Summary
Здесь мы представляем протокол к изоляции и охарактеризовать структуру, обонятельные потенции и поведенческие реакции предполагаемого феромонов соединений морской миноги.
Abstract
Биопроб руководствуясь Фракционирование это итеративный подход, использующий результаты физиологических и поведенческих bioassays изоляции и выявление активных феромонов соединения. Этот метод привела к успешной характеристика химических сигналов эту функцию как феромоны в широком диапазоне видов животных. Море миноги полагаются на обоняние обнаружить феромоны, которые посредником физиологических или поведенческих реакций. Мы используем эти знания биологии рыб постулировать функций предполагаемым феромоны и направлять изоляции и идентификации компонентов активного феромонов. Хроматография используется для извлечения, сконцентрироваться и отдельных соединений с кондиционерами воды. Электро olfactogram (ЭОГ) записи проводятся для определения, какой фракции вызывают обонятельных ответы. 2 выбор лабиринт поведенческих анализов затем используется для определения если любой из пахучих фракций поведенчески также активны и побудить предпочтение. Спектрометрические и спектроскопические методы предоставляют молекулярный вес и структурной информации для оказания помощи с разяснения структуры. Биологическую чистых соединений подтверждено ЭОГ и поведенческих анализов. Поведенческие реакции, наблюдается в лабиринте в конечном счете должно проверяться в поле параметр для подтверждения их функции в обстановке естественный поток. Эти bioassays играть двойную роль 1) направлять процесс фракционирования и 2) подтвердить и далее определять биологическую изолированных компонентов. Здесь мы приводим представительных результатов идентификации феромонов Морская минога которые иллюстрируют утилита биопроб руководствуясь фракционирование подход. Идентификация Морская минога феромоны особенно важна, потому что модуляции своей коммуникационной системы феромонов среди вариантов считается для контроля инвазивных Морская минога в районе Великих озер в Лаврентийские горы. Этот метод может быть легко адаптирована для характеристики химической связи в широком массиве таксонов и пролить свет на водной основе химической экологии.
Introduction
Феромоны конкретные химические сигналы, выпущенный лицами, которые помогают им в поиске источников питания, обнаружение хищников и посредничество социальных взаимодействий сородичами1. Связь феромоны насекомых была хорошо изучены2; Однако химической идентификации и биологические функции водных позвоночных феромоны не были изучены как широко. Знания о личности и функции феромоны выпустила может применяться для облегчения восстановления угрожаемых видов3,4 или управления вредителей видов5,6. Применение этих методов требует изоляции и характеристика компонентов биоактивные феромонов.
Феромоны идентификации является филиалом натуральный продукт химии. Прогресс в исследованиях феромонов был частично ограничено из-за природы феромоны молекул, сами. Феромоны зачастую нестабильным и выпущенный в небольших количествах, и только несколько методов выборки существуют для обнаружения мизерных количествах летучих7,8 или9водорастворимые соединения. Подходы к идентификации феромоны включают 1) целевой скрининг известных соединений, 2) метаболомики и 3) биопроб руководствуясь фракционирования. Целевые обследования известных соединений коммерчески доступных метаболических побочных продуктов физиологических процессов, предположили, чтобы функционировать как феромоны. Этот подход ограничивает потому что исследователи могут проверять только известных и доступных соединений. Однако это привело к успешной идентификации половых гормонов в золотой рыбки эту функцию как феромоны10,,1112. Метаболомика — это второй феромонов идентификации подход, который отличает потенциальные малые молекулы продуктов метаболизма в биологической системе13. Сравнение метаболические профили двух групп (т.е., активные против неактивного экстракт) позволяет идентифицировать потенциальные метаболических профиля от которого очищается метаболит, осветил структура и биологическую является подтвержденным14. Аддитивные или синергических эффектов сложных формулировок конкретных смесей, скорее всего, быть обнаружены с метаболомики метаболитов, которые считаются вместе, а не как ряд фракций13. Тем не менее реализация метаболомики полагается на наличие синтетических ссылки потому, что полученные данные не способствуют прояснению новых структур.
Руководствуясь биопроб Фракционирование это комплексный итеративный подход, который охватывает два поля: Химия и биология. Этот подход использует результаты физиологических и поведенческих bioassays изоляции и выявление активных феромонов соединения. Незрелая выдержка фракционированный химические свойства (т.е.молекулярный размер, полярности, и т.д.) и протестированы с электро olfactogram (ЭОГ) записи и/или в биопроб. Биологически активных компонентов отсев, повторяя эти шаги фракционирования и EOGs и/или bioassays. Спектрометрический и спектральными методами, которые обеспечивают молекулярный вес и структурной информации для создания шаблона соединения, которые будут обобщены освещены структуры чистой активных соединений. Фракционирование биопроб руководствуясь может принести различных метаболитов и потенциально Роман феромонами с уникальной химической скелеты, которые вряд ли предсказал от биосинтетических пути.
Здесь мы описываем биопроб руководствуясь фракционирование протокол, используемый для изолировать и характеризует биологическую мужчины Морская минога Секс феромоны соединений. Морская минога (Petromyzon marinus) является идеальным позвоночных модель для изучения феромонов коммуникации, потому что эти рыбы полагаются на обонятельные обнаружения химических сигналов посредничать их проходных истории жизни, состоит из трех этапов: личинки, несовершеннолетних и взрослых. Морская минога личинки зарываются в отложениях пресноводной потоков, пройти радикальные метаморфоза и превратить в несовершеннолетних, которые мигрируют в озера или океана, где они паразитируют крупных принимающих рыбы. После отсоединения от принимающей рыбы, взрослые мигрируют обратно в нереста потоки, руководствуясь мигрирующих феромоны, выпущенное поток резидентов личинки15,16,,1718,19 . Зрелые мужчины взойти на время нереста, релиз многокомпонентных Секс феромоны для привлечения товарищей, периодически появляться примерно на неделю и затем умирают15,20. Определение Морская минога феромоны имеет важное значение, потому что модуляции системы связи феромонов среди рассмотренных для контроля инвазивных морской миноги в Лауренциана Великих озер21вариантов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Все методы, описанные здесь были одобрены институциональный уход животных и использование Комитета Мичиганского государственного университета (AUF # 03/14-054-00 и 02/17-031-00).
1. сбор и добыча морской миноги кондиционерами воды
- Место сексуально пожилые мужской морской миноги (15-30 животных) в цистерне поставляется с 250 Л газированная вода озера Гурон, поддерживается на 16-18 ° C.
- Соберите мужчины кондиционерами воды в течение каждую ночь с июня по июль.
Примечание: морской миноги естественно умирают после нереста. Если рыба близится этот момент в его жизни, замените его свежие зрелые мужчины. - Экстракт кондиционерами воды методом экстракции твердой фазы.
- Замочите смолы в метаноле для 4 h перед загрузкой его в столбец. Загрузить смолы в столбце, а затем насоса 10 Л воды через колонку для устранения органических растворителей.
- Передайте кондиционерами воды из бака, холдинг рыбы через насосной системы в верхней части столбца. Вода проходит через кровать 2 кг умеренно полярных полимерных ионообменные смолы (например., смола амберлит XAD-7 HP), содержащийся в серии из четырех 2,5-л стекло столбцы. Поддерживать скорости загрузки между 400 и 600 мл/6 мин элюировать метаболитов с 10 Л метанола, сразу же после 5 Л ацетона.
Предупреждение: Этот шаг использует метанол и ацетон. Оба являются легковоспламеняющиеся и ядовитые.
Примечание: Пула остаточной может храниться при температуре-80 ° C до дальнейшей обработки.
- Повторно активируйте столбец после 1 недели обогащения, Стиральная его с водой (примерно 10 Л).
- Удаление органических растворителей (смесь метанола и воды) и урожай экстракт вращательное испарения для 5 h при пониженном давлении (до 300 мбар) при 40 ° C. Концентрации остатков воды путем замораживания сушки лиофилизации за 48 ч при-20 ° C до полного высыхания.
2. изоляция фракция бассейнов с хроматографии
- Замочите силикагель (230-400 mesh) на начальном этапе мобильные для 30 min. передачи гель с растворителем (подвеска) к столбцу стекла. Откройте клапан столбце Разрешить подвижная фаза пройти. Разрешить силикагель осадок и сформировать силикагель кровать.
- Тщательно перемешать выдержки с силикагель (70-230 сетки) и загрузить их в столбце жидкостной хроматографии над кроватью силикагель. Элюировать их с градиентом от 95% КХКЛ3 (хлороформ) / метанола (метанол) до 100% метанола, 2,5 Л в общем объеме. Соберите элюента в отдельных флаконов (каждый 10 мл).
Предупреждение: Хлороформ, используемые на этом шаге является ядовитым реагента. - Руководство объединения eluents в 20 фракций путем анализа хроматографии (ТСХ) тонким слоем.
- Выполните TLC эксперимент на предварительно покрытых силикагель пластины, применяя образца на стартовой линии и погружая стартовой линии пластины в развивающихся растворителей, (выбрать полярности на коэффициент КХКЛ3 метанола из 100-0%), в ампулах стекла танк.
- Выберите отношение развивающихся растворителя, чтобы сделать все пятна TLC с фактором удержания (Rf) от 0,3 - 0,8.
- После того, как развивающиеся растворителя достигает конца строки, вынуть пластину из танка и ждать 10 минут для растворителя испаряется.
- Визуализировать пятна сначала под УФ 254 Нм и затем пятно их распыления их с кислой метанола раствором 5% альдегид (20 мкл), опрыскивателя хроматографии и отопления их на 85 ° C в течение 3 мин.
Примечание: Красочные пятна на TLC табличке указывают основной компонент в фракции. - Объединить элюента до 20 долей, основанный на плашечный цвет и Rf сходство основной компонент.
- Концентрат дробь к остатков вращательное испарения при пониженном давлении (согласно свойство растворителей 300 мбар) при 40 ° C приблизительно 30 мин.
3. электро olfactogram (ЭОГ) записи для идентификации пахучих дроби/соединения
- Тянуть боросиликатного стекла капилляров (наружный диаметр: 1.5 мм, внутренний диаметр: 0.86 мм; длина: 100 мм) микропипеткой съемник с уровнем нагреватель установлен в 65.
- Оценка и вырежьте отверстие на кончике капилляра с наконечником алмазный стеклорез и заполнить его с расплавленный агар 0,4% в 0,9% физиологического раствора. Открытие на кончике капилляра должно быть около 10 мкм в диаметре.
- Заполнения вытащил капиллярного электродов от шаги 3.1-3.2 и твердотельные электроды Держатели быстровозводимые Ag/AgCl гранулы (см. Таблицу материалы) с 3 M с помощью микропипеткой KCl.
Примечание: Выбить воздушные пузыри в капилляр или держатель электрода. - Вставьте вытащил электродов в Держатели электродов.
- Подготовка 100 мл 10-5 M L-аргинин в угольного фильтра воды из L-аргинина Стоковый раствор 10-2 M в деионизированной воде (хранить при 4 ° C) в объемных колбу. Перевести 20 мл 10-5 M L-аргинин в стеклянный флакон.
- Для кривой концентрация реакция Подготовьте десятикратного разведений фракция бассейнов от шага 2.3 в стеклянные флаконы по 10 мл. Подготовьте свежие разведений ежедневно до экспериментов и использовать их в течение дня. Положите стеклянных флаконах рабочих растворов L-аргинин и фракция бассейн разведений в рециркуляционный водяной бане, чтобы позволить температуры сбалансировать 8 ° c.
- Анестезировать минога с 3-аминобензойной кислоты этилового эфира (MS222; 100 мг/Л) и парализовать его с внутримышечной инъекции gallamine triethiodide (3 мг/кг веса тела, 0,9% физиологического раствора) с помощью стерильного шприца.
Примечание: Достаточной глубины анестезии определяется путем наблюдения о непринятии Гилл, неспособность сохранить вертикальное положение, а не всасывания сторон танка, используя свои устные диска. Чтобы свести к минимуму любые микробного загрязнения до и во время операции, стерильных перчатках и замочить рассечение инструменты в 70% этанола (v: v) в деионизированной воде для по крайней мере 10 минут перед использованием. - Ориент наркотизированных миноги в V-образный стенд и оберните его с влажной салфеткой для предотвращения высыхания.
Примечание: Не закрывайте отверстия Гилл. - Вставить трубку рециркуляционных газированная вода, содержащая 50 мг/Л MS222 в ротовой полости, отрегулировать скорость потока и убедитесь, что вода является выходом через жаберные отверстия для непрерывно орошают жабры.
- Используйте стерильным скальпель и щипцы [под стереоскопическим микроскопом на 1,25 кратном (см. Таблицу материалы)] для удаления 5 мм2 участок кожи на поверхности обонятельных капсул подвергать обонятельного эпителия.
- Флеш одоранта доставки трубки с фильтрованной воды и подключить его к клапан, смонтированный на микроманипулятор. Место одоранта доставки капиллярной трубки в полость обонятельного эпителия, используя микроманипулятор для доставки фильтрованной воды для обонятельного эпителия для предотвращения высыхания, когда не управляющей отдушки.
- Прикрепите электроды записи и ссылки на микроманипуляторов. Нижняя электрод сравнения на внешнюю кожу возле нарис. Использование стереоскопические (1.25 X), ниже запись электрод для едва прикасаться к поверхности обонятельного эпителия.
- Передать поглощение одоранта Отводная трубка из фона фильтрации воды 10-5 M L-аргинин решения.
- Включите компьютер, усилитель (установить режим DC), фильтр и дигитайзер. С помощью программного обеспечения драйверов клапан, программа процедуры для администрирования 4 s одного импульса одоранта, установив флажок T1, установка T-4 s и установив флажок T2.
- В программное обеспечение получения данных (см. Таблицу материалы), установите режим приобретение высокоскоростного осциллографа, щелкните значок воспроизведения и нажмите кнопку начать в драйвере клапан для показа одоранта пульс.
Примечание: Программы для сбора данных автоматически записывает дифференциального ЭОГ ответ амплитуда 20 s (3 s до 4 s во время импульса одоранта и 13 s позже). Используйте микроманипулятор для маневра позиции записи электрод, электрод сравнения или одоранта Отводная трубка для увеличения соотношения сигнал шум с максимальной реакции на стандарте L-аргинин и минимальный отклик (пустой элемент управления фильтрованная вода). Молотого усилитель, переключателем AC-DC усилитель к GND при перемещении электродов. - Начните запись пустой элемент управления, L-аргинин, а затем отдушки, подготовленную на этапе 3.6 от низких до высоких концентраций с 2 мин флеш фильтрованной воды между приложениями.
- После записи ответов на все Отдушки для проверки, молотый усилитель и тщательно убрать электродов и одорант доставки капиллярной трубки. После утвержденной институциональный уход животных и использование Комитет (IACUC) методы, при прекращении ЭОГ эксперимента, усыпить наркотизированных минога с передозировкой MS222 (1 г/Л).
Примечание: Проверьте успешное эвтаназии, отмечая отсутствие движения Гилл и сердцебиение по крайней мере 5 минут, после чего смертельная мозга. - Анализировать и печати с помощью программного обеспечения для анализа данных. Определите порог обнаружения отдушки22 для выявления пахучих фракций, которые вызывают ответы больше, чем контроль пустой воды. Фракция бассейны, которые вызывают зависит от концентрации обонятельных ответы, которые отличаются от пустой воды управления затем проверяются в поведенческого анализа (шаг 4).
4. два выбор лабиринт поведенческих биопроб для выявления функционально активных фракций/соединений
- Акклиматизироваться половозрелые женский Морская минога в клетке выхода в лабиринте (см. дополнительный рис. 1) для 5 минут поддерживать заданную скорость потока воды в реке в лабиринте
Примечание: Лабиринт построен из лакированных морской сорт дерева и меры 6,5 м в длину и 1,2 м в ширину с делителя измерения 2,7 м в длину, чтобы разделить два канала вверх в конце лабиринта. Временно вода направляется в лабиринте. Глубина воды должна поддерживаться на 0,19 м и скорости должна поддерживаться на 0,07 м/с ± 0,01. - Отпустите Морская минога и записывать совокупное количество времени, минога тратит в экспериментальных и канала управления, каждый содержащий речной воды за 10 мин.
Примечание: Если Морская минога не ввести экспериментальных и контролировать канал для по крайней мере 10 s в этот период 10 мин, конец судебного разбирательства, как это признак бездействия или сильная сторона предвзятости. - Применить тест стимул (т.е., предполагаемый феромонов на 10-12 М растворяют в 50% метанол/деионизированная вода) назначенный случайным образом экспериментальный канал и транспортного средства (50% метанол/деионизированная вода) для канала управления с помощью Перистальтический Насосы постоянной скоростью 200 мл/мин за 5 мин.
Примечание: Обнаружения порога концентрации тестового стимула как определено с электро olfactogram записи должны использоваться в качестве начальной концентрации для поведенческой теста. - Применять тест стимул и транспортное средство для дополнительных 10 мин и записывать совокупное количество времени, тратит миноги в экспериментальных и канал управления.
- Промойте лабиринт с воды за 10 мин до начала следующего судебного разбирательства. Повторите шаги 4.1-4.4 с по крайней мере 7 миноги, при наличии достаточных стимул тест.
- Рассчитать индекс22 предпочтения для каждого судебного разбирательства и оценить значение с помощью теста Вилкоксон подписали ранга.
Примечание: Индекс результаты в один номер, который может быть либо положительным или отрицательным. Положительное значение индекса предпочтения указывает притяжения, тогда как отрицательное значение индекса предпочтение показания отталкивания. Если индекс предпочтения значительно отличается от нуля, фракция считается активной.
Здесь,
Bc = время, затраченное тест миноги в канале управления до подачи одоранта,
Be = время, затраченное на экспериментальный канал до подачи одоранта,
C = время, затраченное на канале управления после применения одоранта, и
E = время, затраченное на экспериментальный канал после применения одоранта.
5. хроматографический изоляции чистых соединений из активных фракций
- Повторите шаги 2.1-2.4 с бассейнами фракции, которые индуцируют обонятельных ответы (шаг 3) и вызывают поведенческих реакций (шаг 4).
- Дальнейшего очищения активных фракций в соединения с размер-гель-проникающей хроматографии с использованием торфов LH-20 столбца.
- Подготовка образца в 0,5 мл на начальном этапе мобильных [КХКЛ3- метанола (1:1) или метанола 100%], загрузить в соответствующий столбец КХКЛ3- метанола (1:1) и столбца затем метанола (100%) и элюировать их уступить соединений.
6. Структура разяснения чистого соединения с масс-спектрометрия (МС) и ядерного магнитного резонанса (ЯМР)
- Распустить и разбавленных очищенная смесь на начальном этапе (как правило, метанола для воды, 1:1, v: v) мобильных высокой производительности жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) сформировать 10 мкл раствора примерно 1 мкг/мл.
- Пример решения передать ВЭЖХ флаконов и установите их в автоматический пробоотборник ВЭЖХ. Придать электроспрей ионизационная масс-спектрометрия (ESIMS) образца (10 мкл) и записи с высоким разрешением электроспрей ионизации масс-спектрометрия (HRESIMS) спектры с использованием хроматографии масс-спектрометр23.
- Предсказать молекулярную формулу согласно базе в масс-спектрометры Программное обеспечение (см. Таблицу материалы)24.
- Откройте Хроматограмма закачиваемой образец и получить его массовые спектр, выбрав хроматографического пика.
- Ввод измеренной массы ионов (m/z) значения (4 десятичных знаков) в элементного состава под модулем инструмент . Значение параметра tolerance PPM < 5.
- Отрегулируйте параметры символа подогнать элементный состав измеренных молекулы. Программное обеспечение производит предсказание молекулярной формулы на основе одного массового анализа.
- Выберите транс растворителей (600 мкл, CH3OH -d4 или ДМСО -d6) согласно протоколу25 развести образцы.
- Полностью растворите образец в выбранной транс растворители, образуя раствор с концентрацией около от 0,1 до 10 мг/мл. Передать образец решения в ЯМР-пробирку для записи 1D (1H, 13C) и 2D ЯМР [1H -1H корреляции спектроскопии (COSY), гетероядерных сингл квантовой согласованности (HSQC), гетероядерных несколько Бонд корреляции (HMBC)] спектры на 900 МГц ЯМР спектрометр26.
- Место ЯМР трубки с образцом внутри счетчика турбины. Измеритель глубины для обеспечения Высота образца используется в середине окна измерения. Откройте программное обеспечение ЯМР (см. Таблицу материалы) и нажмите кнопку отменить , чтобы изменить образец в магнит.
Примечание: Держите руку поверх магнита чувствовать газа, поступающего из верхней части магнита. В то же время свист звук должен быть слышен. - Осторожно поместите образец на воздушной подушке поверх магнита и нажмите кнопку снять снова спуститься в образце в магнит ЯМР.
Примечание: Слушайте шум «нажмите кнопку» указывает, что образец находится в правильном положении. - Создание нового набора данных и загрузить параметры по умолчанию, рекомендованный ЯМР инструмент (см. Таблицу материалы).
- Тип «замка» для вызова процесс автоматической блокировки и выберите растворителя на странице запрос.
- Для тонкой настройки, в Управление Панель, отрегулировать кнопку разблокировки модели, настроить курсор на панели манипулировать и снова зафиксировать магнита.
- На запрос страницы Атма настройте параметр в панели Управление к процедуре настройки, который может занять несколько минут. Подождите завершения настройки для продолжения.
- Запуск процедуры автоматического шиммирования «topshim», введя в командной строке. Подождите, пока шиммирования завершения, чтобы продолжить.
- Тип «ПГА», чтобы задать автоматическое получение выгоды корректировок, то типа «d1», чтобы установить задержку между импульсами, то типа «ЖГ» чтобы начать приобретение и дождитесь завершения приобретения.
- Тип «ef» или «efp» для обработки данных и затем введите «АПК «автоматического прекращения. Обработка данных на программное обеспечение для обработки ЯМР.
- Выяснения химической структуры, интерпретация анализа данных ЯМР.
- Граф углерода сигналов в спектре ЯМР C 13. Выберите соответствующий молекулярную формулу из прогнозируемого результата в высоким разрешением масс-спектрометрия (HR-МС).
- Интегрировать сигналы протона в спектре 1H ЯМР и назначить подключения из углерод - и Протон-на основе сигналов в спектре HSQC.
- Назначение подключения углеродного скелета, основанный на корреляции в 1H -1H уютный и HMBC спектра.
- Предварительно назначьте химической структуры, основанные на структуре обоснование27. Поиск примерная структура в химической структуры баз данных. Сравните примерная структура с аналогами в ссылках.
- Назначьте относительную конфигурацию с спектр ядерной спектроскопии эффект Оверхаузера (NOESY).
Примечание: Поскольку свойства идентификации энантиомеров на спектрометрии и спектроскопические методы идентичны, абсолютной конфигурации некоторых соединений, особенно с 2'-алкоголя и 2'-NH2, должен быть определен с реакция деривации. После деривации реакции различия, указал на спектры облегчить недвусмысленное назначение абсолютной конфигурации большинства соединений28.
7. ЭОГ и биопроб для подтверждения чистого соединения пахучие и функционально активных
- Повторите шаги 3.1-3.5.
- Для кривой концентрация реакция Подготовьте 10 мл десятикратного разведения чистых соединений от 10-6 М - 10-13 M 10-3 M феромонов запасов раствора в 50% метанол/воде хранящихся в-20 ° C на основе молекулярной массой, предусмотренных Шаг 6.2. Положите стеклянных флаконах с рабочих растворов L-аргинин и чистых соединений рециркуляционный водяной бане, чтобы позволить температуры сбалансировать 8 ° c.
- Повторите шаги 3,7-3.18.
- Повторите шаги 4.1-4.2.
- Применение чистого соединения в концентрации порог обнаружения ЭОГ назначенный случайным образом экспериментальный канал и транспортного средства (50% метанол/деионизированная вода) для канала управления с использованием перистальтического насоса постоянной скоростью 200 мл/мин за 5 мин.
- Повторите шаги 4.4-4.6.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Диаграмма, резюмируя шаги, описанные в протоколе биопроб руководствуясь Фракционирование это показано на рисунке 1. Протокол включает в себя шаги, чтобы изолировать и охарактеризовать структуру, обонятельные потенции и поведенческой активности 5 предполагаемый Морская минога феромоны (рис. 2). С помощью масс-спектрометрических и данные ЯМР (рис. 3 и рис. 4), были выяснены структуры petromyzene A-B и petromyzone A-C от воды, кондиционером с пожилые мужской морской миноги22,29.
Наши репрезентативных данных из записей ЭОГ (рис. 5) продемонстрировать, что petromyzene A-B и petromyzone A-C были все мощным отдушки, которые стимулировали взрослых Морская минога обонятельного эпителия и низкие пороги обнаружения (рис. 6) . Особо следует отметить, ЭОГ записи требуют правильного размещения записи электрода на поверхности обонятельного эпителия относительно стимул Отводная трубка приведет к хорошее соотношение сигнал шум для надежной одоранта ответ записи ( Рисунок 5B). Если этот критический шаг не выполняется, она будет трудно различить сигнал, вызванных одоранта среди высокой шума. Вниз прогиб ЭОГ трассировки после экспозиции одорант является отрицательный потенциал. Хороший ЭОГ сигнал должен показать одоранта администрация приводит в быстрый и резкий ответ, после восстановления базовой линии. Обонятельные ответы на предполагаемый Феромоны также были нормализованы ответы 10-5 M L-аргинин, положительный контроль одоранта в Морская минога, тестирование на протяжении эксперимента, чтобы гарантировать целостность записи была сохранена.
В двух выбор лабиринт поведенческих анализов (рис. 7A) были привлечены к petromyzone А, petromyzene А и petromyzene B овуляцией женский морской миноги и отбили от petromyzone, которую C. Ovulated женщины, по-видимому, быть отбиты от petromyzone B; Однако поведенческих ответ не был значительным (рис. 7B). Больше размер выборки не удалось из-за ограниченного количества petromyzone б. Для правильной оценки поведенческих ответ одоранта, важно записать предварительной смещения для управления и экспериментальный канал каждого минога.
Рисунок 1: схема биопроб руководствуясь фракционирования феромонов. Адаптировано из рисунка 2 Li, Buchinger и ли эта цифра30. Прямоугольники указывают полученный химический продукт от метода указано в овал. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: химической структуры petromyzene A-B и petromyzone A-C. Этот показатель изменяется от цифры 1 в Li et al. 22 , 29. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3:1 d NMR спектрами. 1D спектров ЯМР petromyzene A: (A) спектра 1H ЯМР (900 МГц) и (B) 13C ЯМР (225 МГц) спектра. Эта цифра составляет от вспомогательной информации в Li et al. 29. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: 2D NMR спектрами. 2D спектров ЯМР petromyzene A: (A) спектра HSQC, (B) 1H -1H COSY спектра, (C) HMBC спектра и (D) NOESY спектра. Эта цифра составляет от вспомогательной информации в Li et al. 29. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 5: электро olfactogram (ЭОГ) запись подготовки и представитель трассировки записи. (A) это подготовка ЭОГ, показаны подвергается Морская минога обонятельного эпителия с записи электрода, электрод сравнения, одорант Отводная трубка и насыщенной кислородом воды с анестетиком. (B) Эта группа показывает представитель трассировки записи, демонстрируя хорошие (вверху) или соотношения сигнал шум плохо (внизу). Хорошее соотношение сигнал шум является необходимым для надежного одоранта ответы записей. Вниз прогиб ЭОГ трассировки после экспозиции одорант является отрицательный потенциал. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 6: полу логарифмический график электро olfactogram (ЭОГ) концентрация реакция кривых. Petromyzone A-C и petromyzene A и B были стимулирующее для взрослых Морская минога обонятельного эпителия и обнаружения низких пороговых значений. Данные представлены как среднее нормализованных ЭОГ амплитуде ± S.E.M. Размеры выборки были следующие: petromyzone А, petromyzene А и petromyzene B (n = 7) и petromyzone B и petromyzone C (n = 5). Врезные является расширенное представление ответов ЭОГ показаны ответ пороговые концентрации. Эта цифра была изменена на рисунке 3 в Li et al. 22 и 4 в Li et al. 29. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 7: схема и результаты двух выбор лабиринт, используемых для оценки поведенческих реакций овуляцией женский морской миноги для отдушки. (A) стрелка представляет направление потока воды (0,07 m s-1 ± 0,01). Круги представляют собой точки администрирования одоранта. Небольшие пунктирные линии представляют собой тонкой сетки используется для ограничения движения Морская минога пределы лабиринта. Большой пунктирные линии представляют доски используется для уменьшения воды турбулентности потока. Серый прямоугольник представляет релиз клетке. В баре шкалы = 1 м. Эта цифра является от S1 рисунок в Li et al. 29. (B) женщины были привлечены к petromyzone А, petromyzene А и petromyzene б. Минога времени в каждом канале лабиринт до и после воздействия одоранта (10-12 М) был использован для вычисления индекса предпочтения для оценки поведенческих ответ одоранта. Положительное значение индекса предпочтения указывает притяжения. Размер выборки, n, сообщается за пределами скобок, и число в скобках указывает количество женщин через испытания, которые тратят больше времени в экспериментальный канал, по сравнению с элементом управления. Данные представлены как средний ± S.E.M. (* p < 0,05; Вилкоксон подписали ранг тест) для сравнения поведенческих предпочтений до и после воздействия одоранта. Эта цифра была изменена на рисунке 4 в Li et al. 22 и рисунок 5 в Li et al. 29. пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Дополнительный рисунок 1: фотография лабиринта. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Рыбы живут в химической мире, полном соединений еще должны быть определены. Фракционирование биопроб руководствуясь доказал необходимо определить и охарактеризовать биоактивных молекул, которые посредником многих химических взаимодействий, например теми, которые наблюдались в масу лосося31и32азиатских слонов, морской миноги33, 34,35. Биопроб руководствуясь фракционирование является эффективным подходом к точно трассировки и точечный биоактивных соединений от начальной извлечь очищенный активного соединения. Используя этот подход, выявленных биоактивных соединений может выявить составные с уникальной химической скелет, который вряд ли может быть предсказано из известных биосинтетических пути роман.
ЭОГ записи проводятся для определения, какой фракции или соединения вызывают обонятельных ответы. Несколько технических соображений необходимо точно измерить обонятельные ответы на предполагаемый феромонами с ЭОГ записей. Во-первых согласно институциональный уход животных и использование Комитет утвердил процедуры, рыба должна глубоко под наркозом с 3-аминобензойной кислоты этилового эфира (MS222) и прикол с внутримышечной инъекции gallamine triethiodide. Электрод записи будет обнаруживать любые движения жабр и сердцебиения вследствие недостаточной иммобилизации, который может быть источником электрических шумов. Во-вторых обонятельного эпителия должны немедленно подвергаться угольного фильтра воды после вскрытия для предотвращения высыхания. Настройка местоположения записи и ссылки электрода с микроманипуляторы, электрические земли и одорант Отводная трубка может помочь максимизировать ответ положительный контроль одоранта при сведении к минимуму ответ (пустой элемент управления фильтрованная вода). В-третьих после определения местоположения чувствительных записи в обонятельного эпителия, важно для записи от аналогичной позиции на ламели для сведения к минимуму изменения. Последовательно записывать из аналогичных местоположения, держите танк и V-образный пластиковый стенд холдинг рыбы, Микроскоп, одорант Отводная трубка и микроманипуляторов в той же позиции. Цистит трубки должны оставаться в ротовой полости рыб в течение всего эксперимента, чтобы убедиться, что он остается наркотизированных. Однако размещения в ротовой полости и скорость потока анестетика может быть изменен, если электрод записи обнаружения движения воды, что приводит к неустойчивой базового электрического сигнала.
Дизайн поведенческих assay должны соответствовать поведенческой экологии объекта испытания и исследования вопрос о заинтересованности. 2 выбор лабиринт поведенческих анализов используются для определения, если любой из пахучих фракций активны также поведенчески. Потому что часто только чистые соединения доступны в мизерных количествах, лабиринт является полезным поведенческих биопроб, по сравнению с потока за счет более низких разряда. Мы были заинтересованы в оценке вблизи источника предпочтение предполагаемого Секс феромоны, выпущенное пожилые мужчины, предсказал зрелых женщин товарищей в непосредственной близости от привлекать и удерживать их на гнездо для нереста. Поведенческого анализа был разработан для репликации природные условия овуляцией Женский выбор между отдушки зрелых мужчин. Таким образом было уместно для тестирования овуляцией женщины в качестве испытуемого в наших экспериментах поведение. Однако в зависимости от испытания одоранта, другие испытуемых (то есть, стадия разные жизни или мужчины) может быть более подходящим. Вариации на размеры двух выбор лабиринт может быть необходимым в зависимости от размера объекта испытания и предсказал активное пространство феромоны (т.е., возле источника против междугородние)36. Аналогичным образом поведенческие реакции, часто зависит от концентрации. Если поведенческие реакции не наблюдается, когда предполагаемые феромонов применяется на обнаружение порога концентрации определяется с ЭОГ, должна быть скорректирована концентрацию феромонов. Следует, однако, отметить, что даже если соединение является мощным одоранта, она может не побудить обязательно значительные поведенческих предпочтений. В конечном счете поведенческих реакций, наблюдается в лабиринте должно проверяться в поле настройки с синтетическое соединение, чтобы подтвердить функцию предполагаемого феромонов.
Одним из основных ограничений биопроб руководствуясь фракционирование является последовательное тестирование отдельных фракций или соединений в bioassay (ЭОГ или поведение). Предыдущая работа показала насекомое Секс феромоны обычно являются смеси нескольких компонентов в определенных соотношениях37 этой функции независимо, как компоненты38 или синергически как смеси39 побудить соответствующие ответы в сородичами. Таким образом соединений, которые активны только при наличии конкретных смесей могут остаться незамеченными с наведением биопроб фракционирования, потому что они требуют комбинаторные тесты для подтверждения биологическую. Другие ограничения биопроб руководствуясь фракционирования включают: 1) большое количество исходного материала необходимо иметь достаточное количество для структурного анализа, ЭОГ и поведенческих исследований; 2) этот процесс занимает много времени из-за процесса последовательной очистки; и 3) незначительную или нестабильных соединений вряд ли могут быть обнаружены. В будущем преодолеть некоторые технические ограничения биопроб руководствуясь фракционирования может потребовать гибридизированные подхода биопроб руководствуясь фракционирования и метаболомики. Используя гибридизированные подход, присадок или синергических феромонов эффекты более склонны быть discerned13 и нестабильного соединения являются более вероятно быть обнаружены.
Процесс описан биопроб руководствуясь фракционирование разработан специально для идентификации Морская минога феромоны. Однако химические связи повсеместно в животном1 , и этот процесс может быть легко адаптирована к характеризуют феромоны в широкий спектр таксонов. Феромоны идентификации и характеристика важны, потому что феромоны могут быть применены к модулировать поведенческих реакций, в результате в элементе управления инвазивных видов или в восстановлении находящемуся в опасности видов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать.
Acknowledgments
Мы благодарим США геологического обследования Хаммонд залив биологической станции для использования их научно-исследовательских учреждений и персонала США рыбы и дикой природы и рыболовства и океанов Канады для предоставления морской миноги. Это исследование было поддержано грантов от Комиссии по рыболовству в районе Великих озер Веймин Li и Ke Li.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Premium standard wall borosilicate capillaries with filament | Warner Instruments | G150F-4 | recording and reference electrode (OD 1.5 mm, ID 0.86 mm) |
| Pipette puller instrument | Narishige | PC-10 | pulls electrodes for EOGs |
| Diamond-tipped glass cutter | Generic | cut tip of electrodes for EOG | |
| Borosilicate glass capillaries | World Precision Instruments | 1B150-4 | odorant delivery tube for EOG |
| Recording electrode holder E Series straight body with Ag/AgCl pellet for glass capillary OD 1.5 mm | Warner Instruments | ESP-M15N | recording electrode holder |
| Reference electrode holder E Series with handle with Ag/AgCl pellet for glass capillary OD 1.5 mm | Warner Instruments | E45P-F15NH | reference electrode holder |
| 1 mm pin | Warner Instruments | WC1-10 | to bridge reference and recording electrode holders |
| 2 mm pin | Warner Instruments | WC2-5 | to bridge reference and recording electrode holders |
| Agar | Sigma | A1296 | molten agar to fill electrodes |
| Potassium chloride (KCl) | Sigma | P9333 | 3M KCl to fill electrodes and electrode holders |
| Micropipette microfil | World Precision Instruments | MF28G-5 | to fill electrodes and electrode holders |
| L-Arginine | Sigma | A5006 | positive control odorant for EOG |
| Methanol | Sigma | 34860 | |
| Water bath | Custom made | N/A | holds odorants for EOG |
| 3-aminobenzoic acid ethyl ester (MS222) | Syndel USA | Tricaine1G | EOG anesthetic |
| Gallamine triethiodide | Sigma | G8134-5G | EOG paralytic |
| 1 mL syringe | BD Biosciences | 301025 | to administer paralytic |
| Subcutaneous needle 26G 5/8 | BD Biosciences | 305115 | to administer paralytic |
| Roller clamp | World Precision Instruments | 14043-20 | adjust flow rate of anesthic into lamprey's mouth |
| Sodium chloride (NaCl) | J.T. Baker | 3624-05 | for preparation of 0.9% saline |
| V-shaped plastic stand as specimen stage | Custom made | N/A | holds lamprey during EOG |
| Plastic trough | Custom made | N/A | holds V-shaped plastic stand during EOG |
| Scalpel Blades - #11 | Fine Science Tools | 10011-00 | for EOG dissection |
| Scalpel Handle - #3 | Fine Science Tools | 10003-12 | for EOG dissection |
| Straight ultra fine forceps | Fine Science Tools | 11252-00 | for EOG dissection, Dumont #5SF Forceps |
| Curved ultra fine forceps | Fine Science Tools | 11370-42 | for EOG dissection, Moria MC40B |
| Straight pring Scissors | Fine Science Tools | 15003-08 | for EOG dissection |
| Stereomicroscope | Zeiss | Discovery V8 | for EOG dissection |
| Illuminator light | Zeiss | CL 1500 ECO | for EOG dissection |
| Plastic tubing | Generic | to connect re-circulating EOG setup and water baths | |
| Odorant delivery tubing | Custom made | N/A | |
| In line filter and gasket set | Lee Company | TCFA1201035A | |
| Micromanipulators | Narishige | MM-3 | to position electrodes and odorant delivery capillary tube |
| Magnetic holding devices | Kanetec | MB-K | |
| Valve driver | Arduino | custom made | to control the opening of the valve for odor stimulation |
| Electromagnetic valve | Lee Company | LFAA1201618H | valve for odor stimulation |
| NeuroLog AC/DC amplifier | Digitimer Ltd. | NL106 | to increase the amplitude of the elictrical signal |
| NeuroLog DC pre-amplifier with headstage | Digitimer Ltd. | NL102G | to increase the amplitude of the elictrical signal |
| Low-pass 60 Hz filter | Digitimer Ltd. | NL125 | |
| Digitizer | Molecular Devices LLC | Axon Digidata 1440A | |
| Dell computer (OptiPlex 745) running Axoscope data acquistion software | Molecular Devices LLC | AxoScope version 10.4 | |
| Faraday cage | Custom made | N/A | Electromagnetic noise shielding |
| Two-choice maze | Custom made | N/A | waterproofed marine grade plywood covered with plastic liner |
| Trash pump | Honda | WT30XK4A | fills maze with water from nearby river |
| Peristaltic pump with tubing | Cole Parmer | Masterflex 07557-00 | to adminster odorants in maze |
| Inverter Generator | Honda | EU1000i | powers perstaltic pump |
| Release cage | Custom made | N/A | used to acclimate lamprey in the maze |
| Mesh | Generic | used to contain the dimensions of the maze and minimize water turbulance with mesh rollers | |
| Buckets (5 gallon) | Generic | to mix odorants | |
| Flow meter | Marsh-McBirney | Flo-Mate 2000 | to measure discharge |
| XAD 7 HP resin | Dow chemical | 37380-43-1 | for extraction of conditioned water |
| Methanol | Sigma | 34860 | for extraction of conditioned water |
| Water bath | Yamato | BM 200 | for extraction of conditioned water |
| Freeze dryer | Labconco | CentriVap Concentrator | for extraction of conditioned water |
| chloroform | Sigma | CX1050 | for isolation of fraction pools |
| Silica gel 70-230 mesh | Sigma | 112926-00-8 | for isolation of fraction pools |
| Silica gel 230-400 mesh | Sigma | 112926-00-8 | for isolation of fraction pools |
| Pre-coated silica gel TLC plates | Sigma | 99571 | for isolation of fraction pools |
| anisaldehyde | Sigma | A88107 | for isolation of fraction pools |
| Sephadex LH-20 | GE Healthcare | 17-0090-01 | for isolation of fraction pools |
| Amberlite XAD 7 HP resin | Sigma | XAD7HP | for extraction of conditioned water |
| 4, 2.5L capacity glass columns | Ace Glass Inc. | 5820 | for extraction of conditioned water |
| Acetone | Sigma | 650501 | for extraction of conditioned water |
| TQ-S TOF LC Mass spectrometer (or equivalent) | Waters Co. | N/A | for structure elucidation |
| Binary HPLC pump | Waters Co. | 1525 | for isolation of fraction pools/compounds |
| Agilent NMR spectrometer, 900MHz (or equivalent) | Agilent | N/A | for structure elucidation |
| Rotovap drying system | Buchi | RII | for extraction of conditioned water |
| UV lamp (254 nm) | Spectronics Co. | ENF-240C | for thin layer chromatography |
References
- Wyatt, T. D. Pheromones and Animal Behavior: Chemical Signals and Signatures. , Cambridge University Press. Cambridge, UK. (2014).
- El-Sayed, A. M. The pherobase: database of insect pheromones and semiochemicals. , Available from: http://www.pherobase.com (2009).
- Zhu, J., et al. Reverse chemical ecology: Olfactory proteins from the giant panda and their interactions with putative pheromones and bamboo volatiles. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (46), E9802-E9810 (2017).
- Leal, W. S. Reverse chemical ecology at the service of conservation biology. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (46), 12094-12096 (2017).
- Carde, R. T., Minks, A. K. Control of moth pests by mating disruption: successes and constraints. Annual Review of Entomology. 40 (1), 559-585 (1995).
- Witzgall, P., Kirsch, P., Cork, A. Sex pheromones and their impact on pest management. Journal of chemical ecology. 36, (2010).
- Cheng, Y. -n, Wen, P., Dong, S. -h, Tan, K., Nieh, J. C. Poison and alarm: the Asian hornet Vespa velutina uses sting venom volatiles as an alarm pheromone. Journal of Experimental Biology. 220 (4), 645-651 (2017).
- Howse, P., Stevens, J., Jones, O. T. Insect Pheromones and Their Use in Pest Management. , Springer Science & Business Media. (2013).
- Pizzolon, M., et al. When fathers make the difference: efficacy of male sexually selected antimicrobial glands in enhancing fish hatching success. Functional Ecology. 24 (1), 141-148 (2010).
- Stacey, N., Sorensen, P. Hormones in communication | Hormonal Pheromones Encyclopedia of Fish Physiology. , Elsevier Inc. (2011).
- Kobayashi, M., Sorensen, P. W., Stacey, N. E. Hormonal and pheromonal control of spawning behavior in the goldfish. Fish Physiology and Biochemistry. 26 (1), 71-84 (2002).
- Stacey, N. Hormonally-derived pheromones in teleost fishes. Fish Pheromones and Related Cues. , 33-88 (2015).
- Kuhlisch, C., Pohnert, G. Metabolomics in chemical ecology. Natural Product Reports. 32 (7), 937-955 (2015).
- Prince, E. K., Pohnert, G. Searching for signals in the noise: metabolomics in chemical ecology. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 396 (1), 193-197 (2010).
- Teeter, J. Pheromone communication in sea lampreys (Petromyzon marinus): implications for population management. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 37 (11), 2123-2132 (1980).
- Moore, H., Schleen, L. Changes in spawning runs of sea lamprey (Petromyzon marinus) in selected streams of Lake Superior after chemical control. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 37 (11), 1851-1860 (1980).
- Vrieze, L. A., Bergstedt, R. A., Sorensen, P. W. Olfactory-mediated stream-finding behavior of migratory adult sea lamprey (Petromyzon marinus). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 68, (2011).
- Wagner, C. M., Jones, M. L., Twohey, M. B., Sorensen, P. W. A field test verifies that pheromones can be useful for sea lamprey (Petromyzon marinus) control in the Great Lakes. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 63 (3), 475-479 (2006).
- Wagner, C. M., Twohey, M. B., Fine, J. M. Conspecific cueing in the sea lamprey: do reproductive migrations consistently follow the most intense larval odour? Animal Behaviour. 78, (2009).
- Siefkes, M. J., Winterstein, S. R., Li, W. Evidence that 3-keto petromyzonol sulphate specifically attracts ovulating female sea lamprey Petromyzon marinus. Animal Behaviour. 70, (2005).
- Siefkes, M. J., Steeves, T. B., Sullivan, W. P., Twohey, M. B., Li, W. Sea lamprey control: past, present, and future. Great Lakes Fisheries Policy and Management. , Michigan State University Press. East Lansing, MI. 651-704 (2013).
- Li, K., et al. Three Novel Bile Alcohols of Mature Male Sea Lamprey (Petromyzon marinus) Act as Chemical Cues for Conspecifics. Journal of Chemical Ecology. 43 (6), 543-549 (2017).
- Hird, S. J., Lau, B. P. -Y., Schuhmacher, R., Krska, R. Liquid chromatography-mass spectrometry for the determination of chemical contaminants in food. TRAC Trends in Analytical Chemistry. 59, 59-72 (2014).
- Little, J. L., Williams, A. J., Pshenichnov, A., Tkachenko, V. Identification of "known unknowns" utilizing accurate mass data and ChemSpider. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 23 (1), 179-185 (2012).
- Beckonert, O., et al. Metabolic profiling, metabolomic and metabonomic procedures for NMR spectroscopy of urine, plasma, serum and tissue extracts. Nature Protocols. 2 (11), 2692 (2007).
- Kaiser, B., Wright, A. Draft Bruker XRF Spectroscopy User Guide: Spectral Interpretation and Sources of Interference. , BRUKER. Madison, WI. (2008).
- Breitmaier, E., Sinnema, A. Structure Elucidation by NMR in Organic Chemistry: A Practical Guide. , Wiley. Chichester, New York, Brisbane, Toronto, Singapore. (1993).
- Seco, J. M., Quinoá, E., Riguera, R. The assignment of absolute configuration by NMR. Chemical Reviews. 104 (1), 17-118 (2004).
- Li, K., et al. Bile Salt-like Dienones Having a Novel Skeleton or a Rare Substitution Pattern Function as Chemical Cues in Adult Sea Lamprey. Organic Letters. , (2017).
- Li, K., Buchinger, T. J., Li, W. Discovery and characterization of natural products that act as pheromones in fish. Natural Product Reports. , In press (2018).
- Yambe, H., et al. L-Kynurenine, an amino acid identified as a sex pheromone in the urine of ovulated female masu salmon. Proceedings of the National Academy of Sciences. 103 (42), 15370-15374 (2006).
- Rasmussen, L., Lee, T. D., Zhang, A., Roelofs, W. L., Daves, G. D. Jr Purification, identification, concentration and bioactivity of (Z)-7-dodecen-1-yl acetate: sex pheromone of the female Asian elephant, Elephas maximus. Chemical Senses. 22 (4), 417-437 (1997).
- Sorensen, P. W., et al. Mixture of new sulfated steroids functions as a migratory pheromone in the sea lamprey. Nature Chemical Biology. 1 (6), 324-328 (2005).
- Hoye, T. R., et al. Details of the structure determination of the sulfated steroids PSDS and PADS: New components of the sea lamprey (Petromyzon marinus) migratory pheromone. The Journal of organic chemistry. 72 (20), 7544-7550 (2007).
- Fine, J. M., Sorensen, P. W. Isolation and biological activity of the multi-component sea lamprey migratory pheromone. Journal of Chemical Ecology. 34 (10), 1259-1267 (2008).
- De Buchinger, T. J., Wang, H., Li, W., Johnson, N. S. Evidence for a receiver bias underlying female preference for a male mating pheromone in sea lamprey. Proceedings of the Royal Society of London B: Biological Sciences. 280, (2013).
- De Bruyne, M., Baker, T. Odor detection in insects: volatile codes. Journal of Chemical Ecology. 34 (7), 882-897 (2008).
- Bradshaw, J., Baker, R., Lisk, J. Separate orientation and releaser components in a sex pheromone. Nature. 304 (5923), 265-267 (1983).
- Linn, C., Campbell, M., Roelofs, W. Pheromone components and active spaces: what do moths smell and where do they smell it. Science. 237 (4815), 650-652 (1987).
