Name: Insan In Vitro Bağışıklık Dengesizlik Erken Devlet Tanıma Tarama Aracı Olarak Bastırılması (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-22T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 1 s
Description: Öğrenin, insan Treg fonksiyonunu ölçmek için optimize edilmiş in vitro baskılama testini. Bu yöntem, tip 1 diyabet riski taşıyan bireylerde erken bağışıklık dengesizliği tespiti için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, Wisconsin ve Çocuk Araştırma Enstitüsü Wisconsin Juvenil Diabetesat Medical College Max McGee, Ulusal Araştırma Merkezi tarafından desteklenmiştir. Maliyeciler, çalışma tasarımı, veri toplama ve analizi, ya da yazının hazırlanmasında rol oynamıştır.

1. Bir bastırma tahlil kurmadan önce, daha sonra hücre uyarılması ve bir ihtiyacı için anti-insan CD3 (klon UCHT1, nihai konsantrasyonu 1μg/ml) kat tosylactivated boncuk boncuk verimli insan kullanarak in vitro proliferasyonu tayininde kurma kaplı olup olmadığını kontrol edin T hücreleri <ol><li> Orijinal şişe, manyetik standı yer M-450 tosylactivated boncuk 1ml alın ve tüm boncuklar tüp tarafına yapıştırılır kadar tutun. Tüp manyetik stand hala tamponu çıkarın. 37, ajitasyon tekrar süspansiyon boncuk buffer1 1 ml ve anti-insan CD3 40μl eklemek °; manyetik stand tüp ve buffer1 1 ml ekleyin, tekrar tüp manyetik standında yer ve tüp manyetik standında ise buffer1 kaldırmak C'de 15 dakika boyunca,% 0.1 w / v BSA ekleyin ve önümüzdeki 16 saat boyunca ajitasyon devam ediyor. </li><li> 5 dakika boyunca tampon kaldırmak ve buffer2 1 ml boncuklar tekrar süspansiyon; boncuk ° C ve bir kez, 5 dakika buffer3 içinde 2-8 ° C yukarıda açıklandığı gibi manyetik standı kullanarak 2-8, iki kez buffer2 boncuk yıkayın 4x10 8 / ml son konsantrasyon ve kullanıma hazır. </li><li> Kısım 50.000 ve 25.000 PBMC / 96 plaka triplicates ve CD3 kaplı boncuklar değişken sayısı (4x10 8 boncuk / ml, CD3 1μg/ml, örneğin 1, 2, 3, 4, 5 boncuk / hücre eklemek ) hücre başına boncuk optimal sayısını belirlemek için. 72 saat sonra kültür, 1μCi [3 H] timidin ekleyin ve 37 kuluçka ° C önümüzdeki 16 saat boyunca devam ediyor. Çoklu hasat plaka (Millipore) Hasat hücreleri, parıldamanın sıvı ve Kont NXT (Packard, CT) kullanılarak / dakika başına sayıları (CPM) okuyun. BGBM'leri 5000 yukarıda boncuk / hücre oranı ancak daha az 15000 baskılayıcı fonksiyonunu kaybedebilir Tregs, aşırı uyarılma önlemek için kullanın. Genellikle 3 boncuk / hücre oranı, şu ana kadar 1-4 test edilen tüm konu gruplarında cevaplayıcı ve Treg hücreleri uyarır . </li></ol> 2. Sağlıklı donörlerin veya insan leukopacks veya genellikle yerel Kan Transfüzyon Merkezleri sorumlu sağlıklı gönüllü ve alınan buffy coat (BC) (Şekil 1) tam kan hücre izolasyonu <ol><li> M.Ö. (~ 50 ml) 01:06 PBS ile (add 250ml) seyreltilir. Şimdi 300ml toplam hacmi vardır. Yavaşça seyreltilmiş M.Ö. 25ml 15ml Ficoll-Paque üst katmanı PLUS katmanları bozmadan, 50ml Falcon tüpler ekledi. 30 dakika 4 ° C, frenler için 800xg Santrifüj (sallanan kova rotor SH-3000 ile Sorvall santrifüj 1400) kapalı. </li><li> Hücre katmanı (ara faz) dikkatli bir şekilde toplamak ve yeni bir 50ml Falcon tüpler aktarmak. PBMC DPBS ile 50ml tüpleri doldurarak yıkayın. Bir tüp içine 2 hücre pelletleri toplayın. 4 10 dakika 400xg santrifüjleyin ° C Her seferinde tek bir tüp içine 2 hücre pelletleri birleştirerek, iki kez adım yıkama tekrarlayın. Tek bir tüpe 50ml tüm hücre pelletleri birleştirin. </li><li> Tripan Mavi dışlama testi kullanılarak hücre güvenin. 180μl Tripan Mavi leke PBMC, 20μl ekleyerek Tripan Blue 1:10 seyreltme olun. İyice karıştırın ve hemen hemasitometre saymak 20μl almak. Iki kare blok, her biri 16 küçük kare içeren bulunan tüm lekesiz ve sadece mavi boyanan hücrelerin sayıları sayma. Iki numara ortalama 10 ile çarpın. Hücre / ml 'lik bir numara almak için bu sayı 100 ile bölün. Canlı hücreler Yüzde olarak hesaplamak [1 - (mavi hücre sayısı / toplam hücre sayısı) x100]. Yaşayabilirliği ≥% 95 ise devam edin. </li></ol> 3. CD4-T hücreleri MACS ön sıralamak <ol><li> Devam etmeden önce, yeni bir tüp içine PBMC 1 ml transfer 5000rad bu ışınlanması için hücreleri hazırlamak için medya 4ml eklemek antijen-sunan hücreler (APC) olacaktır. </li><li> PBS/2mM EDTA/0.5% BSA tampon 250xg hücreleri geri kalanı Santrifüj 10 dakika süreyle 4 ° C PBS/2mM EDTA/0.5% BSA tampon 4ml supernatant ve tekrar süspansiyon hücreleri dökün. </li><li> MACS anti-CD4 mikro 200μl ekleyin ve 4 ° C'de 20 dakika için. </li><li> 250xg PBS/2mM EDTA/0.5% BSA tampon ve santrifüj 40ml ekleyerek yıkayınız 10 dakika süreyle 4 ° C Gazlar, oda sıcaklığında PBS/2mM EDTA/0.5% BSA tampon, 8 ml supernatant ve tekrar süspansiyon dökün. </li><li> LS sütun üzerinde yüklemeden önce Ön ayırma filtreleri kullanarak Filtre ayrı hücre süspansiyonu. </li><li> Split hücre süspansiyonu ve katman 4ml üzeri kalibre her LS kolon (deggassed PBS/2mM EDTA/0.5% BSA tampon 3ml). LS sütun MidiMACS ayırıcı sabittir. Hücre süspansiyonu, yeniden çalıştırmak flowthrough ya biterse veya PBS/2mM EDTA/0.5% BSA tampon deggassed oda sıcaklığında 3ml eklemek ve tampon aracılığıyla çalışmasına izin önce. Daha fazla tampon temizlemek gelene kadar ekleyin. </li><li> LS sütun üzerine Pipet 5ml deggassed tampon aracılığıyla ~ 1.0ml çalıştırmanızı sağlayarak yeni bir steril 15ml toplama tüpünün içine LS Sütun MidiMACS ayırıcı ve yerden kaldırmak. Sütuna piston koyun ve yavaş yavaş geri kalanı itinhacminin. </li><li> Her iki LS sütunları ile aynı yapın ve iki CD4 + kesirler birleştirmek. 50ml PBS ve sayısı hücrelere ekleyin. Beklenen verim 5x10 8 hücrelere kadar. 2ml PBS/2mM EDTA/0.5% BSA tampon 10 dakika ve tekrar süspansiyon hücreleri 400xg santrifüjleyin. </li></ol> 4. Floresan Aktif Hücre Ayırma (FACS) izolasyonu (Şekil 2) <ol><li> Aşağıdaki hücre yüzey belirteçleri (ışıktan korumak) CD işaretçileri antikorların bir kokteyl olun: 20 ul anti-insan CD8-FITC (klon RPA-T8), anti-insan CD14-FITC (klon M5E2 20 ul; LPS reseptör), 20 anti-insan CD32-FITC (klon FLI8.26 ul; FcγR tip II) ve anti-insan CD116-FITC (klon M5D12 6 ul GM CSFRα zinciri) ve alternatif olarak, 40μl karşıtı ekleyin insan CD4-APCCy7 (klon RPA-T4). </li><li> 2ml hücre süspansiyonu 5μl alın ve leke kokteyl 2μl ile leke, bu eşik (Florokrom Eksi Bir ​​FMO) 5 belirlemek için bir tüp. </li><li> Leke kokteyl ve 4 ° C 30 dakika hücre süspansiyonu ve inkübe kokteyl, anti-insan CD25-PE (IL-2Rα klon M-A251) 50 ul ekleyin. 10 dakika 10 7 / ml bir hücre konsantrasyonu ve tekrar süspansiyon hücreleri için 400xg PBS, santrifüj hücre yıkayın. </li><li> Boyanmamış hücre ve hücreler veya hücre FACS Aria (BD Biosciences, San Jose, NJ) sıralama için tazminat kontrolü olarak kullanmak için tek florokrom ile boyandı boncuk hazırlayın. </li><li> FMO tüp hücreleri Edinme kullanıcı CD25 + T hücreleri (Şekil 2a) sıralama için eşik ayarlamak için izin verecektir. FITC-pozitif hücreler, monositler, makrofajlar ve diğer tüm CD4 + T hücreleri (Şekil 2b) oluşan dışlamak için bir kapı FITC-negatif hücrelerin etrafındaki ayarlayın. </li><li> Ayrı bir arsa, CD25, CD25low ve CD25high T hücreleri-Tregs (üst, en yüksek sayıda CD25 eksprese eden hücrelerin% 1) (Şekil 2c) için geçitler çizerek. Hücre alt grupları genellikle yüksek saflıkta (Şekil 2d, 2e ve 2f) göstermektedir. </li><li> 10 dakika için 400xg hücre toplama tüpleri Santrifüj ve kaplama kadar buz üzerinde saklayın. </li></ol> 5. 200μl/well 96-plaka (düzeni Tablo 1 olarak eklenmiştir) hücre kültürü ayarlayın <ol><li> CD3 kaplı boncuklar kısım 50μl (1 mcg / ml) 3 boncuk / U-alt% 10 toplanmış insan AB serum ile eksiksiz bir medya yeniden süspanse iyi cevaplayıcı hücre, 96-kuyucuğu olarak hesaplanmıştır. (Örneğin, CD3 kaplı 2ml medya, CD3 kaplı stok boncuk final konsantrasyonu 4x10 8 / ml 7.5μl almak ve medya 2ml sulandırmak; her 50μl 75.000 beads-3beads/cell içerecektir). </li><li> 5x10 5 / ml hücre konsantrasyonunu ışınlanmış APC seyreltilir ve "sadece Tregs" olarak etiketlenen kuyular, Tablo "sadece APC" ve "medya sadece" dahil olmak üzere, önceden eklenmiş stimülasyon, her kuyuya 50μl eklemek (2.5 x 10 4 hücreler içeren) 1. </li><li> Tablo 1'de tasarım aşağıdaki triplicates 2.5 x 10 4 / iyi CD4CD25 veya CD4CD25low T hücreleri ekleyin. </li><li> Oranı 1:10 (2,500 Treg hücreleri) co-kültürler (satır B, Tablo 1) ve "sadece Tregs" olarak etiketlenen kuyulara Tregs ekle ve% 5 CO 2 ile CO 2 inkübatör plaka 37 ° C'de inkübe , 72 saat boyunca nem doymuş. </li><li> Darbe 1μCi [3 H] timidin ile kuyu ve inkübasyon 37 ° C Sonraki 16 saat boyunca devam ediyor. </li></ol> 6. Hasat ve sayım <ol><li> Packard filtermate döver ya da alternatif bir sistem kullanarak çoklu hasat plaka üzerinde Hasat hücreleri. </li><li> Sintilasyon sıvı (Microscint 20), son adım için hazırlık, şeffaf plastik bir kapak ile plaka hasat kapsar. </li><li> Dakika başına sayıları (CPM) Okuma / Kont NXT (Packard, BT) veya alternatif bir sistem kullanıyor. </li></ol> 7. Bastırma Bilgisayar yüzdesi <ol><li> Hücreleri triplicates kültüre edildi olarak, ortalama her durum için hesaplanır. Varyasyon katsayısı&gt;% 30 ise, uç ortalama iki kuyu yok ve sadece kopyaya. Bastırma Yüzde hesaplama ile elde edilir [(sc) / s] x% 100 = kopyaya tek kültür ve c = ko-kültür cpm. </li><li> Naif (CD25-) ve in vivo aktif (CD25low) efektör T hücreleri cevaplayıcı T hücreleri olarak kaplama, bu alt gruplarının her bastırmak için Tregs yeteneğini fark öncül dayalı bir potansiyel fonksiyonel prognostik göstergesi olarak yakalanan ve kullanılan olduğu gibi bu aktif hücrelerin bastırmak için zordur. </li></ol> 8. Temsilcisi Sonuçlar: Büyük değişkenlik yöntemleri kullanılmış ve in vitro insan bastırma tahlil edilen sonuçlar bize tahlil 1 etkileyen koşulların kapsamlı bir çalışma gerçekleştirmek için istenir. Daha önce 6 belirlenir Teffs (1:10): Biz Tregs arasında düşük oranı göz önünde bulundurularak, Treg fonksiyonu sadece test tahlil, aynı zamanda saflık geliştirdik. Buna ek olarak, Tregs th farklıbağışıklık dengesini tehlikeye T1D geliştirmek için risk altındaki kişilerde olduğu gibi başarıyla, naif ve Şekil 3 ve daha belirgin hale gelir, önceki çalışmalarda 2,4, gösterildiği gibi sağlıklı kişilerde bile vivo aktive T hücreleri, bastırmak için EIR yeteneği . Tahlil bize sağlıklı kontrol arasındaki fonksiyon karşılaştırmak için izin verir, biz doğal (nTregs), indüklenebilir (iTregs) ve in vitro genişletilmiş nTregs baskılayıcı fonksiyon karşılaştırıldığında çalışmada çok iyi çalıştı, yeni başlangıçlı (RO) T1D ve uzun süreli ( LS ) T1D konular. Biz RO T1D konularda fonksiyonel iTregs ve genişletilmiş nTregs üretme LS T1D ve sağlıklı bireyde 7 ile karşılaştırıldığında daha iyi bir kapasiteye sahip olduğu sonucuna varmıştır. Böylece, bu testte bağışıklık dengesizliği erken ve geç devlet hem de tanıma mükemmel bir araç olarak kullanılabilir. Programı 1 şematik sunumu in vitro bastırma tayininde yer alan adımları <img src="/files/ftp_upload/3071/3071fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1 fotoğraflarla birlikte sunulan in vitro bastırma tayininde Adımları <img src="/files/ftp_upload/3071/3071fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2 FACS hücre izolasyonu Ayırıcı stratejisi. FITC-negatif hücrelerin (daha kapı vardı ve CD + CD25, CD + CD25low ve CD + CD25high olarak toplanan bir) CD25 + eşik) hücreler, c FITC-negatif olarak kapılı idi) Florokrom Eksi Bir (FMO), b göre ayarlanabilir oldu Tregs) yüzdeleri, d ile gösterilir) e sıralama sonra CD + CD25low sıralaması, sıralama sonra Tregs sıralaması FACS) FACS, ve f) sıralama sonra sıralaması CD4 + CD25-T hücrelerinin FACS <img src="/files/ftp_upload/3071/3071fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3 sağlıklı bireylerden Temsilcisi sonuçları a) ilgili tüm hücre alt grupları için tek kültür olarak sunulan sağlıklı birey (naif-CD25-, in vivo aktif-CD25low, antijen sunan hücreler APC dakikada sayar Temsilcisi (CPM) ve Her CD25 ve otolog Tregs CD25low cevaplayıcı T hücrelerinin sağlıklı kontrol olgusu sunulmuştur (n bastırma düzenleyici T hücreleri-Treg) yanı sıra cevaplayıcı T hücrelerinin ortak kültürler (CD25-veya CD25low) ve Tregs b) Yüzde = 4). Bastırılması [(sc) / s] olarak hesaplanmıştır x% 100 = kopyaya kadar tek bir kültür ve c = kopyaya ko-kültür. Cevapçı T hücrelerini bastırmak için Tregs kapasitesi hafif fark fark olmasına rağmen,. C (t-testi p = 0.08 eşleştirilmiş)) Sunan cevaplayıcı olarak CD25 ve CD25low de dahil olmak üzere, tek tek her kültür için risk konular kopyaya kadar önemli değildi T hücrelerinin yanı sıra her cevaplayıcı T hücre alt otolog her CD25 ve CD25low cevaplayıcı T hücrelerinin baskılanması Tregs (CD25-/Tregs ve CD25low/Tregs) d) Yüzde numaralı seribaşı APC ve Tregs ve ortak kültürler Tregs riskli grup (n = 4) sunulmuştur. CD25-versus CD25low cevaplayıcı T hücreleri bastırmak için Tregs kapasitesi arasındaki fark anlamlıydı (eşleştirilmiş t-testi p = 0.04). Tablo 1. Şematik in vitro bastırma tayininde kurdu <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> 1-3 </td><td> 4-6 </td><td> 7-9 </td><td> 10-12 </td></tr><tr><td> A </td><td> CD4CD25- </td><td> CD4CD25low </td><td> sadece medya </td><td> sadece medya </td></tr><tr><td> B </td><td> CD4CD25-/ Tregs </td><td> CD4CD25low / Tregs </td><td> Sadece Tregs </td><td> APC sadece </td></tr><tr><td> C </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> D </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> E </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> F </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> G </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> H </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

<ol><li>Barge, A., Cravotto, G., Gianolio, E., Fedeli, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+to+determine+free+Gd+and+free+ligand+in+solution+of+Gd+chelates.+A+technical+note%5BTitle%5D)+AND+%22Contrast+Med.+Mol.+Imaging%22%5BJournal%5D)">How to determine free Gd and free ligand in solution of Gd chelates. A technical note.</a> Contrast Med. Mol. Imaging. 1, 184-188 (2006).</li>
<li>Nagaraja, T. N., Croxen, R. L., Panda, S., Knight, R. A., Keenan, K. A., Brown, S. L., Fenstermacher, J. D., Ewing, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+arsenazo+III+in+the+preparation+and+characterization+of+an+albumin-linked%2C+gadolinium-based+macromolecular+magnetic+resonance+contrast+agent%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Application of arsenazo III in the preparation and characterization of an albumin-linked, gadolinium-based macromolecular magnetic resonance contrast agent.</a> J. Neurosci. Methods. 157, 238-245 (2006).</li>
<li>Supkowski, R. M., Horrocks, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+determination+of+the+number+of+water+molecules%2C+q%2C+coordinated+to+europium%28III%29+ions+in+solution+from+luminescence+decay+lifetimes%5BTitle%5D)+AND+%22Inorg.+Chim.+Acta%22%5BJournal%5D)">On the determination of the number of water molecules, q, coordinated to europium(III) ions in solution from luminescence decay lifetimes.</a> Inorg. Chim. Acta. 340, 44-48 (2002).</li>
<li>Menjoge, A. R., Kannan, R. M., Tomalia, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendrimer-based+drug+and+imaging+conjugates%3A+design+considerations+for+nanomedical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Discovery+Today%22%5BJournal%5D)">Dendrimer-based drug and imaging conjugates: design considerations for nanomedical applications.</a> Drug Discovery Today. 15, 171-185 (2010).</li>
<li>Que, E. L., Chang, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Responsive+magnetic+resonance+imaging+contrast+agents+as+chemical+sensors+for+metals+in+biology+and+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Soc.+Rev%22%5BJournal%5D)">Responsive magnetic resonance imaging contrast agents as chemical sensors for metals in biology and medicine.</a> Chem. Soc. Rev. 39, 51-60 (2010).</li>
<li>Uppal, R., Caravan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+probes+for+cardiovascular+MR+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Future+Med.+Chem%22%5BJournal%5D)">Targeted probes for cardiovascular MR imaging.</a> Future Med. Chem. 2, 451-470 (2010).</li>
<li>Major, J. L., Meade, T. J. B. ioresponsive <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioresponsive%2C+cell-penetrating%2C+and+multimeric+MR+contrast+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Acc.+Chem.+Res%22%5BJournal%5D)">Bioresponsive, cell-penetrating, and multimeric MR contrast agents.</a> Acc. Chem. Res. 42, 893-903 (2009).</li>
<li>Datta, A., Raymond, K. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gd-hydroxypyridinone+%28HOPO%29-based+high-relaxivity+magnetic+resonance+imaging+%28MRI%29+contrast+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Acc.+Chem.+Res%22%5BJournal%5D)">Gd-hydroxypyridinone (HOPO)-based high-relaxivity magnetic resonance imaging (MRI) contrast agents.</a> Acc. Chem. Res. 42, 938-947 (2009).</li>
<li>Leôn-Rodríguez, L. M. D., Lubag, A. J. M., Malloy, C. R., Martinez, G. V., Gillies, R. J., Sherry, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Responsive+MRI+agents+for+sensing+metabolism+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Acc.+Chem.+Res%22%5BJournal%5D)">Responsive MRI agents for sensing metabolism in vivo.</a> Acc. Chem. Res. 42, 948-957 (2009).</li>
<li>Castelli, D. D., Gianolio, E., Crich, S. G., Terreno, E., Aime, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metal+containing+nanosized+systems+for+MR-molecular+imaging+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Coord.+Chem.+Rev%22%5BJournal%5D)">Metal containing nanosized systems for MR-molecular imaging applications.</a> Coord. Chem. Rev. 252, 2424-2443 (2008).</li>
<li>Caravan, P., Ellison, J. J., McMurry, T. J., Lauffer, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gadolinium%28III%29+chelates+as+MRI+contrast+agents%3A+structure%2C+dynamics%2C+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Rev%22%5BJournal%5D)">Gadolinium(III) chelates as MRI contrast agents: structure, dynamics, and applications.</a> Chem. Rev. 99, 2293-2352 (1999).</li>
<li>Lauffer, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paramagnetic+metal+complexes+as+water+proton+relaxation+agents+for+NMR+imaging%3A+theory+and+design%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Rev%22%5BJournal%5D)">Paramagnetic metal complexes as water proton relaxation agents for NMR imaging: theory and design.</a> Chem. Rev. 87, 901-927 (1987).</li>
<li>Yoo, B., Pagel, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+overview+of+responsive+MRI+contrast+agents+for+molecular+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Front.+Biosci%22%5BJournal%5D)">An overview of responsive MRI contrast agents for molecular imaging.</a> Front. Biosci. 13, 1733-1752 (2008).</li>
<li>Pandya, S., Yu, J., Parker, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+emissive+europium+and+terbium+complexes+for+molecular+imaging+and+sensing%5BTitle%5D)+AND+%22Dalton+Trans%22%5BJournal%5D)">Engineering emissive europium and terbium complexes for molecular imaging and sensing.</a> Dalton Trans. 23, 2757-2766 (2006).</li>
<li>Nwe, K., Xu, H., Regino, C. A. S., Bernardo, M., Ileva, L., Riffle, L., Wong, K. J., Brechbiel, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+approach+in+the+preparation+of+dendrimer-based+bifunctional+diethylenetriaminepentaacetic+acid+MR+contrast+agent+derivatives%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chem%22%5BJournal%5D)">A new approach in the preparation of dendrimer-based bifunctional diethylenetriaminepentaacetic acid MR contrast agent derivatives.</a> Bioconjugate Chem. 20, 1412-1418 (2009).</li>
<li>Nwe, K., Bernardo, M., Regino, C. A. S., Williams, M., Brechbiel, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+MRI+properties+between+derivatized+DTPA+and+DOTA+gadolinium-dendrimer+conjugates%5BTitle%5D)+AND+%22Bioorg.+Med.+Chem%22%5BJournal%5D)">Comparison of MRI properties between derivatized DTPA and DOTA gadolinium-dendrimer conjugates.</a> Bioorg. Med. Chem. 18, 5925-5931 (2010).</li>
<li>Caravan, P., Das, B., Deng, Q., Dumas, S., Jacques, V., Koerner, S. K., Kolodziej, A., Looby, R. J., Sun, W. -C., Zhang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+lysine+walk+to+high+relaxivity+collagen-targeted+MRI+contrast+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Commun%22%5BJournal%5D)">A lysine walk to high relaxivity collagen-targeted MRI contrast agents.</a> Chem. Commun. , 430-432 (2009).</li>
<li>Leôn-Rodríguez, L. M. D., Kovacs, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+synthesis+and+chelation+chemistry+of+DOTA-peptide+conjugates%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+Chem%22%5BJournal%5D)">The synthesis and chelation chemistry of DOTA-peptide conjugates.</a> Bioconjugate Chem. 19, 391-402 (2008).</li>
<li>Boswell, C. A., Eck, P. K., Regino, C. A. S., Bernardo, M., Wong, K. J., Milenic, D. E., Choyke, P. L., Brechbiel, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis%2C+characterization%2C+and+biological+evaluation+of+integrin+%CE%B1V%CE%B23-targeted+PAMAM+dendrimers%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Pharm%22%5BJournal%5D)">Synthesis, characterization, and biological evaluation of integrin αVβ3-targeted PAMAM dendrimers.</a> Mol. Pharm. 5, 527-539 (2008).</li>
</ol>

Tregs tek benzersiz özellik olarak, baskılayıcı fonksiyonu aynı içinde ve farklı çalışmalar arasında hastalık gelişiminin farklı aşamalarını güvenilir ve düzgün konular arasında test edilmelidir. Biz bu testinin standardizasyonu için katkı olarak laboratuvarda geliştirilen bastırma tahlil detayları sunar. Geniş optimizasyon çalışması, insan anti-CD3 kaplı boncuklar (APC olarak hücre ile birlikte 1μg/ml konsantrasyonu UCHT1 klon (piyasada mevcut 5μg/ml karşı) ile T hücre stimülasyonu doğal uyarılması olduğunu tespit etti...

<table border="1"><tbody><tr><th> Reaktif ya da enstrüman Adı </th><th> Şirket </th><th> Katalog numarası </th><th> Yorumlar (isteğe bağlı) </th></tr><tr><td> Ficoll-Paque PLUS </td><td> Amersham Pharmacia Biotech </td><td> 17-1440-03 </td><td></td></tr><tr><td> DPBS-1X </td><td> Gibco </td><td> 14190-144 </td><td></td></tr><tr><td> Tripan Mavi </td><td> Invitrogen </td><td> 15250-061 </td><td></td></tr><tr><td> anti-CD4 mikro </td><td> Miltenyi </td><td> 130-045-101 </td><td></td></tr><tr><td> Ön ayırma filtreleri </td><td> Miltenyi </td><td> 130-041-407 </td><td></td></tr><tr><td> LS sütun </td><td> Miltenyi </td><td> 130-042-401 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA </td><td> Invitrogen </td><td> 15575-020 </td><td></td></tr><tr><td> BSA </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> B4287 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-insan CD4-APCCy7 (klon RPA-T4) </td><td> BD Pharmingen </td><td> 557852 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-insan CD25-PE (klon M-A251; IL-2Rα) </td><td> BD Pharmingen </td><td> 555432 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-insan CD8-FITC (klon RPA-T8) </td><td> BD Pharmingen </td><td> 555366 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-insan CD14-FITC (klon M5E2; LPS reseptör) </td><td> BD Pharmingen </td><td> 555397 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-insan CD32-FITC (klon FLI8.26 FcγR tip II) </td><td> BD Pharmingen </td><td> 555448 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-insan CD116-FITC (klon M5D12; GM-CSFRα zinciri) </td><td> BD Pharmingen </td><td> 554532 </td><td></td></tr><tr><td> Dynalbeads M-450 tosylactivated </td><td> Invitrogen </td><td> 140-13 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-insan CD3 </td><td> Ancell </td><td> 144-024 </td><td></td></tr><tr><td> Buffer1 </td><td> Ev yapımı </td><td></td><td> 0.1M Na 2 B 4 O 7 pH7.6 </td></tr><tr><td> Buffer2 </td><td> Ev yapımı </td><td></td><td> PBS/2mM EDTA /% 0.1 BSA pH7.4 </td></tr><tr><td> Buffer3 </td><td> Ev yapımı </td><td></td><td> % 0,2 M Tris/0.1 BSA pH8.5 </td></tr><tr><td> Alexa RPMI medya </td><td> Ev yapımı </td><td></td><td> RPMI 1640 medya 2 mM L-glutamin 5 mM HEPES 100 U / mg / ml Peni / strept 0.5 mM sodyum piruvat </td></tr><tr><td> [3 H] timidin </td><td> Perkin Elmer </td><td> NET027Z005MC </td><td></td></tr><tr><td> insan toplanmış AB serum </td><td> Atlanta Biyolojik </td><td> S40110 </td><td></td></tr><tr><td> Çoklu hasat plaka </td><td> Millipore </td><td> MAHFC1H60 </td><td></td></tr><tr><td> Microscint 20 </td><td> Perkin Elmer </td><td> 6013621 </td><td></td></tr></tbody></table>

insan in vitro bağışıklık dengesizlik erken devlet tanıma tarama aracı olarak bastırılması

Human In Vitro Suppression as Screening Tool for the Recognition of an Early State of Immune Imbalance

Düzenleyici T hücreleri (Tregs), self-antijenleri immün tolerans kritik arabulucular. Buna ek olarak, önemli bir enfeksiyon sonrası immün yanıt düzenleyicileri. Tregs benzersiz yüzey işaretleyici tanımlamak için çabalarına rağmen, sadece benzersiz özellik efektör T hücrelerinin çoğalması ve işlevi bastırmak için yeteneğidir. In vitro tayinlerde, sadece insan Treg fonksiyon değerlendirilmesinde kullanılabileceğini açık olmakla birlikte, otoimmün hastalıkları (Tip 1 Diyabet-T1D gibi) ihtiyacı olan kişilerde sağlıklı hücre ve hücreler izole kesitsel çalışmalardan elde edilen sonuçlar değerlendirilirken, bu sorunlu olur karşılaştırılabilir. Cevapçı oranları ve insan, antijen sunan hücrelerin sayısı ve türü (APC), in vitro bastırma tayinlerde: Cevapçı T hücreleri, stimülasyon doğası ve gücü, Treg sayısı ve türü laboratuvarlar arasında büyük bir değişkenlik yoktur. Bu değişkenliği Treg fonksiyonu zor ölçüm çalışmalar arasında karşılaştırma yapar. Treg alan sağlıklı kişilerde ve otoimmün hastalıklar ile çalışacak bir standart bastırma tahlil gerekiyor. Biz, pankreas β-hücrelerinin otoimmün yıkımı temel konularla karşılaştırıldığında sağlıklı gönüllüler izole edilen T hücrelerinin uyarılması çok az test içi değişkenlik gösterir in vitro bastırma tayininde geliştirdik . Bu parça ana hedefi, farklı konu grupları arasında karşılaştırma sağlayan in vitro insan bastırma tayininde bir tanımlamak için. Ayrıca, bu testte, küçük bir fonksiyon nTreg kaybı tasvir ve gelecekte daha da kaybı, önleyici immünomodülatör tedavi 1 yararlanabilir böylece tespit konularda tahmin etmek potansiyele sahiptir. Aşağıda, bu yordamı yer alan adımları ayrıntılı bir açıklama sağlar. Treg fonksiyonu ölçmek için kullanılan in vitro bastırma tayininde standardizasyon katkıda bulunmayı umuyoruz. Buna ek olarak, bağışıklık dengesizliği erken bir devlet ve T1D için potansiyel bir fonksiyonel biyomarker tanımak için bir araç olarak bu testte sunuyoruz.

Tregs bağışıklık sisteminin güçlü bastırıcılar. Bunları tanımlamak için benzersiz yüzey belirteçleri bir eksikliği vardır, dolayısıyla, Tregs tanımları öncelikle fonksiyonel. Burada bir optimize tarif<em&gt; In vitro</em&gt; Tahlil T1D geliştirmek için risk altındaki kişilerde bağışıklık dengesizlik tespit yeteneğine sahip.

Insan In Vitro Bağışıklık Dengesizlik Erken Devlet Tanıma Tarama Aracı Olarak Bastırılması

Düzenleyici T hücreleri (Treg'ler), öz antijenlere karşı immün toleransın kritik mediyatörleridir. Ayrıca, immün yanıtın çok önemli düzenleyicileridir...

Bu prosedürün genel amacı, treg fonksiyonunu ölçmek ve potansiyel olarak fonksiyonlarındaki gelecekteki kayıpları öngörmek için in vitro bir insan supresyon testi kullanmaktır. Bu işlem, öncelikle hücre stimülatörleri olarak kullanılacak kodlanmış boncukların hazırlanması ve test edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım; saf naif CD4 pozitif CD25 negatif T hücrelerini, in vivo aktive edilmiş CD4 pozitif CD25 düşük T hücrelerini ve regülatör CD4 pozitif CD25 yüksek T hücrelerini izole etmek ve bunları antijen sunan hücreler veya APC'ler olarak kullanılmak üzere ışınlanmış PP BMC'leri ile birleştirmektir.Ardından, yanıtlayıcılar olarak naive veya aktive edilmiş T hücreleri ve APC'ler olarak P BMC'leri ile tekli kültürler veya aynı koşullar altında, ancak 1:10 oranında treg eklenmiş ko-kültürler kurulur. Son adım, hücrelerin hasat edilmesi ve tritiyumlu timidinin inklüzyonu ile proliferasyonlarının ölçülmesidir. Nihai olarak elde edilen sonuçlar, naive hücrelere karşı in vivo aktive edilmiş T hücre yanıtlarının baskılanmasındaki farkları ortaya koyabilir.Benim adım Jeff Woodcliff. Düzenleyici T hücreleri kendine özgü hücre yüzeyi belirteçleri eksprese etmezler. Bu nedenle, fonksiyonlarını güvenilir bir şekilde ölçebilmek için, en iyi ayrımı sağlayan teknikler kullanılarak izole edilmeleri gerekir.Fluoresan aktivasyonlu hücre ayıklamanın (FACS), manyetik izolasyon gibi diğer yöntemlere göre temel avantajı, FACS ile elde edilebilen saf hücre popülasyonlarıdır. Böylece, burada gösterildiği gibi, hücre fonksiyonları in vitro baskılama deneylerinde güvenilir şekilde test edilebilir. Bu yöntem, sağlıklı bireylerde ve tip 1 diyabetle ilişkili deneklerde Treg fonksiyonları hakkında bilgi sağlayabilir. Ayrıca, insan romatoid artriti, sistemik lupus eritematozus, multipl skleroz ve diğer otoimmün hastalıklara da uygulanabilir. T-hücre aktivasyon boncuklarını anti-insan CD3 ile kaplamak için.Orijinal şişeden bir mililitre M four 50 toil aktive edilmiş boncuğu 1,5 mililitrelik bir tüpe ekleyin ve tüm boncuklar tüpün kenarına yapışana kadar tüpü manyetik standa yerleştirin. Ardından, tüp hala manyetik standdayken boncuk tamponunu pipetleyerek uzaklaştırın. Daha sonra tüpü manyetik standdan çıkarın ve bir mililitre tampon bir ekleyin.Tüpü tekrar tekrar manyetik standa yerleştirin. Tüp manyetik standayken tamponu uzaklaştırın. Boncukları bir mililitre tampon 1 içerisinde yeniden süspande edin.Bu sefer aynı zamanda 40 µL anti-human CD3 ekleyin. Boncukları ve antikoru 37 °C'de 15 dakika boyunca ajite edin. Ardından %0,1 (ağırlık/hacim) BSA ekleyin ve sonraki 16 saat boyunca ajitasyona devam edin.Ardından, boncukları bir mililitre tampon iki içerisinde, 2 ila 8 °C'de beş dakika inkübe ederek ve ardından tüp manyetik standdayken tamponu uzaklaştırarak iki kez yıkayın. Daha sonra boncukları aynı steril koşullar altında bir kez daha yıkayın.Bu kez bir mililitre tampon üç kullanarak, optimal oranı belirlemek amacıyla hücre başına değişken sayıda CD3 kaplı boncuk ekleyip antikor kaplama verimliliğini test edin ve 96 kuyucuklu bir plakada her kuyucuğa üç tekrarlı olarak 50.000 PBMC ekleyin. 37 °C'de 72 saatlik kültürlemenin ardından, bir mikrokuri trityumlanmış timidin ekleyin ve inkübasyona sonraki 16 saat boyunca devam edin. Hücreleri çoklu ekran hasat plakası veya benzeri bir kapla toplayın.Sintilasyon sıvısı ekleyin ve kuyuk başına dakika başına sayımı veya CPM değerini okuyun. Bir TopCount NXT sintilasyon sayacı veya benzeri bir cihaz kullanarak boncuk/hücre oranını belirleyin; deneyimlerimize göre, tutarlı bir şekilde 5.000'in üzerinde ancak 15.000'in altında bir CPM veren oranı seçin. Hücre başına üç boncuk oranı, test edilen tüm insan deneklerde hem yanıtlayıcı hem de Treg hücreleri için genellikle optimal stimülasyonu sağlar.50 mililitrelik konik bir tüpü 15 mililitre fal plus ile doldurun. Ardından, kan tüpüne 250 mililitre PBS ekleyerek 50 mililitre buffy coat'un bire altıya seyreltmesini gerçekleştirin. Seyreltilmiş buffy coat'un 25 mililitresini, katmanları bozmadan yavaşça fial pack'in üzerine katmanlar halinde ekleyin.4 °C'de 30 dakika boyunca 800 ×g'de santrifüj edin. Freni kapatarak, fial ile tampon arasındaki beyaz ara faz olan PBMC tabakasını dikkatlice toplayın. Gerekirse, tüpün çeperindeki hücreleri sıyırarak alın.Birkaç dakika bekleyin ve hücreleri ara fazdan tekrar toplayın. Hücreleri taze 50 mililitrelik tüplere aktarın ve tüpleri PBS ile doldurup santrifüj ederek pellet haline getirip yıkayın. PBM cs.Yıkama adımını her seferinde iki kez tekrarlayın. İki hücre peletini tek bir tüpte birleştirerek, nihayetinde tüm hücre peletlerini tek bir 50 ml tüpte toplayın. Ardından, tripan mavisi dışlama yöntemiyle hücre canlılığını belirlemek için süspansiyon halindeki hücrelerden 20 µL kullanın.Canlı pbmc'den bir mililitreyi yeni bir tüpe aktararak test APC'lerini oluşturun. Ardından dört mililitre besiyeri ekleyin ve hücreleri 5.000 rad ile ışınlayın; geri kalan PBMC'leri içeren tüpü PBS tamponu ile tamamlayın. Daha sonra hücreleri 4 °C'de 10 dakika boyunca 250 ×g'de santrifüj ettikten sonra süpernatantı dökün ve hücreleri aynı karışımın dört mililitresinde yeniden süspanse edin.Ardından, PBMC'lere 200 µL max anti CD4 mikroboncuğu ekleyin ve hücre-boncuk karışımını 4 °C'de 20 dakika boyunca inkübe edin. İnkübasyonun ardından, hücreleri 40 mL PBS tamponuyla yıkayın ve ardından hücreleri pelletleyin. Daha sonra süpernatantı dökün ve hücreleri oda sıcaklığında 8 mL Degas PBS tamponu içinde yeniden süspande edin.Ardından, hücre süspansiyonunu ayırmak için ön ayırma filtreleri kullanın. Daha sonra PBM CS'yi iki adet 15 mililitrelik tüpe bölün. Her bir tüpe dört mililitre P BMC ekleyin.İki sütunu minimax ayırıcıya kalın bir yapıştırıcı ile sabitleyin ve her sütunun altına toplama tüpleri yerleştirin. Ardından, her sütuna üç mililitre DGAs PBS tamponu ekleyin; tampon tükendiğinde, hücre süspansiyonu tamamen bitmeden önce her tüpteki dört mililitrelik hücre solüsyonunun tamamını sütunların üzerine katmanlar halinde ekleyin. Her sütuna üç mililitre oda sıcaklığında DGAs PBS tamponu ekleyin ve tamponun toplama tüplerine akmasını bekleyin.Berrak bir görünüm elde edene kadar daha fazla tampon ekleyin. LS kolonlarına beş mililitre daha DGAs tamponu pipetleyin ve ardından LS kolonlarını minimax separatörden çıkarın. Kolonları yeni steril 50 mililitrelik toplama tüplerine yerleştirin.Yarım mililitrenin dışarı akmasına izin verin ve ardından geri kalan yaklaşık dört mililitrelik hacmi yavaşça dışarı itin. Şimdi iki CD4 pozitif fraksiyonu birleştirin. Ardından tüpe 50 mililitreye kadar PBS ekleyin ve hücreleri 4 °C'de, 10 dakika boyunca 400 ×g'de santrifüj ettikten sonra hücreleri sayın.Hücreleri iki mililitre PBS tamponu içinde yeniden süspande edin. Fakt boyaması için kullanılacak antikorları tek bir tüpte birleştirin: anti CD 14, CD 32, CD 16 ve isteğe bağlı olarak anti CD 4. FLOROKROM eksi bir tüpünü boyamak için karışımdan bir alikot alın.Hücre süspansiyonundan beş µL'yi bir fax tüpüne aktararak FMO tüpünü hazırlayın ve hücreleri önceden hazırlanmış antikor kokteylinden iki µL ile boyayın. Ardından, hücre ayırma için kompanzasyon kontrolleri olarak kullanılmak üzere, tek bir florokrom ile boyanacak olan boyanmamış hücreleri ve mouse IgG kaplı boncukları yeni bireysel fax tüplerine ekleyin. Daha sonra kokteyle 50 µL anti-human CD 25 PE ekleyin ve kokteyli hücre süspansiyonunun geri kalanına ilave edin.Tüpleri 4 °C'de 30 dakika boyunca inkübe edin. Hücreleri antikor kokteyli ile inkübe ettikten sonra, hücrelere PBS tamponu ekleyin ve ardından onları çöktürün. Çökelti, 10⁷ hücre/mL konsantrasyonunda PBS tamponu içinde süspande edin.CD 25 pozitif T hücrelerinin ayıklanması için eşik değerini belirlemek amacıyla FMO tüpünü kullanın. Bu kapılama stratejisini kullanarak, öncelikle bu şekilde gösterildiği üzere monositleri, makrofajları ve diğer tüm CD 4 pozitif T dışı hücreleri kapsayan fitz pozitif hücreleri dışlamak için fitz negatif hücrelerin etrafına bir kapı belirleyin. Ayrı bir grafikte, bu şekilde olduğu gibi CD 25 negatif ve CD 25 düşük T hücreleri ile CD 25 yüksek treg hücreleri için kapılar çizin.Akış sonrası hücre alt kümeleri sıralandıktan sonra, toplama tüplerini santrifüj ederek çöktürün ve T-hücrelerini ekim yapana kadar buz üzerinde tutun. U tabanlı 96 kuyucuklu bir plakayı tabloda gösterildiği şekilde etiketleyin. 96 kuyucuklu plaka içerisindeki %10 havuzlanmış insan AB serumlu tam medyuma, kuyucuk başına yanıt veren hücre başına üç boncuk konsantrasyonuna göre hesaplanmış 50 µL CD3 kaplı boncuk alikotunu süspande edin; ardından daha önce ışınlanmış APC'leri medya içerisinde 5 × 10⁵ hücre/ml konsantrasyonuna seyreltin.96 kuyucuklu plakaya 50 µL hücre ekleyin ve ardından her kuyucuğa üç tekrarlı olarak 2,5 × 10⁴ CD4⁺ CD25⁻ veya CD4⁺ CD25ˡᵒ T hücresi ekleyin; Treg hücrelerini B sırasına ve burada gösterildiği gibi ko-kültürdeki "sadece Treg" olarak etiketlenmiş kuyucuklara 1:10 oranında ekleyin. Ardından plakayı, %5 CO₂ içeren ve doygun neme sahip bir inkübatörde 37 °C'de 72 saat boyunca inkübe edin. Sonrasında, ko-kültürün son birkaç saatinde hücreleri 1 µCi tritiyumlanmış timidid ile pulse edin ve timidid hücrelere dahil olduktan sonra inkübasyona 37 °C'de sonraki 16 saat boyunca devam edin.Çoklu ekranlı bir toplama plakası üzerindeki hücreleri toplamak için bir filtre mate hasat cihazı kullanın. Ardından, toplama plakasını önceden sintilasyon sıvısı ile doldurulmuş şeffaf plastik bir kapakla kapatın. Son olarak, kuyucuk başına CPM değerini okuyun.Bir sintilasyon sayacı kullanılarak, aşağıdaki nokta grafikleri serisinde görüldüğü üzere T hücre alt kümeleri bu sistemle yüksek saflıkta izole edilebilir; CD 4 pozitif CD 25 negatif T hücreleri burada alt kapıda gösterilmiştir. Bir sonraki şekilde, yüksek saflıkta CD 4 pozitif CD 25 düşük T hücreleri görülebilir. Akışla sıralanmış saf bir CD 4 pozitif popülasyonu.CD 25 yüksek treg hücreleri üst kapı kontrolünde gösterilmiştir. Sağlıklı deneklerden alınan APC'lerin ve treglerin tek hücre tipi kültürleri, timidin inklüzyonu ile ölçüldüğünde arka plan değerinin üzerinde çok az veya hiç proliferasyon göstermemiştir; buna karşın, naif CD 25 negatif ve in vivo aktive olmuş CD 25 düşük T hücreleri, bu yanıt verici hücre tipleri treg hücreleri ile birlikte kültüre edildiğinde baskılanan belirgin bir proliferasyon sergilemiştir. Bununla birlikte, treglerin yanıt verici naif CD 25 negatif ve in vivo aktive olmuş CD 25 düşük T hücrelerini baskılama kapasitelerinde hafif farklılıklar gözlemlenmiştir.Kontrol grubu anlamlı değildi. Risk altındaki deneklerden alınan APC ve Treg hücrelerinin tek hücre tipi kültürleri, timidin inklüzyonu ile ölçüldüğünde arka plana kıyasla çok az proliferasyon göstermiş veya hiç göstermemiştir. Buna karşın, naif CD 25 negatif ve InVivo aktive edilmiş CD 25 düşük T hücreleri, sağlıklı kontrollere kıyasla daha düşük proliferasyon seviyeleri sergilemiştir.Deney güvenilir sonuçlar ürettiği için, yanıt veren T hücrelerinin treg'ler ve ko-kültürler tarafından daha fazla baskılandığı görülmüştür. Ek olarak, düşük CPM değerlerinin sinyal iletiminde potansiyel kusurlara işaret ettiği sonucuna varılabilir ve bu durum farklı bir çalışma türünde daha detaylı incelenmelidir. Bununla birlikte, risk altındaki deneklerde treg'lerin CD 25 negatif yanıt veren T hücrelerine kıyasla CD 25 düşük yanıt veren T hücrelerini baskılama kapasitesindeki fark anlamlıydı.Bu videoyu izledikten sonra, sağlıklı deneklerde ve tip 1 diyabetli denekler gibi bağışıklık sistemi yetersizliği olan deneklerde Treg varlığına yönelik başarılı ve güvenilir bir fonksiyonel test için gerekli tüm adımların nasıl sorunsuz bir şekilde birleştirileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

human-vitro-suppression-as-screening-tool-for-recognition-an-early

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Biz HIV-spesifik CD4 T hücreleri tarafından sitokin salgılanmasının düzenlenmesinde immünregulatuar yolların rolünü araştırmak için bir in vitro testi geliştirdi.

Vitro Testi HIV-spesifik CD4 T hücre efektör işlevi üzerinde immünoregülatör yolları etkisini değerlendirmek için

Monoklonal antikorlar TG30 (CD9) ve GCTM-2'nin floresan aktif hücre sıralama (FACS) yoluyla hücre yüzeyi antijenlerinin kombine tespiti için pozitif seçim kullanılarak canlı insan embriyonik kök hücrelerinin (hESC) tanımlanması ve zenginleştirilmesi ve ayrıca hESC'lerin karışık hücre popülasyonundan arındırılması için negatif seçimin kullanılmasını açıklıyoruz.

Monoklonal Antikorlar TG30 ve GCTM-2 Kullanılarak Hücre Yüzey Antijenlerinin Tespiti ile İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinin Zenginleştirilmesi ve Temizlenmesi

İnsan ko-enfeksiyonunun in vitro olarak çoğaltılması zordur. Bununla birlikte, insan sıtma parazitleri, doğal olarak HIV ile enfekte olmuş taze izole edilmiş insan periferik kan mononükleer hücreleri gibi, in vitro olarak kolayca kültürlenebilir. Bu, HIV ko-enfeksiyonu bağlamında sıtma parazitlerine karşı erken bağışıklık tepkilerini incelemek için mükemmel bir model sağlar.

Bir<em&gt; İn Vitro</em&gt; HIV Co-enfeksiyon Bağlamında Sıtma için Bağışıklık Yanıtları Ölçüm Modeli

Bu protokol, HIV enfeksiyonuna karşı kök hücre tabanlı tasarlanmış bağışıklığa sahip insanlaştırılmış bir kemik iliği/karaciğer/timus fare modeli oluşturma yöntemlerini açıklar.

Insanlaşmış Fare Modelinde HIV enfeksiyonuna karşı kök hücre Tabanlı Engineered Bağışıklık

Burada, hoşgörü Ekiminde teşvik ve içinde in vitro ve in vivo değerlendirmek için bir protokol farklı hücre alt kümeleri alıcıdan gelen süpresif kapasitesi ve donör veya eksojen antijenleri doğru alıcının bağışıklık durumu mevcut.

Vitro ve In Vivo değerlendirme T, B ve Myeloid hücrelerin süpresif etkinlik ve nakli alıcılardan gelen Humoral yanıt

Biz burada pre-harekete geçirmek CD8 sitotoksisite araştırmak için bir protokol tarif+ T hücreleri kanser hücrelerine karşı apoptotik kanser hücreleri aracılığıyla gerçek zamanlı mikroskobu tespit ederek. Bu protokol mekanizmaları myeloid hücre kaynaklı T hücre bastırma arkasında araştırmak ve T hücreleri ile abluka bağışıklık baskılayıcı myeloid hücre yenileyici amaçlı bileşikler değerlendirmek.

Gerçek zamanlı hafiye-in Vitro tümör hücre Apoptosis içinde CD8 tarafından indüklenen+ T hücreleri Myeloid hücrelerin tümör infiltre bağışıklık baskılayıcı işlevlerini çalışmaya

Bu kağıt akış sitometresi-tabanlı bir tahlil kimyasal inhibitörleri ekran kitaplıklarına inhibitörleri ve T hücre reseptör sinyal etkileyen hedefleri tanımlaması için kullanır. Yöntem tanımlamak burada da yüksek üretilen iş gösterimleri için genişletilebilir.

T-hücre reseptör üzerinden tarama kimyasal inhibitörü kütüphanelerin sinyal arabulucu tanımlaması

Biz bir insan periferik kan mononükleer hücre (PBMC) - çeviriimmün-onkoloji araştırma için insanlaşmış ksenogreft fare modeli dayalı açıklar. Bu protokol, I-O terapi değerlendirmesi için benzer modellerin oluşturulması ve karakterizasyonu için genel bir kılavuz görevi görebılabilir.

Çevirisel İmmüno-onkoloji (I-O) Araştırma için İnsani Periferik Kan Mononükleer Hücre (PBMC) Engrafted Humanized Xenograft Modeli

Solid tümör dokularının kantitatif immün profillerini belirlemek ve immün-onkoloji biyomarker keşfi için klinik kohortlardan yararlanmak için RNA tabanlı bir yaklaşımın kullanımı moleküler ve enformatik protokollerle açıklanmıştır.

Solid Tümörlerin Prediktif İmmün Modellemesi

Burada sunulan birincil insan kanı monosit izolasyon yanı sıra makrofajlar ve dendritik hücreler ve çok hücreli insan akciğer modeli içine epitel hücreleri ile montaj içine farklılaşma için bir protokoldür. Proinflamatuar uyaranlara maruz kalındığında, taze izole edilmiş veya çözülmüş monositlerden farklı bağışıklık hücrelerinden oluşan kokültürlerin biyolojik yanıtları karşılaştırılır.

Tehlike Değerlendirmesi İçin Epitel Hücreleri ve Primer İmmün Hücrelerden Oluşan Çok Hücreli İnsan Alveoler Modeli

Bu protokol, immüno-onkoloji çalışmaları için insan bağışıklık sistemi (HIS) farelerinin neslini özetlemektedir. Bu modelde implante edilen insan tümörleri üzerinde insan immünoterapötiklerini test etmek için bu modelin kullanımındaki talimatlar ve hususlar, insan bağışıklık sisteminin tümöre tepkisini karakterize etmeye vurgu yapılarak sunulmuştur.

İnsan Tümörleri Taşıyan İnsanlaştırılmış Bir Fare Modelinde Kanser İmmünoterapötiklerinin Test Edilmesi

Öğrenin, insan Treg fonksiyonunu ölçmek için optimize edilmiş in vitro baskılama testini. Bu yöntem, tip 1 diyabet riski taşıyan bireylerde erken bağışıklık dengesizliği tespiti için kullanılır.

Insan In Vitro Bağışıklık Dengesizlik Erken Devlet Tanıma Tarama Aracı Olarak Bastırılması

Daha fazla video keşfet