Summary
Bu protokol, calretinin, S100 proteini ve protein geni ürün 9,5 için immünostasyon rektal emiş biyopsisi sürecini açıklar. Hirschsprung hastalığı için bu roman adjuvan tanı yöntemi tercih duyarlılık ve özgüllük oranları vardır.
Abstract
Hirschsprung hastalığı (HD) klinik olarak bebeklerde mekonyum veya çocuklarda uzun süreli kabızlık geçmek için bir yetersizlik olarak ortaya çıkan konjenital bir bağırsak hastalığıdır. Rektal emiş biyopsisi (RSB) ganglion hücrelerinin yokluğunda belirlemek için ve nöral hipertrofisi Şu anda HD tanısı için en doğru testtir. Geleneksel hematoksislin-eozin boyama hassasiyeti ve özgüllüğü yoktur. Asetilkolinesteraz boyama karmaşık süreci nedeniyle yaygın olarak kullanılamaz. RSBs üzerinde yaptığımız calretinin, S100 proteini ve protein geni ürün 9,5 (PGP 9.5) için immünostasyonu olan yeni protokolümüz,% 96,49 (% 95 güven aralığı, 0.88-0,99) ve% 100 (% 95 güven aralığında) yüksek hassasiyet ve özgüllük oranları sergiler interval, 0.97-1.00), sırasıyla. HD etkilenen segmentler genellikle kalretinin ifadesi yokluğunda mevcut, S100 protein, ve PGP 9.5, submukozal dokuda nöral Hipertrofinin belirteçleri olan. Bu protokol, bu yeni tanılama yönteminin ayrıntılı işletim sürecini açıklar.
Introduction
Hirschsprung hastalığı (HD) distal bağırsak yolunun farklı segmentlerinde ganglion hücrelerinin eksikliği ile karakterize ortak konjenital bağırsak bağırsak bozukluğu1. Embriyonik nöral hücrelerin istilası tamamlandığında insan enterik sinir sistemi oluşur. Eğer sürecin bir bozukluğu varsa ve istilanın tamamlanması başarısız olursa, yenidoğan distal bağırsak aganglionik2olur. Bu potansiyel ölümcül durum Hirschsprung hastalığı denir. Proliferasyon, motilite ve bağırsak büyümesi başarılı kolonizasyon üç ana bileşenleridir.
Sınırlı submukozal biyopsinin geleneksel hematoksisi ve Eozinin (H & E) boya tedavisi, ameliyattan elde edilen tam kalınlıkta bir dokunun H & E boyama sonucu tatmin edici olarak elde edilemez. Ayrıca, rektal emiş dokusunun asetilkolinesteraz (AChE) lekesi,% 91 olan yetersiz duyarlılığı ve Frozen bölümler3,4' ün karmaşık işlenmesi nedeniyle teorik olarak zordur. Ganglion hücrelerinin ve formalin-sabit ve parafin-gömülü örneklerinde lekelenebilir sinir liflerinin birçok diğer immunhistokimyasal belirteçleri kademeli olarak mainstream HD tanılama haline gelmektedir. Calretinin, HD etkilenen segmentlerin myenterik ve submukozal pleksusunda ifade edilmez olan D vitamini bağımlı kalsiyum bağlayıcı bir proteindir5. , Sinir lifleri ve glial hücreler, genellikle HD etkilenen segmentler6submukozal dokuda nöro hipertrofisi mevcut gibi neural arması türetilen hücrelerde S100 protein ifade edilir. Protein gen ürün 9,5 (PGP 9.5) güvenilir lekeler sinir lifleri ve ganglion hücreleri; PGP 9.5 boyama, özellikle izole hypoganglionosis vakalarında, kalretinin lekeleme ek olarak davranır. S100 ve PGP 9.5 ile çift boyama yanlış negatif hızını azaltabilir ve hassasiyeti artırabilir. Bir önkoşul olarak, mevcut çalışma bu roman tanı yönteminin yeterli özgüllüğü ve yüksek hassasiyetini sağlamayı amaçlamaktadır. Bizim yeni protokol aganglionik bağırsak ve hipertrofik sinir lifleri ayrımcılık için her üç işaretçileri kullandı. 318 çocuk prospektif bir çalışma laboratuvarımız tarafından yapıldı ve daha önce ayrıntılı bir protokol7olmadan yayınlandı. Bu makalede ayrıntılı protokol ve önlemler ele alınmaktadır. Doğumdan bu yana şiddetli bir defekasyon probleminden ya da diğer ortak hastalıklar haricinde kronik kabızlık olan çocuklardan gelen herhangi bir yenidoğan, rektal emiş biyopsisi (RSB) için potansiyel adaylardır. Bizim yeni protokol sadece RSBs değil, aynı zamanda tam kalınlık biopsleri veya cerrahi numuneler son tanı yapmak için boyama için uygundur.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Bu protokol Huazhong bilim ve Teknoloji Üniversitesi birlik Hastanesi araştırma etiği Kurulu tarafından onaylanmıştır.
1. rektal emiş biyopsisi
- Rektal emiş biyopsisi ile iyi eğitimli bir Pediatrik cerrah ve Rbi2 emiş Rektal biyopsi sistemini kullanarak bir asistanın Velinden bilgilendirilmiş onay aldıktan sonra gerçekleştirin.
- Aşağıdaki endikasyonlara sahip hastalarda RSB gerçekleştirin: bebeklerde mekonyum veya çocuklarda kabızlık olmadan veya uzun süreli şişkinlik geçememesidir; defekasyonu tamamlamak için parafin yağa ihtiyacı olan uzun süreli kabızlık olan çocuklar; bir enterostomi geçiren çocuklarda bilinmeyen nedenlerden dolayı bağırsak tıkanıklığı veya bağırsak perforasyonu.
Not: RSB için kontrendikasyonlar aşağıdaki gibidir: kötü fiziksel durumda olan veya RSB toleranslı olmayan ciddi semptomlara sahip çocuklar; Akut aşamalı enterokolit olan çocuklar; Tam şifa olmadan intestinal anastomoz geçiren çocuklar.
- Aşağıdaki endikasyonlara sahip hastalarda RSB gerçekleştirin: bebeklerde mekonyum veya çocuklarda kabızlık olmadan veya uzun süreli şişkinlik geçememesidir; defekasyonu tamamlamak için parafin yağa ihtiyacı olan uzun süreli kabızlık olan çocuklar; bir enterostomi geçiren çocuklarda bilinmeyen nedenlerden dolayı bağırsak tıkanıklığı veya bağırsak perforasyonu.
- Bağırsak hazırlama olarak normal bir tuzlu tutma lavmanı gerçekleştirin 36 h prosedür önce gevşek dışkı ve mukoza aşırı ödem önlemek için. Çocuk şiddetli kabızlık varsa magnezyum sülfat solüsyonu ekleyin. K vitamini (1 mg/kg) yenidoğan için yönetin.
Not: gerekli olmadığı gibi, preoperatif kan testleri yapmak veya antibiyotik yönetmek etmeyin. - Hastaya litotomi konumuna koyun. Ceket parafin yağı ile tüp yüzeyi. Arka veya lateral duvarlar bakan yan delik ile rektum içine künt uçlu tüp 4-7 cm yerleştirin.
- Yan deliğin rektal duvara yeterli yapışmasını kolaylaştırmak için tüpün üzerine nazik basınç uygulayın. Tetiği basın ve aracı hemen geri çekin.
- Biyopsi aleti, 3 cm çapı 2 mm ve diş hattının 6 cm üzerinde, anteriora ve posteriora kadar 4 emme biyopsisi elde etmek için kullanın. Numuneyi, tuz ile nemlendirilmiş gazlı bez üzerine yerleştirmek için bir iğne kullanın.
- Hastanın rektal kanamayı çıkarmaması için prosedürden 2 h 'ye kadar dikkat edin. RSB sonra ilk 24 h daha fazla rektal ve anal manipülasyon kaçının.
2. RSB bölümlerinin hazırlanması
- Dokuyu düzeltmek için 6 saat boyunca rektal emiş biyopsisi% 4 paraformaldehit olarak yerleştirin. Doku hacmine göre 5 kat daha fazla bir fiksatif hacmi kullanın.
- 11 saat boyunca patolojik doku kurutucu kullanarak dokuyu kurutur. Tüm programlanmış süreç aşağıdaki 5 adımda oluşur:
- Dokusunu formaldehit içine yerleştirin ve 1 h için düzeltin.
- 4 h için 75% etanol içinde doku yerleştirin.
- Mutlak etanol içinde doku yerleştirin (iki değişiklik, 1 h her).
- Doku mutlak etanol (iki değişiklik, 30 dk her) yerleştirin.
- Dokuyu ksilene yerleştirin (üç değişiklik, 1 saat her biri).
- Dokusunu Parafin balmumu (58-60 °C) (üç değişiklik, 1 saat her) yerleştirin. Parafin bloklarında RSB dokularını katıştırın.
- Doku tamamen tam bir bölüm uçağı ile maruz kadar bir mikrotome kullanarak parafin blokları Trim.
- Bir mikrotome ile 0,4 μm bölümlere blokları kes.
- Bölümleri düz bir plaka içine yaymak için izin vermek için her biri birkaç saniye için 45-50 °C su içine bölümleri yerleştirin.
- Parafin bölümlerini slaytlar üzerine aktarın.
- 3-5 h için 60 °C ' lik bir fırında slaytlar pişirin. çok uzun süre pişirmeyi kaçının, bu da antijenlerin kaybına yol açabilir.
- Deparafinize slaytlar Ksilin içine yerleştirin (2 değişiklikler, 15 dk her).
- Mutlak etanol içinde slaytlar hidrat, 95%, 80%, ve 75% etanol için 5 dk her. Daha sonra, onları reverse osmoz (RO)-arıtılmış suda 5 dakika daha durulayın.
3. antijen alımı
- 200 ml ro-arıtılmış su ile 4 ml EDTA antijen alma tamponunu karıştırarak kalretinin alımı için çalışma seyreltme yapın. 99 mL RO-arıtılmış su ile 1 mL sitrik asit sodyum sitrat tamponu (100x) karıştırarak S100 ve PGP 9.5 alımı için çalışma dilüsyonları yapın.
Not: Calretinin, EDTA alma çözümüyle tercihen alınabilir. Ancak, sitrik asit sodyum sitrat tampon, S100 ve PGP 9.5 alınması için daha uygundur. - Slaytları bir danışman boyama kavanozu içine yerleştirin. Alma çözeltisi ile kavanoz doldurun ve önceden ısıtılmış kaynar su banyosu içine yerleştirin. 20 dakika boyunca Kaynatıldıktan sonra, kavanozu su banyosundan çıkarın ve oda sıcaklığına kadar soğumaya bırakın. Soğutma işlemi yaklaşık 10 dakika sürer. slaytları çıkarın ve fosfat-tamponlu tuz (PBS) ile yavaşça bir kez yıkayın.
- Doku etrafında bir marker kalem ile bir daire çizin ve aşağıdaki prosedürler için ıslak bir kutu hazırlayın.
4. engelleme
- 3 mL 30% H2O2 ile 27 ml ro-arıtılmış su karıştırarak çalışma seyreltmeleri yapın.
- İki veya üç damla ekleyin 3% H2O2 çözüm dropwise doku üzerine peroksiformlar engellemek için. Çözüm daire taşması değil emin olmak için hemen H2O2 çözüm ekleyin. 20 dakika boyunca 37 °C ' lik kuluçte peroksiklenin engellenmesini gerçekleştirin.
- Slaytları PBS ile hafifçe durulayın (üç yıkanması, her biri 5 dk.).
- 5% Sığır serum albümin (BSA, 30 mL RO-arıtılmış su ile 1,5 g BSA tozu karıştırılarak hazırlanmış) ile 37 °C ' de 20 dakika boyunca slaytları engelleyin.
Not:% 3 H2O2 ile engelleme, spesifik olmayan lekenin% 95 'ini engelleyebilir ve% 5 BSA ile engelleme, spesifik olmayan lekenin% 5 'ini engelleyebilir. Güvenilir bir sonuç elde etmek için iki yöntemi birleştirin.
5. antikor reaksiyonu
- % 5 BSA çıkarın ve 50 μL primer antikor (calretinin, S100 veya PGP 9.5) ' i slayda ekleyin. Gece 4 °C ' de inküyün.
- Slaytı PBS ile yıkayın (üç kez, her biri 3 dakika).
- Bölüm için 50 μL polimer arttırıcı (reaktif A; bkz. malzeme tablosu) ekleyin ve 37 °c ' lik kuluçte 20 dakika boyunca inküye yapın. Ardından, slaytı PBS ile yıkayın (üç kez, her biri 3 dakika).
- Bölüme 50 ikincil antikor B (keçi Anti-tavşan/fare IgG ikincil antikor) μL ekleyin ve 37 °C ' lik inkübte 30 dakika boyunca Kuluçk yapın. Bölüm PBS (üç kez, 5 dk her) ile yıkayın.
6.3, 3-diaminobenzidin ve hematoxylin boyama
- 1,5 mL 'Lik bir tüpe 850 μL RO-arıtılmış su ekleyin ve 1 ml 3, 3-diaminobenzidin (DAB) çalışma çözeltisi toplam elde etmek için her reaktif için A, B ve 50 C sıralamadaki boyama reaktiflerini ( malzeme tablosunabakın) ekleyin. Eğer çökelti varsa, filtrasyon sonra çözüm kullanın.
- Doku bölümüne DAB çalışma solüsyonu bir damla ekleyin ve 3-10 dk için leke. kahverengi boyama tespit edilinceye kadar slaytları oda sıcaklığında DAB 'de Inküte et. Bir aydınlık alan mikroskop kullanarak dikkatle izleyin. DAB çalışma çözümünü ışıktan uzak tutun. Sonra, 5 dakika boyunca PBS ile slayt yıkayın.
- Yaklaşık 1 dakika boyunca çekirdekleri karşı koymak için bir damla hematoksilen ekleyin. Sonra, danışman kavanozu tutun ve yaklaşık 30-40 s için su bir damlasını altında yıkayın fazla boya kaldırılıncaya kadar. Doku bölümlerine zarar vermemek için dikkatli olun.
- 25-30 s için PBS içeren bir danışman kavanozu içinde RSB slaytları batırın. Sonra, ayırt 1% hidroklorik asit-etanol 10 s. 1 dakika boyunca PBS ile slaytlar yıkayın.
- Hidrasyon ters sırada slaytlar susuz: 75%, 80%, 95%, ve mutlak etanol (5 dk her).
- Slaytları ksillene (2 değişiklik, 5 dk.) maruz bırakmayın.
- UltraClean montaj kullanarak lamel magazini monte edin. Mikroskop kullanarak görselleştirmeden önce slaytların kurumasına izin verin.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Toplam 318 hasta çalışmaya alındı. Tüm hastalarda RSB yapıldı ve dokularda calretinin, S100 ve PGP 9.5 için lekelenmiş. Yeni protokolüne dayalı tanı 97 durumlarda HD, 213 vakalarda HD olmayan ve 8 olguda HD şüphesi vardı. 132 cerrahi hastalar arasında, 99 hastada ameliyattan sonra tam kalınlıkta numunelerin immünostürlenerek HD tanısı konuldu. S100 ve PGP 9.5 boyama, 99 hastaların% 92 ve% 93 ' in sırasıyla hipertrofik sinir gövdeleri olduğunu gösterdi. 186 hastaların diğer 83 tam kalınlık biyopsileri yapıldı ve ganglion hücrelerini gösterdi. Toplam 103 hasta muhafazakar tedaviler ile klinik olarak tedavi edildi ve HD hariç tutuldu. HD şüphesi olan 8 hastanın 3 hasta kısa segment HD olarak sınıflandırılır ve diğer 5 hasta HD olmayan olarak sınıflandırılır.
Sonuçlarımıza göre 97 hastaların başlangıçta RSB tanısı kondu. Ayrıntılı bilgi Tablo 1' de gösterilir. RSBs üzerinde yaptığımız calretinin, S100 ve PGP 9.5 için immünohistokimyasal lekenin protokolü, sırasıyla% 96,49 (% 95 güven aralığı [CI], 0.88-0,99) ve% 100 (% 95) (0.97-1.00) yüksek hassasiyet ve özgüllük oranlarına sahiptir. Pozitif tahmin değeri% 94,3 (95% CI, 0.87-0,99) ve negatif tahmin değeri% 99,1 (% 95 CI, 0.95-1.00) ' dir.
Şekil 1a ve 1B , calretinin immünostatinden sonra tipik sonuçları temsil eder. Calretinin ifade ettiği birçok ganglion hücresi, normal dokularda bulunabilir. Ancak, hiçbir ganglion hücreleri HD segmentinden doku herhangi bir alanda tespit edildi. Şekil 1C-F gösterildiği gibi, S100 ve PGP 9.5 immünostasyon submukoza hipertrofiye sinir gövdeleri gösterir, bazı küçük sinir dalları sadece granüler boyama normalde inbüt bağırsak gözlenen iken. Bizim çalışmada, hipertrofik sinir gövdeleri ≥ 40 μm çapı ile sinir lifleri vardır.
Resim 1: calretinin, PGP 9.5 ve S100 için rektal emiş biyopsisi Immunostasyon. HD etkilenen dokuda (A) ve normal olarak içsel dokuda (B) myenterik pleksuslar ganglion hücrelerinde kalretinin immunostasyon. HD etkilenen segmentin myenterik pleksuslar içinde hiçbir kalretinin boyama tespit edildi. HD etkilenen dokuda PGP 9.5 boyama, normal dokularda (D) sinir liflerinin aksine submukozada (C) yoğun hipertrofik sinir lifleri gösterdi. (E) yoğun ve belirgin S100 immünostatif HD etkilenen doku submukoza hipertrofik sinir gövdeleri gösterdi. (F) submukozada normal sinir lifleri. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.
| protein belirteçleri | HD (99) | HD olmayan (219) | ||
| ganglion hücreleri (+) | Hipertrofik sinir gövdeleri (+) | ganglion hücreleri (+) | Hipertrofik sinir gövdeleri (+) | |
| kalretinin | 2 | — | 214 | — |
| S100 | — | 91 | — | 3 |
| PGP 9.5 | — | 92 | — | 4 |
Tablo 1: rektal emiş biyopsilerinde üç protein işaretçisi için Immünhistokimyasal boyama puanları.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Burada HD tanısı için RBS bölümlerini lekelemek için üç farklı immunhistokimyasal antikorları kullanarak bir prosedür açıklanmıştır. Tanı protokollerimizin duyarlılığı% 96,49 (% 95 CI, 0.88-0,99) ve özgüllük% 100 (% 95 0.97-1.00) oldu.
Protokolün en önemli adımları RSB ve antijen-antikorların reaksiyonu. Biyopsinin büyüklüğü, lekeme doğruluğunu belirler. Küçük bir biyopsi hassas bir tanı yapmak için yeterli doku sağlamaz, büyük bir biyopsi ise daha yüksek kanama riskine neden olur. Tecrübe meselesi olarak, 2 mm çapına sahip biyopsiler en uygun boyuttadır. Antijen-antikor reaksiyonu için, antikorın uygun şekilde korunması göz ardı edilemez. Protokol adım adım takip ve yavaşça çalışma gereklidir. Ters osmoz-arıtılmış su tüm adımlarla tavsiye edilir, gözlem için daha net bir alan sağlayan ve patologlar doğru bir tanı yapmak için daha kolay hale.
Kontrast lavman, anorektal manometri ve histolojiyle biyopsi son yıllarda kullanılan üç preoperatif tanı yöntemlerdir. Takawira et al'a göre. araştırma, histolojiyle biyopsi en yüksek hassasiyet ve özgüllüğe sahiptir8. Meier-Ruge ve ark. ilk 1972 yılında HD teşhis yardımcı olmak için dondurulmuş rektal emme dokusu üzerinde asetilkolinesteraz (AChE) boyama kullanımını bildirdi9. Bu boyama yöntemi submukozada hipertrofik sinir gövdeleri algılar. Bu rapordan sonra, dünyanın dört bir yanından birçok kurum bu yöntemi HD tanısı için bir yardımcı olarak kullanmaya başladı. teşhis sınırlamaları nedeniyle, araştırmacılar da ganglion hücreleri ve sinir lifleri leke olabilir diğer işaretçileri konsantre başladı formalin-sabit ve parafin-gömülü numuneler. 2004 yılında, barshack ve ark. kalretinin ifadesi kaybı HD10aganglionik segmentlerde teşhis yardımcı olabilir bulundu. Karacan ve al. ve Guinard-Samuel et al. 2009 ' deki Protokolü tekrarladı ve kalretinin asetilkolinesteraz11,12için boyayana kadar immunhistokimyasal lekenin üstün olduğu sonucuna varıldı. 1988 yılında, HD tanısı için S100 immün boyama ilk Robey ve Al tarafından tanıtıldı . 13. Monforte-Muñoz ve al. 1998 yılında yöntem tekrarlanan ve bulundu 90% onların 20 Hirschsprung olguların daha geniş sinir lifleri vardı 40 μm14. Bu nedenle, S100 immün boyama ganglion hücreleri olmayan durumlarda bir yardımcı tanı yöntemi olarak hizmet verebilir. Ayrıca, Bachmann ve al. MAP2, calretinin, GLUT1 ve S100 için immunohistokimyasal lekeler dondurulmuş bölüm teknikleri15olarak doğru olarak güvenilir bir sonuç elde edebileceği fark etti. Ancak, 1992 yılında, Sams ve al. HD16tanısında PGP 9.5 değerini değerlendirdi. S100 daha lamina propria sinir lifleri algılayabilir rağmen, daha yüksek bir yanlış negatif oranı vardır. Bu nedenle, önceki çalışmalar önerilen gibi, HD immunhistokimyasal tanısı için birlikte PGP 9.5 ve S100 kullanmayı seçti. Geçiş bölgelerinde neuron-specific enolaz için boyama birçok olgu da myenterik ve submukozal plekbe pozitif ganglion hücreleri gösterdi, ancak bu hücreler seyrek ve küçük12. Benzer şekilde, calretinin-pozitif ganglion hücreleri küçüktür ve kümelenmiş bir oluşuma sahiptir. Önceki bir çalışmada, bazı biraz kalınlaşmış sinir gövdeleri da HD geçiş segmentlerinde tespit edilebilir olduğunu belirtti, ancak toplam kolon aganglionosis ile, sinir gövdeleri normal sınırlar içinde olabilir (< 40 μm)17. Sonuçları davayla analiz etmeli ve bu sonuçları yanlış teşhis önlemek için klinik bulgularla birleştirmeliyiz.
Bu protokol son patolojik tanıyı temsil edemez, bu yüzden her çocuk için en az bir yıllık kapsamlı klinik takip gerçekleştirdik. Ayrıca, bu protokol güvenilirliğini kanıtlamak için daha fazla örnek gerektirir.
Sonuç olarak, RSB tarafından HD tanısı, kabul edilebilir minimal yaralanma ile ideal bir Histolojik tanı sağlayan uygun bir yöntemdir. Duyarlılık, örnekleme yerinin doğru olup olmadığı ile yakından ilişkilidir. Calretinin, S100 ve PGP 9.5 için RSB immunhistokimyasal boya, ganglion hücrelerinin ve hipertrofik sinir gövdesinin algılanması konusunda hassas ve özeldir. Bu üç işaretçilerin kombinasyonu HD için daha güvenilir bir tanı yöntemi sunar.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey yok.
Acknowledgments
Yazarlar Film Laboratuvarı sağlayan onun büyük yardım için Tang weibing teşekkür ederiz. Bu yazı kamu refah araştırma tarafından desteklenmektedir ve özel fonlar Çin Ulusal Sağlık ve aile planlaması (Grant No. 201402007) alındı.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| calretinin antibody | MXB Biotechnologies | MAB-0716 170416405c | antibody: primary antibody |
| S-100 antibody | MXB Biotechnologies | Kit-0007 | antibody: primary antibody |
| PGP9.5 antibody | Shanghai long island antibody Co. Ltd | R-0457-03 | antibody: primary antibody |
| enhancer reagent | MXB Biotechnologies | KIT-9902-A 170416405a | antibody: secondary antibody A |
| Goat anti-Rabbit/Mouse IgG Secondary Antibody | MXB Biotechnologies | KIT-9902-B | antibody: secondary antibody B |
| DAB staining kit (containing reagent A B and C) | MXB Biotechnologies | DAB-0031 | staining kit |
| Heat incubator | Shanghai yiheng instrument Co. Ltd | DHP-9082 | instrument |
| Rbi2 suction rectal biopsy system | Aus Systems Pty Ltd, South Australia, Australia | CP1200 HP1000 SS1000 | instrument |
| microtome | Leica | leica RM2016 | instrument |
| citric acid sodium citrate buffer(100X) | MXB Biotechnologies | MVS-0101 | antigen retrieval buffer |
| pathological tissue dehydrator | wuhan junjie electronic Co. Ltd | JT-12F | instrument |
References
- Tam, P. K. Hirschsprung's disease: A bridge for science and surgery. Journal of Pediatric Surgery. 51 (1), 18-22 (2016).
- Heanue, T. A., Pachnis, V. Enteric nervous system development and Hirschsprung's disease: advances in genetic and stem cell studies. Nature Reviews Neuroscience. 8 (6), 466-479 (2007).
- Setiadi, J. A., Dwihantoro, A., Iskandar, K., Heriyanto, D. S., Gunadi, The utility of the hematoxylin and eosin staining in patients with suspected Hirschsprung disease. BMC Surgery. 17 (1), 71 (2017).
- Agrawal, R. K., et al. Acetylcholinesterase histochemistry (AChE) - A helpful technique in the diagnosis and in aiding the operative procedures of Hirschsprung disease. Diagnostic Pathology. 10 (1), 208 (2015).
- Kacar, A., Arikok, A. T., Azili, M. N., Ekberli Agirbas, G., Tiryaki, T. Calretinin immunohistochemistry in Hirschsprung's disease: An adjunct to formalin-based diagnosis. The Turkish Journal of Gastroenterology. 23 (3), 226-233 (2012).
- Bachmann, L., et al. Immunohistochemical panel for the diagnosis of Hirschsprung's disease using antibodies to MAP2, calretinin, GLUT1 and S100. Histopathology. 66 (6), 824-835 (2015).
- Jiang, M., et al. S100 and protein gene product 9.5 immunostaining of rectal suction biopsies in the diagnosis of Hirschsprung' disease. American Journal of Translational Research. 8 (7), 3159 (2016).
- Takawira, C., D'Agostini, S., Shenouda, S., Persad, R., Sergi, C. Laboratory procedures update on Hirschsprung disease. Journal of Pediatric Gastroenterology & Nutrition. 60 (5), 598 (2015).
- Meier-Ruge, W., et al. Acetylcholinesterase activity in suction biopsies of the rectum in the diagnosis of Hirschsprung's disease. Journal of Pediatric Surgery. 7 (1), 11-17 (1972).
- Barshack, I., Fridman, E., Goldberg, I., Chowers, Y., Kopolovic, J. The loss of calretinin expression indicates aganglionosis in Hirschsprung's disease. Journal of Clinical Pathology. 57 (7), 712-716 (2004).
- Kapur, R. P. Can We Stop Looking? Immunohistochemistry and the Diagnosis of Hirschsprung Disease. American Journal of Clinical Pathology. 126 (1), 9-12 (2006).
- Guinardsamuel, V., et al. Calretinin immunohistochemistry: a simple and efficient tool to diagnose Hirschsprung disease. Modern Pathology. 22 (10), 1379-1384 (2009).
- Robey, S. S., Kuhajda, F. P., Yardley, J. H. Immunoperoxidase stains of ganglion cells and abnormal mucosal nerve proliferations in Hirschsprung's disease. Human Pathology. 19 (4), 432-437 (1988).
- Monforte-Muñoz, H., Gonzalez-Gomez, I., Rowland, J. M., Landing, B. H. Increased submucosal nerve trunk caliber in aganglionosis: a "positive" and objective finding in suction biopsies and segmental resections in Hirschsprung's disease. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 122 (8), 721-725 (1998).
- Bachmann, L., et al. Immunohistochemical panel for the diagnosis of Hirschsprung's disease using antibodies to MAP2, calretinin, GLUT1 and S100. Histopathology. 66 (6), 824-835 (2015).
- Sams, V. R., Bobrow, L. G., Happerfield, L., Keeling, J. Evaluation of PGP9.5 in the diagnosis of Hirschsprung's disease. Journal of Pathology. 168 (1), 55 (1992).
- Huang, Y., Anupama, B., Zheng, S., Xiao, X., Chen, L. The expression of enteric nerve markers and nerve innervation in total colonic aganglionosis. International Journal of Surgical Pathology. 19 (3), 303 (2011).
