverişi için zaman iliklerine izin verin. Amino-silan içeren solüsyonlar, tehlikeli atık olarak bertaraf edilmelidir. </li><li> Inkübatör Kuru lamelleri sıcak sıcaklığında (~ 37 ° C), tozsuz bir ortamda 10 dakika. </li><li> Oda sıcaklığında soğutun. </li><li> Davlumbaz, kare bir cam tabak içinde GKD 2 O% 1 glutaraldehid çözüm batırmayın lamelleri, 30 dakika boyunca plaka karıştırın . </li><li> Karıştırma ile GKD 2 O 3 borsaları, döviz başına 10 dakika yıkayın. Glutaraldehid ile tehlikeli atık olarak bertaraf edin. </li><li> Toz lamelleri yapışmasını önlemek için alüminyum folyo ile kaplanmış, oda sıcaklığında kurutun. </li><li> 2 ay kadar tozdan uzak, kuru bir yerde saklayın. </li></ol> 2. Poliakrilamid Hazırlama (PAA) jel <ol><li> Tablo 1,% 40 Akrilamid ve% 2 bis-akrilamid, akrilamid / bis-akrilamid karışımı stok çözümleri hazırlayın. Biz farklı sertlik PAA jeller için optimize edilmiş çok sayıda hisse senedi çözümler korumak; örnekler Tablo 1 ve 2'de listelenmiştir. Stok çözeltiler 4 C'de karanlık bir şişe içinde tutulur sürece, birkaç yıl boyunca muhafaza edilebilir </li><li> Çalışma çözümler akrilamid / bis-akrilamid son istenilen konsantrasyonları içeren stok çözeltileri elde edilir. Örneğin, biz 2.8kPa PAA jeller yapmak için çalışan bir çözüm GKD 2 O% 7.5 acrylamide/0.10% bis-akrilamid hazırlar. </li><li> Degas akrilamid çözümü için bir vakum odasında 20 dakika, PAA polimerizasyon engelleyen çözüm içindeki oksijeni azaltmak için. </li><li> % 10 amonyum persülfat (APS) solüsyonu (0.5g/5mL) hazırlayın. 3 gün içinde yeni bir çalışma stok kullanın. Alternatif olarak, hisse senetleri, daha sonraki tarihlerde kullanılmak üzere dondurularak muhafaza edilebilir. </li><li> Akrilamid gaz alma iken, cam slayt yüzeyini hidrofobik yapmak şiddetle Yağmur-X mendil ile bir 1x3 "mikroskop cam slayt silin. Kapalı, kenara, nemli Kimwipe cam slayt silin. Set cam slayt aşırı Yağmur-X kaldırmak için. </li><li> Akrilamid çözüm vakum odasından çıkarın ve floresan boncuk eklemek (hacimce% 1, Tablo 1'de yer alan çalışma çözümü için 5 ul). 0.75μl TEMED ekleyin ve jel polimerizasyonu başlatır 2.5 ul% 10 APS. Baloncuklar tanıtımı en aza indirmek için ~ 5 saniye boyunca pipetleme iyice karıştırınız. </li><li> Damlacık üstüne 22x40mm lamel aktif hidrofobik mikroskop lamı (adım 2.4 hazırlanan) ve yer akrilamid çözüm 10-12 ul uygulayın. Jel tüm çözüm kat lamel gerekir. Çözümü içinde ortaya çıkabilecek herhangi bir kabarcıkları yumuşatır. ~ 10 dakika süreyle oda sıcaklığında polimerize jel solüsyonu izin verin. </li><li> Polimerizasyon tamamlanması mikrosantrifüj tüp tersini kalan çalışma çözümü ile tespit edilebilir. Ayrıca, polimerize jel lamel kenarları uzak çekin. Makroskopik polimerizasyon görülmektedir hemen sonra, cam slayt lamel ayırın. Ince uçlu bir cımbız ya da jilet kenarı kullanarak, hidrasyon korumak için dikkatli bir şekilde, GKD 2 O mikroskop lamı yüzey ve batırmayın jel, jel takılı lamel kaldırmak. </li></ol> 3. PAA jel ekstrasellüler matriks (ECM) proteinleri Kaplin PAA jel üst yüzey (3.1 ve 3.2) veya jel hacmi (3.3) içinde ECM protein içeren ya ECM protein eklemek için üç ayrı yöntem kullanılabilir. Burada, inkübasyondan sonra 1 saat süreyle 10 mg / ml fibronektin çözüm cam üzerine adsorbe miktarına eşdeğer bir yüzey ligand yoğunluğu sonucu PAA jeller fibronektin kaplin tartışmak. Tartışmaya bir yöntem seçiminde dikkat edilmesi gereken noktalar ayrıntılı olarak açıklanmıştır. <ol><li> Cross-bağlayan proteinler üzerinde Sulfo SANPAH Reaktif aminler PAA jel yüzey ECM protein kovalent çapraz bağlayıcı heterobifunctional Sulfo-SANPAH PAA jel yüzeye bağlı. <ol><li> S çözme Sulfo-SANPAH 40 ul çalışma alikotları hazırlayın susuz dimetil sülfoksit ulfo SANPAH tozu (DMSO) (ul Sulfo-SANPAH başına 20 mg). -80 Az sıvı azot ve mağaza Flash dondurma stokları ° C daha sonra kullanmak için. </li><li> GKD 2 O bir lamel spinner (&lt;2sn) kullanarak jel yüzeyden çıkarın. Jel kurutma kaçının. </li><li> Kullanımdan hemen önce kat jel yüzey (~ 200 ul) GKD 2 O (2mg/ml pH 7) Sulfo-SANPAH-DMSO alikotları sulandırınız. Sulfo-SANPAH reaktivite yarılanma ömrü oda sıcaklığında su (~ 5 dk) kısa olduğunu unutmayın; bu nedenle, bu adımları hızlı bir şekilde yapılmalıdır. </li><li> UV çapraz bağlayıcı fırında (1.5 dakika süreyle 2-3 santim mesafe 8W, 254 nm dalga boyu) UV ışığı jel yüzey Açığa. Sulfo-SANPAH turuncu ve kahverengi renk değişikliği. </li><li> Dip UV-tedavi taze GKD 2 O ile beher lamelleri ve lamel spinner (&lt;2sn) kullanarak jel yüzey aşırı su çıkarmak. </li><li> Pipet ~ Parafilm Petri kabı kapta soğuk 1mg/ml Fibronektin (FN) (PBS, pH 7.4) 50 mcL. FN damla üst lamel haricindekileri, jel tarafı FN maruz. </li><li> 4 ° C gecede 1-2 saat veya oda sıcaklığında reaksiyona girer. </li><li> PBS (pH 7.4) içeren 6 cm doku kültürü yemekleri Yeri lamelleri, yeterli doku kültürü kaput steril koşullar altında, lamel kapsayacak. </li><li> PBS (pH 7.4) steril koşullar altında birkaç yıkar (3-5), iyice yıkayın. </li><li> 30 dakika süreyle doku kültürü kaput antiseptik lamba kullanımı lamelleri sterilize edin. </li><li> Kaplama hücrelerine önce 30-45 dakika süreyle cep medya lamelleri inkübe edin. </li></ol></li><li> Çapraz bağlantı ECM okside proteinler üzerinde hidrazin hidrat Karbonhidrat gruplar tarafından PAA jel yüzey ve hidrazin hidrat ile jel akuple. <ol><li> 2. bölümünde açıklandığı gibi poliakrilamid jeller hazırlayın. </li><li> Davlumbaz plastik Petri kabı ve eldiven kullanarak yerleştirin PAA jel lamelleri her PAA jel ve inkübe yüzeye en az iki saat süreyle, yaklaşık 1 ml sulandırılmamış hidrazin hidrat pipet, ama 24 saatten daha uzun </li><li> Petri kabı GKD 2 O, hidrazin hidrat çözüm çıkarın ve tehlikeli atık olarak imha ediniz . </li><li> Lamel batırmayın Petri kabı% 5 asetik asit ekleyin. Kapak ve bir saat süreyle inkübe edin. </li><li> Asetik asit çıkarın ve GKD 2 O. ile yıkayın GKD 2 O bir saat süreyle inkübe edin. Lamelleri artık etkin ve çapraz bağ Fibronektin (FN) okside hazırız. </li><li> Son bir 10 mg / ml konsantrasyon, 10 ul 940 ul karanlık bir mikro santrifüj tüpüne 50 mM sodyum asetat tamponu (pH 4.5) 1 mg / ml FN çözüm sulandırınız. </li><li> 50 mM sodyum asetat tamponu (pH 4.5) 1 ml 80 mg sodyum meta-periyodat ekleyerek 20X sodyum meta-periyodat stok olun. </li><li> Meta-periyodat stok 20X sodyum 50 ul 3.2.6 hazırlanan FN çözümü, bu son çalışma konsantrasyonu 10 mcg / ml FN ve 4 mg / ml sodyum meta-periyodat. 30 dakika boyunca oda sıcaklığında karanlık bir tüp içinde inkübe edin. </li><li> Lamel spinner (&lt;2 sn) kullanarak 3.2.5 hazırlanan jel yüzey aktif fazla GKD 2 O çıkarın. Jel kurutma kaçının. </li><li> Pipetleyin ~ FN çözümü üzerine oda sıcaklığında 1 saat boyunca aktif jel yüzey ve inkübe 500 ul. </li><li> PBS (pH 7.4) içeren yemekler Yeri lamelleri, lamel kapağı için yeterli. </li><li> PBS birkaç yıkar (3-5) (pH 7.4) ile iyice yıkayın. </li><li> 30 dakika süreyle doku kültürü kaput antiseptik lamba kullanımı lamelleri sterilize edin. </li><li> Kaplama hücrelerine önce 30-45 dakika süreyle cep medya lamelleri inkübe edin. </li></ol></li><li> Toplu konjugasyon akriloil-X PAA jel ECM protein, succinimidyl ester Bu protokol 2.5 önce yapılır. Proteinlerin reaktif aminler NHS ester, kimya ile bir akrilamid monomer birleştiğinde ve sonra PAA jel dökme içine ko-polimerize. <ol><li> Akriloil-X, üreticinin talimatlarına göre tercih Konjugat ECM protein. Stok çözümler konjuge protein 4 saklanmalıdır ° C </li><li> PAA jel fabrikasyon (örneğin lamel ortalama 10 uL) için gerekli çalışma çözeltisi hacmi hesaplayın. </li><li> Tablo 1'de çalışma çözüm tarifi listelenen miktar su (örneğin% 10 hacmi) 50 mcL çıkarma ve polimerizasyon başlatabilir. </li><li> 3.3.2 'de hesaplanan ses çıkarın ve% 10 hacim ECM / akriloil-X çözümü eklemek. (Örneğin 1 mcL PAA 9 mcL ECM / akriloil-X). Jel polimerize Bu adım, hızla yapılmalıdır. </li><li> 2.6 ve 2.7 adımları tamamlayın daha önce açıklandığı gibi. </li><li> PBS (pH 7.4) steril koşullar altında birkaç yıkar (3-5), iyice yıkayın. </li><li> 30 dakika süreyle doku kültürü kaput antiseptik lamba kullanımı lamelleri sterilize edin. </li><li> Kaplama hücrelerine önce 30-45 dakika süreyle cep medya lamelleri inkübe edin. </li></ol></li></ol>konfokal görüntüleme odasına le "&gt; 4. lamel Bu adımlar, hücreleri ECM-kaplı jel substrat (~ 6-12 saat) yayılmasına izin edildikten sonra yapılır. Konfokal görüntüleme odası (RC-30WA) bir araya getirmek için, rehberlik için Warner Instruments web sitesine bakın yararlı. <ol><li> Sıcak hücre medya ve% 0,5 veya% 0.25 tripsin ve yük 5ml veya 10ml şırınga içine. </li><li> Lamel yerinde tutmak için vakum yağ kullanarak bir Warner Instruments konfokal görüntüleme odası (RC-30WA) Top lamel sahibinin üzerine bir 22x30mm lamel yükleyin. </li><li> Giriş ve çıkış polietilen boru erişim sağlayan, lamel üstüne kauçuk conta oluşturan bir odaya yerleştirin. Bu üst lamel ve kullanılan conta boyutuna bağlı olarak jel kaplı 22x40mm lamel, 150-1000 mm arasında bir boşluk sağlayacaktır. </li><li> Konektörü kiti ve medya tüp yoluyla ve Top lamel üzerine akar ve hava kabarcığı akış hatları belirgin olduğunu kontrol yoluyla giriş boru üzerine Yük şırıngalar,. </li><li> Odasının taban ve hücre tarafı kadar yük jel kaplı 22x40mm lamel üzerine vakum gres yağı uygulayın. Sıcak medya hücrelere uygulayın. </li><li> Odası Conta jel kaplı lamel ayıran oda tabanına yerleştirin lamel tutucu,. Odanın tabanı içinde Konumlandırılması Pins Top lamel Konumlandırılması Delik içinde oturup emin olun. </li><li> Basınç odasının tabanına Plaka uygulayın ve vida ve Basınç Plaka güvenli Basınç Plaka Anahtarı. </li><li> Odanın içinde herhangi bir olası sızıntıları izlemek için tüp ve oda ile medya akışını kontrol edin ve hücre yüzeyinde herhangi bir medya-serbest bölgeler ortadan kaldırmak için. Not: medya ile beslerken hafif bir vakum çekmek için küçük bir iğne kullanarak, medya-serbest bölgeler ortadan kaldırmaya yardımcı olabilir. </li><li> Görüntüleme için bir mikroskop sahibi içinde yer alan Sahne Adaptörü konfokal görüntüleme odasının uygulayın. </li><li> Resim floresan etiketli konfokal bir floresan mikroskop jel substrat içinde gömülü protein ve floresan boncuk. </li><li> Jel içinde yapmacıksız boncuk bir görüntü elde etmek için, jel hücresel yapışıklıklar ayırmak için tripsin serpmek ve floresan boncuklar hücre yapıştırılmış aynı görüntüleme alanında bir görüntü çekmek. Gergin ve yapmacıksız boncuk pozisyonların karşılaştırılması daralma altında jel substrat deplasman ölçümü için izin verir. </li></ol> Temsilcisi Sonuçlar: Yukarıdaki protokol hücre kontraktilite çalışmak için uyumlu PAA jeller hazırlamak için deneysel prosedürü açıklar ve Şekil 1'de gösterilmiştir. Bu protokol ile elde edilen jel yüzeyi boyunca eşit gömülü floresan boncuk (Şekil 2A), nispeten düz ve pürüzsüz. , Odak yapışıklıklar konumu, hücre görüntüleme (Şekil 3A) ve jel yüzey (Şekil 3B) jel daralma, odak yapışıklıkların konfokal optik düzlemde ölçüm yapılması gerekir. Hücreleri yapışık (gergin) karşı müstakil (yapmacıksız) bir jel daralma gömülü floresan boncuk deplasman (Şekil 3B) jel yüzeyi ile görülebilmesi. Hesaplama algoritmaları kullanmak jel boncuk deplasman ve buna karşılık gelen elastik modülü (Şekil 3C ve 3D) (Sabass ve ark, 2008) ile ilişkili çekiş vurguluyor verebilmesidir. Görüntüleme jel içinde derin bir yer alırsa, o zaman boncuk değiştirmeler odak yapışıklıklar uygulanan çekiş güçleri temsilcisi küçük olmalıdır ve olacaktır. <img src="/files/ftp_upload/2173/2173fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1 deney düzeneği şematik gösterimi. Bu prosedürün genel amacı, hücresel daralma eğitim amaçlı uyumlu matrisler oluşturmak için. Deneysel işlemin polimerize jeller ankraj amaçlı amino-silane/glutaraldehyde tedavisi lamelleri etkinleştirmek için ilk adım. İkinci adım, aktif lamel üzerine, floresan boncuklar içeren bir poliakrilamid jel polimerize. Üçüncü adım, kimyasal içerir çapraz bağlayarak, 3. adımda listelenen üç kaplin teknikleri birini kullanarak, poliakrilamid jel yüzey ekstrasellüler ligand. Hücreler daha sonra, jel üzerine kaplama ve yapışır ve yaymak için izin verilir. Aktif hücresel daralma altında, jel gömülü boncuk yerinden. <img src="/files/ftp_upload/2173/2173fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2 PAA jel üst yüzeyi Optik konfokal dilim gibi (A) floresan 40nm jel içinde gömülü boncuk ve (B) fibronektin immünofloresan tarafından görüntülendi. <img src="/files/ftp_upload/2173/2173fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3 bir çekiş kuvveti deney için Temsilci sonucu. (A) bir insan osteosarkom U2OS hücre Odak yapışıklıklar mGFP-paxillin ve (B), gergin (yeşil) ve yapmacıksız (kırmızı) odak yapışıklıklar altında yatan PAA jel gömülü floresan boncuk pozisyonları arked. Oklar boncuk yerinden örnekler göstermektedir. (C) Çekiş stres vektörler ve çekiş (D.) karşılık gelen ısı ölçekli harita hesaplama algoritmaları kullanarak (Sabass ve ark, 2008), jel daralma türetilen vurguluyor. Ölçek çubuğu = 5 mm. Tablo 1: Örnek Stok ve PAA Çözümleri (Tablo 1 Veri Yeung ve ark. Arkadaşlarının elde edilen ilk ve bağımsız bizim laboratuar olarak teyit edildi. ) <table border="1"><tbody><tr><td colspan="5"> Stok PAA Çözümü </td></tr><tr><td> PAA Gel Kayma Modülü (Pa) </td><td> 230 </td><td> 2833 </td><td> 8640 </td><td> 16344 </td></tr><tr><td> % 40 Akrilamid (mL) </td><td> 1,25 </td><td> 3,12 </td><td> 2,34 </td><td> 2,50 </td></tr><tr><td> % 2 Bis-Akrilamid (mL) </td><td> 0,50 </td><td> 0,83 </td><td> 1,88 </td><td> 0,60 </td></tr><tr><td> Su (ml) </td><td> 3,25 </td><td> 1,04 </td><td> 0,78 </td><td> 1. 90 </td></tr><tr><td> Toplam Hacim (ml): </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr></tbody></table> <table border="1"><tbody><tr><td colspan="5"> Çalışma PAA Çözümü </td></tr><tr><td> Stok Çözüm İkinci el (Pa) </td><td> 230 </td><td> 2833 </td><td> 8640 </td><td> 16344 </td></tr><tr><td> Stok Çözüm Cilt (mcL) </td><td> 150 </td><td> 150 </td><td> 200 </td><td> 300 </td></tr><tr><td> Su (mcL) </td><td> 341,75 </td><td> 341,75 </td><td> 291,75 </td><td> 191,75 </td></tr><tr><td> Boncuk (mcL) </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> TEMED (mcL) </td><td> 0,75 </td><td> 0,75 </td><td> 0,75 </td><td> 0,75 </td></tr><tr><td> % 10 APS (mcL) </td><td> 2,5 </td><td> 2,5 </td><td> 2,5 </td><td> 2,5 </td></tr><tr><td> Toplam Hacim (mcL): </td><td> 500 </td><td> 500 </td><td> 500 </td><td> 500 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Final Akrilamid% </td><td> 3 </td><td> 7,5 </td><td> 7,5 </td><td> 12 </td></tr><tr><td> Final Bis-Akrilamid% </td><td> 0,06 </td><td> 0,1 </td><td> 0,3 </td><td> 0,15 </td></tr></tbody></table> Tablo 2: PAA yüzeylerde çeşitli nihai Akrilamid ve bis-akrilamid yüzdelerini Shear Modülü <table border="1"><tbody><tr><td colspan="2"> 12% Akrilamid </td><td></td><td colspan="2"> 7.5% Akrilamid </td></tr><tr><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td><td></td><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td></tr><tr><td> 0,145 </td><td> 16344 </td><td></td><td> 0,01 </td><td> 689 </td></tr><tr><td> 0,28 </td><td> 30067 </td><td></td><td> 0,03 </td><td> 1535 </td></tr><tr><td> 0,45 </td><td> 34263 </td><td></td><td> 0,05 </td><td> 2286 </td></tr><tr><td> 0,55 </td><td> 42375 </td><td></td><td> 0,075 </td><td> 2833 </td></tr><tr><td> 0,575 </td><td> 50873 </td><td></td><td> 0,1 </td><td> 4069 </td></tr><tr><td> 0,6 </td><td> 55293 </td><td></td><td> 0,2 </td><td> 5356 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 0,3 </td><td> 8640 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> 5% Akrilamid </td><td></td><td colspan="2"> 3% Akrilamid </td></tr><tr><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td><td></td><td> % Bis-Akrilamid </td><td> Kayma Modülü (Pa) </td></tr><tr><td> 0,05 </td><td> 430 </td><td></td><td>0,02 </td><td> 1,3 </td></tr><tr><td> 0,075 </td><td> 600 </td><td></td><td> 0,04 </td><td> 54 </td></tr><tr><td> 0,1 </td><td> 1431 </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

<ol><li>Damljanovic, V., Lajerholm, B. C., Jacobson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bulk+and+micropatterned+conjugation+of+extracellular+matrix+proteins+to+characterized+polyacrylamid+substrates+for+cell+mechanotransduction+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Bulk and micropatterned conjugation of extracellular matrix proteins to characterized polyacrylamid substrates for cell mechanotransduction assays.</a> Biotechniques. 39 (6), 847-851 (2005).</li>
<li>Engler, A., Bacakova, L. N. ewman, Hategan, C., Griffin, A., M, D. D. ischer <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substrate+compliance+versus+ligand+in+cell+on+gel+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Substrate compliance versus ligand in cell on gel responses.</a> Biophys J. 86 ((1 Pt 1)), 617-628 (2004).</li>
<li>Gardel, M. L., Sabass, B., Ji, L., Danuser, G., Schwarz, U. S., Waterman, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Traction+stress+in+focal+adhesions+correlates+biphasically+with+actin+retrograde+flow+speed%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Traction stress in focal adhesions correlates biphasically with actin retrograde flow speed.</a> J Cell Biol. 183, 999-1005 (2008).</li>
<li>Rajagopalan, P., Marganski, W. A., Brown, X. Q., Wong, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+comparison+of+the+spread+area%2C+contractility%2C+and+migration+of+balb%2Fc+3T3+fibroblasts+adhered+to+fibronectin-+and+RGD-modified+substrata%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Direct comparison of the spread area, contractility, and migration of balb/c 3T3 fibroblasts adhered to fibronectin- and RGD-modified substrata.</a> Biophys J. 87 (4), 2818-2827 (2004).</li>
<li>Reinhart-King, C. A., Dembo, M., Hammer, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dynamics+and+mechanics+of+endothelial+cell+spreading%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">The dynamics and mechanics of endothelial cell spreading.</a> Biophys J. 89, 676-689 (2005).</li>
<li>Stricker, J., Sabass, B., Schwarz, U. S., Gardel, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+traction+force+microscopy+for+micron-sized+focal+adhesions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Phys%3A+Condensed+Matter%22%5BJournal%5D)">Optimization of traction force microscopy for micron-sized focal adhesions.</a> J. Phys: Condensed Matter. 22, 194104-194114 (2010).</li>
<li>Sabass, B., Gardel, M. L., Waterman, C. M., Schwarz, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+traction+force+microscopy+based+on+experimental+and+computational+advances%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">High resolution traction force microscopy based on experimental and computational advances.</a> Biophys J. 94, 207-220 (2008).</li>
<li>Yeung, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+substrate+stiffness+on+cell+morphology%2C+cytoskeletal+structure%2C+and+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Motil+Cytoskeleton%22%5BJournal%5D)">Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion.</a> Cell Motil Cytoskeleton. 60 (1), 24-34 (2005).</li>
<li>Waterman-Storer, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microtubule%2Forganelle+motility+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Microtubule/organelle motility assays.</a> Curr Protoc Cell Biol. , 13.1.1-13.1.21 (1998).</li>
</ol>

Bu prosedür, hesaplama izleme rutinleri (Sabass ve ark, 2008) uygulanması ile birlikte, kurulum için bir çekim gücü mikroskobu (TFM) deneyi burada açıklanan mikron ölçekli mekansal çözünürlüğe sahip cep güçlerinin ölçümü için izin verir . Deney protokolünde optimize etmek için, ECM ligand tekdüze kaplama ile saf ve düzgün bir jel substrat oluşturmak için kritik öneme sahiptir. Aşağıda potansiyel tuzaklar tartışın: Üniform Olmayan Jel Yüzey veya Tears: Deney...

<table><tbody><tr><td>3-aminopropiltimetoksisilan</td><td>Aldrich</td><td>28, 177-8</td><td></td></tr><tr><td>%40 Akrilamid</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0140</td><td></td></tr><tr><td>%2 Bis-akrilamid</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1404</td><td></td></tr><tr><td>TEMED</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP 150-20</td><td></td></tr><tr><td>Amonyum persülfat</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP179</td><td></td></tr><tr><td>40nm floresan mikroküreler</td><td>Invitrogen</td><td>F8789</td><td></td></tr><tr><td>Sulfo-SANPAH</td><td>Pierce, Thermo Scientific</td><td>22589</td><td></td></tr><tr><td>Konfokal görüntüleme haznesi (RC-30)</td><td>Warner Instruments</td><td>64-0320</td><td></td></tr><tr><td>Lamel döndürücü</td><td>Ev yapımı</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Ultraviyole lamba CL1000</td><td>UVP Inc.</td><td>95-0228-01</td><td></td></tr><tr><td>Paslanmaz çelik raf</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>72239-04</td><td></td></tr><tr><td>akriloil-X, SE (6-((akriloil)amino)hekzanoik asit)</td><td>Invitrogen</td><td>A-20770</td><td></td></tr><tr><td>Hidrazin hidrat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>225819</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum meta-periyodat</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>20504</td><td></td></tr><tr><td>İzopropanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>A416-4</td><td></td></tr><tr><td>Fibronektin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2006</td><td></td></tr><tr><td>Kolajen</td><td>BD Biosciences</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>Lamel (#1.5)</td><td>Corning</td><td>2940&amp;#8208;224</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldehit</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>16120</td><td></td></tr><tr><td>Rain-X</td><td>SOPUS Products</td><td>www.rainx.com</td><td></td></tr><tr><td>Asetik Asit</td><td>Acros Organics</td><td>64-19-7</td><td></td></tr></tbody></table>

hücresel daralma miktarının Şikayet matrisler hazırlanması

Preparation of Complaint Matrices for Quantifying Cellular Contraction

Ekstrasellüler matriks (ECM) hücresel adezyon düzenlenmesi, hücre göçü ve ECM yeniden şekillenme için esastır. Odak yapışıklıklar makromoleküler meclisleri olduğunu çift ECM kontraktil F-aktin hücre iskeletinin. Bu bağlantı, hücre zarından substrate altında yatan, hücre içi mekanik güçlerin iletim sağlar. Son çalışmalar, ECM mekanik özellikleri, fokal adezyon ve F-aktin morfolojisi yanı sıra, hücre farklılaşması, bölünmesi, çoğalması ve göçü de dahil olmak üzere çok sayıda fizyolojik süreçleri düzenleyen göstermiştir. Böylece, hücre kültürü yüzeylerin kullanımı tam olarak kontrol ve ECM mekanik özellikleri modüle giderek daha yaygın bir yöntem haline gelmiştir. Yapışık bir hücrede fokal yapışıklıklar çekiş kuvvetleri ölçmek için bir yöntem olarak adlandırılan çekim gücü mikroskobu (TFM) yüksek çözünürlüklü görüntüleme ve hesaplama teknikleri ile birlikte, uyumlu substratlar kullanılır. Bu teknik, hücresel daralma sonucu substrat deformasyonların yerel büyüklüğü ve yönü ölçümleri dayanmaktadır. Floresan etiketli proteinlerin yüksek çözünürlüklü floresan mikroskobu ile birlikte, sitoskeletal organizasyon ve yeniden yapılanma çekiş güçleri ile ilişkilendirilmesi mümkün. Burada iki boyutlu hücresel daralma ölçmek için uygun bir iyi karakterize, ayarlanabilir mekanik sertlik, bir hücre kültürü substrat yaratma amaçlı, uyumlu matrislerin hazırlanması için ayrıntılı bir deney protokolünde mevcut. Bu protokoller poliakrilamid hidrojeller imalat, kaplama gibi jeller ECM proteinleri, jeller kaplama hücreleri, ve perfüzyon odasının kullanarak yüksek çözünürlüklü konfokal mikroskopi içerir. Buna ek olarak, veri atıf TFM protokolleri kullanarak hücresel güçlerinin konumu ve büyüklüğü gösteren temsili bir örnek sağlar.

Bu video, hücre kültürü için uygun, uyumlu, ekstrasellüler matriks (ECM) kaplanmamış maddeler imal etmek için kullanılan deneysel teknikler göstermek ve çekiş gücü mikroskopi için uygun ve hücre davranışı üzerindeki etkilerinin gözlenmesi ECM sertlik.

Hücresel Daralma miktarının Şikayet Matrisler hazırlanması

Hücrelerin hücre dışı matrikse (ECM) adezyonunun düzenlenmesi, hücre göçü ve ECM yeniden şekillenmesi için esastır. Fokal adezyonlar...

Bu prosedürün genel amacı, hücresel kasılmayı modüle etmek ve nicelleştirmek için uygun matrisler oluşturmaktır. Bu işlem, öncelikle matrisin tutunmasını sağlamak amacıyla bir lamelin aktive edilmesiyle gerçekleştirilir. Prosedürün ikinci adımı, aktive edilmiş lamel üzerine bir poliakrilamid jel polimerize etmektir.Prosedürün üçüncü adımı, hücrelerin jel üzerine ekilmesi ve yapışmalarının sağlanmasıdır. Prosedürün son adımı ise, traksiyon kuvveti mikroskopi protokolleri ile analiz edilecek verileri üretmek amacıyla jelin görüntülenmesidir. Nihayetinde, traksiyon kuvveti mikroskopisi aracılığıyla hücrelerin matrislerine traksiyon kuvvetleri uyguladığını gösteren sonuçlar elde edilebilir.Merhaba, ben Chicago Üniversitesi Fizik Bölümü ve Biyofiziksel Dinamikler Enstitüsü'ndeki Margaret ELL laboratuvarından Yvonne Eons. Ben de yine Guard laboratuvarından Steven Winter. Bugün size, hücresel kontraksiyonu ölçmek için uyumlu matrislerin hazırlanma prosedürünü göstermek istiyoruz.Laboratuvarımızda kasılabilen aktin miyozin ağlarını incelemek için bu prosedürleri kullanıyoruz. Öyleyse başlayalım. Lamel aktivasyonu öncesinde, daha önceden birkaç adet 22 by 40 mm numara 1.5 lamel yerleştirilmişti.Lamellerin aralıklı olması ve birbirine değmemesi için paslanmaz çelik bir rack içinde %70 etanol ile durulayın. Kimyasal çeker ocakta çalışarak, kare bir cam kap içerisinde izopropanol ile %2 three or minor profile trimeth çözeltisi hazırlayın. Three or minoro profile eklemek için cam pastör pipeti kullanın.Plastik ile reaksiyona girme özelliği nedeniyle Trimeth oxy çözeltisi içerisinde, çeker ocaktaki bir manyetik karıştırıcı üzerinde karıştırarak lamelleri tamamen daldırın ve 10 dakika boyunca inkübe edin. Lamelleri ıslattıktan sonra, çift distile su içerisine daldırarak yıkayın. Son değişimden sonra suyu dört kez yenileyin.Karıştırma işlemiyle birlikte 10 dakika boyunca bekletin. Ardından lamelleri yaklaşık 37 °C sıcaklıktaki bir inkübatörde 10 dakika boyunca kurutun. Kuruduktan sonra oda sıcaklığına gelmelerini bekleyin.Lamelleri, çift distile su içerisinde hazırlanmış %1'lik Glutaraldehit çözeltisine daldırın. Bu işlemi, manyetik karıştırıcı üzerindeki kare cam bir kapta 30 dakika boyunca gerçekleştirin. Temiz bir kap kullandığınızdan emin olun.Aksi takdirde, çözelti sonrasında bulanık görünebilir. Lamelcikleri, her biri 10 dakika süren ve karıştırma işlemi uygulanan üç kez çift distile su değişimi ile yıkayın. Ardından, tozdan kaçınmak için lamelcikleri alüminyum folyo ile örtün ve oda sıcaklığında kurutun.Kuruduktan sonra lamelleri, tozdan uzak ve kuru bir yerde iki aya kadar saklayın. Poliakrilamid veya PAA jelini hazırlamak için öncelikle, RI protokolünde açıklandığı şekilde %40 akrilamid ve %2 bis akrilamidden oluşan Akrilamid bis stok çözeltilerini hazırlayın.DGAs, akrilamid çözeltisini bir vakum odasında 20 dakika boyunca bekletir. Bu işlem, polimerizasyonu engelleyen jel içindeki oksijeni azaltır. Bu sırada, %10'luk amonyum persülfat veya bir PS çözeltisi hazırlayın.Ardından, cam lam yüzeyini hidrofobik hale getirmek için bir inç çarpı üç inç boyutundaki mikroskop lamlarını Rain X mendillerle silin. Pürüzsüz bir jel yüzeyi sağlamak için herhangi bir tozu Kim wipe ile temizleyin. Lamı alüminyum folyo ile kapatın ve kenara ayırın.Ardından akrilamid çözeltisini vakum odasından çıkarın ve floresan boncuklar ekleyin. Jel polimerizasyonunu başlatmak için 0.75 µL TM E ve 2.5 µL %10a PS ekleyin. Çözeltiyi pipetleme yöntemiyle kısa süreli karıştırın. Sonra, 10 ila 12 µL akrilamid çözeltisini daha önce hazırlanmış olan hidrofobik mikroskop lamına uygulayın.Aktive edilmiş 22 by 40 milimetrelik bir lamelini damlanın üzerine yerleştirin. Jel çözeltisi tüm lameli kaplamalıdır. Çözelti içerisinde oluşabilecek hava kabarcıklarını düzeltin.Jel solüsyonunun oda sıcaklığında yaklaşık 10 dakika boyunca polimerize olmasına izin verin. Polimerizasyon gerçekleştiğinde, jel lamelin kenarından ayrılacaktır. Bir cımbızın ince ucuyla, jelin yapışık olduğu lameli mikroskop lamı yüzeyinden dikkatlice kaldırın.Ekstraselüler matriks veya ECM proteinini jele çapraz bağlamak için jel yüzeyinin hidrate kalmasını sağlamak amacıyla, jeli çift distile su içeren bir Petri kabına daldırın. İlk olarak, SULF san par tozunu susuz dimetil sülfoksit veya DMSO içinde çözerek 40 µL'lik çalışma alikotları hazırlayın. Ardından, lamel döndürücümüzü kısa bir süre kullanarak jel yüzeyindeki çift distile suyu uzaklaştırın.Kullanımdan hemen önce jelin kurumamasına dikkat edilmelidir. Sülfür sampa DMSO alikotları çift distile su ile seyreltilir ve jel yüzeyinin merkezi yaklaşık 200 µL ile kaplanır. Ardından, jel yüzeyi bir UV çapraz bağlayıcı fırında UV ışığına maruz bırakılır.UV maruziyetinin ardından, lamelleri taze çift distile su içeren bir beherin içine daldırın. Bir lamel döndürücü kullanarak jel yüzeyindeki tüm solüsyonu uzaklaştırın. Ardından, paramı bir Petri kabına yerleştirin ve paramın üzerine 50 microliters soğuk fibronektin damlatın.Lamelin yönünü ters çevirin ve jel tarafını fibronectinin üzerine yerleştirin. Lamellerin oda sıcaklığında bir ila iki saat veya dört derece Celsius'ta gece boyunca reaksiyona girmesini bekleyin. İnkübasyonu steril bir doku kültürü havalandırmalı kabininde gerçekleştirin.Lamelleri kaplamak için PBS içeren altı santimetrelik doku kültürü kaplarına yerleştirin. Yıkama işleminin ardından, steril koşullar altında birkaç kez PBS değişimi yaparak lamelleri kapsamlı bir şekilde yıkayın. Lamelleri 30 dakika boyunca UV işlemi ile sterilize edin.Ardından, hücre ekimi öncesinde lamelleri 30 ila 45 dakika boyunca hücre besiyerinde inkübe edin. Sonrasında, lamelin sabit kalmasını sağlamak için vakum gresi kullanarak, 22 x 30 milimetrelik lameli bir Warner Instruments konfokal görüntüleme odasının üst lamel tutucusuna yerleştirin. Hem giriş hem de çıkış polietilen tüplerine erişim sağlayacak şekilde, lamelin üzerine oda oluşturucu bir kauçuk contayı yerleştirin.Bu işlem, kullanılan contanın boyutuna bağlı olarak, üst lamel ile jel kaplı 22 by 40 milimetrelik lamel arasında 150 ile 1000 mikron arasında bir boşluk oluşmasını sağlayacaktır. Ardından, sıcak hücre besiyeri içeren şırıngaları konnektör kiti aracılığıyla giriş borusuna yerleştirin ve besiyerinin boru boyunca akarak üst lamel üzerine ulaştığını kontrol edin. Oda tabanına vakum gresi uygulayın ve jel kaplı 22 by 40 milimetrelik lamelin hücre yüzeyi yukarı gelecek şekilde yerleştirin.Ilık medyumu hücrelere uygulayın. Üst lam tutucuyu, oda contalarının onu jel kaplı lamdan ayırmasını sağlayacak şekilde oda tabanına yerleştirin. Oda tabanındaki konumlandırma pimlerinin, üst lamdaki konumlandırma deliklerine oturduğundan emin olun.Basınç plakasını hazne tabanına yerleştirin ve basınç plakasını vidalayarak sabitlemek için basınç plakası anahtarını kullanın. Hazne içinde herhangi bir sızıntı olup olmadığını izlemek için tüpler ve hazne boyunca medya akışını kontrol edin. Ayrıca, hücre yüzeyinde medyasız bölgeler kalmadığından emin olun.Konfokal floresan mikroskobunda jel alt tabakasına gömülü floresan işaretli proteinlerin ve floresan boncukların görüntüsünü almak ve jel perfüzyonu içindeki gerilmemiş boncuk konumunun görüntüsünü elde etmek için konfokal görüntüleme odasını, mikroskop tutucu içindeki sahne adaptörüne yerleştirin. Hücresel adezyonları jelden ayırmak için işlem yapın ve hücrelerin bulunduğu aynı görüntüleme alanındaki floresan boncukların görüntüsünü alın. Protokol doğru şekilde uygulandığında, jel yüzeyi nispeten düz ve pürüzsüz olacak ve floresan boncuklar her yere eşit şekilde gömülmüş olacaktır.ECM ayrıca fibronectin immünofloresansı ile de görselleştirilebilir. Odaksal yapışma bölgelerinde jel kontraksiyonu ölçülüyorsa, jel ve hücrelerin görüntülemesi odaksal yapışmaların konfokal optik düzleminde yapılmalıdır. Burada, GFP pxi ile işaretlenmiş bir insan osteosarkom veya U2 OS hücresindeki çekim kuvveti deneyinde odaksal yapışmalar görselleştirilmiştir.Bir jelin büzülmesi, gömülü floresan boncukların fokal adezyonların altındaki yer değiştirmesiyle görselleştirilebilir. Yeşil renkteki gerilmiş boncukların, kırmızı renkteki gerilmemiş boncuk konumlarıyla karşılaştırılması, büzülme altındaki jel substrat yer değiştirmesinin nicelleştirilmesine olanak tanır; burada, tripsin ile jel yüzeyinden ayrılan yayılmış bir hücrenin temsilci bir sonucu yer almaktadır. Burada, gerilmiş ve gerilmemiş boncuk konumlarının karşılaştırılmasına ilişkin temsilci bir sonuç yer almaktadır.Gelişmiş hesaplama algoritmalarının kullanımı, boncuk yer değiştirmesi ve jellerin elastik modülü ile ilişkili çekme streslerini ortaya çıkarabilir. Bu stresler burada, ısı haritasındaki daha sıcak renklerin ve daha büyük okların daha güçlü kuvvetleri belirttiği bir ısı ölçeği haritası ve vektörlerle görselleştirilmiştir. Bu prosedürü uygularken, hücresel kontraksiyonu ölçmek için nasıl uyumlu matrisler hazırlayacağınızı az önce göstermiş olduk.Zamana duyarlı adımların hızla gerçekleştirilebilmesi için önceden planlama yapmak önemlidir. Hepsi bu kadar. İzlediğiniz için teşekkürler ve deneylerinizde başarılar dileriz.

preparation-of-complaint-matrices-for-quantifying-cellular-contraction

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Biz invadopodia aracılı matriks yıkımı görselleştirmek için floresan jelatin kaplı mikroskop lamelleri üretmek için prototip yöntem açıklanmaktadır. Mevcut yazılımını kullanarak hesaplama teknikleri karışık bir popülasyon içindeki ve bütün mikroskobik alanı kapsayan çok hücreli grupları için tek hücreler ile matris proteolizin sonuç seviyeleri ölçülmesi için sunulmuştur.

Tek ve Çok hücreli Bağlamlarda Invadopodia aracılı Ekstrasellüler Matriks Proteoliz Kantitatif Ölçümü

Bu videoda, elektrik hücresi-substrat empedans algılama veya ECIS kullanılarak aort düz kas hücresi (SMC) kasılmasının ölçümü açıklanmaktadır. ECIS, hücrelerin hareketini ölçer ve kasılmaları ölçmek için güvenilir bir yöntemdir.

SMC Kasılmasının İn Vitro Olarak Ölçülmesi: Elektrik Hücresi-Substrat Empedans Algılama Kullanarak Düz Kas Hücrelerinin Kasılmasını Değerlendirmek İçin İnvaziv Olmayan Bir Yöntem

Bu protokol, in vitro kas hücrelerinin kasılma ölçmek için esnek kültür yüzeyleri olarak mikro silikon konsolun kullanımını tarif etmektedir. Hücresel kasılması, ölçülen kaydedilen ve in vitro kontraktil fonksiyon ölçmek için non-invazif ve ölçeklenebilir sisteminin temin edilmesiyle, kuvvet çıktılan dönüştürülebilir dirsekli bükme neden olur.

Mikro Silikon konsolun Kullanımı Hücresel kasılma fonksiyonunu değerlendirmek için İn Vitro

Burada, epitelyal-mezenkimal geçiş geçiren mezenkimal hücrelerde kasılma fonksiyonunu değerlendirmek için bir jel kasılma testinin geliştirilmesini ve uygulanmasını açıklıyoruz.

Bir Gelişimi<em&gt; İn Vitro</em&gt; Deney Mezenkimal Hücreleri Uyguladığımız Epitel-Mezenkimal Geçiş kasılma Fonksiyonu değerlendirin

Hücre farklılaşması, iki matris bileşimi ve substrat malzeme özellikleri de dahil olmak üzere mikro-çevresel faktörlerin, bir ana bilgisayar tarafından kontrol edilir. Biz burada hücre farklılaşması ve microenvironmental bağlamında bir fonksiyonu olarak biyomekanik hücre substrat etkileşimleri hem değerlendirmek için çekiş kuvvet mikroskobu ile birlikte hücre mikrodiziler kullanan bir tekniği açıklar.

Hücre farklılaşması ve Çekiş Kuvvetleri Korelatif Analizi için Yüksek verim Hücre Mikroarray Platformu

Mekanik kuvvetler hücre göçlerini kontrol etmek için önemlidir. Bu protokol, hücre yapısı ve göç değişiklikleri ortaya çıkarmak için yerel bir sertlik gradyan ile hücreleri uyarmak için bir cam mikropipette ve bir mikromanipülatör kullanılarak deforme edilebilir elastik hidrojellerin kullanımını göstermektedir.

Hücresel Hareketin Mekanik Kontrolünün Ve İlgili Sinyal Olaylarının Değerlendirilmesi için Tek Hücreli Durotaksis Tsay

Tavşan kardiyomiyositlerinde GtACR1 aktivasyonunun elektromekanik etkilerinin değerlendirilmesi için bir protokol sayılmiyoruz. Hücre izolasyonu, kültür ve adenoviral transdüksiyon ve yama-kelepçe ve karbon-fiber teknikleri ile fonksiyonel deneyler hakkında ayrıntılı bilgi salıyoruz.

Optogenetik Modüle Kardiyomiyosit Aktivitesinin Elektromekanik Değerlendirilmesi

Bu yazıda birincil, hastaya özgü insan aort düz kas hücrelerinin ve dermal fibroblastların izolasyonu ve kültürlenmesi için eksplant kültürüne dayalı bir yöntem anlatılmaktadır. Ayrıca, hücre kasılmasını ölçmek ve daha sonra bu hücrelerdeki hastaya özgü farklılıkları incelemek için kullanılabilecek yeni bir yöntem sunulmaktadır.

Primer Hastaya Özgü Aort Düz Kas Hücrelerinin İzolasyonu ve Yarı Kantitatif Gerçek Zamanlı Kasılma Ölçümleri In Vitro

Bu çalışma, floresan olarak etiketlenmiş elastomerik büzülebilir yüzeyler (FLECS) Teknolojisini, floresan protein mikrodesenlerinin görselleştirilmiş yer değiştirmelerine dayanan tek hücreli kontraktil kuvvetlerin basitleştirilmiş, eller kapalı nicelleştirilmesi için mikrowell formatında kullanmak için esnek bir protokol sunmaktadır.

Mikrodesenli Elastomerler Kullanarak Tek Hücreli Kasılmanın Basitleştirilmiş, Yüksek Verimli Analizi

İnsan iPSC kaynaklı kardiyomiyositlerin kasılma fonksiyonlarındaki ve hücresel bütünlüğündeki değişikliklerin analizi, klinik olmayan ilaç gelişimi için büyük önem taşımaktadır. Hibrit bir 96 kuyucuklu hücre analiz sistemi, klinik aşamalara güvenli bir geçiş için gerekli olan güvenilir, insanla ilgili sonuçlar için her iki parametreyi de gerçek zamanlı ve fizyolojik bir şekilde ele alır.

Preklinik Kardiyak Risk Değerlendirmesi için İnsan iPSC Kaynaklı Kardiyomiyositlerin Yapısal ve Kasılma Değişikliklerini Değerlendirmek için Hibrit Hücre Analiz Sistemi

Bu protokol, klinik öncesi gelişim sırasında ilaca bağlı kontraktilitedeki değişiklikleri değerlendirmek için güvenilir bir platform olan MyoBLAZER sistemi ile donör kalplerinden alınan yetişkin insan primer kardiyomiyositlerinde kontraktilitenin nasıl ölçüleceğini açıklar.

İzole Yetişkin İnsan Primer Kardiyomiyositlerinde Kalp Kontraktilitesinin Ölçülmesi

Öğrenin, hücresel daralma miktarını ölçmek için uyumlu ekstraselüler matris kaplı substratların nasıl hazırlandığını. Bu yöntem, hücre davranışları üzerindeki etkileri incelemek için çekme kuvveti mikroskobisi kullanır.

Hücresel Daralma miktarının Şikayet Matrisler hazırlanması

Daha fazla video keşfet