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Cancer Research

Cartographie des ganglions sentinelles et biopsie du cancer de l’endomètre à un stade précoce avec laparoscopie

Published: August 19, 2021 doi: 10.3791/63044
Automatic Translation
1, 1, 1, 1, 1, 1
1Obstetrics and Gynecology Hospital of Fudan University

Summary

Ce protocole décrit l’identification et la résection des ganglions sentinelles pour rendre l’opération aussi facile et peu invasive que possible.

Abstract

La cartographie et la biopsie des ganglions sentinelles (SLN) sont une technique prometteuse pour visualiser et évaluer l’état des ganglions lymphatiques dans le cancer. Cette approche a été recommandée pour les patients atteints d’un cancer de l’endomètre (EC) à faible risque par des directives internationales faisant autorité, mais elle n’a pas été réalisée de manière générale en Chine et dans le monde. Ce travail vise à décrire des procédures détaillées de cartographie et de biopsie SLN afin de promouvoir l’application clinique. La cartographie SLN et l’ultra-marquage pathologique postopératoire ont été effectués chez un patient atteint d’EC à faible risque en utilisant un colorant vert d’indocyanine (ICG) pour suivre les LNN sous laparoscopie et les réséquer complètement pour l’ultra-marquage. En conclusion, ce protocole décrit les détails de l’injection d’ICG, de la cartographie et de la biopsie SLN chez les patients atteints d’EC en fonction des expériences acquises au cours de la pratique clinique.

Introduction

Le cancer de l’endomètre (EC) est l’une des maladies les plus courantes en oncologie gynécologique, et son incidence augmentede 1,2. La chirurgie est le traitement de première intention de l’EC3,4à un stade précoce. L’évaluation des métastases ganglionnaires est une partie essentielle de la stadification chirurgicale dans l’EC. L’étude 33 du Gynecologic Oncology Group (GOG) a démontré que les métastases ganglionnaires sont associées à un mauvais pronostic5.

En tant que nouvelle technique essentielle pour évaluer les métastases ganglionnaires, la cartographie et la biopsie des ganglions sentinelles (SLN) ont émergé ces dernières années et ont été recommandées pour être utilisées chez les patients atteints d’EC apparemment confinée à l’utérus conformément aux lignes directrices du National Comprehensive Cancer Network (NCCN) pour le cancer del’utérus6,7,8,9,10. La cartographie SLN a également été largement appliquée dans des tumeurs telles que le cancer du sein11,le cancer du poumon12,le cancer de la thyroïde13et le mélanome14. L’ultra-cerf pathologique a atteint de bonnes performances dans le cancer colorectal et gynécologique15,16,17 et est recommandé par les directives européennes faisant autorité18. Bien que les principes de la cartographie SLN pour la stadification EC aient été fournis dans les directives internationales10,19, il n’y a pas de manipulations détaillées de la chirurgie dans d’autres travaux présents.

Ce travail présente le protocole de cartographie détaillée de la SLN et de biopsie avec ICG chez une femme de 28 ans qui avait reçu un diagnostic clinique d’EC à un stade précoce, améliorant et favorisant ainsi le diagnostic des patients.

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Protocol

Toutes les procédures chirurgicales liées au patient décrit ici ont été approuvées par les comités d’éthique de l’hôpital d’obstétrique et de gynécologie de l’Université Fudan à Shanghai, en Chine. Le consentement éclairé a été obtenu du patient.

1. Indications de la cartographie SLN avec ICG chez les patients EC

  1. S’assurer que les patientes reçoivent un diagnostic clinique d’EC primaire confiné à l’utérus avec des facteurs de faible risque (carcinomes endométrioïdes de grade 1 ou 2, lésion préopératoire de l’endomètre ≤2 cm et invasion myométrique <50 %).
  2. Assurez-vous que les patients ne sont pas allergiques au révélateur (ICG).
  3. S’assurer que les patients n’ont pas subi de curage ganglionnaire rétropéritonéal pour quelque raison que ce soit avant la maladie.
  4. S’assurer que les patients comprennent les procédures chirurgicales SLN et ont signé les formulaires de consentement chirurgical.
  5. S’assurer que les patients ne peuvent pas effectuer de lymphadénectomie systématique, mais une cartographie SLN pour la stadification chirurgicale pour quelque raison que ce soit.
  6. Assurez-vous que les patients sont inscrits à l’essai clinique dans le groupe de cartographie SLN s’ils présentent une EC à risque intermédiaire-élevé.

2. Préparation du patient

  1. Préparation intestinale préopératoire
    1. Fournir des laxatifs pour la préparation intestinale et le lavement aux patients qui ont subi plusieurs chirurgies pelviennes et abdominales.
      REMARQUE: La préparation intestinale n’est pas nécessaire pour les patients sans antécédents de chirurgie intestinale.
  2. Préparation du régime préopératoire
    1. Évitez les aliments solides pendant 8 h avant l’opération, évitez un régime semi-liquide pendant 6 h avant la procédure et arrêtez de boire pendant 2 h avant la procédure.
  3. Anesthésie
    1. Utilisez des agents intraveineux (p. ex. le propofol) pour produire l’inconscience et ajoutez des bloqueurs neuromusculaires par inhalation ou par voie intraveineuse pour atteindre la profondeur d’anesthésie nécessaire. Utilisez une combinaison d’administrations pour l’entretien de l’anesthésie afin de s’assurer que le patient est inconscient et complètement détendu avec des signes vitaux stables tout au long de l’opération.
      REMARQUE: L’utilisation des anesthésiques suivra les règles du département d’anesthésiologie de chaque centre.
  4. Position
    1. Une fois que le patient est anesthésié, laissez le patient être en position de lithotomie avec la position de Trendelenburg.
  5. Préparez la peau au site chirurgical. Effectuer la préparation de la peau avec une préparation antiseptique (p. ex., povidone-iode) de manière organisée à partir du site prévu de l’incision irradiant vers les bords de la zone d’exposition cutanée prévue, avec la limite supérieure du processus xiphoïde plat, les bords latéraux des lignes mi-axillaires et la limite inférieure de la partie supérieure de la cuisse (Figure 1).

3. Préparation de colorant fluorescent

  1. Préparation de vert d’indocyanine (ICG)
    1. Dissoudre 25 mg d’ICG dans 20 mL d’eau stérile pour une concentration finale de 1,25 mg/mL et agiter doucement.

4. Injection d’ICG

  1. Utilisez une seringue de 2 mL (avec une taille d’aiguille de 0,6 mm x 32 mm TW LB) pour injecter 0,5 mL de l’ICG préparé à 3 heures et 9 heures de l’ectocervix au niveau du col de l’utérus superficiel (2-3 mm) et profond (1-2 cm), respectivement (Figure 2).
    REMARQUE: Dans certains cas, les positions ectocervix de 6 et 12 heures peuvent également être sélectionnées. L’ICG doit être évité lorsqu’il est injecté dans le kyste de Nessler.

5. Identification peropératoire du SLN

  1. Préparation avant le développement
    1. Saisissez la peau autour de l’ombilic avec deux pinces à serviette pour élever la paroi abdominale. Faites une incision d’environ 10 mm de large dans la peau de l’ombilic et à travers le fascia et le péritoine.
    2. Insérez un trocart de 10 mm à travers l’ombilic, produisant le pneumopéritoine avec une pression intrapéritonéale d’environ 13-14 mmHg. Insérez un laparoscope (avec source lumineuse et caméras) via le trocart.
    3. Faites trois autres petites incisions d’environ 5 mm de large dans le bas-ventre et insérez des trocarts de 5 mm à travers la paroi abdominale dans la cavité. Insérer des instruments de manipulation via les trois autres trocarts de 5 mm (Figure 1).
    4. Identifier les trompes de Fallope sous laparoscopie. Saisissez et élevez les tubes près des fimbriae et attachez une ligature autour du tube avec une suture de soie 2-0 / T.
      REMARQUE: Cette étape est utilisée pour empêcher les cellules tumorales de l’endomètre de pénétrer dans la cavité abdominale le long des trompes de Fallope à partir de la cavité utérine.
    5. Prenez les lavages péritonéaux avec 100 ml de solution saline normale avant toute manipulation ou manipulation importante de l’utérus. Recueillir le liquide de lavage pour la cytologie.
    6. Ouvrez le mode de fluorescence du système d’imagerie par fluorescence endoscopique (voir étape 5.2). Soulevez unilatéralement le ligament infundibulum pelvien et l’utérus pour révéler le péritoine latéral et rechercher les vaisseaux lymphatiques de fluorescence.
      REMARQUE: S’il n’y a pas de vaisseaux lymphatiques de fluorescence identifiés, il est permis d’injecter de l’ICG à plusieurs reprises.
  2. Cartographie SLN
    1. Préparation du système d’imagerie par fluorescence endoscopique (PINPOINT).
    2. Ajustez le mode de fluorescence au laser proche infrarouge (lumière d’excitation, 805 nm) pour obtenir le meilleur champ de vision.
      REMARQUE: Le système d’imagerie par fluorescence endoscopique dispose de plusieurs modes, tels que la lumière blanche HD (haute définition), la fluorescence SPY, la fluorescence PINPOINT et le mode SPY CSF, et le chirurgien peut passer à un autre mode si nécessaire.
  3. Identifier les NL sous laparoscopie par fluorescence.
    1. Tenez un scalpel à ultrasons et une pince édentée avec chaque main (effectuée par le chirurgien).
      REMARQUE: L’assistant saisit des pinces édentées pour coopérer avec le chirurgien.
    2. Soulevez et ouvrez le péritoine, séparez la graisse sous-péritonéale et les tissus conjonctifs pour révéler les structures nécessaires, y compris l’uretère, les vaisseaux iliaques internes et les nerfs obturateurs selon l’indication des lignes lymphatiques de fluorescence verte, ainsi que pour les protéger des blessures.
      REMARQUE: Un scalpel à ultrasons avec activation est utilisé pour couper les tissus, tandis qu’un scalpel inactivé peut être utilisé pour la dissection contondante.
    3. Observez les LGN recouverts par le péritoine environ 5 à 10 minutes après l’injection d’ICG.
      REMARQUE: En règle générale, les LNN sont présents avec les vaisseaux lymphatiques de fluorescence des deux côtés du col de l’utérus jusqu’à au moins la hauteur du vaisseau sanguin iliaque commun. Parfois, les SLN émergent à côté de l’aorte abdominale. L’équipement PINPOINT dispose de plusieurs modes, notamment la lumière blanche, la fluorescence et les modes noir et blanc. La commutation entre plusieurs modes permet de déterminer l’emplacement des SNJ.

6. Biopsie peropératoire de la SLN

  1. Localisez le SLN, le premier ganglion lymphatique cartographié le long du drainage du paramétrie dans chaque hémi-bassin, et utilisez plusieurs modes pour le confirmer. Exposez complètement les SLN pour une résection complète (Figure 3).
  2. Saisir et élever le SLN par une pince édentée et effectuer une résection complète du ganglion lymphatique le long de la périphérie du ganglion lymphatique à la lumière blanche.
    REMARQUE: Évitez les dommages aux ganglions lymphatiques, qui pourraient causer une contamination par les cellules tumorales.
  3. Placez les LLN retirés dans la fosse obturatrice ou mettez-les dans un petit sac simple. Une fois que l’utérus est complètement retiré et retiré par le vagin, les NL bilatéraux sont retirés entièrement par le vagin plutôt que par l’ouverture du trocart de 5 mm pour éviter la fragmentation.
  4. Envoyez les ganglions lymphatiques enlevés au service de pathologie pour une ultra-cicatrisation pathologique.
  5. Pendant l’opération, réséquez simultanément les ganglions lymphatiques élargis ou suspects et envoyez-les pour un examen pathologique.
  6. Consignez l’emplacement des SLN sur des formulaires normalisés de collecte de données peropératoires.
  7. Si la cartographie SLN échoue d’un côté ou des deux côtés, effectuer une lymphadénectomie spécifique au côté conformément aux lignes directrices du NCCN.
    REMARQUE: S’il n’y a pas de nœud fluorescent dans l’hémipelvis, continuez à chercher le nœud cartographié le long des vaisseaux lymphatiques jusqu’à la région para-aortique en raison de la possibilité de cartographie dans des endroits inattendus. Un échec de la cartographie SLN de chaque côté signifie qu’aucun nœud vert fluorescent n’est visible avec ou sans vaisseaux lymphatiques verts fluorescents sous le système de laparoscope à fluorescence de chaque côté du bassin et de la région para-aortique.
  8. Effectuer une hystérectomie totale plus une salpingectomie bilatérale.
    REMARQUE: Étant donné qu’il s’agissait d’une patiente de 28 ans atteinte d’un cancer endométrioïde à un stade précoce qui avait un fort désir de préservation de la fertilité et de cancer de l’ovaire d’apparence normale et n’avait aucun antécédent familial apparent de cancer du sein / de l’ovaire ou de syndrome de Lynch, la préservation de l’ovaire pourrait être envisagée.
  9. Habiter un tube de drainage pour le liquide résiduel potentiel dans le bassin.
  10. Retirez le laparoscope et libérez le gaz de l’abdomen. Fermez les incisions dans l’ombilic et le bas-ventre avec un seul point de suture de soie 2-0 / T.

7. Ultrastaging SLN postopératoire20

  1. Coupez le SLN le long du diamètre maximal et de la micro-section à 50 μm de distance pour obtenir trois lames d’hématoxyline-éosine (H & E) et une lame d’immunohistochimie (IHC) avec anticorps anti-cytokératine (AE1 / AE3).
    REMARQUE: L’ultra-marquage implique une section série mince du SLN brut. La cytokératine IHC n’est pas essentielle. Aucun protocole standard n’est destiné à l’ultrastaging.
  2. Les métastases ganglionnaires ont été décrites comme des macrométastases (>2 mm), des micrométastases (0,2-2,0 mm) ou des cellules tumorales isolées (ITC) selon la classification de l’American Joint Committee on Cancer (AJCC)21.
  3. Signalez la pathologie postopératoire avec des détails sur la taille de la tumeur, le type et le grade histologiques, l’invasion myométrique, l’atteinte de l’espace lymphovasculaire, l’atteinte stromale cervicale, le nombre et l’état des ganglions lymphatiques et la cytologie des lavages péritonéaux.

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Representative Results

La patiente dans le cas présent était une femme de 28 ans avec des saignements vaginaux irréguliers pendant 2 ans, et elle a été diagnostiquée avec une anomalie de l’endomètre il y a 4 mois. L’échographie transvaginale a révélé une épaisseur d’endomètre hétérogène avec une masse annexielle. L’imagerie par résonance magnétique (IRM) abdominopalvique a démontré une masse de 51 mm x 56 mm x 88 mm avec une limite claire dans la cavité utérine sous un signal T2WI élevé dans un hôpital local. Ensuite, elle a été évaluée par hystéroscopie et la lésion de l’endomètre a été disséquée. Les résultats pathologiques ont montré un cancer de l’endomètre de grade 1. Ce patient est venu à l’hôpital pour un traitement supplémentaire avec un fort besoin de fertilité. Après une évaluation complète (y compris un autre examen IRM qui a montré un signal irrégulier de l’endomètre à l’hôpital, figure 4)et la signature d’un consentement éclairé, elle a subi un traitement de préservation de la fertilité. Cependant, la deuxième hystéroscopie à l’hôpital a révélé une invasion myométrique superficielle, une contre-indication de la préservation de la fertilité. En fin de compte, après que la patiente a été informée de son état, elle a décidé de subir une hystérectomie totale + salpingectomie bilatérale + cartographie SLN.

Le col de l’utérus a été injecté avec de l’ICG dilué à des positions superficielles et profondes de 3 et 9 heures, respectivement(Figure 2). Ensuite, les vaisseaux lymphatiques et les LNN ont été marqués par fluorescence, ce qui a permis leur reconnaissance sous différents modes de couleur (vert pour le mode fluorescence et bleu et rouge pour le mode segmenté en couleur) dans le système d’imagerie par fluorescence endoscopique Pinpoint (Figure 3). Par la suite, le service de pathologie a procédé à la coloration H&E et IHC du SLN(Figure 5 et Figure 6)et à l’ultra-marquage du SLN. Les résultats de la mise en scène ont révélé une sortie de métastases négative.

Figure 1
Figure 1: Portée de préparation antiseptique de la cartographie SLN dans l’EC avec laparoscopie. La flèche noire indique les lignes mi-axillaires. Les cercles rouges numérotés indiquent les places de quatre trocarts sur la paroi abdominale. Le cercle n ° 2 est pour le trocart de 10 mm. Le reste des cercles est pour les trocarts de 5 mm. La distance entre les cercles n ° 2 et 3 est d’environ quatre largeurs de doigts. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 2
Figure 2: Illustration de la cartographie SLN dans EC. (A) Diagramme anatomique du SLN dans le bassin. La ligne vert foncé représente la direction du drainage lymphatique. Les flèches indiquent les ganglions lymphatiques SLN dans ce cas (la flèche jaune présente le ganglion lymphatique situé entre les vaisseaux iliaques externes et internes droits, la flèche brune montre le SLN dans le foramen obturateur gauche et la flèche noire montre un ganglion lymphatique élargi sur la veine iliaque gauche). La ligne bleue plate indique les directions de l’horloge. ( B )Emplacementsdes points d’injection dans le col de l’utérus. ICG = vert indocyanine. Des points verts indiquent les points d’injection. Le carré bleu indique les positions 3 et 9 heures de l’ectocervix. (C) Diagramme du col de l’utérus agrandi: les points verts indiquent des injections cervicales superficielles et profondes. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 3
Figure 3: Imagerie peropératoire du SLN en mode EC. (A) Fluorescence. La flèche verte indique le SLN en mode fluorescence. (B) Mode de fluorescence segmenté en couleur. La flèche jaune indique le ganglion lymphatique en mode segmenté en couleur. (C) Mode de floraison des ganglions sentinelles de ce cas. (D) Mode de fluorescence segmenté en couleur des ganglions sentinelles de ce cas. HD: Haute définition; LCR : Fluorescence segmentée en couleur. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 4
Figure 4: L’IRM du patient EC. (A) Signal irrégulier de l’endomètre situé dans la cavité inférieure de l’utérus (flèches) sur T1WI. (B) Signal irrégulier de l’endomètre (flèches) sur T2WI. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 5
Figure 5: Coloration H&E de la coloration EC et IHC de la SLN. (A) Coloration H&E de la myoinvasion dans la CE. (B) Coloration H&E de la SLN. (C) Coloration IHC de AE1 / AE3 (AE1 / AE3 peut tacher les myofibroblastes et les cellules musculaires lisses et indiquer les cellules tumorales résiduelles) dans SLN. 2,5x et 5x font référence au grossissement au microscope. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 6
Figure 6: Coloration IHC des patients EC. (A) Coloration IHC du récepteur des œstrogènes (ER) avec cinq grossissements. (B) Coloration IHC du récepteur de la progestérone (PR). (C) Coloration IHC de P53. (D) Coloration IHC du Ki67. (E) Coloration IHC de MLH1. (F) Coloration IHC de MSH2. (G) Coloration IHC de PMS2. (H) Coloration IHC du MSH6. Toutes les images sont capturées avec un grossissement 5x. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Tableau 1 : Comparaison entre les traceurs de colorant bleu, d’ICG et de Tc99. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce tableau.

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Discussion

La cartographie et la biopsie du SLN sont une approche de curage ganglionnaire plus sélective et adaptée qui est appliquée en clinique depuis près de 20 ans. Dans le domaine de la CE, la cartographie et la biopsie SLN ont été de plus en plus recommandées par plusieurs lignes directrices en raison de leur grande efficacité diagnostique dans la CE à un stade précoce, atteignant des taux de détection globaux et bilatéraux de 89% à 95% et 52% à 82%, respectivement, avec une sensibilité de 84% à 100% et une valeur prédictive négative de 97% à 100%22. La présente étude rapporte un patient EC typique qui a effectué une cartographie SLN et décrit le protocole SLN en détail, de l’injection ICG à la biopsie SLN.

La cartographie SLN est réalisable avec divers colorants. Des recherches antérieures sur la stadification des ganglions lymphatiques des cancers du sein et de l’endomètre ont appliqué un colorant bleu (généralement du bleu de méthylène ou du bleu d’isosulfane (ISB), des radiocolloïdes, ou les deux23,24,25,26), atteignant de bonnes performances et précision. Comme le montre la lumière blanche, les colorants bleus mentionnés ci-dessus ont été largement utilisés en raison de leur commodité et des exigences d’équipement les moins complexes. Cependant, le colorant ICG avait des taux de détection SLN plus élevés (83%) que l’ISB (64%)26. Ainsi, l’ICG est considéré comme une meilleure option pour une détection réussie. La comparaison entre différents colorants est indiquée dans le tableau 1 selon le consensus SGO27.

En plus des colorants de suivi, les positions d’injection affectent également les taux de détection de la cartographie SLN. L’injection de colorant dans le col de l’utérus ne peut pas refléter entièrement le drainage lymphatique, bien que la procédure soit relativement simple et populaire dans les essais cliniques28,29. Une injection hystéroscopique nécessite plus d’habileté et est située près de la lésion tumorale. Le site myométrique est difficile d’accès en peropératoire, ce qui entraîne un faible taux prédictif négatif de 87,50% et un taux de faux négatifs de 33,30%30. Dans les études utilisant l’injection cervicale, la plage de sensibilité était de 62,5% à 97,5%, tandis que l’injection de myomètre était de 66,70% à 94,10%31. Une revue systématique comprenant 55 études éligibles a révélé un taux de détection global de 81% (l’intervalle de confiance à 95% est de 77 à 84)32. La double détection fonctionne mieux que la détection simple, quel que soit le lieu d’injection33. Dans l’étude clinique en cours (NCT04276532), où 92 patients EC ont été recrutés, le taux de détection de la cartographie SLN atteignait 91,3%, avec une sensibilité totale de 73,3%. La combinaison d’injections cervicales et de fond d’œil a atteint un taux de détection para-aortique plus élevé (40,4%) que les injections cervicales seules (4,4%), ce qui indique que l’injection combinée est plus efficace.

Il existe de nombreuses raisons possibles pour une détection SLN insuffisante. Anatomiquement, le kyste de Naboth et le bassin anormal postopératoire affectent la précision de la cartographie. Un excès de tissu adipeux près du col de l’utérus et une sténose cervicale due au vieillissement entraînent également un échec de la cartographie. Des facteurs tels que l’indice de masse corporelle (IMC), l’utilisation de colorant ISB et les nœuds élargis sont associés à l’échec du mappage SLN34. De manière controversée, une étude prospective incluant 110 patients EC a rapporté que l’obésité et la présence de métastases ganglionnaires n’étaient pas associées à un échec de détection35. L’invasion de l’espace lymphovasculaire pourrait également entraîner l’échec de la cartographie SLN.

Les lignes directrices internationales considèrent la cartographie et la biopsie du SLN comme des procéduresnécessaires10,18. Cependant, il existe des débats sur l’opportunité d’effectuer une cartographie SLN chez les patients EC à risque intermédiaire-élevé. Les patients atteints d’un carcinome sévère, d’un carcinome à cellules claires et d’un carcinosarcome présentent un risque plus élevé de métastases ganglionnaires36. Au contraire, certains essais ont déterminé que la cartographie SLN est une alternative sûre à la lymphadénectomie systématique en raison de la moindre occurrence decomplications 37,38 et de la survie globale équivalente37. Davantage d’essais cliniques de haute qualité sont nécessaires pour déterminer les normes d’inclusion optimales.

En conclusion, la cartographie et la biopsie SLN sont de meilleures options que la lymphadénectomie systématique pour rendre l’opération aussi simple et peu invasive que possible. Il peut même améliorer le stade pathologique de la maladie en utilisant une méthode d’ultra-mise en scène pathologique pour guider plus précisément le traitement adjuvant postopératoire. Pour maximiser la spécificité et la sensibilité de la détection SLN, ce protocole fournit des conseils pour la cartographie SLN et la biopsie afin d’assurer un meilleur résultat de la chirurgie.

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Disclosures

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgments

Ce travail a été soutenu en partie par des subventions de la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (81772777), du projet d’orientation médicale de la Commission des sciences et de la technologie de Shanghai (18411963700), du plan de recherche clinique du SHDC (No. SHDC2020CR4079); Shanghai Pujiang Talents Project (17PJ1401400). Nous remercions l’aide opportune fournie par Fenghua Ma du département de radiologie pour les images IRM et Chao Wang du département de pathologie pour les images pathologiques de l’hôpital d’obstétrique et de gynécologie de l’Université Fudan.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2-mL syringe Becton, Dickinson and Company, USA 301940
Coagulation forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory D0A010
Fluorescence microscope Olympus IX73
Harmonic scalpel Soering GmbH SONOCA190
Hematoxylin-eosin staining Beyotime Biotechnologies Corporation,CN C0107
Immunohistochemical cytokeratin staining MXB Biotechnologies Corporation, CN Kit-0020
Indocyanine green (ICG) Dandong Medical Innovation Pharmaceutical Corporation. 3599-32-4
Pararaffin Sangon biotech Co., Ltd. A601889
Pinpoint Endoscopic Fluorescence Imaging system Novadaq Technoloies Bonita, Springs, FL NA
Propofol Injection Fresenius Kabi Deutschland GmbH D-61346 Bad Homburg v.d.H., Germany H20030124
Silk Braided non-absorbable suture Shanghai Ethicon SA854G
Silk thread Beijing AKIN AIEN International Medical Technology Co.,Ltd. VCPP71D
Suction-Irrigation Tube Shanghai SMAF YX980D
Toothless forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory J41010
Trocar ETHICON Co,. Ltd, USA B10LT, B5LT

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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Cancer Research numéro 174 ganglion sentinelle cartographie biopsie cancer de l’endomètre laparoscopie
Cartographie des ganglions sentinelles et biopsie du cancer de l’endomètre à un stade précoce avec laparoscopie
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Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., … More

Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., Chen, X., Wang, C. Sentinel Lymph Node Mapping and Biopsy for Endometrial Cancer at Early Stage with Laparoscopy. J. Vis. Exp. (174), e63044, doi:10.3791/63044 (2021).

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