Summary
Мы представляем в пробирке мыши плода систему культуры эритробласт печени, что рассекает ранние и поздние этапы терминала эритропоэза. Эта система облегчает функциональный анализ специфических генов в разных стадиях развития.
Abstract
Эритропоэз включает динамический процесс, который начинается с решимости эритроидная пакетных единиц (БОЕ-ES) с последующим быстро делящиеся эритроидного колониеобразующих единиц (КОЕ-ES). После КОЕ-Эс, клетки морфологически узнаваемым и обычно называют терминальные эритробласты. Одна из проблем для изучения терминала эритропоэза является отсутствие экспериментальных подходов рассекать функций генов в хронологическом порядке. В этом протоколе, мы описываем уникальную стратегию, чтобы определить функции генов в ранних и поздних стадиях терминального эритропоэза. В этой системе, мышь плода Ter119 печени (маркер зрелых эритроидных клеток) отрицательные эритробластов очищали и трансдуцированных экзогенной экспрессии кДНК или малых РНК шпильки (shRNAs) для интересующих генов. Затем клетки культивировали в среде, содержащей факторы роста других, чем эритропоэтин (ЕРО), чтобы поддерживать их предшественников этап в течение 12 часов, позволяя экзогенные кДНК или shRNAsвыразить. Клетки были изменены на Epo среды после 12 часов, чтобы индуцировать дифференцировку и пролиферацию клеток, а экзогенные генетические материалы были уже выражены. Этот протокол облегчает анализ генных функций в ранней стадии терминального эритропоэза. Для изучения поздно терминала эритропоэз стадии, клетки немедленно культивировали в Эпо среду после трансдукции. Таким образом, эти клетки уже дифференцированы в поздней стадии эритропоэза терминала, когда были выражены трансдуцированных генетические материалы. Мы рекомендуем общее применение этой стратегии, которая помогла бы понять подробные функций генов в различных стадиях терминала эритропоэза.
Introduction
Эритропоэза является процесс дифференциации мультипотентных гемопоэтических стволовых клеток в зрелые эритроциты. Это поэтапный процесс включает в себя формирование привержены эритроидная пакетных единиц (БОЕ-ES), быстро делящиеся эритроидные колониеобразующих единиц (КОЕ-Эс), и морфологически распознаваемых эритробластов 1,2. Терминал эритропоэз из клеток-предшественников CFU-E включает в себя последовательную эритропоэтин-зависимые и независимые этапы 2,3. На ранней стадии терминального эритропоэза, эритропоэтин (ЕРО) связывается со своим рецептором на поверхности клетки и индуцирует серию последующих сигнальных путей, которые предотвращают апоптоз клеток и способствуют быстрому клеточных делений и экспрессию гена 1,4. В поздней стадии терминального эритропоэза, эритробласты пройти выход терминал клеточного цикла, хроматин и ядра конденсации, и экструзию высоко конденсированных ядер 5.
Наше понимание терминалаэритропоэз значительно улучшилась за последние несколько десятилетий, что во многом благодаря успешному использованию нескольких в пробирке и в естественных мышиных моделях 6-9. Среди этих моделей, в пробирке культуру мыши плода эритробластов печени предоставляет много преимуществ, включая простоту очистки клеток, быстро пролиферации и дифференцировки, и ближе имитировать человеческой эритропоэза 10,11. В этой системе, большое количество клеток-предшественников эритроидного от мыши печени плода может быть легко изолированы от одной стадии очистки Ter119 (маркер для зрелых эритроидных клеток) негативных эритробластов. В течение двух дней культуры эритробластов, дифференцировки этих клеток можно контролировать с помощью проточной цитометрии анализа, основанного на поверхностной экспрессии рецептора трансферрина с (CD71) и Ter119 антигена 12. Кроме того, энуклеации из терминальной дифференцировки эритробластов могут быть обнаружены с помощью ДНК-производителя (Hoechst 33342) 13. Кроме того, очищенные предшественники могут быть генетически модифицированы экзогенного выражения кДНК или малых РНК шпильки (shRNAs) для интересующих генов, что облегчает механистические исследования функций экспрессии генов на эритропоэз 11,13,14.
С другой стороны, высокая скорость роста клеток может быть обоюдоострым оружием, так как трудно характеризуют функции генов в различных стадиях терминала эритропоэза. В большинстве случаев, трудно определить, является ли конкретные функции генов в ранней стадии терминального эритропоэза так как по времени кДНК или shRNAs выраженной, клетки уже прошли раннюю стадию. Чтобы решить эту проблему, мы разработали уникальную систему, чтобы вскрыть ранние и поздние этапы терминала эритропоэза. Для ранней стадии терминала эритропоэза, генетически модифицированные Ter119 отрицательные эритробластов культивировали в EPO-свободного среды, но содержащий фактор стволовых клеток (SCF), ИЛ-6 и FLT3лиганд сохранить свой статус предшественников и позволяют трансдуцированных кДНК или ShRNA выражению 13. Клетки были изменены на Epo, содержащей среду после 12 часов, чтобы индуцировать пролиферацию и дифференцировку клеток. Таким образом, когда клетки начали дифференцироваться, уже выразили трансдуцированных кДНК или shRNAs. Для поздней стадии терминального эритропоэза, Ter119 отрицательные эритробласты культивировали в ЭПО сразу среде, содержащей после трансдукции. Таким образом, можно проанализировать функции генов, представляющих интерес в поздней стадии терминального эритропоэза. Таким образом, широкое применение этой системы поможет рассекать функций генов в различных стадиях терминала эритропоэза.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Эксперименты, описанные в этом протоколе были проведены в соответствии с руководящими принципами и правилами, установленными Северо-Западного университета Уходу за животными и использованию комитета.
1 Получение культуральной среде
- Подготовьте фибронектина решение. Добавить 1 мл воды на одну ампулу человеческого фибронектина (1 мг). Оставьте раствор в капот культуры ткани в течение 30 мин без перемешивания. Передача общий объем жидкости в 50 мл PBS, чтобы получить конечную концентрацию 20 мкг / мл, и осторожно перемешать также. Сделать фибронектин раствор свежей перед нанесением на пластину (смотри ниже).
- Подготовьте 50 мл ЭПО свободной среде (SCF среднего). Комбинат перечисленных ингредиентов в таблице 1. Среда может храниться при температуре 4 ° С в течение 1 месяца, когда только что приготовлен.
- Подготовьте 50 мл ЭПО, содержащей среде. Комбинат перечисленных ингредиентов в таблице 2. Среду можно хранить при температуре 4 ° С в течение 1 месяца, когда только что приготовлен. 2 Фибронектин покрытием плиты
- Добавить 1 мл раствора фибронектина в каждую лунку 6-луночного планшета (или 0,5 мл в каждую лунку 12-луночного планшета). Оставьте пластину в капот культуры ткани в течение 1 часа.
- Промыть лунки стерильной водой в два раза и просушить на воздухе пластину.
- Оберните пластину и сохранить в холодном помещении при температуре 4 ° C.
- Подготовка клеток печени плода Всего
- Жертвоприношение МОВсебе на СО 2 вдоха и смещения шейных позвонков. Спрей живота с 70% этанола для дезинфекции. Откройте живота с рассекает ножницы, чтобы удалить матку. Вымойте матку в 1x PBS.
- Проанализируйте плодов в стерильных условиях с использованием капюшон тканевой культуры и автоклавного инструментов и мыть в 1x PBS.
- Проанализируйте фетальные печень из плодов. Держите тело плода с одним пинцетом, осторожно потяните плода печень (розового цвета) от тела с другим пинцетом. Очистите печень плода пинцетом удалить связанные фиброзных тканей. Поместите все плода печень в свежую 1x PBS, содержащей 10% фетальной бычьей сыворотки.
- Механически нарушить плода печень с помощью пипетки вверх и вниз.
- Фильтр клеточной суспензии через сито 40 мкм клеток в 50 мл коническую пробирку. Гранул клетки при 800 х г в течение 5 мин.
- Аспирата супернатант и ресуспендирования клеток в 1 мл PBS с 10% FBS (примерно 8 E13.5 плода печеньна мл).
- Очистка Ter119 отрицательных эритробласты
- Блок клетки с крысиным IgG (0,2 мг / мл) на льду в течение 15 мин.
- Без промывки или центрифугированием, добавить биотинилированного анти-Ter119 антитела к клеточной суспензии (1 мкг / мл). Выдержите в течение 15 мин на льду.
- Промыть в 1х PBS с 10% FBS (1:10) и центрифугируют при 800 х г в течение 5 мин. Ресуспендируют клеток в 1 мл PBS с 10% FBS.
- Добавить 75 мкл стрептавидин сопряжено с магнитными частицами и выдержать в течение 10 минут на льду.
- Добавить объем в 2,5 мл ЗФР, содержащим 10% FBS. Передача клеточной суспензии в 5 мл полипропиленовые трубки с круглым дном.
- Вставьте трубку в клеточной сортировки аппарата магнитного и инкубировать в течение 10 мин. Ter119 позитивные клетки будут приложить к стороне трубки. Одиноких Ter119 отрицательные эритробласты останется в суспензии.
- Налейте клеточной суспензии в новую 5 мл полипропиленовые трубки с круглым дном.
- Повторите шаги 3.2.6 и 3.2.7 для удаления остаточного Ter119 положительных клеток.
- Гранул клетки при 800 х г в течение 5 мин. Аспирируйте от супернатанта. Ресуспендируют клеток в 1 мл PBS, содержащей 10% FBS, и рассчитывать живых клеток трипановым синим.
- Пластина очищенный Ter119 негативные фетальных клеток печени на 3-5 х 10 5 / хорошо в фибронектина покрытием 12-луночного планшета (регулировать количество клеток, если используете другую тарелку).
- Добавить полибрена до конечной концентрации 10 мкг / мл для облегчения вирусной трансдукции. Вращение инфицировать клетки с лентивирусов или ретровирусы, кодирующей кДНК или ShRNA, при 800 х г в течение 1-1,5 ч при 37 ° С.
- Чтобы проверить функции генов в ранней стадии терминального эритропоэза (Рисунок 1 пунктирными линиями).">
Культура Трансдуцированные клетки в Европейской бесплатно средней (SCF среды) в течение 12 часов, чтобы позволить экспрессию трансдуцированными генов и поддержание состояния предшественников. - Центрифуга клетки при 800 х г в течение 5 мин. Аспирируйте супернатант. Ресуспендируют клеток в 1 мл среды, содержащей Epo в каждую лунку 12-луночного планшета.
- После культивирования в течение 24 или 48 часов, сбора клеток для дальнейших анализов.
- Генный тест функции в поздней стадии терминального эритропоэза (рис 1 сплошные линии).
- Культура Трансдуцированные клетки сразу в Европейской содержащей среде.
- После культуре для 24 или 48 часов, сбора клеток для дальнейших анализов.
- Вымойте и ресуспендирования клеток в 1x PBS. Урожай 2 х 10 5 культивируемые клетки для анализа проточной цитометрии.
- Выдержитеклетки с флуорофоров-конъюгированного антитела течение 20 мин при комнатной температуре в темноте. Чтобы проверить дифференциацию, использовать APC сопряженных анти-CD71 и PE сопряженных анти-Ter119. Чтобы проверить энуклеации, использовать Hoechst 33342 пятно в дополнение к другим антителам.
- Вымойте клеток с 1x PBS. Ресуспендируют клеток в 0,5 мл PBS, содержащим 1% FBS и пропидий йодида (PI) (1 мкг / мл), чтобы окрасить мертвые клетки и исключить их из анализа.
- Проведение поток cytrometric анализ. Проанализируйте один цвет окрашенных и неокрашенных контрольные клетки сначала для регулировки и компенсации цитометра.
3 Очистка печени плода эритробласты
ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте плода печень от E13 до E15 приурочен беременных мышей (C57BL / 6). E13.5 печени являются предпочтительными для максимизации выхода CFU-E предшественников. Для получения приуроченные беременных мышей, от 6 до 8 недель мужские и женские мышей помещали в одной клетке (обычно один самец с одним или двумя самками). Женский вагинальные пробки были проверены на следующее утро, чтобы определить, если спаривание прошло успешно. Первый день беременности было на следующий день после вилка был найден.
4 Трансдукция Вирусы кДНК, кодирующей или ShRNA
5 Культура Трансдуцированные Ter119 Отрицательный мыши печени плода эритробласты
6 Окрашивание клеток, культивированных фетальной печени для проточной цитометрии анализа
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Рисунок 1 описывает экспериментальные стратегии. Протокол состоит из двух независимых условий для таргетинга функции сигнальных молекул в ранних и поздних стадиях терминального эритропоэза. Ter119 отрицательные плода эритробласты печени были очищены от E13.5 мыши плода. Проточной цитометрии анализ плода эритроидных клеток печени до и после очистки показали, что очистка была эффективна (Фигуры 2А и 2В). Для ранней стадии терминала эритропоэза (фиг.1 пунктирные линии), после вирусной трансдукции клетки культивировали в EPO-свободного среды (SCF среднего) в течение 12 часов. В течение этого периода, клетки показал минимальное дифференциации (Рисунок 2C) с без существенного апоптоза наблюдается в трансдуцированных клеток (GFP положительный) (Рисунок 3). Клетки начали дифференцироваться после передачи, чтобы EPO-содержащей среде (фиг.4 сильная>), который был похож на клетках, культивируемых в среде, содержащей Epo непосредственно после трансдукции (фиг.1, сплошные линии и фиг.5). В течение 2 дней культуры в Epo, содержащей среды в обоих методов, большинство клеток-предшественников эритроидного (CD71 с низким Ter119 низкий) выставлены индукцию рецептора трансферрина (CD71) и Ter119 на 2 день (CD71 высокой Ter119 высокий) (фиг.4А и рис 5A). Энуклеация произошло на 2 день, как это было отмечено Hoechst высокой Ter119 высокие (эритробластов) и Hoechst низкий Ter119 высоких (ретикулоцитов) (Рисунок 4B и рис 5б). Следует отметить, что клетки немедленно культуры в EPO (сплошная линия) была относительно более эффективным для дифференциации и энуклеации, чем клетки культивируют первый в SCF среды (пунктирная линия).
фигура 1 "FO: контент-ширина =" 5 дюймов "шириной =" 500 "SRC =" / файлов / ftp_upload / 51894 / 51894fig1highres.jpg "/>
Рис.1 Схематический обзор экспериментальной стратегии. Пунктирная и сплошные линии представляют методы изучения сигнальных молекул в ранних и поздних стадиях терминального эритропоэза, соответственно.
Рисунок 2 проточной цитометрии анализ мыши плода эритроидных клеток печени до и после очистки Ter119 отрицательных эритробластов. () Всего фетальные клетки печени, окрашенных Ter119 и CD71. (B) Очищенная Ter119 негативные клетки, окрашенные Ter119 и CD71. (C) Очищенные Ter119 негативные клетки после 12 ч культуры в SCF среды. Мольбыэлектронной нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 3 проточной цитометрии анализ апоптоза после культивирования в EPO-Средний (SCF среды) в течение 12 часов. (AB) В Ter119 отрицательные эритробласты трансдуцировали контроля лентивирусы (А) или лентивирусы кодирующих зеленый флуоресцентный белок (GFP) (B). Процентное содержание GFP позитивных клеток, трансдуцированных был представлен после 12 ч культуры в среде SCF. (CD) Анализ апоптоза в GFP отрицательным (С) и (D положительных клеток) из (B).
Рисунок 4 Цитометрический анализ дифференциации и энуклеации трансдуцированной erythroblaпетель культивируют в среде с последующей SCF ЕПВ среды. (А) В на фиг.3, GFP отрицательные и положительные клетки закрытого типа для анализа дифференциации с использованием CD71 и Ter119 после того, как клетки были изменены на Epo среде и культивировали в течение дополнительных 48 часов. (В) Энуклеация анализа с помощью Hoechst и Ter119 из указанных клетки после 48 часов в Европейской среды.
Рисунок 5 проточной цитометрии анализ дифференцировки и энуклеации эритробластов трансдуцированных непосредственно, культивируемых в среде Epo. (А) Ter119 негативные клетки трансдуцированных лентивирусов, кодирующих GFP. Клетки культивировали непосредственно в Epo среде после трансдукции. Дифференцировки клеток анализ GFP отрицательных и положительных клеток проводили с использованием CD71 и Ter119 после 48 ч в культуре. (В) Анализ Энуклеация изуказанные клетки с помощью Hoechst и Ter119 после 48 часов в культуре.
| Ингредиент | Количество |
| IMDM | 41,385 мл |
| Фетальной бычьей сыворотки (FBS, 15%) | 7,5 мл |
| б -меркаптоэтанола (10 -4 М) | 50 мкл (10 -1 М складе в IMDM) |
| Пенициллин-стрептомицин (1%) | 500 мкл |
| Глютамин (2 мМ) | 500 мкл |
| Stem Cell Factor (50 нг / мл) | 25 мкл из 100 нг / мл наличии |
| FLT3 лиганда (FLT-3L) (30 нг / мл) | 30 мкл из 50 нг / мл наличии |
| IL-6 (20 нг / мл) | 10 мкл из 100 нг / мл наличии |
Таблица 1 Ингредиент FOг SCF среднего (ЭПО бесплатно среднего).
| Ингредиент | Количество |
| IMDM | 36,3 мл |
| FBS (15%) | 7,5 мл |
| Бычий сывороточный альбумин (БСА, 10%) | 5 мл (10% акций в IMDM) |
| Инсулин (10 мг / мл) | 50 мкл от 4 ° C складе |
| Холо-трансферрина (200 мг / мл) | 200 мкл (50 мг / мл в воде, -20 ° C складе) |
| б -меркаптоэтанола (10 -4 М) | 50 мкл (10 -1 М складе в IMDM) |
| Пенициллин-стрептомицин (1%) | 500 мкл |
| 2 мМ глутамина | 500 мкл |
| EPO (2 Ед / мл) | 33 мкл (3000 ед / мл складе) |
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Здесь мы представляем уникальную систему, чтобы хронологически проанализировать мыши плода терминала печени эритропоэз. За счет применения различных условиях культивирования, мы успешно расчлененный терминала эритропоэз в ранних и поздних стадиях. Это особенно важно, чтобы определить механизмы генов с множеством функций. Например, Rac GTPases играют важную роль в различных стадиях терминала эритропоэза. Торможение Rac GTPases в ранней стадии дифференциации терминал влияет эритропоэз и пролиферации клеток. С другой стороны, ингибирование активности рац GTPases в поздней стадии терминала эритропоэз блоков энуклеации, не влияя на дифференцировку клеток, пролиферации, или выживание 13.
Несколько важных шагов в этом протоколе следует иметь в виду,. Во-первых, E13.5 мыши плода печень, являются предпочтительными для очистки Ter119 негативных клетках. Старые эмбрионы могут быть использованы, но proportiна из предшественников из общего клеток фетальной печени будет низкой. Во-вторых, важно использовать низким содержанием эндотоксина BSA в Epo среды, так как он является критическим для энуклеации, хотя механизм не ясно. В-третьих, хотя фибронектин, как сообщается, важно для эритропоэза 15, мы обнаружили, что использование пластины, покрытой фибронектина была необязательной. Это не влияет на клеточную пролиферацию, дифференцировку, или энуклеации в нашей системе. Тем не менее, фибронектин может быть полезно для клетки приложить к пластине, которая может быть важным для некоторых приложений, таких как иммунной окраски. В-четвертых, небольшой процент ретикулоцитов или поздней стадии эритробластов может потерять GFP сигнал, который был проведен с трансдуцированных клеток. В качестве альтернативы мы используем человеческого CD4 в качестве маркера для отслеживания трансдуцированных клеток. Наконец, предыдущие доклады рекомендуется удаление эритропоэтина из культуры на 1 день 11. Мы обнаружили, что это не было необходимо, чтобы сделать так, поскольку не было никакого существенного различия в ячейкедифференциация, пролиферация, или энуклеация с удалением или без удаления эритропоэтина. Напротив, изменение среды может привести к потере клеток.
Используя ту же самую стратегию, недавно мы обнаружили более 30 генов, которые играют новые функции на различных этапах терминала эритропоэза (Zhao и соавт., Неопубликованные результаты). Как Rac GTPases, многие из этих генов играют двойную функцию в обоих ранних и поздних стадиях терминала эритропоэза. Это указывает на то, что сигнальные пути в терминальной эритропоэза тесно взаимосвязаны. Гены, вовлеченные в цитоскелета ремоделирования и ядерной конденсации являются те, которые, как правило, играют двойную функцию в связи с критическими роли этих сигнальных путей по всей терминальной эритропоэза. С другой стороны, гены, участвующие в пути, таких как синтеза гема и генерации эритроидного конкретной плазматическую мембрану, как правило, более ограничены в ранней стадии терминала эритропоэза 16,17. Хотя Therэ определенные ограничения этой экспериментальной стратегии, такие как относительно низкой эффективности инфекции по сравнению с трансдукции клеточных линий, и трудности сбивая белки с большим периодом полураспада, мы рекомендуем рутинную практику для использования нашей системы, учитывая важность рассекает функций генов в различных стадиях терминала эритропоэза. Кроме того, этот экспериментальный стратегия также может быть использована для других целей. Например, используя условие SCF среднего культуры, гены, которые участвуют в поддержании стволовых клеток свойствами, такими как самообновления или дифференциации могут быть проанализированы. Используя метод анализа поздней стадии эритропоэза, можно также определить функции генов, которые могут быть вовлечены в аутофагии для удаления органелл.
В общих чертах, этот экспериментальный стратегия может быть применена к функциональным исследовании других кроветворных систем, таких как megakaryopoiesis и миелопоэза. Успешное применение этого SТРАТЕГИЯ также выявить скрытую сторону молекулярных механизмов специфических генов в разных стадиях развития клеток крови.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют, что они не имеют конкурирующие финансовые интересы.
Acknowledgments
Это исследование было поддержано NIH R00HL102154, и Американского общества гематологии ученого премии в P Джи.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Iscove's Modified Dulbecco's MediumIMDM (IMDM) | Gibco | 12440-053 | |
| Fetal bovine serum (FBS) | GEMINI Bio-product | 700-102P | |
| Penicillin-Streptomycin solution | Hyclone | SV30010 | 100x |
| L-Glutamine | Hyclone | SH30034.01 | 200 mM |
| Mouse FIT3 Ligand (Flt-3L) | BD Biosciences | 14-8001-80 | |
| Mouse Recombinant Interleukin-6 (IL-6) | GEMINI Bio-product | 300-327P | |
| Fibronectin | BD Biosciences | 354008 | |
| Bovine Serum Albumin (BSA) | STEMCELL TECH | 9300 | 10% stock in IMDM |
| Erythropoietin(Epo) | PROCRIT | NOC 59676-303-00 | 3,000 U/ml stock |
| Streptavidin particles Plus | BD Pharmingen | 557812 | |
| EasySep Magnet | STEMCELL TECH | 18000 | |
| Polypropylene Round-Bottom Tube, 5 ml | FALCON | 352063 |
References
- Hattangadi, S. M., Wong, P., Zhang, L., Flygare, J., Lodish, H. F. From stem cell to red cell: regulation of erythropoiesis at multiple levels by multiple proteins, RNAs, and chromatin modifications. Blood. 118 (24), 6258-6268 (2011).
- Richmond, T. D., Chohan, M., Barber, D. L. Turning cells red: signal transduction mediated by erythropoietin. Trends in cell biology. 15 (3), 146-155 (2005).
- Eshghi, S., Vogelezang, M. G., Hynes, R. O., Griffith, L. G., Lodish, H. F. Alpha4beta1 integrin and erythropoietin mediate temporally distinct steps in erythropoiesis: integrins in red cell development. The Journal of cell biology. 177 (5), 871-880 (2007).
- Koury, M. J., Bondurant, M. C. Maintenance by erythropoietin of viability and maturation of murine erythroid precursor cells. Journal of cellular physiology. 137 (1), 65-74 (1988).
- Ji, P., Yeh, V., Ramirez, T., Murata-Hori, M., Lodish, H. F. Histone deacetylase 2 is required for chromatin condensation and subsequent enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts. Haematologica. 95 (12), 2013-2021 (2010).
- Dumitriu, B., et al. Sox6 cell-autonomously stimulates erythroid cell survival, proliferation, and terminal maturation and is thereby an important enhancer of definitive erythropoiesis during mouse development. Blood. 108 (4), 1198-1207 (2006).
- Rector, K., Liu, Y., Van Zant, G. Comprehensive hematopoietic stem cell isolation methods. Methods in molecular biology. 976, 1-15 (2013).
- Rossi, L., Challen, G. A., Sirin, O., Lin, K. K., Goodell, M. A. Hematopoietic stem cell characterization and isolation. Methods in molecular biology. 750, 47-59 (2011).
- Choi, H. S., Lee, E. M., Kim, H. O., Park, M. I., Baek, E. J. Autonomous control of terminal erythropoiesis via physical interactions among erythroid cells. Stem cell research. 10 (3), 442-453 (2013).
- Bhatia, H., et al. Short-chain fatty acid-mediated effects on erythropoiesis in primary definitive erythroid cells. Blood. 113 (25), 6440-6448 (2009).
- Zhang, J., Socolovsky, M., Gross, A. W., Lodish, H. F. Role of Ras signaling in erythroid differentiation of mouse fetal liver cells: functional analysis by a flow cytometry-based novel culture system. Blood. 102 (12), 3938-3946 (2003).
- Socolovsky, M., et al. Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts. Blood. 98 (12), 3261-3273 (2001).
- Ji, P., Jayapal, S. R., Lodish, H. F. Enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts requires Rac GTPases and mDia2. Nature cell biology. 10 (3), 314-321 (2008).
- Chida, D., Miura, O., Yoshimura, A., Miyajima, A. Role of cytokine signaling molecules in erythroid differentiation of mouse fetal liver hematopoietic cells: functional analysis of signaling molecules by retrovirus-mediated expression. Blood. 93 (5), 1567-1578 (1999).
- Patel, V. P., Lodish, H. F. A fibronectin matrix is required for differentiation of murine erythroleukemia cells into reticulocytes. The Journal of cell biology. 105 (6 Pt 2), 3105-3118 (1987).
- Udupa, K. B., Lipschitz, D. A. Endotoxin-induced suppression of erythropoiesis: the role of erythropoietin and a heme synthesis stimulating factor. Blood. 59 (6), 1267-1271 (1982).
- Koury, M. J., Sawyer, S. T., Brandt, S. J.
