Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

קולגן אני Assay Organotypic: פלטפורמה חשילה לבחינת התנהגות תא בהקשר 3-Dimensional

Published: October 13, 2011 doi: 10.3791/3089

Summary

שיטה מתוארת להכנת מטריצה ​​3-ממדית המורכבת מסוג קולגן אני ופיברובלסטים אנושיים ראשוניים. ג'ל organotypic זה משמש כמצע שימושי להעריך נדידת תאים פולשניים כי זה מחק את התכונות בסיסיות של הרקמה סטרומה והוא נוח לצורות רבות של מיקרוסקופיה.

Abstract

נדידת תאים היא בסיסית להיבטים רבים של ביולוגיה, כולל פיתוח, ריפוי פצעים, תגובות התאיות של המערכת החיסונית, וגרורות של תאים סרטניים. הגירה נחקרה בcoverslips זכוכית כדי להפוך את דינמיקה המתאימים לחקירה סלולרית על ידי מיקרוסקופ אור. עם זאת, זה הפך להיות ברור שהיבטים שונים של נדידת תאים תלויים בתכונות של הסביבה המקומית, כולל את האלסטיות שלו, הרכבו חלבון, והגודל נקבובי, שאינם מיוצגים בנאמנות על ידי שני מצעים נוקשים ממדים כגון זכוכית ופלסטיק 1. יתר על כן, אינטראקציה עם סוגים אחרים של תאים, כולל fibroblasts סטרומה 2 ו 3 תאים חיסוניים, הוכחה לשחק תפקיד קריטי בקידום הפלישה של תאים סרטניים. החקירה ברמה המולקולרית הראתה כי יותר ויותר דינמיקה מולקולרית, כולל תגובה לטיפול תרופתי, של תאים זהים שונה באופן משמעותי בהשוואה במבחנת in vivo 4.

באופן אידיאלי, זה יהיה הכי טוב כדי ללמוד נדידת תאים בהקשר הטבעי שלה ביצורי חיים, אולם זה לא תמיד אפשרי. מערכות ביניים רקמות תרבות, כגון מטריקס תא נגזר, matrigel, תרבות organotypic (מתואר כאן) explants רקמות, organoids, וxenografts, לכן ביניים ניסיוניים חשובים. מערכות אלו היבטים מסוימים של מקורבים בסביבת vivo אלא הם נוחים יותר למניפולציה ניסויית כגון שימוש בקווים ביציבות transfected סלולריות, משטרי טיפול תרופתי, לטווח ארוך והדמיה ברזולוציה גבוהה. מערכות ביניים כאלה שימושיים במיוחד כהוכחת עילה לאימות בדיקות ולקבוע פרמטרים הנדרשים לתמונת התגובה הדינמית של תאים וכתבי ניאון לפני ביצוע הדמית in vivo 5. ככאלה, הם יכולים לשמש תפקיד חשוב בהקטנת הצורך בניסויים בפרנסהבעלי חי ז.

Protocol

1. הקמת תרבויות פיברובלסטים מהעור explants

  1. 4 ביופסיות אגרוף מ"מ שנרכשו מזרוע אנושית ממוקמות בממ תוספת 100 יחידות / המ"ל פניצילין, סטרפטומיצין 100 מיקרוגרם / מ"ל, ו0.25 מיקרוגרם / המ"ל Fungizone.
  2. לקצץ כל שומן תת עורי וקוצצים דקים את הביופסיה לחתיכות קטנות על ידי מתנדנד להב אזמל מספר 24 נגד התחתון של צלחת פטרי.
  3. תרחיף רקמת מקום בבקבוק 25 סנטימטרים 2 רקמת תרבות עם תקשורת צמיחת פיברובלסטים הראשונית (MEM בתוספת 10% FCS, 100 יחידות / המ"ל פניצילין, סטרפטומיצין 100 מיקרוגרם / מ"ל, ו25 מיקרוגרם / המ"ל Fungizone) הוסיף עד פני השטח של בקבוק הוא מכוסה אך עומק נוזל אינו מספיק לרקמות לצוף.
  4. לאחר 3 ימי דגירה על 37 מעלות צלזיוס באווירת humidified של 5% CO 2, להוסיף 3 מ"ל של תקשורת צמיחת פיברובלסטים הראשונית.
  5. לאחר 3 ימי דגירת תקשורת שינוי נוסף בתקשורת צמיחה העיקרית פיברובלסטים טריות, או אם cells כמעט confluent הם עשויים להיות מפוצלים 01:04 לתקשורת טריה. (Fungizone ניתן להשמיט מנקודה זו ואילך).

2. שלב I - הכנת קולגן אני מזנבות עכברים

הערה: פרוטוקול כ 12-14 זנבות עכברי מתבגר (טריים או קפואים)

  1. הכן את זנב חולדה על ידי השטיפה באתנול 70% ולהסיר גידים כדלקמן:
  2. הסרת עור מזנב חולדה על ידי חיתוך באמצע הזנב מלמעלה עד למטה עם אזמל ומתגלגל לאורכו של הזנב.
  3. ניתוק גיד מהליבה של האזור הפרוקסימלי של הזנב.
  4. הסר גיד לעבר האזור הדיסטלי של זנב הימנעות הנדן באמצעות מלקחי שיניים.
  5. חלץ 1 גרם של גיד / 250 מ"ל של חומצה אצטית 0.5 מ 'על ידי ערבוב ב4 מעלות צלזיוס למשך 48 שעות.
  6. צנטריפוגה תמצית (7500 XG) במשך 30 דקות וזורקים את הכדור.
  7. הוסף נפח שווה של 10% (w / v) NaCl לsupernatant, ומערבב 30-60 דקות.
  8. דיאליזת פתרון קולגן נגד 6-8 שינויים של 6L ~ החומצה אצטית mM 17.5 (חומצה אצטית קרחונית 1 מ"ל לליטר מים קרים, 2 x שינוי היומי).
  9. צנטריפוגה קולגן dialysed ב 30,000 XG עבור 1.5 שעות.
  10. הסרת supernatant ומקום בבקבוק סטרילי.
  11. התאם קולגן אני ריכוז ל~ 2 מ"ג / מ"ל ​​באמצעות חומצה אצטית 0.5 מ"מ ב 4 ° C.

3. שלב השני - הגדרת מטריצת 3D עם fibroblasts המוטבע (לאפשר לחוזה במשך 8 ימים).

  1. הרכב את תמהיל שימוש בריאגנטים קרים ב 4 ° C בבקבוק מראש מצונן. שמור לי קולגן על קרח.
  2. לT75 בקבוק אחד של fibroblasts העיקרי confluent (~ מספר תא 1 x 10 6) שימוש:
    • קולגן 25 מ"ל עכברוש זנב (כ conc 2mg/ml)
    • 3 מיליליטר 10xממ
    • 0.22 M NaOH: הראשון, להוסיף 2ml, אז תוך ערבוב טיפה חכמה, עד הקולגן הופך כתום,
    • אבל לא ורוד (בדרך כלל עד 3 מ"ל). משוער p H = 7.2.
    • הערה: חשוב לוודא שבינוני / ג'ל נשאר ניטראלי או מעט חומצי כfibroblasts לא יתכווץ ג'ל אם ייחשף לתנאי אלקליין אפילו מעט.
  3. Trypsinise את fibroblasts, לסובב ב 400 XG במשך 5 דקות ולהסיר supernatant.
  4. במהלך 5 דקות ספין לעיל: היכון 12 x 35 מ"מ מנות פלסטיק - בדרך כלל להשיג 12 מנות מבקבוק אחד של fibroblasts / שילוב הקולגן.
  5. Re-להשעות fibroblasts ב3 FCS מ"ל ולהוסיף מייד לתערובת והמערבבים קולגן.
  6. צלחת כ -2.5 מ"ל של קולגן / פיברובלסטים למנה במהירות אפשרית. נסו להימנע מבועות והגדרת קולגן.
  7. בואו קולגן נקבע על 37 מעלות צלזיוס באווירת humidified של CO 2 5% באוויר במשך 10 דקות.
  8. הוסף 1ml של פיברובלסטים לגדולה התקשורת (DMEM + 10% FCS).
  9. לנתק את מטריצת הקולגן / פיברובלסטים מהצדדים של הצלחת באמצעות פיפטה.
  10. היום הבא: הוסף 1ml של תקשורת צמיחת פיברובלסטים (DMEM + 10% FCS).
  11. שינוי תקשורת בכל יום אחר. אפשר מטריצת הקולגן / פיברובלסטים לחוזה לכ 8 ימים, עד שהם מתאימים בצלחת 24 היטב (התכווצות מ ~ 3.5 סנטימטרים עד 1.5 סנטימטרי קוטרו, ראה תרשים 1).

הערה: ריכוז קולגן צריך להיות מותאם כך שיתאים ליישום. תדלל יותר את פתרון קולגן, מהר יותר זה יהיה חוזה על ידי fibroblasts. הבדלים קלים בקצב התכווצות יהיו מנוסים עם קבוצות שונות של קולגן באותו הריכוז. בדומה לכך, תרבויות שונות פיברובלסטים תתכווצנה בג'לי קולגן בשיעורים שונים, וככל שיותר fibroblasts להציג, מהר יותר את קצב ההתכווצות. ריכוז קולגן וצפיפות פיברובלסטים ולכן יכולים להתאים לשינוי בשיעור של התכווצות,והצפיפות הסופית של ג'ל קולגן.

4. השלב II - תאי ציפוי של עניין על גבי המטריצה

שימו לב: לעקר כל המלקחיים וציוד עם אתנול לפני השימוש.

  1. שימוש במלקחיים קהים, בעדינות להעביר מטריצת חוזה לצלחת 24 היטב. ודא זה לא קיפול.
  2. הכן את ההשעיה של תאים של ריבית בכ 4 10 1ml x 4 / מ"ל וצלחת (לאחר תאי trypsinising, ספין להיפטר טריפסין) על גבי המטריצה. מספר אמיתי של תאים הדרושים משתנה בהתאם לסוג התא בשימוש. מדיום סלולרי צריך להיות מדיום גידול נורמלי לתאים של עניין.
  3. לאפשר לתאים לגדול למפגש על גבי המטריצה, כ 3-5 ימים.

5. השלב III - העברת המטריצה ​​לרשת לפלישה (כ 0-21 ימים)

  1. חותך רשתות נירוסטה ליצור חצובה והחיטוי לפני השימוש (ראה איור 2).
  2. הנח רשת הסטרילי במנת הסנטימטר 6, להוסיף תקשורת צמיחה לרמה שמעל לרשת (כ 10.5ml). מטריצה ​​מניח על הרשת ועדינות לשאוב תקשורת כדי התחתון של המטריצה ​​הוא במגע עם תקשורת, אבל לא שקוע. זה נקרא כממשק אוויר / נוזל, שיוצר שיפוע שמקדם פלישה. החלף בינוניים כל ימים (ראה איור 2).
  3. לחיות תא, הדמית קשר באמצעות תאי ניאון ניתן הדמיה בשלב זה או קודם לכן. קולגן המכווץ או סיבי אני יכול להיות צלמתי באמצעות דור הרמוני שני (SHG, ראה איור 3). באמצעות עירור רב פוטונים משולבים עם גילוי שדה רחב אנו מוצאים שSHG יכול להיות צלם לפחות 100 מיקרומטר לתוך המטריצה, ואילו תאים להביע GFP cytoplasmic יכולים להיות צלם לפחות 200 מיקרומטר עמוק.

הערה: עם כל כבוד לכימות של פלישה, היום שבו matricies מונח על הרשתות מגדיר יום 0. מיקום ברשתות יוצר שיפוע של תקשורת סלולרית התרבות שמקדם int פלישה o המטריצה. דוגמאות ניתן הדמיה מעל 1 הבא - 21 יום (או יותר) כדי להעריך את תהליכים ביולוגיים כגון פלישה, התפשטות, הישרדות או בידול (ראה רשימת הפניה).

6. השלב IV - קיבוע

  1. הוסף 5 מ"ל של 4% PFA בצינור פלקון.
  2. העברת המטריצה ​​על גבי משטח שטוח. חותך את המטריצה ​​במחצית עם אזמל טרי ונקי (כפי שאתה תהיה מכתים את החתך), הרם את המטריצה ​​עם אזמל והעברה ל4% PFA, לתקן במשך הלילה.
  3. מטריצות Organotypic עכשיו מוכנות להכתים עם נוגדן / כתם של בחירה (ראה איור 3).

7. תוצאות נציג:

איור 1
איור דוגמה 1 של תערובת פיברובלסטים קולגן-החוזה הראשון של פיברובלסטים וקולגן זנב חולדה מנותקת מצלחת הפטר ואפשר לחוזה על 6-8 ימים.

איור 2 "src =" / files/ftp_upload/3089/3089fig2.jpg "/>
תרשים התקדמות assay 2 Organotypic. , סכמטי של קבוצת organotypic והתקדמות. ב ', דוגמה למטריצת הקולגן / פיברובלסט על גבי נירוסטה, רשת סטרילי כדי ליצור אוויר / ממשק נוזלי.

איור 3
איור 3 יישומים של assay organotypic. A, B לבלב אדנוקרצינומה תאי ductal אינם פולשניות וחודרניים (PDAC) פולשים לאורך זמן עם מטריצת organotypic. C, חיים מקבילים עור מראה האפידרמיס מרובדת על מרכיב עור collagenous פיברובלסטים-הוסכם. ד, C8161 תאים מלנומה בפולש לפיברובלסטים -נדבק מקביל collagenous העור. דואר, תאים פולשניים PDAC (ירוק) ואינטראקציה עם פלישת fibroblasts (אדום) בתוך מטריצת organotypic. F

Discussion

כאן אנו מציגים שיטה לייצור של מטריצה ​​מתאימה ללימודים של נדידת תאים פולשניים 06-08 מרס ממדים. המטריצה ​​מורכבת מסוג 1 סיבים קולגן, שנדבקו על פני תקופה של מספר ימים על ידי fibroblasts אפידרמיס האנושי ראשוני. קולגן הוא הוכן על ידי מיצוי חומצה, לא עיכול אנזימטי, השומר תגובתיות בקצות פולי פפטיד ומקדם קישור צולב של סיבי הקולגן למצרפים גדולים יותר על נטרול של תנאי חיץ 9. התוצאה היא ג'ל מחדש היווה אשר מחק באופן הדוק יותר את התכונות של קולגן בגוף חי ויש לו השלכות רבות על המאפיינים החודרניים של תאים בתרבית בג'לי. זה לא משנה אם חומר טרי או קפוא החל משמש, אבל שימוש בזנבות עכברים מתבגרים חשוב כי קולגן צלב-linking הוא יותר רופף בבעלי חיים צעירים. קולגן מבעלי חיים צעירים לכן קל יותר לחלץ, ומחדש מהווים-wנאמנות גבוהה ith.

מטריצת הקולגן יכולה להיות קבועה ומוכתמת נוגדנים מכוונים נגד גם בתאים סרטניים פולשניים או פיברובלסטים סטרומה 2,10 ושימושיים מאוד לבדיקת היעילות של תרופות שעלולות לעכב פלישת 5,6.

למרות שפרוטוקול זה מצביע על השימוש בfibroblasts עור האנושי הראשוני, זה אפשרי להשתמש פיברובלסטים ראשוניים מסוגי רקמות אחרים, בהתאם לסוג של רקמה תחת חקירה. אפשר גם להקים תרבויות באמצעות fibroblasts הנציח, כולל תאים שכבר transfected ביציבות עם conjugates החלבון פלואורסצנטי. בדרך זו גם תאי סטרומה וגידול יכולים להיות מתויג לדמיין אינטראקציות תא סלולרי במהלך הפלישה 11.

Disclosures

אין לנו מה למסור.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
10x MEM GIBCO, by Life Technologies 21430 -
NaOH Sigma-Aldrich 367176-500G Prepare 0.22 M stock in water
FCS PAA Laboratories A15-101 -
35 mm dishes Falcon BD 353001 For step 3.4
60 mm dishes Falcon BD 353004 For step 5.2
Spring forceps blunt Samco Scientific, Thermo Fisher Scientific E003/02 Toothed, not smooth
16% paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Dilute to 4% in PBS prior to use
Screens for cd-1, size 40 mesh Sigma-Aldrich S07707-5EA Stainless steel grids, 5 per pack
Dialysis tubing Medicell International 7607 2295 12 - 14 kD
PBS Oxford Labware BR0014G -
Acetic Acid Sigma-Aldrich 242853 -
24 well dish Falcon BD 353047 For step 4.1
Fungizone Invitrogen 15290018 -

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Yamada, K. M., Cukierman, E. Modeling tissue morphogenesis and cancer in 3D. Cell. 130, 601-610 (2007).
  2. Edward, M., Gillan, C., Micha, D., Tammi, R. H. Tumour regulation of fibroblast hyaluronan expression: a mechanism to facilitate tumour growth and invasion. Carcinogenesis. 26, 1215-1223 (2005).
  3. Patsialou, A. Invasion of human breast cancer cells in vivo requires both paracrine and autocrine loops involving the colony-stimulating factor-1 receptor. Cancer Res. 69, 9498-9506 (2009).
  4. Serrels, A. Real-time study of E-cadherin and membrane dynamics in living animals: implications for disease modeling and drug development. Cancer Res. 69, 2714-2719 (2009).
  5. Timpson, P. Spatial Regulation of RhoA Activity during Pancreatic Cancer Cell Invasion Driven by Mutant p53. Cancer Res. 71, 747-757 (2011).
  6. Edward, M., Quinn, J. A., Pasonen-Seppanen, S. M., McCann, B. A., Tammi, R. H. 4-Methylumbelliferone inhibits tumour cell growth and the activation of stromal hyaluronan synthesis by melanoma cell-derived factors. Br. J. Dermatol. 162, 1224-1232 (2010).
  7. Fusenig, N. E. Growth and differentiation characteristics of transformed keratinocytes from mouse and human skin in vitro and in vivo. J. Invest. Dermatol. 81, 168s-175s (1983).
  8. Nystrom, M. L. Development of a quantitative method to analyse tumour cell invasion in organotypic culture. J. Pathol. 205, 468-475 (2005).
  9. Sabeh, F., Shimizu-Hirota, R., Weiss, S. J. Protease-dependent versus -independent cancer cell invasion programs: three-dimensional amoeboid movement revisited. J. Cell. Biol. 185, 11-19 (2009).
  10. Amjad, S. B., Carachi, R., Edward, M. Keratinocyte regulation of TGF-beta and connective tissue growth factor expression: a role in suppression of scar tissue formation. Wound Repair Regen. 15, 748-755 (2007).
  11. Gaggioli, C. Fibroblast-led collective invasion of carcinoma cells with differing roles for RhoGTPases in leading and following cells. Nat. Cell. Biol. 9, 1392-1400 (2007).

Tags

Bioengineering גיליון 56 תרבות Organotypic נדידת תאים פלישה מטריצה ​​3-ממדית קולגן אני דור השני הרמוני אינטראקצית מארח גידול microenvironment
קולגן אני Assay Organotypic: פלטפורמה חשילה לבחינת התנהגות תא בהקשר 3-Dimensional
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Timpson, P., Mcghee, E. J., Erami,More

Timpson, P., Mcghee, E. J., Erami, Z., Nobis, M., Quinn, J. A., Edward, M., Anderson, K. I. Organotypic Collagen I Assay: A Malleable Platform to Assess Cell Behaviour in a 3-Dimensional Context. J. Vis. Exp. (56), e3089, doi:10.3791/3089 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter